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Oliver informe 8 - Nota: B+
Bioquímica* (Universidad de Panamá)
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Oliver informe 8 - Nota: B+
Bioquímica* (Universidad de Panamá)
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 UNIVERSIDAD DE PANAMÁ
Facultad de Ciencias Naturales, Exactas y Tecnología
Escuela de Química
 Lic. en Tecnología de Química Industrial 
INFORME N° 8 
“Reacciones cualitativas de Glúcidos” 
Preparado por
Rudolph Griffiths // 3-739-2027
Profesor:
José Veces
Fecha de realización:
2 de Julio, 2020
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Introducción
Los glúcidos, también denominados azúcares, son compuestos químicos formados por
carbono (C), hidrógeno (H) y oxígeno (O). Su fórmula empírica es parecida a Cn H2n
On. Por ello, se les suele llamar también hidratos de carbono o carbohidratos. 
Los glúcidos se definen sencillamente desde el punto de vista químico como
polihidroxialdehídos o polihidroxicetonas, o bien sustancias que por hidrólisis dan lugar
a este tipo de compuestos. Los polihidroxialdehídos son compuestos orgánicos en los
que todos los átomos de carbono están unidos a un grupo hidroxilo excepto uno de ellos
que forma parte de un grupo aldehído, mientras que las polihidroxicetonas son
compuestos orgánicos en los que todos los átomos de carbono están unidos a un grupo
hidroxilo excepto uno que forma parte de un grupo cetona. 
Los carbohidratos se clasifican dentro de tres grupos: monosacáridos, disacáridos y
polisacáridos.
Monosacáridos: También reciben el nombre de azúcares simples al ser los glúcidos más
sencillos. Se caracterizan por pasar a través de la pared del tracto alimentario sin sufrir
modificación por parte de las enzimas encargadas de la digestión.
Disacáridos: Los disacáridos son compuestos de azúcares simples, es decir, son
resultado de la unión de dos monosacáridos. Pero para que el cuerpo los pueda absorber
en el tracto alimentario, los tiene que convertir antes nuevamente en monosacáridos.
Polisacáridos: Son hidratos de carbono de mayor complejidad que los dos anteriores.
Pueden ser metabolizados por algunas bacterias y protistas y algunos son fuentes
comunes de energía en la alimentación.
Por eso haremos un análisis cualitativo de algunas muestras de carbohidratos para poder
ejemplificar y visualizar algunas de las características descritas en este trabajo.
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Objetivos:
 Capacidad de aplicar e interpretar los conocimientos y resultados
 Diferencia entre una cetosa y una aldosa
 Distingue por medio de pruebas sencillas, entre un monosacárido, un disacárido y un 
polisacárido.
Materiales:
1. Solución alcohólica de α-naftol al 5%
2. H2SO4 concentrado
3. Reactivo de Seliwanoff
4. Reactivo de Benedict
5. Reactivo de Fehling A
6. Reactivo de Fehling B
7. Reactivo de Bial
8. Reactivo de Barfoed
9. Solución de Yodo 0,01 M 
10. Soluciones acuosas de glucosa, fructosa, sucrosa, maltosa, ribosa(o arabinosa) y 
almidón al 0,5%.
11. Soluciones de dextrina y glucógeno al 1%.
Procedimiento
A. Reacción de Molisch (prueba general para glúcidos)
Coloca en tres tubos de ensayos debidamente rotulados 2 mL de glucosa, sucrosa y
almidón al 0,5% respectivamente. Adiciona 2 gotas de la solución de α-naftol
(reactivo de Molisch) a cada tubo y mezcla bien. A continuación, agrega a cada tubo 2
mL de ácido sulfúrico concentrado con mucho cuidado: para ello incline el tubo de
ensayo y deje resbalar el ácido, contenido en una probeta de 10 mL, por las paredes
de manera que se deposite en el fondo del tubo formándose una bicapa con un anillo de
color violeta en la interfase. Coloca los tubos de ensayos sin agitar en la gradilla,
observa y anota tus resultados.
