bases para la anestesia en conejo y peq roedores de lab

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Técnicas para Bioterio V 
 
 
BASES PARA LA ANESTESIA 
EN CONEJO Y PEQUEÑOS 
ROEDORES DE LABORATORIO 
 
 
 
 “Donde está el dolor, está también lo que lo salva” 
 
 
 
 
 
 VET. Lilian Lattanzio. 
Docente del Área de Anestesiología y Algiología, Facultad de Ciencias 
Veterinarias. Universidad de Buenos Aires. Argentina. 
Anestesióloga del Hospital Escuela de la Facultad de Ciencias Veterinarias. 
Universidad de Buenos Aires. Argentina. 
 
CARRERA DE TÉCNICOS PARA BIOTERIO VET. Lilian Lattanzio 
 
 
 
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INTRODUCCIÓN 
 
El tratamiento del dolor, en animales de laboratorio, ha sido durante mucho tiempo 
poco considerado. Posiblemente la falta de conocimiento de las manifestaciones 
clínicas de dolor, y de protocolos analgésicos y anestésicos adecuados en estas 
especies, haya sido la limitante para brindarles un tratamiento humanitario. 
 
Los animales que sienten dolor, sufren como consecuencia stress, el que conlleva 
a comprometer la recuperación postoperatoria. 
 
El dolor puede traducirse clínicamente por disminución o ausencia de la ingesta de 
agua y alimento, inmovilidad, vocalización, agresión, trauma autoinfligido sobre la 
zona dolorosa, rechinar de dientes, frecuencia respiratoria aumentada, salivación, 
ausencia o exceso de acicalamiento, hipertermia ,hipotermia, midriasis, etc. 
 
La percepción del dolor en estas especies puede ser difícil, pero frente a la 
sospecha del mismo debe instaurarse un tratamiento que permita una recuperación 
adecuada, logrando su bienestar. 
 
Los animales que se emplean en experimentación son pequeños mamíferos entre 
los que se encuentran el cobayo, conejo, gerbo, hámster, rata y ratón, y de todos, 
las dos últimas especies, rata y ratón, son sin lugar a dudas las que con más 
frecuencia se utilizan. Los animales de laboratorio desempeñan un papel 
fundamental en la investigación. 
 
Los avances logrados, gracias al uso de estos animales en medicina humana y 
veterinaria son múltiples. Es fundamental garantizar el bienestar de estas especies 
y evitarles el dolor y el sufrimiento innecesario en los protocolos de 
experimentación, por lo que debe implementarse el uso de analgésicos y 
anestésicos que permitan una acción indolora. 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
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ANESTESIA GENERAL 
 
 
Estado de depresión reversible del SNC caracterizado por pérdida de: 
 
 
• SENSIBILIDAD 
• MOTRICIDAD 
• ACTIVIDAD REFLEJA 
• CONCIENCIA 
 
En 
todo acto anestésico deben estar siempre presentes la analgesia y protección del 
sistema neurovegetativo. 
 
 
 
AYUNO 
 
El ayuno preanestésico en conejos y pequeños roedores no es necesario, ya que 
estos animales no vomitan durante la inducción anestésica. Los cobayos deben 
ayunar 6-12 horas antes de la anestesia para permitir eliminar de su cavidad oral 
los alimentos que llevan a la base de la lengua. Generalmente deben tener agua 
disponible hasta aproximadamente una hora antes de la inducción a la anestesia. 
 
 
 
 
 
 
HIPNOSIS 
TRÍADA DE GRAY 
RELAJACIÓN 
MUSCULAR 
PROTECCÓN DE 
SISTEMA 
NEUROVEGETATIVO 
ANALGESIA 
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EVALUACIÓN PREANESTÉSICA 
 
 HISTORIA CLÍNICA 
 EXÁMEN FÍSICO 
 LABORATORIO (volumen extracción de sangre 0,6-0,8% peso) 
 ESTADO SANITARIO 
 Enfermedades respiratorias. 
 Insuficiencia renal crónica 
 SNC, Cetoacidosis, etc. 
 
 
MANEJO 
 
 Muy susceptibles al stress. 
 Alto tono simpático que puede limitar el efecto de tranquilizantes. 
 Utilizar métodos que disminuyan el stress (Ambiente tranquilo, reducir la 
manipulación, etc.) 
 
