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1 UNIVERSIDAD NACIONAL AUTONOMA DE MEXICO FACULTAD DE ESTUDIOS SUPERIORES ZARAGOZA Carrera Cirujano Dentista Título de Tesis: Análisis taxonómico mediante química computacional de la enzima betalactamasa y su importancia en cavidad oral. Modalidad: Experimental silico computacional. Presenta: Guillermo Refugio González Ochoa Director de Tesis: Q.F.B. Tejeda Rosales Ma. Elena Asesor: Cirujano Dentista. Miranda Llanas Iván Antonio Revisor de Tesis: Q.F.B. María de las Mercedes Zamudio Durán Fecha de entrega: 28 de noviembre del 2016. UNAM – Dirección General de Bibliotecas Tesis Digitales Restricciones de uso DERECHOS RESERVADOS © PROHIBIDA SU REPRODUCCIÓN TOTAL O PARCIAL Todo el material contenido en esta tesis esta protegido por la Ley Federal del Derecho de Autor (LFDA) de los Estados Unidos Mexicanos (México). El uso de imágenes, fragmentos de videos, y demás material que sea objeto de protección de los derechos de autor, será exclusivamente para fines educativos e informativos y deberá citar la fuente donde la obtuvo mencionando el autor o autores. Cualquier uso distinto como el lucro, reproducción, edición o modificación, será perseguido y sancionado por el respectivo titular de los Derechos de Autor. 2 INDICE Página I INTRODUCCIÓN 1.1 Introducción 1.2 Justificación 3 5 II OBJETIVOS 2.1 Objetivo General 2.2 Objetivos Particulares 7 8 III MATERIAL Y METODO 3.1 Tipo de Estudio 3.2 Método de Trabajo 3.3 Palabras Clave 9 9 10 IV DESARROLLO DEL TEMA 4.4 La Bioinformática 4.4.1 Cefalosporinasas 4.4.2 Enzimas de amplio espectro 4.4.3 Enzimas de espectro extendido (BLEE) 4.5 Enzimas de amplio espectro resistentes a inhibidores 4.5.1 Carbenicilinasas 4.5.2 Cloxacilinasas 4.5.3 Carbapenemasas 4.5.4 Metalo betalactamasas 4.5.5 Protein Data Bank 20 23 24 23 24 25 25 26 26 28 3 V BETALACTAMASAS SELECCIONADAS 5.1 La enzima 1M6K 5.2 La enzima 3LCE 5.3 La enzima 4X53 5.4 La enzima 3FV7 5.5 La enzima 1E25 5.6 La enzima 1ALQ 5.7 La enzima 1G68 5.8 La enzima 1G6A 5.9 La enzima 1SHV 5.10 La enzima 4R4R 5.11 La enzima 1LHY 5.12 La enzima 1ZG4 5.13 La enzima 1JTD 5.14 La enzima 1ZC2 5.15 La enzima 1K03 5.16 La enzima 4BP0 5.17 La enzima 1JJT 5.18 La enzima 2YNV 30 31 32 33 34 35 36 38 39 40 41 42 43 44 45 46 47 48 49 4 VI CRUSTAL OMEGA 6.1 Crustal Omega VII RESULTADOS 7.1 Interpretación de Matriz de identidad 7.2 Cladograma. VIII CONCLUSIONES 50 51 53 57 58 67 5 I 6 I 7 INTRODUCCIÓN La introducción de los antibióticos betalactámicos representa una de las contribuciones científicas más importantes de la ciencia en la historia reciente1. Hoy en día estos antibióticos siguen siendo los más utilizados debido a su efectividad, bajo costo, accesibilidad y efectos secundarios mínimos1. Los atributos que hacen especial a esta clase de antibióticos, parten de que su objetivo de acción, inhibir la biosíntesis de la pared celular bacteriana, va dirigido a un componente específico de las bacterias sin homólogo funcional o estructural en el ser humano, por tanto es imperativo que se mantengan como recurso clínico contra las enfermedades infecciosas1. Los antibióticos betalactámicos inhiben la actividad de las transpeptidasas y carboxipeptidasas por acilación de la serina en el sitio activo de las proteínas enlazantes de penicilina o PBPs2. A su vez, las betalactamasas son enzimas producidas por bacterias y son las responsables de la resistencia que éstas exhiben ante la acción de antibióticos betalactámicos como las penicilinas, las cefalosporinas, monobactámicos y carbapenémicos.1,3 El Cirujano Dentista durante su práctica profesional usa los antibióticos betalactámicos como antimicrobianos de primera elección.4,5 En la actualidad se ha reportado un alarmante aumento de la resistencia bacteriana a éstos y a otros antibióticos, por lo que es importante hacer un análisis