B. Reacción de Seliwanoff, una reacción para identificar cetosas
Coloca en 3 tubos de ensayos debidamente rotulados 3 mL del reactivo de Seliwanoff y
a continuación 6 gotas de las soluciones de fructosa, glucosa y sucrosa al 0,5%
respectivamente y agita. Coloca los tubos en baño maría y calienta hasta que aparezca
un color rojo cereza característico que indica la presencia de cetosas. Toma el tiempo
de demora en formarse el complejo coloreado en cada tubo. También prepara un testigo
con 6 gotas de agua destilada, observa y anota tus resultados.
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C. Reacciones debidas al poder reductor de los azucares.
Reacción de Benedict.
Coloca 5 mL del reactivo de Benedict en cada uno de 4 tubos de ensayos
debidamente rotulados. Añade a continuación 8 gotas de la soluciones de glucosa,
sucrosa, maltosa y almidón al 0,5% respectivamente. Coloca los tubos en baño
maría aproximadamente por 3 minutos; observa, anota y compara tus resultados.
Reacción de Fehling.
Prepara el reactivo de Fehling mezclando en partes iguales las soluciones de Fehling
A y B. Coloca 3 mL del reactivo en cada uno de 4 tubos de ensayos debidamente
rotulados. Añade a continuación 5 gotas de glucosa, sucrosa, maltosa y almidón al
0,5% respectivamente. Pon los tubos en un baño María aproximadamente por 3
minutos. Observa, compara y anota tus resultados. 
Reacción de Barfoed, prueba para diferenciar disacáridos de monosacáridos.
Coloca 3 mL del reactivo de Barfoed en cada uno de 3 tubos de ensayos
debidamente rotulados. Adiciona a continuación de 5 a 10 gotas de glucosa, maltosa
y sucrosa al 0,5% respectivamente. Coloca los tubos en un baño María por 5
minutos. Observa, compara y anota tus resultados.
D. Reacciones de diferentes glúcidos con yodo.
Los polisacáridos forman diferentes complejos coloreados con el yodo. Así, los
polisacáridos lineales y helicoidales como el almidón presentan un color azul
intenso, el glucógeno forman un complejo de color vino tinto, la dextrina tiene un
color que va de rojo purpura a rojo chocolatoso y la maltosa una coloración amarillo
pardo.
Realización de las pruebas:
Coloca en 4 tubos de ensayos debidamente rotulados 2 mL de solución de almidón,
glucógeno, dextrina y agua como blanco respectivamente. Agrégale a cada tubo 3
gotas de la solución de yodo. Observa, compara y anota tus resultados
E. Reacción de Bial, prueba para determinar la presencia de pentosas.Coloca en cada uno de 4 tubos de ensayos debidamente rotulados 1 mL de solución de glucosa, 
sacarosa, arabinosa al 0,5% y agua respectivamente. Añade a continuación a cada tubo 2 mL 
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del reactivo de Bial, coloca los tubos en baño María hasta observar una coloración verde 
azulado pronunciada. Observa, compara y anota tus resultados.
Molish Seliwanoff Benedict Fehling Barfoed Bial Yodo
Agua X X X X X X X
Glucosa ✔ X ✔ ✔ ✔ X X
Sacarosa ✔ ✔ X X X X X
Almidón ✔ X X X X X ✔
Fructosa ✔ ✔ ✔ ✔ ✔ X X
Maltosa ✔ X ✔ ✔ X X X
Arabinosa ✔ X ✔ ✔ ✔ ✔ X
Glucógen
o
✔ X X X X X ✔
Dextrina ✔ X X X X X ✔
En la `prueba de Molish los azúcares usados dieron un resultado positivo con el reactivo de 
Molish, a pesar de que algunos son monosacáridos como otros disacáridos, ya que por dicha 
clasificación se debe el tiempo que tarda en formarse el anillo color rojo violeta ya que el el 
ácido sulfúrico concentrado permite que los glúcidos se deshidraten formando compuestos 
furfúricos por tanto diremos que como en nuestro caso las hexosas dan hidroximetilfurfural.
Prueba de Seliwanoff en cada una de las muestras llevamos a baño maría y observamos si 
existen cambios en los azúcares. vemos que la glucosa, lactosa, y maltosa no 
reaccionan(inmediatamente). La fructosa y sacarosa se logró diferenciar ya que existió cambio y
se tornó de color rojo y esto nos indica la presencia de cetonas la cual podemos decir que la 
prueba nos dio positiva con estos dos azúcares.
