UNIDAD 2 BIOSGURIDAD Y METODOS DIAGNOSTICOS

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Luana Sader 
 
 
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BIOSEGURIDAD 
 
Es la aplicación de conocimientos, técnicas y equipamientos para proteger a personas, laboratorios, 
áreas hospitalarias y medio ambiente de la exposición a agentes potencialmente infecciosos o 
considerados de riesgo biológico. 
 
 
El centro para el control y prevención de enfermedades (CDC) de los Estados Unidos, específica 
cuatro niveles de bioseguridad para el manejo de agentes biológicos, los cuales son conocidos como 
Niveles de bioseguridad del 1 al 4. 
 
• GRUPO 1: riesgo individual y poblacional escaso o nulo 
Bacillos cereus, E. coli K12, Lactobacillus acidophilus, Virus Distemper (moquillo) canino. 
Pocas probabilidades de provocar enfermedades en el hombre. 
 
• GRUPO 2: riesgo individual moderado, riesgo poblacional bajo 
Clostridium spp., Listeria monocytogenes, virus sarampión, virus hepatitis, Salmonella typhi. 
Enfermedades del hombre, de bajo riesgo para el personal de laboratorio, en las que existe medidas 
terapéuticas y preventivas eficaces. 
 
• GRUPO 3: M. tuberculosis, Brucella spp., Rickettsia spp., Virus rabia. 
Riesgo individual elevado, riesgo poblacional bajo existen medidas terapéuticas y 
preventivas eficaces. 
 
• GRUPO 4: virus de la fiebre aftosa, virus Machupo. 
Riesgo individual y poblacional elevado, no existen medidas terapéuticas ni preventivas eficaces. 
En Argentina, solo hay un laboratorio nivel 4, el laboratorio de Senasa. 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
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CONTROL DEL DESARROLLO MICROBIANO 
 
Conceptos claves para la vida general 
 
ESTERILIZACIÓN: 
proceso por el que se alcanza la muerte de todas las formas de vida microbianas, incluyendo 
bacterias y sus formas esporuladas altamente resistentes. Se realiza por métodos físicos y 
químicos. 
Físicos: 
• Incineración, el material se quema. eliminación de desechos infecciosos. 
• Calor húmedo, autoclave objetos resistentes al calor. Quedan 30min a 121°C a 1atm.Calor 
seco, estufa, materiales que se dañarían en una autoclave (pueden ser materiales inertes o 
biológicos). Quedan 1-3horas a 160-180°C 
• Radiación gamma (i), radiación de corta longitud de onda y alta energía (material desechable) 
• Radiación UV (n.i) NO ionizante de bajo poder de penetracion, superficies. 
• Filtración, pasaje de substancias por membranas. 
 
Químicos: Óxido de etileno, H2O2 vaporizado (plasma gaseoso), Glutaraldehído, Formaldehído. 
 
 
DESINFECCIÓN: 
es el proceso por el cual los microorganismos patógenos son destruidos a excepción de las 
esporas. Se realiza por métodos físicos y químicos. 
Físicos 
• Ebullición (100ºC x 30 min) 
• Pasteurización (leche) que puede ser 65ºC 30 min o 72ºC 15 seg. y luego enfriamiento rápido 
a 10ºC 
• Radiación UV 
 
Químicos 
• ALTO PODER: Son esterilizantes (destruyen las esporas), actúan modificando de forma 
irreversible grupos funcionales de proteínas y ácidos nucleicos - Glutaraldehido 2%, peróxido de 
hidrogeno (3-25%), Formaldehido 8% 
• MEDIO PODER: Elimina M.TBC, hongos y virus no lipídicos. NO elimina las esporas. están 
los Clorogenos y los yodoformos (iodo y alcohol iodado) que son oxidantes: actúan a nivel de 
proteínas y ácidos nucleicos y los alcoholes y fenoles que actúan a nivel de la membrana plasmática. 
• BAJO PODER: Compuestos de amonio cuaternario, anfóteros (detergentes) y las sales de 
plata que son agentes catiónicos, y actúan sobre la membrana plasmática. 
 
La selección del agente desinfectante depende del tipo de objeto a desinfectar 
CRÍTICOS - catéteres, agujas hipodérmicas, equipos de hemodiálisis 
SEMICRÍTICOS - termómetros (de uso rectal y oral), fibroscopios, tubos endotraqueales, 
broncoscopios 
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NO CRITÍCOS - Estetoscopios, máscaras faciales y humidificadores 
 
 
ANTISEPSIA: 
es el proceso que, por su baja toxicidad, se utiliza para la destrucción de microorganismos 
presentes sobre la superficie cutaneomucosa. Se realiza por métodos químicos. 
 
Un antiséptico se recomienda para: 
• Disminuir la colonización por gérmenes 
• Preparar la piel para procedimientos invasivos 
• Atender pacientes inmunosuprimidos 
• Lavado quirúrgico de manos 
• Preparación prequirúrgica de la piel 
• Luego de manipular material contaminado 
• Prevenir infecciones intrahospitalarias (IIH) 
Antisépticos en uso 
• Alcohol 70% 
• Clorhexidina 2% 
• Povidona Yodada 10% 
• triclosán 0,5% 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
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DIAGNOSTICO MICROBIOLOGICO 
El diagnóstico microbiológico se basa en un conjunto de procedimientos que permiten identificar la 
causa (etiología) de una enfermedad infecciosa. 
 
Es importante entender que, aunque el laboratorio de microbiología clinica desempeña un papel 
importante en el diagnóstico y el control de las enfermedades infecciosas, la capacidad del 
laboratorio de detección del patógeno está vinculada a la calidad de la muestra recogida en el 
paciente, el medio de transporte de la muestra al laboratorio y las técnicas ultilizaas para demostrar 
la presencia del microorganismo. 
 
Incluso los protocolos diagnósticos más sofisticados carecen de valor cuando la muestra recogida no 
es representativa del foco de la infección. Muchas muestras enviadas a los laboratorios para su 
análisis estan mal tomadas o se contaminan durante el proceso de recogida con microorganismos 
que colonizan la piel y mucosas. 
 
Una muestra contaminada implica perdida de materiales del laboratorio, una nueva toma de muestra 
y demora en el tratamiento del paciente. 
 