 
CONSIDERACIONES ANESTÉSICAS 
 
 EVITAR HIPOGLUCEMIA (En anestesias de más de 30 minutos). 
Para asegurar rangos de glucemia normales deben hacerse mediciones, con 
aparatos de medición rápida de glucosa en sangre. 
Si se presenta hipoglucemia administrar: 
 
 Soluciones glucosadas y cristaloides. 
 Preferentemente vía IV. 
 Alternativamente vía IP, SC, IO. 
 
 PROTECCIÓN OCULAR 
Los ojos permanecen abiertos durante la anestesia, y la córnea expuesta a la 
sequedad y abrasión. 
Administrar lágrimas artificiales. (Hidroximetilcelulosa). 
 
 PREVENIR LA PÉRDIDA DE CALOR( hipotermia) 
 (10 a 15º en 20 minutos) 
 Métodos: 
 Envoltorio plástico de burbujas. 
 Papel aluminio. 
 Botellas agua caliente. 
 Caloventores. 
 Lámparas. 
 Manta de agua caliente o térmica. 
 Soluciones parenterales tibias. 
 Aislamiento de la camilla. 
 
 
 
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 PREPARACIÓN DEL CAMPO QUIRÚRGICO 
 Tricotomía de área mínima, compatible con técnica quirúrgica aséptica. 
 Lavado del campo quirúrgico con antisépticos templados. 
 Emplear paños de campo. 
 
 EVITAR LA SOBREDOSIFICACIÓN: ¡PESAR EXACTAMENTE! 
. 
 MANTENER LA OXIGENACIÓN.(mascarilla facial, intubación traqueal) 
 
 MINIMIZAR PERDIDAS SANGUÍNEAS.(Técnica quirúrgica adecuada) 
 
 EVITAR PRESIÓN SOBRE EL TÓRAX. 
 EVITAR DEPRESIÓN RESPIRATORIA: 
 Masaje suave tórax 
 Doxapram (5-10 mg/Kg.) 
 
 
CLASIFICACIÓN DE ANESTESIA EN ROEDORES 
 
 GENERAL PARENTERAL (Intraperitoneal, intravenosa, intramuscular, 
subcutánea, intraósea). 
 
 GENERAL INHALATORIA (cámara de inducción, máscara, intubación 
traqueal). 
 
 LOCO-REGIONAL (Infiltrativa local – Epidural). 
 
 ENTERAL (Oral- Rectal). 
 
 
¿ESTABILIZACIÓN DEL ANIMAL? 
 
Debe realizarse antes de la inducción a la anestesia. 
 
 GRADO DE HIDRATACIÓN 
 TEMPERATURA 
 OXIGENACIÓN 
 COLOCACION DE VÍA VENOSA PERMEABLE SEGÚN TIPO DE 
ANESTESIA Y ESPECIE (mantenimiento de fluidos 10/ml/ kg/hora) 
¡EVITAR SOBREHIDRATACIÓN! 
 
 
ETAPAS DE LA ANESTESIA GENERAL 
 
PREMEDICACIÓN 
INDUCCION 
MANTENIMIENTO 
RECUPERACIÓN 
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 PREMEDICACION: 
 
Son drogas administradas antes de la anestesia, con la finalidad de: 
 Facilitar el manejo del animal, disminuyendo el stress. 
 Permitir una recuperación mas tranquila. 
 Potenciar otras drogas anestésicas, disminuyendo su dosis y aumentando el 
margen de seguridad de la anestesia. 
 Bloquear reflejos no deseables producidos por el sistema neurovegetativo. 
 Brindar analgesia. 
 
 ANTICOLINERGICOS 
 TRANQUILIZANTES Y SEDANTES 
 OPIACEOS 
 AGENTES DISOCIATIVOS 
 NEUROLEPTOANALGESIA (¿Automutilacíon??) 
 
 AINES( Antiinflamatorios no esteroides) 
 
 
 
 
Anticolinérgicos 
 
Los anticolinérgicos bloquean la estimulación parasimpática, principalmente al 
sistema cardiopulmonar, reducen las secreciones, producen broncodilatación. Se 
usan en combinación con tranquilizantes, sedantes y analgésicos comopre-
medicación a la anestesia general. No se administran anticolinérgicos de rutina a 
los animales que se anestesian, se lo hace selectivamente, después de un examen 
preanestésico, según las necesidades propias de cada animal y según la respuesta 
anticipada al anestésico elegido, y la tendencia a que la droga desarrolle 
bradicardia o salivación excesiva. 
 