filogenético, mediante el uso de las nuevas tecnologías de genética molecular para identificar la evolución de las betalatamasas, y su posible impacto en microorganismos de la cavidad oral.1,2,3 Con la ayuda del análisis filogenético que se realizará durante el proceso de esta investigación de carácter documental, se analizarán las clasificaciones de las familias y subfamilias de betalactamasas. Es importante su clasificación mediante 8 secuencias moleculares, ya que nos da una idea de su proceso evolutivo y conocer así una perspectiva del futuro de la quimioterapia basada en antibióticos betalactámicos.6 Los antibióticos betalactámicos son moléculas que poseen un anillo betalactámico en el cual podemos encontrar un grupo de amino secundario. Figura 1.1,7,8 Figura 1. Estructura General de los antibióticos betalacámicos: Penicilina y Cefalosporina Las betalactamasas existen desde antes del descubrimiento de las penicilinas y su presencia es el resultado de la resistencia de los microorganismos para su supervivencia en el medio. 7,8 Las nuevas herramientas informáticas, los programas de modelado molecular, los bancos de información y los servidores disponibles, nos permiten incorporar nuevas tecnologías de la información a la generación de conocimiento, no sólo en la FES Zaragoza en el área de odontología sino también en cualquier rama.9,10,11 9 1.2 JUSTIFICACIÓN. Hoy día, existe una amplia cantidad y diversidad de antibióticos para atender un padecimiento infectocontagioso, sin embargo los antibióticos betalactámicos son los más usados y consumidos. Su relativa inocuidad, alta eficacia y bajo costo, los hacen el antibiótico de elección en un gran número de padecimientos. Infecciosos. En la práctica diaria del Cirujano Dentista, los antibióticos betalactámicos siguen siendo la antibioterapia de primera elección. Ello se debe a que la mayoría de abscesos e infecciones bacterianas de la cavidad oral, son producidos por microorganismos, que en general son sensibles a los antibióticos betalactámicos. Se denominan antibióticos betalactámicos a un grupo de moléculas que poseen como estructura química básica un anillo betalactámico que contiene un grupo amino secundario con sustituyentes conjugados en la cadena lateral. Las penicilinas y cefalosporinas, son las moléculas representativas de los antibióticos betalactámicos. Se sabe que la producción bacteriana de betalactamasas existe desde antes del uso generalizado de la penicilina. Ello como resultado de la interacción natural de los microorganismos, sin embargo el indiscriminado y generalizado uso de antibióticos betalactámicos ha generalizado la diversificación y aumento de betalactamasas. El descubrimiento de la multirresistencia bacteriana asociada a plásmidos, llamó poderosamente la atención de la comunidad científica, evidenciando la posibilidad de que la eficacia terapéutica de la antibioterapia pudiera ser puesta en riesgo. Como resultado del alarmante aumento de betalactamasas, la clasificación de esta fue ocurriendo por sus características clínicas y su semejanza estructural. 10 Posteriormente se propuso clasificarlas teniendo en cuenta distintos criterios como las propiedades bioquímicas (peso molecular, secuenciación de nucleótidos), las propiedades físicas (punto isoeléctrico), el espectro de hidrólisis, el espectro de inhibición, la codificación (plasmídica o cromosómica). Aunque útiles, estas clasificaciones no consideran la posibilidad de analizarfilogenéticamente las betalactamasas, para identificar posibles orígenes comunes o convergencias evolutivas. Es en este punto donde las herramientas bioinformáticas y la química computacional se consideran fundamentales para identificar filogenéticamente la clasificación de las betalactamasas. Dado el aumento de betalactamasas y la multirresistencia bacteriana asociada a plásmidos, la flora microbiana de cavidad