Por eso al tomar una muestra tenemos que tener en cuenta, como tomarla, como mandarla al 
laboratorio, que estamos buscando a fin de indicar los medios de cultivo o pruebas que tenemos que 
pedir para que el laboratorio pueda saber cómo proceder. 
 
DIAGNOSTICO 
 
Es el conjunto de procedimientos que se toma desde el momento que entra el paciente. 
 
Incluye anamnesis y evaluación clínica: Epidemiología, signos y síntomas, análisis clínicos, 
diagnóstico por imágenes, diagnóstico presuntivo y microbiológico de certeza. 
 
DIAGNOSTICO EM MICROBIOLOGIA 
 
Se divide en MÉTODOS DE DIAGNÓSTICO DIRECTO 
 
Son procedimientos que implican la demostración directa de un agente (presencia) o sus distintos 
componentes en las muestras clínicas de un paciente. 
Puede ser la visualización del microorganismo, de antígenos o aun del efecto citopático. 
 
 
Y MÉTODOS DE DIAGNÓSTICO INDIRECTO 
 
Permiten demostrar que el agente ha tomado contacto con el sistema inmune del individuo. Es una 
“huella” que indica que el patógeno está o estuvo presente en algún momento. No necesariamente 
demuestra que el paciente está infectado, si no que tuvo contacto con el patógeno. 
 
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PROPIEDADES DE LAS PRUEBAS DX - ESTADISTICA 
 
VALOR DE LOS RESULTADOS 
Cuando hablamos de pruebas diagnóstico, describimos características de las pruebas como 
SENSIBILIDAD, ESPECIFICIDAD, VALOR PREDICTIVO POSITIVO, VALOR PREDICTIVO 
NEGATIVO. Conocer estas características nos permite saber en qué momento las usamos, la 
probabilidad que el resultado de la prueba diagnóstica sea positivo. 
 
 
VERDADERO POSITIVO 
 - Condición presente y se diagnostica el paciente como enfermo. 
VERDADERO NEGATIVO 
 - La condición no está presente y se diagnostica el paciente como sano 
FALSO NEGATIVO 
 - La condición está presente y se diagnostica el paciente como sano 
FALSO POSITIVO 
 - El paciente no presenta la enfermedad y se diagnostica como enfermo 
 
 
 
VALOR PREDICTIVO POSITIVO = A / (A + B)- Cantidad de individuos que tienen la enfermedad/ condición y presentan la prueba positiva 
VALOR PREDICTIVO NEGATIVO = D / (C + D) 
 - proporción de sujetos con la prueba negativa que no presentan la enfermedad/condición 
SENSIBILIDAD = A / (A + C) 
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 - Es la capacidad que tiene una prueba diagnóstica para detectar los que tienen la 
condición/patologia. Es la proporción de individuos enfermos que poseen una prueba positiva. 
ESPECIFICIDAD = D / (B + D) 
 - La capacidad que tiene una prueba para detectar los que no tienen la condición/patologia. 
 
PREVALENCIA 
Número de infectados y enfermos (VP) en una población 
 
 ¿Qué me dicen estos resultados? 
 
 Podemos inferir que la Sensibilidad y la especificidad representan la validez de una prueba 
diagnóstica y que el VPP y el VPN representan la seguridad de una prueba diagnóstica. 
 
- PRUEBAS DE TAMIZAJE (SCREENING) 
 
Son pruebas rápidas, de bajo costo, que puede ser aplicadas a toda, o gran parte de la población de 
forma rápida. 
NO necesitan mucho entrenamiento o conocimiento para realizarlas. 
Baja especificidad 
 
- EVALUACIÓN COMPLETA 
 
Se evalúa todo el paciente, historia, historia clínica, resultados de laboratorio nuevos y antiguos para 
llegar una diagnóstico correcto, de certeza. 
Se demanda mucha energia, mucho tiempo y profesionales altamente entrenados. 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
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DIAGNOSTICO BACTERIANO 
• DIRECTO Veo el microorganismo (la bacteria) 
o Observo al microscopio optico 
o Cultivo 
o antígenos 
o Genoma bacteriano 
• INDIRECTO (detección de Anticuerpos séricos específicos) 
o Por Inmunofluorescencia 
o Aglutinación (Elisa) 
 
Para hacer el DIAGNOSTICO DE BACTERIAS tenemos que seguir algunos pasos: 
1. TOMA DE MUESTRA 
• RESPIRATORIA 
o Hisopado, aspirado, esputo, lavado bonquiolar, cepillado bronquio alveolar. 
• URINARIA 
o Micción, al acecho, Punción de sonda, punción suprapúbica 
• GASTROINTESTINAL 
o deposición, hisopado rectal 
• SNC 
o LCR, sangre 
• SISTEMICO 
o Sangre 
o Hemocultivos 
• GENITAL 
o Hisopado, improntas de ulceras 
 
HISOPADO PUNCION 
>CONTENIDO DE FLORA, por lo que hay 
que diferencias entre la flora y patógeno 
Cultivos cuantitativos 
<FLORA 
MO y cultivo con >significado 
 
2. TRANSPORTE Y CONSERVACION 
Lo tiene que proteger ante los 
• Cambios de temperatura 
• Falta de humedad 
• Desarrollo de flora (contaminación) 
• Anaerobiosis o aerobiosis 
 
 
 
 
 
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3. ¿COMO CONSERVO LA MUESTRA? 
 
TEMPERATURA AMBIENTE HELADERA 
Exudado faríngeo 
Sangre 
LCR 
Exudado genital, ocular, piel 
Muestra para anaerobiosis 
Orina 
Esputo 
Heces 
 
4. PROCESAMIENTO 
 
POR MICROSCOPIA 
DX DE CERTEZA AUXILIAR 
Inmunofluorescencia directa, veo los 
antígenos de la bacteria marcados 
Campo oscuro (Treponema) 
Fresco 
GRAM 
Ziehl neelsen 
 
POR CULTIVO 
MEDIO LIQUIDO MEDIO SOLIDO 
PARA ENRIQUECER (AUMENTAR 
LA MUESTRA) 
PARA AISLAR 
Medios selectivos y medios diferenciales 
 
5. IDENTIFICACIÓN 
• Pruebas bioquímicas 
• identificación de antígenos 
o Serotipificacion 
o Aglutinación 
 
• detección de resistencias/susceptibilidad 
o Antibiograma 
▪ Por difusión (método de kirby) 
▪ Por cantidad (1/2 liquido) 
o detección de secuencias de ADN/ARN, genes de resistencia antibiótica 
Como por ejemplo M. Tuberculosis > Rifampicina 
 