 Atropina: es el agente anticolinérgico más utilizado. Sin embargo, su 
administración de rutina es discutible, debido a la alta incidencia de arritmias 
cardíacas que se asocian a su uso y al espesamiento de las secreciones. La 
presencia de enzima atropinasa en conejo, dificultaría su utilización, ya que 
se requiere repetir la administración en algunos casos. 
 
 Glicopirrolato: sus efectos son más prolongados que la atropina. El 
glicopirrolato provoca menos casos de taquicardia. No penetra el SNC por 
su dificultad en cruzar la barrera hematoencefálica. Tampoco atraviesa la 
barrera placentaria. Es menos utilizado, debido a su alto costo. 
 
 
 
 
 
 
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Tranquilizantes y Sedantes 
 
Los tranquilizantes producen un efecto calmante sin sedación. Los tranquilizantes 
se pueden usar, en combinación con otras drogas, para disminuir la dosis del 
anestésico general, potenciar la anestesia y producir una inducción y recuperación 
más confortable. 
 
El estado psicológico del animal antes de la administración de los tranquilizantes 
puede afectar significativamente el efecto logrado. Los animales que son agresivos, 
y en estado de excitación, pueden llegar a no ser manejables, a menos que se 
realice sujeción química, con pérdida de la conciencia. 
 
Tranquilizantes mayores: 
 
 Fenotiazinas (acepromacina): produce tranquilizaciòn y permite 
reducir la dosis de los anestésicos generales, pero provoca hipotensión, 
dosis dependiente e hipotermia. 
 
 
Tranquilizantes menores: 
 
 Benzodiacepinas (diazepam, midazolam): producen una sedación 
variable, según la especie animal. Son buenos relajantes musculares y 
no tienen efectos secundarios indeseables. El diazepam no puede 
mezclarse con otros agentes hidrosolubles, mientras que el midazolam 
es hidrosoluble y puede mezclarse en la misma jeringa con otros 
agentes. 
Estas drogas pueden ser revertidas por un antagonista de acción 
rápida (2 a 4 minutos), llamado flumazenil. 
 
 
Agonistas alfa-2-adrenérgicos (xilacina, medetomidina): 
 
Xilacina: es sedante y analgésico visceral que actúa como un depresor 
del SNC e induce la relajación muscular por la inhibición de la transmisión 
de los impulsos en el SNC. Su efecto analgésico es de corta duración 15 a 
30 minutos aproximadamente. Su uso principal en la anestesia de 
animales de laboratorio se hace por la combinación con un agente 
disociativo (ketamina, tiletamina) para producir anestesia quirúrgica. 
Ocasiona depresión respiratoria, bradicardia marcada y es 
hiperglucemiante, La xilacina produce cambios fisiológicos profundos; para 
poder utilizar este agente con seguridad, hay que conocer bien estos 
efectos, que generalmente son específicos para cada especie. Los efectos 
de esta droga, pueden ser revertidos con un antagonista, yohimbina. 
 
Medetomidina: este agente tiene los mismos efectos cardiovasculares 
que la xilacina. La duración de acción es mayor y produce mejor 
analgesia. Se puede antagonizar su efecto con atipamezol. 
 
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Opiáceos 
 
Son derivados del opio. Estas drogas proveen analgesia. Su mecanismo de 
acción se produce por unión a distintos receptores de dolor. (Mu, kappa, sigma, 
delta), la unión a estos receptores puede producir excitación (incremento de 
movimiento, vocalización, manía, etc.) o depresión (analgesia, depresión 
respiratoria, sedación, etc.), se ha hallado una gran variación entre especies. 
 
 Agonistas puros (Ej: Morfina, fentanilo, sufentanilo, remifentanilo meperidina, 
dextropropoxifeno). 
 Agonistas-antagonistas (Ej: nalbufina, butorfanol, buprenorfina). 
 Agonistas parciales (Ej: Tramadol). 
 Antagonistas (Ej.: naloxona). 
 