Prueba de Benedict acá lo que se busca es identificar si el azúcar es reductor o no por 
medio de la reducción del metal cobre, en el cual la glucosa, fructosa, maltosa, 
arabinosa dieron prueba de poseer poder reductivo en cambio las otras dan negativo por 
el hecho de no poseer carbonos anomericos libres.
Prueba de Fehling se buscaba la presencia de azucares reductores identificándolos con 
la presencia de una coloración rojo ladrillo para los azucares positivos mientras un 
azulado para los negativos en el caso de la sacarosa.
Prueba de Barfoed en esta ocasión solo teníamos 3 monosacáridos como 
muestras(Glucosa, Fructosa, Arabinosa) por ende estábamos claro que serían las únicas 
en dar positivo.
Prueba de Bial esta prueba quizás sea la más fácil porque solo da positivo en pentosas la
cual nos dara una coloración azulada.
Prueba de Yodo es para ver cuales azúcar son poliscáridos ya que los iones yodo entran 
a la estructura del polisacárido provocando un color azul en la solución pasando por 
púrpura profundo hasta llegar al negro en soluciones concentradas. Esta reacción es el 
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resultado de la formación de cadenas de poliyoduro a partir de la reacción del almidón 
con el yodo presente en la solución de un reactivo llamado Lugol.
Cuestionario:
1. ¿Cuál es la probable fórmula estructural del complejo coloreado que se forma en la 
prueba de Molisch?
R. Esta es la reacción de Molish estructuralmente:
2. Además del α-naftol, ¿qué otra sustancia se puede emplear como reactivo?
R. algunos otros compuestos orgánicos dan también furfural con ácido sulfúrico 
concentrado.
3. ¿Por qué algunas proteínas dan esta reacción?
R.
4. ¿A qué se debe que el calentamiento prolongado de la maltosa con el reactivo de 
Seliwanoff da un color rojo cereza si la maltosa no es una cetosa?
R. Esta prueba da positivo para ambas tanto las aldosas como las cetosas, por la 
formación del furfural o en un derivado de éste y su posterior condensación con el 
resorcinol, dando un color rojo fuego para cetosas y rosa para aldosas.
5. Además de las sales de cobre, ¿Cuáles otros metales se pueden emplear para las 
reacciones de poder reductor?
R. Si no me equivoco también el sodio puede presentes en el Citrato de sodio y 
Carbonato anhidro de sodio.
6. ¿Cuál es la diferencia entre el reactivo de Benedict y de Fehling?
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R. La principal diferencia entre la solución de Benedict y la solución de Fehling es que 
La solución de Benedict contiene citrato de cobre (II) mientras que la solución de 
Fehling contiene tartrato de cobre (II).
7. ¿Qué sustancia en la orina interfiere con la reacción de Benedict?
R. Buscando no hallé un compuesto como tal pero encontré estos medicamentos que 
interfieren un poco que son la terramicina, estreptomicina, clorotetraciclina y la 
cloromicetina que dan resultados falsos positivos cuando se encuentran en 
concentraciones elevadas de 10 mg/ml.
8. ¿Para qué es útil la prueba de Barfoed?
R. La Prueba de Barfoed es un ensayo químico utilizado para detectar monosacáridos. 
Los disacáridos también pueden reaccionar, pero en forma más lenta. El grupo aldehído 
del monosacárido que se encuentra en forma de hemiacetal se oxida a su ácido 
carboxílico correspondiente.
9. Explique el por qué las diferencias de colores entre los polisacáridos ante la 
presencia de la solución de yodo.
R.
10. ¿Por qué es necesario utilizar ácido fuerte para el tratamiento de los azúcares en la 
prueba general de los glúcidos?
R. Como explique arriba el ácido sulfúrico concentrado permite que los glúcidos se 
deshidraten formando compuestos furfúricos,
11. Usted tiene unas muestras desconocidas: Vial A y Vial B y desea saber qué tipo de 
azúcar podrían contener. Se les realizaron las pruebas correspondientes arrojando los 
siguientes resultados:
 Vial A: anillo de color rojo, coloración rojo cereza y precipitado rojo en Barfoed y 
Benedict. 
R. Decimos que ese azúcar es positivo para un monosacárido reductor.
Vial B: coloración roja vino ante la prueba de yodo, no precipita a la prueba de Benedict
y Barfoed.
R. Este sería un polisacárido.
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