 
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DIAGNOSTICO MICOLOGICO 
¿Que tengo en cuenta al evaluar? 
• Historia clínica del paciente 
• Epidemiologia 
• Brotes 
• Sensibilidad fúngica 
o Comportamiento de las drogas antimicóticas "in vitro" 
¿Cuáles formas de diagnóstico tenemos? 
• DIRECTO 
 
o Cultivo 
o Microscopia óptica 
o Estructura molecular 
o moléculas estructurales o ácidos nucleicos 
1. TOMA DE MUESTRA - CONSERVACION 
• Tengo que conocer las características clínicas y evolutivas de las lesiones. Antes de tomar 
una muestra, ya deberíamos saber que está en esta muestra o que esperamos encontrar, a 
fin de saber cuál es la mejor forma de toma de muestra para cada lesión. 
 
 Es importante evaluar el riesgo y la morbilidad asociado a la toma de muestra. 
 
 El paciente no puede haber empezado ningún tratamiento o estar usando cremas, talcos 
ungüentos, cosméticos (esmaltes, cremas, perfumes) TODO lo que pueda perjudicar el 
diagnostico. 
 
 
o MICOSIS SUPERFICIALES 
• Como solamente afectan la parte más externa de la piel, la capa cornea y sus faneras. 
 
 La toma de muestra será la retirada de escamas por raspado o escarificación. 
 
 En caso sea pelo/vello es importante tener la raíz del pelo. 
 
 Se toma con material estéril, se conserva en un frasco estéril, a T° AMB y se debe procesar 
antes de las 24hs. 
 
Toma por escamas de piel 
Toma por raspado 
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o SUBCULTANEAS Y PROFUNDAS 
• Entre las micosis subcutáneas y profundas tenemos una gran variedad de muestras 
 
 En el caso de las subcutáneas o las profundas con manifestaciones cutáneas, se suele 
obtener por BIOPSIAS de preferencia profundas. La incisión deberá llegar hasta encontrar 
tejido subcutáneo sano. 
 
 El procesamiento debería ser inmediato o lo más rápido posible, y su conservación deberá 
ser en formol para la microscopia o en solución salina si el examen directo es en fresco. 
 
 Para los fluidos como ESPUTO, LCR, tienen distinto niveles de contaminación que se debe 
tener en cuenta. 
 
 La SANGRE, se debe usar anticoagulantes para la visualización de los hongos, ya que en la 
sangre coagulada los hongos que generan invasión intracelular pueden no ser visualizados. 
 
 Las muestras deben ser conservadas en recipiente estéril y procesada casi inmediatamente 
para sus óptimos resultados de identificación. 
 
 Ya los EXUDADOS son recolectados por punción- aspiración o si drenan por sí solos la 
simples recolección basta. 
 
 
2. EXAMEN EN FRESCO - DIRECTO 
• Tiene baja sensibilidad y alta especificidad, tengo que saber los antecedentes del paciente, el 
estado y origen de la muestra. 
 
 
¿PARA QUE SIRVE EL EXAMEN DIRECTO? 
o Veo si son hongos u otros microorganismos (bacterias) 
o Diferencio levaduras y micelios 
o Diferencio los tipos de micelios 
Todas las características que puedo diferenciar me van a ayudar en el momento de armar un cultivo. 
 
Los tejidos queratinizados como escamas, polvo de uñas, y raspados de córnea deben ser tratados 
con KOH (hidróxido de potasio) al 10-20% en el portaobjetos para la degradación de la queratina. 
 
 
COLORACION 
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o GRAM 
• En lo común se puede usar una tinción de GRAM principalmente para diferenciar de 
infecciones por bacterias. 
 
 
o GIEMSA 
• Se usa para encontrar estructuras intracelulares que fueron fagocitadas por 
polimorfonucleares o macrófagos. 
 
 
o ZIEHL-NEELSEN 
• Se usa igual que las bacterias para las especies nicóticas que son Acido-alcohol resistentes. 
 
 también se usa el KINYOUN que es una variante del ZN. 
 
 
o GROMORI- GROCOTT 
• Se usa la oxidación de la plata como forma de ver las estructuras nicóticas que toman una 
tonalidad negra, se usa especialmente para neumomicosis. 
 
 
o AZUL DE METILENO 
• Se usa de forma de rutina, ya que es una forma barata y fácil de identificar estructuras 
nicóticas principalmente las micosis 
 
 
o BLANCO DE CALCOFLUOR 
• Es una tinción de fluorescencia, aunquees una tinción simple de hacerse, se necesita que el 
microscopio que se observa tenga luz UV, para que se resalte las estructuras que presentan 
alta afinidad como la quitina y algunos polisacáridos. 
 
 
o CULTIVOS 
• Así como las bacterias podemos usar medios líquidos y sólidos. 
SABOURAUD 
• El agar Sabouraud es un medio de cultivo básico que por sus características funciona como 
medio de enriquecimiento para hongos y que, en caso de contener cloranfenicol u otro 
antibiótico, se convierte en un medio selectivo para los mismos. El medio contiene peptonas1 
y una elevada concentración de glucosa que favorece el crecimiento de los hongos sobre las 
bacterias. 
 
 
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BHI - BRAIN- HEART INFUSION - INFUSION CEREBRO CORAZON 
• Es un medio de cultivo para que se desarrollen organismos fastidiosos, se puede usar en 
medio liquido o en agar. 
 Para los hongos dismórficos (que tienen distintas características con la variación de T°) se cultiva en 
Sabouraud a 27-28°C y BHI a 37°C, simulando así sus dos formas; ambiental e invasora. 
 
 BIOMARCADORES 
Puedo buscar distintos ANTIGENOS de los hongos para poder identificar la especie. NO se usa 
en todos los tipos de muestra y tampoco se usa en para todos los hongos. 
 
 Se puede buscar: 
 
o GALACTOMANANOS: ASPERGILLUS (en suero y LCR) 
o BETAGLUCANOS 
o GXM (GLUCOROXILOMANANOS): CRIPTOCOCCUS (LCR) 
 
Son métodos rápidos que permiten los resultados en pocas horas, con bajos costos y una 
sensibilidad y especificidad relativamente altas, lo que permite arrancar rápidamente un 
tratamiento. 
 