 
 
Agentes disociativos 
 
Su uso en la premedicación esta limitado a la sujeción química del animal. 
Pueden utilizarse en la inducción y mantenimiento de la anestesia general. 
 
Neuroleptoanalgesia 
 
Es la combinación de un tranquilizante (neuroléptico) y un analgésico (opiáceo) 
produciendo depresión del sistema nervioso central y analgesia. 
Debe administrarse generalmente con anticolinérgicos por la bradicardia 
producida por los opiáceos. Es útil como premedicación en procedimientos 
cortos (menores a 30 minutos). 
Ejemplos: Fluanisona -fentanilo 
 Droperidol- fentanilo 
 Acepromacina -meperidina, etc. 
 
Aines 
 
 AAssppiirriinnaa (conejo, rata, ratón, cobayo) 
 CCaarrpprrooffeennoo (conejo, rata) 
 FFlluunniixxíínn (conejo, rata, ratón) 
 KKeettoopprrooffeennoo (conejo) 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
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INDUCCIÓN: 
Es el paso del estado conciente al inconsciente. 
 
MANTENIMIENTO: 
Sostenimiento del plano anestésico con distintos agentes. 
 
 
ANESTÉSICOS GENERALES PARENTERALES 
 
 Anestésicos disociativos 
 
Los anestésicos disociativos producen un estado de inmovilización química y 
una anestesia caracterizada por la rigidez muscular y por la disociación de la 
mente frente al ambiente externo. Los ojos permanecen abiertos, por lo que se 
necesita un ungüento protector de la córnea. Los reflejos quedan intactos, 
incluyendo los reflejos laríngeo y de parpadeo. A menudo, ocurre un aumento 
de la frecuencia cardiaca, de la presión arterial y de la presión intracraneal. 
Consecuentemente, su uso está contraindicado en casos de cirugías craneales 
e intraoculares. Se recomienda su combinación con un tranquilizante en la 
mayoría de las especies. 
Producen solo analgesia somática. 
 
Ketamina: este es el anestésico más ampliamente usado de este grupo. La 
profundidad de la anestesia depende de la dosis administrada. Los efectos 
secundarios incluyen una fuerte salivación, que puede controlarse con un 
anticolinérgico; también hay una tendencia a convulsiones, y una recuperación 
caracterizada por la excitación, desorientación y alucinaciones, que pueden ser 
controladas por tranquilizantes y barbitúricos. En todos los casos, dejando al 
paciente en un ambiente tranquilo y oscuro se facilitará su recuperación. 
 
 Tiletamina: parecido a la ketamina, su efecto es más durable y potente; por lo 
tanto, se debe administrar en dosis reducidas. Se comercializa usualmente en 
combinación con el tranquilizante zolazepam (Zelazol), que mejora la relajación 
muscular, el efecto de depresión sobre el SNC y la recuperación de la 
anestesia, y previene las crisis provocadas por la tiletamina. La combinación 
tiletamina/zolazepam ha resultado útil en ratas y en gerbos, pero no en ratones 
o en hámsteres. La tiletamina a altas dosis, es nefrotóxica en conejos. 
 
 Barbitúricos 
 
Los barbitúricos son hipnóticos. No tienen efectos analgésicos; su uso 
primario es la inducción y/o el mantenimiento de la anestesia general. Los 
barbitúricos son potentes depresores respiratorios y sobre el sistema 
cardiovascular. Tienen efecto acumulativo debido a su metabolismo. 
Los barbitúricos se agrupan según su duración de acción, de larga duración 
(ej., fenobarbital), de corta o media duración (ej., pentobarbital) y de 
duración ultracorta(ej., tiopental, tiamilal, metohexital). 
Los agentes de acción ultracorta se usan generalmente para la inducción a 
la anestesia, y tienen una duración de 10 a 20 minutos. La duración de la 
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anestesia varía mucho con las especies animales 
Los barbitúricos deberían ser administrados por vía intravenosa, lentamente, 
hasta llegar al efecto deseado. Las otras vías de administración son mucho 
menos satisfactorias, ya que es más difícil evaluar la dosis adecuada ya que 
los efectos anestésicos son menos predecibles. Todos los barbitúricos 
pueden ocasionar necrosis de la piel si están accidentalmente inyectados 
fuera de los vasos sanguíneos. 
Aunque los barbitúricos están ampliamente utilizados, generalmente no son 
una buena elección para la anestesia general, debido a la ausencia de 
efecto analgésico, a sus efectos depresores cardiovasculares profundos, a 
su alta mortalidad y a numerosos factores externos que pueden afectar la 
dosis/respuesta y el tiempo de sueño. Se puede obtener una anestesia 
adecuada por la combinación de un barbitúrico con un tranquilizante, un 
sedante o un opiáceo, en algunos casos. 
 