oral no está exenta de adquirir estas características. Por todo lo anteriormente expuesto, se justifica realizar estudios para identificar las diversas betalactamasas de microorganismos de importancia clínica, tanto a nivel sistémico como a nivel de cavidad oral, para proponer una nueva forma de clasificación filogenética basada en alineamientos globales heurísticos de la secuencia molecular de las distintas betalactamasas. Para realizar esta clasificación, se requerirá acceder a herramientas informáticas como bancos de datos, programas de software informático del servidor CLUSTAL OMEGA del Instituto Europeo de Bioinformática de la Universidad de Cambridge, campus Hinxton, en Inglaterra, lo que permitirá incorporar las nuevas tecnologías de la información a la generación de conocimiento el área de Odontología de la FES Zaragoza UNAM. 11 II OBJETIVOS 2.1 Objetivo General. Hacer una clasificación, mediante análisis filogenético de su secuencia molecular, de diversas betalactamasas, poniendo énfasis en bacterias de la cavidad oral. El análisis filogenético se hará a partir de la secuencia de aminoácidos de su estructura primaria, usando para ello las técnicas bioinformáticas de análisis computacional y alineamiento de secuencias, para construir un árbol filogenético que permita identificar familias y subfamilias de betalactamasas.9,10,11 2.2 Objetivos Particulares. •Identificar las diversas betalactamasas de microorganismos de importancia clínica.9 •Identificar si se han reportado secuencias moleculares de betalactamasas producidas por microorganismos de cavidad oral.9 •Identificar y conocer la secuencia de aminoácidos que conforman la estructura molecular de las diferentes betalactamasas.9 •Construir el formato computacional FASTA de almacenamiento, la secuencia molecular y su descripción de caracteres de seguridad, para las diversas betalactamasas de microorganismos de importancia clínica reportadas en los bancos de datos de estructuras moleculares9,11. 12 •Realizar el alineamiento secuencial múltiple de los aminoácidos que conforman la estructura molecular de las diferentes betalactamasas, mediante los programas de software informático del servidor CLUSTAL OMEGA del Instituto Europeo de Bioinformática de la Universidad de Cambridge, campus Hinxton, en Inglaterra.10 •Construir el árbol filogenético, mediante alineamientos globales de forma heurística progresiva, para identificar familias y subfamilias de betalactamasas, usando análisis multivariado de química computacional de secuencias de los aminoácidos que conforman la estructura molecular de las diferentes betalactamasas.10 •Analizar el árbol filogenético resultante de las betalactamasas. III Material y Métodos. 3.1 Tipo de Estudio. 13 Se realizará un estudio Prolectivo, comparativo, transversal, experimental in silico. El término in silico se usa en la terminología científica para referirse a experimentos biológicos llevados a cabo enteramente en un computador. 3.2 Método de trabajo 1.- En los diferentes bancos de datos seleccionar las betalactamasas existentes.9 2.-Descargar el código FASTA del alineamiento de la estructura primaria de la proteína.9 3.-Realizar en formato *.TXT una base de datos del código FASTA de todas las betalactamasas encontradas. 4.- Identificar para cada betalactamasa el microorganismo al cual pertenece. 5.-Acceder al servidor CLUSTAL OMEGA.10 6.- Iniciar el análisis heurístico, y alineamiento secuencial.10 7.- Mediante análisis multivariado de conglomerados (análisis clúster), determinar los dendogramas de máxima verosimilitud.10 8.- El dendograma de máxima verosimilitud, será el mejor árbol filogenético encontrado.10 Se pueden construir uno o varios árboles filogenéticos resultantes de esta investigación a consideración del director y asesores de tesis, así como la misma información documental de esta investigación lo requiera. Se clasificarán en código FASTA, la secuencia de las betalactamasas reportadas en los bancos de información, para iniciar con la clasificación filogenética. 