DETECCION DE ACIDOS NUCLEICOS 
No se hace de rutina, no es standard 
 
PCR y RT-PCR 
 Se puede usar para aspergillus 
 
 
3. INDIRECTOS 
Busco la respuesta del sistema inmune ante la presencia de los hongos. 
Anticuerpos específicos (IgM y IgG), se usan más que nada, en Argentina para las micosis 
sistémicas endémicas, hay dos formas que se pueden hacer por: 
 
 
• TECNICAS DE PRECIPITACIÓN 
Son de baja sensibilidad y alta especificidad, son dependentes del antígeno que se usa, por lo 
tanto, hay una variación grande entre laboratorios. 
 
 
• TECNICAS DE ELISA 
Anticuerpos específicos (IgE) se usa para Aspergillus, ya que este hongo provoca una reacción 
específica, la aspergilosis broncopulmonar alérgica. 
Que es necesaria la cuantificación de los valores de IgE para el tratamiento y seguimiento. 
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• INTRADERMOREACCIONES 
Son reacciones que se hacen en la piel del paciente, normalmente antebrazo. Se inyecta 
de forma intradérmica un antígeno conocido a fin de medir la respuesta inmune del 
paciente. 
Se usa, en hongos, para las micosis sistémicas endémicas. 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
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DIAGNOSTICO VIROLOGICO 
Antes de arrancar con los virus tenemos que mencionar los 
 
- POSTULADOS DE KOCH: 
1. El agente patógeno debe estar presente en los animales enfermos y ausente en los sanos 
2. El agente debe ser cultivado en un cultivo axénico puro aislado del cuerpo del animal. 
3. El agente aislado en un cultivo axénico debe provocar la enfermedad en un animal susceptible 
al ser inoculado. 
4. El agente debe ser aislado de nuevo de las lesiones producidas en los animales de 
experimentación y ser exactamente el mismo al aislado originalmente. 
 
 
 
 
- POSTULADOS DE RIVERS 
Thomas Milton Rivers, 1937 - Modifica los postulados de Koch (válidos en infecciones bacterianas), 
para que sean validos en el diagnóstico de los virus: 
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1. Aislamiento del virus desde el hospedador enfermo. 
2. Aislamiento de virus en cultivo en células. 
3. Prueba de tamaño por filtrado. 
4. Producción de enfermedad comparable cuando el virus cultivado es inoculado para infectar 
animales de experimentación. 
5. Re-aislamiento del mismo virus desde el animal de experimentación. 
6. Detección de una respuesta inmune específica contra el virus. 
Siguiendo ambos postulados podemos identificar cualquier patógeno infectológico. 
 
- DX VIROLOGICO 
 
 Para el diagnóstico viral es crucial para realizar el diagnóstico de laboratorio de un virus, 
cualquiera sea el método empleado, es la toma y el procesamiento de una muestra clínica adecuada. 
 
 Como en el resto de la Infectología, el diagnóstico puede ser visualizando el microorganismo y su 
efecto en el cuerpo o las marcas inmunológicas. 
 
 El método a ser usado varia con el momento de la enfermedad del paciente: 
 
 
 En nuestro cuadro esquemático: 
 
 AMARILLO: los pacientes SUSCEPTIBLES son pacientes que no estuvieron en contacto con el 
microorganismo y por lo tanto sus pruebas directas e indirectas serán negativas 
 
 ROJO: los pacientes que están infectados o tienen en su cuerpo el microorganismo, de modo que 
las pruebas directas serán positivas y las indirectas van a variar con el momento de la 
enfermedad/infección. 
 
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 ROSA: los portadores también tendrán sus pruebas positivas, pero puede ser que tengan menos 
concentración de patógenos. 
 
 VERDE: los pacientes curados son aquellos que directamente no tienen más el patógeno, pero si 
van a responder + a las pruebas indirectas. 
 
• DIRECTO 
 
 Voy a buscar el microorganismo, sus antígenos o su efecto citopático 
 
 - CULTIVO CELULAR 
 
 Es el estudio que se obtiene a partir a tejidos humanos o de mamíferos que se mantienen por 
generaciones para que pierdan sus características del tejido y se puedan replicar indefinidamente. 
 
 Se usan los cultivos celulares para ver los efectos citopáticos que los virus pueden provocar. 
 
 - MICROSCOPIA OPTICA 
 
 Veo lo que causa el virus por medio de un microscopio óptico, como el aumento no es suficiente 
no logro ver el virus. (SALVO LOS VIRUS POX, que es el virus más grande y el único que se puede 
visualizar) 
 
 Puedo diagnosticar el virus por: 
 
 EFECTO CITOPATICO: los cambios bioquímicos y moleculares, morfológicos y de viabilidad 
celular, visibles a microscopía óptica, causados durante el ciclo de replicación viral. 
 
 A lo largo del ciclo viral intracelular, desde que un virus reconoce a una célula y penetra en su 
interior hasta la lisis o muerte celular, prácticamente todos los componentes y orgánulos celulares 
sufren alteraciones drásticas a nivel molecular, muchas de las cuales tienen manifestación 
morfológica. 
 
 La mayor parte de las observaciones del ECP se han realizado en células infectadas en cultivo, 
en las que se aprecia: pérdida de adherencia al sustrato, inhibición por contacto, agregación celular, 
redondeamiento celular, formación de sincitios, cuerpos de inclusión citosólicos, transformación 
celular, lisis, etc. 
 
 Aunque todos los virus líticos producen efecto citopático, puede observarse una gran diversidad 
de manifestaciones. 
 
 
 
 
 
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VIRUS EFECTO CITOPATICO 
 
PICORNAVIRUS Picnosis celular, proliferación de 
membranas 
 
HERPESVIRUS proliferación de membranas nuclear 
 
PAPILOMAVIRUS Vacuolas en el citoplasma 
 
PARAMIXOVIRUS, CORONAVIRUS Sincicios (células gigantes multinucleadas 
 
por fusión celular) 
 
 
HERPESVIRUS, RHABDOVIRUS, 
Redondeamiento y desprendimiento 
celular, 
 
 
ADENOVIRUS, PICORNAVIRUS 
cuerpos de inclusión 
 
ADENOVIRUS Viriones enel núcleo 
 
RHABDOVIRUS Nucleocápsides en citoplasma (cuerpos de 
negri) 
 
 
POXVIRUS 
 
Inclusiones en el citoplasma (cuerpos de 
guarnieri) 
 
 
Los tiempos para los efectos varían entre 24-48hs (herpes, enterobios) y varias semanas 
(citomegalovirus, rubeola). 
 