 
 Propofol 
 
Es un inductor, no barbitúrico de acción rápida, puede utilizarse para el 
mantenimiento de la anestesia intravenosa. No es analgésico. 
Debe utilizarse por vía intravenosa. 
Se debe mantener estricta asepsia en su manejo, ya que por sus 
componentes, la solución es fácilmente contaminable. 
Corto efecto anestésico, 10 minutos, rápida redistribución y 
biotransformación hepática y extrahepática, diez veces más rápida que la del 
tiopental sódico, se atribuye principalmente al metabolismo hepático. 
Recuperación total a los 20 minutos de una dosis única. Se elimina en 30 
min. Su efecto no es acumulativo. 
 
 
 
RELAJANTES MUSCULARES 
 
 Agentes bloqueantes neuromusculares 
Interrumpen el impulso nervioso a nivel de la placa neuromuscular. 
Actúan sobre los músculos voluntarios, producen parálisis fláccida. 
Se clasifican en: 
-Agentes despolarizantes: succinilcolina 
-Agentes no-despolarizantes: curare, pancuronio, gallamina, atracurio vecuronio 
rocuronio. 
La neostigmina, la piridostigmina y el edrofonio son antagónicos a los agentes no-
despolarizantes, pero son ineficaces contra los agentes despolarizantes Los 
agentes bloqueadores neuromusculares se usan como complemento de los 
anestésicos generales cuando se requiere una relajación muscular profunda. 
Como estos agentes producen solamente una parálisis motora y no tienen 
efectos de sedación o de analgesia, se prohíbe su uso en animales 
conscientes (Principios éticos de la investigación con animales). 
El uso de agentes bloqueadores neuromusculares anula algunas de las señales 
usadas para evaluar de la profundidad de la anestesia. Las funciones del sistema 
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nervioso autónomo permanecen intactas con los agentes más modernos (atracurio, 
vecuronio). Por lo tanto, un aumento del ritmo cardiaco y de la presión arterial 
puede indicar la percepción de dolor. 
Como los músculos respiratorios están paralizados, se debe utilizar un respirador 
artificial, para lo cual el animal debe estar intubado. Si un agente bloqueador 
neuromuscular compone un protocolo anestésico, es sumamente importante tener 
equipo apropiado así como personal experimentado en el uso de estos agentes. 
 
 
ANESTÉSICOS POR INHALACIÓN 
 
Los anestésicos por inhalación tienen la ventaja que el nivel de anestesia puede 
ser fácilmente y rápidamente controlado. Sin embargo, su uso requiere un equipo 
especial para su administración. Algunos de estos anestésicos son explosivos, 
inflamables, o irritantes para los tejidos. La exposición crónica a algunos de estos 
anestésicos es peligrosa para la salud del personal de quirófano. 
 
La velocidad de inducción de la anestesia y la recuperación dependen de la 
solubilidad del anestésico en la sangre. Anestésicos altamente solubles 
(metoxiflurano) alcanzan lentamente el equilibrio en la sangre; por lo tanto, la 
inducción de la anestesia y la recuperación se prolongan. Los anestésicos poco 
solubles (halotano, isofluorano, sevofluorano, etc.) alcanzan rápidamente el 
equilibrio, facilitando el control de la profundidad de la anestesia, pero también 
incrementando los riesgos de una rápida sobredosificación. 
 
El uso de la anestesia inhalada, requiere: 
 
 Sistema de entrega de gases (generalmente oxígeno y/o aire comprimido 
estéril). 
 
 Vaporizador para anestésicos volátiles; 
 
 Circuito anestésico/ Cámara de inducción 
 
 Máscara o tubo endotraqueal conectado al sistema correspondiente. Varios 
sistemas sencillos para uso en pequeños animales de laboratorio fueron 
diseñados y publicados en la literatura especializada. 
 