3.3 Palabras Clave Las palabras clave utilizadas en esta tesis son las siguientes: 14 *Datos *Red *Código *Fasta *Crustal *Data *Bank *Alfa *Proteína *Alineamiento *Secuencia *Clustal *Cadenas *Conglomerado *Bacterias. 15 IV DESARROLLO DEL TEMA. 4.1 La Bioinformática. La bioinformática es una ciencia de reciente creación que une las nuevas tecnologías de la información con otras ciencias como la biología, la genética, bioquímica y la química.12,13 La secuenciación de genomas y proteínas lleva la necesidad de obtener información y conclusiones de la lectura de esos millones de pares de bases o de ciento o miles de aminoácidos; la rapidez, claridad y eficacia de esa información ha impulsado el desarrollo de la Bioinformática.12,13 La Bioinformática se apoya en el uso de técnicas computacionales, matemáticas, estadística y químicas para el análisis, interpretación y generación de datos biológicos.14 La bioinformática estudia ácidos nucleicos, proteínas, mutaciones, polimorfismos, y realiza cálculos matemáticos y estadísticos para interpretar la información resultante del análisis de las estructuras moleculares.12,13,14 Es importante mencionar que el código FASTA es un formato de fichero informático basado en texto, utilizado para representar secuencias bien de ácidos nucleicos, bien de péptido, y en el que los pares de bases o los aminoácidos se representan usando códigos de una única letra.12,13,14 16 4.2 ESTRUCTURAS BIOLOGICAS 4.2.1Las Proteínas. En virtud de que en este trabajo usamos la secuencia molecular de betalactamasas, se hará un breve recuento de las proteínas. La palabra proteína proviene del griego proto (lo primero, lo principal, lo más importante).15,16 Las proteínas son las responsables de la formación y reparación de los tejidos, interviniendo en el desarrollo corporal e intelectual.17 Las proteínas son biopolímeros (macromoléculas orgánicas), de elevado peso molecular, constituidas básicamente por unidades estructurales (monómeros) llamados aminoácidos (aa), los cuales se consideran como los "ladrillos de los edificios moleculares proteicos".15,16,17 Estos edificios macromoleculares se construyen y desmoronan con gran facilidad dentro de las células, y a ello debe precisamente la materia viva su capacidad de crecimiento, reparación y regulación.17,18 La unión de un bajo número de aminoácidos da lugar a un péptido; si el número de aa que forma la molécula no es mayor de 10, se denomina oligopéptido; si es superior a 10, se llama poli péptido y si el número es superior a 50 aa, se habla ya de proteína.15,16 Aunque existen diversas clasificaciones de las proteínas, si sólo están formadas por aminoácidos se denominan Holoproteínas y si contienen además de aminoácidos otras moléculas o elementos adicionales no aminoacídicos serán Heteroproteínas. 15,16 La organización de una proteína viene definida por cuatro niveles estructurales denominados: estructura primaria, estructura secundaria, estructura terciaria y 17 estructura cuaternaria. Cada una de estas estructuras informa de la disposición de la anterior en el espacio. 15,16 4.2.2 Estructura Primaria. Es una cadena polipeptídica lineal de aminoácidosunidos por enlaces peptídicos. El primer puesto de la cadena corresponde al grupo amino terminal, y la estructura primaria es la secuencia en la que están situados todos los constituyentes hasta llegar al carboxilo terminal.15,16,17 Figura 2. Esta secuencia está codificada genéticamente.18 Existen cadenas polipeptídicas de cualquier número de aminoácidos, sin que exista una solución de continuidad entre péptidos y proteínas. Por convención, se suele considerar proteína aquellos polipéptidos con un peso molecular del orden de 10,000 o