 NO TODOS LOS VIRUS CAUSAN EFECTOS CITOPATICOS 
 
 Para evidenciar los efectos en MO, se pueden usar tinciones como: 
 
 - GIEMSA 
 
-TEST DE TZANCK: Es un examen directo que permite confirmar cualquier forma de infección 
por Herpesvirus, tanto las causadas por herpes simple tipos I y II como por virus varicela-zóster, 
antes de iniciar un tratamiento antiviral empírico. Su papel diagnóstico resulta especialmente 
relevante en las formas clínicas atípicas, como ocurre en el paciente inmunodeprimido, en el que 
la infección herpética puede mostrarse en forma de úlceras de evolución tórpida en lugar de las 
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clásicas vesículas, o en aquellos casos en los que el diagnóstico de sospecha es poco frecuente 
para la edad del paciente. 
 Consiste en la toma de una muestra del contenido líquido de las vesículas herpéticas o del frotis 
de la base de las lesiones ulcero-costrosas. Esta muestra se fija en un portaobjetos y se tiñe con 
tinción de Giemsa o azul de toluidina, con el fin de observar el efecto citopático que ejerce el virus. A 
pesar de ser una técnica clásica, el TT sigue teniendo una gran utilidad clínica, y representa un 
método sencillo y económico de confirmar de forma rápida el origen herpético de una lesión cutánea, 
sobre todo en ámbitos médicos en los que no se disponga de técnicas como PCR o real time PCR 
para el diagnóstico de las infecciones herpética 
 
 - PAPNICOLAU: También llamada citología vaginal, es una exploración complementaria que se 
realiza para diagnosticar el cáncer cervicouterino. También se puede realizar citología anal para 
detección de cáncer anorrectal. 
 Las células son tomadas por raspado de la abertura del cuello uterino se examinan bajo un 
microscopio. 
 
 
• MICROSCOPIA ELECTRONICA 
 
 Puedo ver el virus, en realidad una partícula viral, en su forma característica: Hay dos formas de 
microscopia de barrido y de transmisión. 
 
Tinción directa: Se realiza por corte ultrafino de la muestra y coloración con colorantes de electrones 
densos, luego puedo buscar la partícula viral en el citoplasma o en el núcleo celular. La desventaja 
es que la reducida área histológica de análisis. 
 
Tinción indirecta o negativa: Para virus en suspensión, hago una especie de foto o negativo de la 
foto y veo esta impresión sobre el área de visualización. 
 
 
• DETECCION DE ANTIGENOS Y ACIDOS NUCLEICOS 
 
 Son métodos rápidos de diagnóstico, ya que tengo el resultado en pocas horas. 
 
 Como los virus son formados por proteínas y ácidos nucleicos, puedo usar anticuerpos 
específicos para marcarlos desde fluidos biológicos, sangre, orina, material fecal, orina, LCR. 
 
 Sea por inmunofluorescencia directa o indirecta, inmunoensayos, ELISA, WESTERN, PCR. 
 
 
 
 
 
 
 
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• INDIRECTO - SEROLOGICO 
 
 metodologías de detección de anticuerpos específicos contra antígenos virales. Se usa para 
evaluar infecciones virales agudas o crónicas, o conocer el estado inmunitario de un individuo o de 
una población. 
 
 IgM y seroconversión IgG: En agudas 
 
 IgG: Para un crónicas, diagnostico retrospectivo. 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
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DIAGNOSTICO PARASITOLOGICO 
 
¿Qué estadio del parásitos encontramos? 
Tenemos que recordar el estadio de transmisión del parasito que vamos a buscar en la muestra. 
• COPROPARASITOLOGICO - MUESTRA DE MATERIA FECAL 
 
1. TOMA DE MUESTRA La muestra suele ser emitida espontanea, y es la mejor para el examen 
coprológico. Al paciente se lo prepara con dieta, se suspende los tratamientos previos Se 
debe recogerse en un recipiente (frasco o caja plástica) seco y limpio. 
 
FRESCO: No se debe mezclar con orina y debe enviarse al laboratorio inmediatamente. 
 
SERIADO: Se recogen varias muestras seriadas para aumentar la concentración, tenemos un 
frasco con una mezcla de formol para que se mantenga la muestra "bien" y un último frasco con 
solución fisiológica donde los parásitos están "vivos". 
 
 
2. PROCESAMIENTO y CONSERVACIÓN 
 
Se debe llegar al laboratorio lo más pronto posible, ya que la muestra puede perder valor, 
características morfológicas: putrefacción, multiplicación bacteriana, pueden hacer que la muestra 
sea inadecuada se pasa después de un tiempo prolongado. 
 
 Se puede refrigerar, por algunas horas o un día entero. en la heladera a 4°C, pero no en el 
congelador. 
 
 FORMOL: Se usa formol diluido al 5-10%, disminuye el mal olor y fija los parásitos. 
 
 
3. EXAMEN COPROLOGICO DIRECTO 
 
MACROSCOPICO: la consistencia de las heces fecales y clasificarlas en liquidas, blandas o 
duras. Buscamos por sangre, moco, restos alimentarios o helmintos. 
 
 MICROSCOPICO: es simples y trabajoso, se coloca eosina, una gota de solución salina y otra 
de Lugol. Se hace una suspensión y esta mezcla es lo que se pone en al microscopio, los 
parásitos móviles se va a teñir con eosina y el Lugol resalta los núcleos de los protozoarios y da 
una coloración café a los huevos y larvas. 
 
 Se puede observar leucocitos, eritrocitos, cristales de charcot-leyden (formados por la 
desintegración de los eosinófilos y se asocian a la "alergia" que causan las parasitosis. 
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• COPROGRAMA 
 Se llama así al estudio más completo de la materia fecal, que incluye, además 
del estudio microscópico (COPROPASITOLOGICO), se hacen análisis 
bioquímicos. 
-pH 
-Azucares reductores 
-Sangre oculta 
 
 
Cuando la cantidad de sangre en la materia fecal es muy pequeña para verse en la microscopia, 
se puede detectar por formas bioquímicas por reaccionar con los derivados de la hemoglobina. 
 