Se deben tomar precauciones, como un sistema de evacuación de gases, para 
evitar la exposición innecesaria del personal a gases anestésicos volátiles. Varias 
publicaciones informan sobre los riesgos para las personas expuestas por períodos 
largos y repetitivos a bajas concentraciones de halotano (toxicidad hepatocelular) 
de metoxiflurano (toxicidad renal), de oxido nitroso (enfermedad neurológica y 
anemia perniciosa) y a la ingestión crónica de cloroformo (tumores renales y 
hepáticos en roedores). Los gases espirados deben ser evacuados al exterior, 
eliminados por un sistema de aspiración o adsorbidos. 
 
 
 
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La manera de dosificar a los agentes anestésicos volátiles, es por medio de la 
CAM (Concentración alveolar mínima):“Es la concentración alveolar a la que el 
50% de los individuos responden al dolor y el otro 50% no lo hacen”. 
 
Anestésicos volátiles 
EL color con que se inscribe el anestésico, es el que lo identifica a en su envase y 
su vaporizador específico. 
 
 Éter dietílico: es un agente altamente volátil. El éter produce una buena 
analgesia y relajación muscular, pero es muy irritante para las mucosas. 
Como sus vapores son altamente explosivos, se debe tener un cuidado 
extremo en su uso y almacenaje. Debido al riesgo de explosión, no se 
recomienda el uso del éter, ya que existen actualmente excelentes 
alternativas de anestésicos disponibles. 
 
 
 Isofluorano: es menos potente que el halotano y metoxifiluorano. Es 
relativamente insoluble, lo que permite una inducción y una recuperación 
rápidas. Produce una depresión respiratoria ligeramente más importante que 
el halotano, pero una depresión cardiovascular ligeramente más leve. Hay 
muy poca sensibilización del miocardio a las catecolaminas. De hecho, el 
isoflurano tiene el mayor margen de seguridad para el sistema 
cardiovascular de todos los anestésicos por inhalación. El isoflurano produce 
una mejor relajación muscular que el halotano, pero tiene propiedades 
analgésicas más pobres. El isoflurano experimenta menos transformaciones 
biológicas que el enflurano y se elimina casi completamente en la espiración. 
Este anestésico tiene un olor agrio que puede causar que el animal retenga 
su respiración durante la inducción. No tiene toxicidades conocidas. 
 
 Sevofluorano: tiene baja solubilidad en sangre, por lo que la inducción y 
recuperación anestésicas son rápidas. 
 
 Halotano: es un hidrocarburo halogenado altamente potente y volátil. 
Dependiendo de la dosis, produce hipotensión y depresión del sistema 
cardiopulmonar. Ocasiona una depresión directa del miocardio y una 
sensibilización a las catecolaminascirculantes. El halotano produce una 
analgesia razonable y una relajación muscular adecuada. Los vapores 
pueden ser hepatotóxicos para el hombre. 
 
 Metoxifluorano: es un anestésico con base de éter, altamente soluble y 
muy potente. A causa de su baja volatilidad, puede usarse sin riesgo para la 
inducción con cámaras anestésicas, y para el mantenimiento de la anestesia 
con máscara. El metoxiflurano produce cierta depresión respiratoria y 
cardiovascular, pero menos que el halotano a profundidades comparables 
de anestesia. También ocurre una sensibilización del miocardio a las 
catecolaminas, pero no tan severa como con halotano. La analgesia y 
relajación muscular son buenas, y no es irritante ni explosivo en 
concentraciones anestésicas. En los animales, la anestesia con el 
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metoxifluorano por menos de una hora no está generalmente asociada con 
la toxicidad hepatorenal. 
 
 Enfluorano: provoca una inducción y una recuperación rápida de la 
anestesia. Provee niveles moderados de analgesia y de relajación muscular, 
la cual disminuye con el incremento de concentración del anestésico. El 
enflurano produce una depresión profunda de las funciones respiratorias y 
miocárdicas. Se elimina en su mayor parte por medio de los pulmones. A 
diferencia del halotano, esta droga es poco metabolizada por el hígado, lo 
que puede ofrecer algunas ventajas experimentales; hay poca diferencia 
entre el enflurano y el halotano desde el punto de vista de la eficacia. 
 