• Prueba hemoglobina humana 
 
 
METODOS DE RECUENTO DE HUEVOS 
 
Sirve para cuantificar el número de huevos por gramo de materias fecales. Permite clasificar las 
parasitosis en intensidades, leves, medianas e intensas. también podemos evaluar la eficacia de 
los tratamientos. 
 
 
RECUENTO EN PLACA MICROSCOPICA 
Es el procedimiento más simple, pero menos exacto. El recuento se hace recorriendo toda la 
lámina (de 22x22mm). El numero huevos se multiplica por 500. 
 
 
TECNICA DE KATO-KATZ 
Es el que más se usa, está homologado por la OMS, es una método japones que luego fue 
actualizado por Katz. Se analiza aproximadamente 50mg de materia fecal, por eso también se 
llama FROTIS GRUESO. 
 
 Es como una concentración por la cantidad de materia fecal examinada. 
 
 
METODOS DE CONCENTRACIÓN 
Se usa para aumentar el número de parásitos en el volumen de la materia fecal que se examina, 
por métodos de sedimentación o flotación. 
 
 
 
 
COLORACION 
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Aunque no se utilizan coloraciones permanentes en el da de rutina de las parasitosis, pueden ser 
útiles en alguns casos especiales, para diagnosticar de especies, para almacenar o remitir a 
laboratorios especializados. 
-Hematoxilina 
-Tricromica 
-Kinyoun 
• METODOS ESPECIALES 
 
o METODO DE GRAHAM 
Se usa para tomar muestra, procesar y mirar al microscopio al Enterobius (oxiuros), que es un 
parasito que tiene hábitos de salir para poner huevos en la región perianal, durante la noche.Se aplica una cinta engomada para retirar los huevos. La misma cinta se pega en el portaobjetos 
y se observa al microscopio. 
 
 
o ESTUDIO DEL FLUJO VAGINAL 
Si se hace en fresco es mejor. Si la muestra no se examina de inmediato de debe conservar en 
solución salina. 
 
 Se pueden teñir con los mismos colorantes que otros exámenes: GRAM, papnicolaou. 
 
 
o PARASITOSIS SANGUINEAS 
MALARIA: GOTA GRUESA 
 
 se obtiene la sangre por punción. Se hace la coloración con GIEMSA, FIELD, WRIGTH, y luego 
se hace un recuento de Plasmodium. 
 
 
o PARASITOSIS TISULARES 
Para la toma de muestra, se hace biopsia del lugar infectado de acuerdo con la localización del 
parasito. Luego se puede colorear y mirar al microscopio. 
 
 Algunas parasitosis por su localización no se hace biopsia, se usan métodos de diagnóstico por 
imágenes, como Equinococcus o cisticercosis. 
 
SEROLOGIA 
DIRECTO: No se suele medir antígenos o acido nucleicos, hay pocos disponibles. 
 
 INDIRECTO: En casos de parasitosis la IgE esta aumentada, pero es completamente 
inespecífico. 
 
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 Las pruebas serológicas son muy limitadas ya que no me dicen carga parasitaria, ya que la 
carga parasitaria no es proporcional a la respuesta inmune. 
 
 Reacciones cruzadas 
 
 Especificidad / Sensibilidad son muy variables. 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
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MEDIOS DE CULTIVO 
Las bases del diagnóstico microbiano son los medios de cultivo y las tinciones. 
Por eso es importante conocer los medios, sus propiedades y fundamentos. Así podemos saber cuál 
es la mejor forma de cultivar cada muestra. 
Usamos los cultivos para como una forma de obtener colonias puras de una muestra de 
microorganismos desconocidos. 
Los medios de cultivo pueden ser solidos o líquidos y colocados en placas de Petri o tubos de 
ensayo. 
 
 
Los medios los podemos clasificar en 
• DEFINIDOS 
Son medios que sabemos exactamente las cantidades de cada ingrediente que tenemos en él. 
Suelen ser medios más simples. 
• INDEFINIDOS 
Son medios más complejos, en que no todas las cantidades están cuantificadas. 
• SELECTIVOS 
Son medios que seleccionan un género/especie usando algún componente inhibitorio en su 
composición. Podemos usar como ejemplo poner antibióticos en un medio seria selectivo para las 
bacterias que son resistentes a él. 
• DIFERENCIALES 
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Son medios que presentan un cambio fisiológico - bioquimico cuando un organismo especifico crece, 
el más común es el cambio de color. 
• AGAR COMUN o AGAR BASICO o aun AGAR 
NUTRITIVO. 
El medio más básico que se usa. Es un medio común 
compuesto de proteínas y azucares que permite el 
crecimiento de prácticamente todos los microorganismos. 
 
 
• AGAR SANGRE 
Es un agar al que se le suma sangre de oveja que es muy nutritivo para casi todas las especies de 
bacterias Gram positivas siendo selectivo ya que inhibe el crecimiento de casi todas las especies 
negativas por tener antibioticos específicos para ellas y es diferencial porque podemos ver 3 tipos de 
hemolisis alfa, beta y gamma. 
Se usa para observar y aislar especies clínicas de staphylo y strepto 
 
 
 
 
 
 
 
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• AGAR CHOCOLATE 
Es un medio en el cual pongo sangre calentada a 
mi mezcla de agar. 
La función es dar factor X y V a las bacterias. A la 
diferencia del Agar sangre estas son bacterias 
que no pueden hemolizar la sangre. 
Se usa casi exclusivamente para Neisseria y 
Haemophylus 
 
 
 
 
• MAC CONKEY 
Es un medio usado para aislar y diferenciar las distintas especies de Enterobacteriaceae, basado en 
la habilidad de fermentar lactosa. 
Es un medio selectivo y diferencial, con lactosa, sales biliares y colorantes rojos y violeta. 
Las sales biliares y el colorante violeta inhiben el crecimiento de las bacterias Gram positivas. Ya el 
colorante rojo, se mantiene sin color si el pH es mayor a 6.8 y en rojo si el pH es menor que 6.8, si la 
bacteria fermenta la lactosa los desechos de esta fermentación acidifican el medio y vemos la placa 
roja, si bacteria no es fermentadora toda la placa queda incolora. 
 
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• MANITOL HIPER SALADO - 
CHAPMAN 
Es usado en casi exclusividad para 
Staphylococcus Aureus, aunque se puede 
usar para otras especies staphylo 
Su fundamento es contener manitol, sal y un 
indicador de pH el colorante phenol rojo que 
es 
amarillo en pH ácidos <6.8 
rojo entre 7.4 y 8.4 
rosa arriba de 8.4 
Es selectivo ya que solamente el género de las stahylo logra crecer en un medio tan salado y 
diferencial ya que las especies patógenas de staphylo son fermentadoras de manitol lo que acidifica 
el medio cambiándolo de color a amarillo. 
 
 
 
• SALMONELLA SHIGELLA (AGAR 
SS) 
Se fundamenta en la capacidad de 
fermentar carbohidratos y tiosulfato de sodio 
que es una fuente de azufre. 
Por un lado, vamos a ver un cambio de color 
del medio si la bacteria fermenta la lactosa, 
pasando de rojo a incolora. Esas son tanto 
shigella cuanta salmonella. 
Por otro lado, si la bacteria puede dar el 
siguiente paso y reducir el tiosulfato se 
verán puntos negros en el centro de las 
colonias. Como Proteus o Salmonella. 
 
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• TIOGLICOLATO 
Es un medio que se usa en líquido para 
bacterias anaerobias o microaerofilicas. 
Tienen una variedad de suplementos 
dependiendo de la especie que se necesita 
cultivar. 
Los más importantes son el tioglicolato de 
sodio y L-cisteina que son responsables por 
reducir el O2 a agua. 
 
 
 
• CALDO DE CARNE COCIDA 
Es un caldo que se usa específicamente para el desarrollo de 
las especies de Clostridium patogeno. 
Como el propio medio es capaz de ser anaeróbico por sí 
solo, puedo cultivarlo en una incubadora común sin la 
necesidad de equipamientos que mantengan la anaerobiosis. 
además de la carne en realidad corazón vacuno, hay peptona 
y dextrosa. 
El color negruzco del medio y la producción de gas, me indica 
indirectamente que el crecimiento proteolítico. 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
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• LOWENSTEIN-JENSEN 
Es un medio que se usa para las especies de Micobacterias, excepto Leprae ya que no crece en 
medios. 
Se usa el rojo congo y/o verde malaquita para inhibir el crecimiento de otras especies contaminantes. 
 
 
 
 
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• TSI (AGAR HIERRO TRIPLE AZUCAR) 
El medio se usa para la diferenciación de las enterobacterias, en base a la fermentación de Hidratos 
de Carbono (Glucosa, lactosa y sacarosa) y la producción de ácido sulfhídrico. 
La fermentación de los azucares hace que el medio cambie de color al amarillo por la baja de pH. 
El tiosulfato de sodio se reduce a sulfuro de hidrogeno y luego reacciona con una sal de hierro 
proporcionando el color negro del sulfuro de hierro. 
 
 
 
 
 
 
 
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TINCIONES 
Las distintas tinciones se usan para evidenciar estructuras que luego se observan en la microscopia 
óptica. Algunas tinciones son simples con un colorante, otras son complicadas conmuchos 
colorantes y pasos. 
• GRAM 
Es la tinción más común en la microbiología, se usa para 
clasificar las bacterias en positivas y negativas, 
dependiendo del color que se tiñen. 
 
 
Se usan dos colorantes que pueden 
variar, pero siempre un violeta y un 
rosa. 
El fundamento de la técnica de 
GRAM está la pared de las bacterias. 
Las + tienen una pared 
marcadamente más grande con 
muchos peptidoglucanos que 
incorporan el primer pigmento el 
violeta y no se destiñen con el Lugol y 
luego no se pinta de nuevo con la 
safranina. 
Ya las bacterias - aunque sean 
tenidas por el color violeta, con el 
Lugol y alcohol se destiñen para ser 
pintadas con el colorante rosa. 
Aunque las levaduras también se 
pintan, no es una tinción apropiada 
para hongos. 
 
 
 
 
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• GIEMSA 
La tinción de Giemsa es un tipo de coloración 
de muestras clínicas, basada en la mezcla de 
colorantes ácidos y básicos. 
Este método tiene utilidad sobre todo para 
poner de manifiesto las rickettsias localizadas 
dentro de las células huéspedes. La coloración 
de Giemsa se emplea también para teñir frotis 
de sangre en el examen para protozoos. Se 
pueden emplear, como variaciones, otras 
coloraciones como es la técnica de cito 
concentración para parásitos sanguíneos, la 
cual tiene un bajo coste y ofrece la posibilidad 
de aislar e identificar en el mismo sedimento el 
parásito principal. 
El fundamento de la técnica de Giemsa está en sus varios colorantes: los tintes neutros utilizados 
combinan el azul de metileno, Azure A y Azure B como tintes básicos, y la eosina como tinte ácido, lo 
que da una amplia gama de colores. El azul de metileno y el Azure son colorantes metacromáticos, 
de ahí que muchas estructuras se tiñan de púrpura y no de azul. El pH de la solución de coloración 
es crítico y se debe ajustar idealmente según diversos fijadores. La gama del pH debe estar entre 6.4 
y 6.9. 
Células de la serie roja: Rosa pálido 
Núcleos: Azul 
H. Pylori, hongos y otras bacterias: Azul 
Mastocitos: Azul / Rosa pálido 
 
 
 
 
 
 
 
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• ZIEHL- NEELSEN 
La tinción de Ziehl-Neelsen es una técnica de tinción diferencial rápida y económica, usada para la 
identificación de bacterias ácido-alcohol resistentes (BAAR), como M. tuberculosis o el filo 
Apicomplexa (coccidios intestinales) entre otros. Fue descrita por primera vez por dos médicos 
alemanes: Franz Ziehl, un bacteriólogo, y Friedrich Neelsen, un patólogo. 
Las paredes celulares de ciertas bacterias contienen ácidos grasos que les confieren la propiedad de 
resistir la decoloración con alcohol-ácido, después de la tinción con colorantes básicos. Por esto se 
denominan ácido-alcohol resistentes. La coloración clásica de Ziehl-Neelsen requiere calentamiento 
para que el colorante atraviese la pared bacteriana. Al suspender el calentamiento y enfriar con 
agua, provoca una nueva solidificación de los ácidos grasos de modo que el colorante ya no puede 
salir de las bacterias. Las bacterias que resisten la decoloración son de color rojo y las que no, se 
ven de color azul ya que se utiliza azul de metileno como tinción de contraste. 
 