OTROS AGENTES 
 
 Oxigeno: es un gas comprimido. Se presenta en tubos metálicos de color 
blanco, conteniendo según su tamaño distintos volúmenes en metros 
cúbicos. Como está contenido a gran presión necesita una válvula que 
reduzca la misma y mantenga una presión de salida constante a medida 
que el tubo se va vaciando, válvula reductora de presión, a la misma se 
adosa un medidor de flujo, flujímetro que mide los mililitros o litros por 
minuto de oxígeno administrado al animal. 
 
 Oxido nitroso: se presenta en tubos de color azul, formado por un 90% de 
líquido comprimido y un 10% de gas comprimido. Se necesita igual que con 
el oxígeno comprimido, una válvula reductora y flujímetro para 
administrarlo. Es muy poco eficiente como anestésico. En casi todas las 
especies animales, no permite inducir un estado de anestesia general ni de 
inconsciencia. Como tiene efectos mínimos sobre el sistema 
cardiopulmonar, puede usarse para reducir la concentración requerida de 
otros agentes, reduciendo así el grado de depresión a una profundidad 
particular de la anestesia. Tiene algunas propiedades analgésicas en los 
animales; sin embargo, su potencia es menos de la mitad que en los 
humanos. El óxido nitroso, se debe administrar al animal con oxígeno puro 
en distintas concentraciones, para impedir la hipoxia causada por la 
difusión rápida del gas en el organismo. 
 Si se requiere un gas transportador, el oxígeno puro es eficiente y no 
 tóxico, a concentraciones adecuadas 
 
 
 INTUBACIÓN TRAQUEAL 
 
Es la colocación de un tubo endotraqueal para mantener la vía aérea del animal 
permeable. 
Podemos oxigenar al animal o mantenerlo con anestésicos inhalados. 
Es una práctica difícil en pequeños roedores y conejo, dadas las características 
anatómicas de los mismos: abertura oral pequeña, lengua prominente, secreciones 
profusas, etc. 
Se puede realizar en forma oral o retrógrada. 
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Se necesitan tubos endotraqueales sin balón inflable y/o catéteres de tamaño 
adecuado a cada especie, laringoscopio y mandril para conducir el tubo 
endotraqueal en algunos casos. Puede utilizarse transiluminación desde el exterior 
para facilitar la maniobra. 
 
CIRCUITOS ANESTESICOS 
 
En los pequeños roedores se utilizan actualmente, circuitos anestésicos 
semiabiertos o de no rehinalación. 
Constan de un tubo corrugado, con entrada y salida de gases anestésicos, y de 
una bolsa reservorio para los mismos. Trabajan con alto flujo de gases frescos para 
evitar la rehinalación del dióxido de carbono espirado (200-400 ml/Kg. /min.). 
Estos circuitos se conectan al tubo endotraqueal o máscara facial. 
 
ANESTÉSICOS LOCALES Y REGIONALES 
 
Los anestésicos locales, tal como la lidocaína, la bupivacaína, pueden usarse para 
bloquear la inervación de una región limitada para el desempeño de procedimientos 
menores o rápidos. La anestesia local es también frecuentemente utilizada como 
complemento a varios agentes sedativos e hipnóticos. Los agentes anestésicos 
locales pueden usarse para la infiltración regional de un sitio quirúrgico, el bloqueo 
de un campo, el bloqueo nervioso, anestesias epidurales y espinales. Una 
combinación de lidocaína/prilocaína (EMLA) también se ha utilizado sobre la piel, 
para tomar sangre sin dolor en algunos animales de laboratorio. 
 
 
MONITOREO DEL PLANO ANESTESICO 
 
Puede realizarse en forma subjetiva mediante la evaluación clínica del animal u 
objetiva utilizando equipamiento medico, electocardiografia, oximetría de pulso, 
presión arterial, capnografia, etc. 
 
Perdida gradual de: 
Estación 
Reflejo palpebral 
Reflejo corneal 
Reflejo laríngeo ( intubación traqueal) 
 
Ausencia de: 
REFLEJO PODAL 
REFLEJO DE LA COLA ANESTESIA 
REFLEJO DE LA OREJA QUIRÚRGICA 
 
 Aparato cardiovascular. 
 Aparato respiratorio. 
 Temperatura corporal. 
 Diuresis. 
 