Se utiliza para teñir micobacterias y otros microorganismos acidorresistentes. Los microorganismos 
se tiñen con carbolfucsina básica y resisten a la descoloración con soluciones de ácido-alcohol. Se 
realiza contratinción del fondo con azul de metileno. Los microorganismos aparecen de color rojo 
sobre un fondo azul claro. La captación de carbolfucsina precisa el calentamiento de la muestra 
(tinción acidorresistente caliente). 
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• KINYOUN 
Tinción acidorresistente en frío (no precisa calentamiento). 
El fundamento de esta tinción se basa en la resistencia al alcohol ácido. El reactivo principal es la 
fucsina fenicada, la cual tiene la propiedad de unirse a los ácidos carboxílicos de la pared celular de 
las micobacterias y algunos parásitos. El fenol es capaz de disolver los lípidos de la pared celular, 
permitiendo la entrada del colorante fucsina, el cual se queda fijo, incluso en presencia de alcohol 
ácido. 
 
 
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• CALCOFLOUR 
Es una tinción fluorescente que se usa para unirse con los polímeros polisacáridos. 
Se utiliza para detectar elementos fúngicos o parasitarios como el género Pneumocystis. El colorante 
se une a la celulosa y la quitina de las paredes celulares, se puede mezclar el colorante con KOH. 
 
• TINTA CHINA 
Es una tinción negativa de cápsulas. Para realizar una tinción negativa de cápsulas para observar, 
precisamente, las cápsulas de una levadura. 
La tinción negativa de cápsulas es una tinción estructural, ya que pone de manifiesto las cápsulas y 
no tiñe los microorganismos. Tiñe el fondo de color negruzco y permite ver los microorganismos sin 
colorear sobre dicho fondo. De este modo genera el contraste suficiente como para permitir su 
visualización al microscopio. 
Para esta tinción se pueden utilizar dos colorantes diferentes: nigrosina o tinta china. En la práctica 
se utiliza tinta china. 
 
 
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• AZUL DE METILENO + KOH 
La coloración con azul de metileno tiñe a todas las estructuras por igual. Se utiliza el colorante para 
teñir las estructuras presentes. No es diferencial porque cuando se tiñen microorganismos con este 
colorante tiñe a todos por igual. 
 
 
• YODO LUGOL 
Se añade yodo a preparaciones en fresco 
de muestras de parasitología para mejorar 
el contraste de las estructuras internas. 
Esto facilita la diferenciación entre las 
amebas y los leucocitos del huésped. 
 
 
 
 
 
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PRUEBAS BIOQUIMICAS 
• PRUEBA CATALASA 
Se utiliza en la caracterización inicial de la mayoría de las bacterias. La enzima catalasa está 
presente en la mayoría de las bacterias aerobias y anaerobias facultativas que contienen citocromo. 
Son excepción Estreptococos spp y Enterococcus spp. 
Las bacterias que sintetizan catalasa hidrolizan el peróxido de hidrogeno en agua y oxígeno 
gaseoso, y como resultado se liberan burbujas de gas. 
 
• PRUEBA DE LA OXIDASA 
Prueba utilizada para determinar si un microorganismo produce la enzima citocromooxidasa. La 
prueba se usa en la caracterización inicial de bacterias gramnegativas. En presencia de oxígeno 
atmosférico la enzima intracelular citocromo oxidasa oxida el reactivo fenilendiamina y forma un 
compuesto color purpura (indofeno) 
 
 
 
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• CAMP TEST 
Determinar la capacidad de un microorganismo para producir una proteína que produce un efecto 
sinérgico con la beta-hemolisina de S. aureus. Algunos microorganismos sintetizan una proteína que 
produce un efecto sinérgico con la beta hemolisina de S. aureus sobre eritrocitos ovinos y bovinos. Si 
ambos microorganismos se siembran próximos en un medio de agar sangre, se produce un 
fenómeno lítico en el punto de intersección de los dos microorganismos. La proteína se denominó 
factor CAMP por las iniciales de los nombres de los autores que descubrieron este fenómeno con la 
proteína B de Estreptococos agalactiae, y esta prueba permite identificar presuntivamente este 
microorganismo.Alternativas: 
• CAMP-Test inverso: la hemolisis de algunos microorganismos se inhibe por la beta-hemolisina 
de S. aureus. 
• Determinar la producción de fosfolipasa D que inhibe la reacción de la prueba del CAMP en la 
especie Arcanobacterium haemolyticum. 
• Determinar la producción de fosfolipasa E que inhibe la reacción de la prueba del CAMP en la 
especie Rhodococcus equi. 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
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• PRUEBA DE LA COAGULASA 
Se utiliza para la diferenciación de especies del género Staphylococcus debido a la capacidad de 
coagular el plasma por la acción de la enzima coagulasa. La coagulasa es un enzima que convierte 
el fibrinógeno en fibrina. Existe en dos formas: clumping factor o coagulasa unida a la pared celular y 
coagulasa libre o enzima extracelular que solo se produce cuando la bacteria se cultiva en caldo. La 
primera se detecta mediante la prueba de la coagulasa en porta y ambas mediante la prueba de la 
coagulasa en tubo. 
 
 
• PRUEBA DE LA ADNasa 
Se utiliza para diferenciar microorganismos en base a la actividad de desoxirribonucleasa (ADNasa). 
Esta prueba se utiliza principalmente en la diferenciación de estafilococos que producen grandes 
cantidades de ADNasa extracelular. La mayoría de las cepas de La ADNasa es un enzima que 
hidroliza el ácido desoxirribonucleico (ADN) y libera oligonucleótidos y fosfato. Hay muchos medios 
de cultivo con y sin indicadores para detectar este enzima. En el medio de cultivo, la tripteína es la 
fuente de nitrógeno, aminoácidos, y aporta los nutrientes necesarios para el adecuado desarrollo 
bacteriano. El ácido desoxirribonucleico (ADN), se encuentra en grado altamente polimerizado, y es 
el sustrato de la enzima desoxirribonucleasa (ADNasa), la cual lo hidroliza. 
 
 
 
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