 
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RECUPERACIÓN 
 
 AREA TRANQUILA 
 CONTROLAR TEMPERATURA ( SECARLOS) 
 MONITOREO CONSTANTE 
 ANALGESIA 
 CAMA ADECUADA 
 ALIMENTO Y H2O. 
 
MISCELÁNEAS 
 
Combinaciones de analgésicos, neurolépticos y de ketamina xiIacina, con la 
acepromacina o la azaperona, han sido usadas exitosamente. La ketamina sola no 
produce analgesia o anestesia adecuadas. 
Los conejos toleran bien los anestésicos por inhalación y la inducción con mascara. 
En conejos, la intubación endotraqueal es relativamente difícil por razones 
anatómicas 
Para la inducción de la anestesia con un anestésico por inhalación, se puede 
utilizar una cámara de inducción. La anestesia puede mantenerse con una mascara 
facial. 
La intubación endotraqueal es difícil en roedores pequeños y requiere 
laringoscopios especialmente diseñados u otoscopios de conos largos. 
La administración segura de la anestesia general en el cobayo es notoriamente 
difícil, ya que este animal frecuentemente mantiene su reflejo pedal y hace 
movimientos de contorsión, aunque esté profundamente anestesiado. Su respuesta 
a muchos anestésicos inyectables es muy variable. Se pueden observar algunas 
complicaciones postanestésicas tales como infecciones respiratorias, 
perturbaciones digestivas, y una depresión generalizada. 
 
La anestesia epidural ofrece una alternativa adecuada en los animales de 
laboratorio. 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
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ANESTESICOS EN ROEDORES Y CONEJO INTRAPERITONEAL (MG/KG) 
 
 
DROGA Ratón Rata Conejo Gerbo Cobayo Hámster
Ketamina 
diazepam 
 100 
5 
80 
10 
25 
5 
50 
5 
100 
5 
70 
2 
Ketamina 
xilacina 
 100 
10 
80 
10 
35 IM 
5 
70 
3 
40 
5 
200 
100 
Ketamina 
medetomidina 
 75 
1 
75 
0,5 
25 IM 
0,5 
75 
0,5 
40 
0,5 
25 
0,5 
Tiletamina 
zolazepam80* 
seda 
20-
40 
50 # 60 50 80 
Fentanilo 
medetomidina 
 0,3 
0,3 
 
 
 
 
 
ANALGÉSICOS EN ROEDORES Y CONEJO 
 
DROGA Vía Duración Ratón Rata Conejo Gerbo Cobayo Hámster 
 (Horas) 
 
 Butorfanol SC 2-4 1-5 2 0,1-0,5 0,5-0,8 
 Buprenorfina SC 6-12 0,05-0,01 0,01-0,05 igual dosis en las otras especies. 
 Fentanilo IP 20-30min. 0,01-0,05 0,01-0,03 
 Meperidina SC-IM 2-3 10-20 10-20 10 
 Morfina SC 4-6 2-10 2-10 2-5 2-5 
 
 
 ASPIRINA PO 6-8 100 100 100 90 
 FLUNIXIN SC-IM 12 2,5 2,5 1 
 IBUPROFENO PO 6 30 15 10 IV 10 IM 
 CARPROFENO SC 12-24 5 2-4 4 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
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BIBLIOGRAFIA 
 
LUMB, W.V. and JONES, E.W. Veterinary anesthesia. Philadelphia, PA: Lea and Febiger, 1984 
 
HELLEBREKERS, Manejo del dolor en medicina veterinaria, 2002 
 
WARREN, Anestesia de animales domésticos, Labor, 1986 
 
DOERNING, B.J., BRAMMER, D.W., CHRISP, C.E. and RUSH, H.E. Nephrotoxicity of tiletamine in 
New Zealand white rabbits. Lab. Anim. Sci. 1992; 42: 267-269. 
MUIR, W.W. and HUBBELL, J.A.E. Handbook of veterinary anesthesia. Toronto, Ont.: C.V. Mosby 
Co., 1989. 
DANNEMAN, P.J., WHITE, W.J., MARSHALL, W.K. and LANG, C.M. An evaluation of analgesia 
associated with the immobility response in laboratory rabbits. Lab. Anim. Sci. 1988; 38: 51-57