más.15,16,17 Figura 2. Estructura primaria de una proteína 18 4.2.3 Estructura Secundaria La estructura secundaria es la forma en la que la cadena polipeptídica se pliega en el espacio.15,16 En una proteína, cada tramo de cadena polipeptídica tiene distinta estructura secundaria. Existen varias formas definidas de estructura secundaria, las más importantes son las llamadas hélice alfa y hoja plegada beta.15,16,17 Las estructuras secundarias definidas están mantenidas por puentes de hidrógeno formados exclusivamente entre los grupos amino y carboxilo que constituyen el esqueleto de la cadena polipeptídica.15,16,19 Consecuentemente, los parámetros estructurales, como distancias o ángulos, serán iguales independientemente de la proteína y de los aminoácidos que formen la estructura.19 Figura 3. Figura 3. Estructura secundaria de una proteína 19 4.2.4 Estructura Terciaria La estructura terciaria de la proteína es la forma en la que se organizan en el espacio los diferentes tramos de la cadena polipeptídica. La estructura terciaria está mantenida por diversas interacciones de las cadenas laterales de los aminoácidos que conforman la proteína, como enlaces iónicos, puentes de hidrógeno entre las cadenas laterales de los aminoácidos, enlaces hidrofóbicos y puentes disulfuro.15,16,19 Figura 4. Figura 4, Enlaces que estabilizan la estructura terciaria de una proteína 20 4.2.5 Estructura Cuaternaria La estructura cuaternaria de una proteína es la forma en la que se asocian las distintas subunidades constituyentes, si es que existen.19 Es decir, para poder hablar de estructura cuaternaria es necesario que la proteína esté formada por varias subunidades. Como ejemplos de proteínas con estructura cuaternaria se puede considerar la hemoglobina, las inmunoglobulinas o la miosina.15,16,19 . Figura 5. Resumen de las estructuras de una proteína. 21 4-3 FUNCIONES DE LAS PROTEINAS. Las proteínas dirigen y realizan casi todos los procesos vitales, determinan la forma y la estructura de las células.16,19 Las funciones de las proteínas son específicas de cada una de ellas y permiten a las células mantener su integridad, defenderse de agentes externos, reparar daños, controlar y regular funciones. 15,16,17,19 Todas las proteínas realizan su función de la misma manera: por unión selectiva a moléculas.18,19 Las proteínas estructurales se agregan a otras moléculas de la misma proteína para originar una estructura mayor.16,18,19 Existen , otras proteínas se unen a moléculas distintas como los anticuerpos a los antígenos específicos; la hemoglobina al oxígeno; las enzimas a sus sustratos; los reguladores de la expresión genética al ADN; las hormonas a sus receptores específicos.16,17,19 22 4.3.1 Tabla de aminoácidos. Esta tabla de aminoácidos es importante puesto que el código FASTA emplea a las abreviaturas como partes informáticas irrepetibles en su estructura.12,14,15,16 Aminoácido Código de tres letras Código de una letra Alanina Ala A Arginina Arg R Asparagina Asn N Ácido aspártico Asp D Cisteína Cys C Glutamina Gln Q Ácido glutámico Glu E Glicina Gly G Histidina His H Isoleucina Ile I https://es.wikipedia.org/wiki/Alanina https://es.wikipedia.org/wiki/Arginina https://es.wikipedia.org/wiki/Asparagina https://es.wikipedia.org/wiki/%C3%81cido_asp%C3%A1rtico https://es.wikipedia.org/wiki/Ciste%C3%ADna https://es.wikipedia.org/wiki/Glutamina https://es.wikipedia.org/wiki/%C3%81cido_glut%C3%A1mico https://es.wikipedia.org/wiki/Glicina https://es.wikipedia.org/wiki/Histidina https://es.wikipedia.org/wiki/Isoleucina 23 Aminoácido Código de tres letras Código de una letra Leucina Leu L Lisina Lys K Metionina Met M Fenilalanina Phe F Prolina Pro P Serina Ser S Treonina Thr T Triptófano Trp W Tirosina Tyr Y Valina Val V https://es.wikipedia.org/wiki/Leucina https://es.wikipedia.org/wiki/Lisina https://es.wikipedia.org/wiki/Metionina https://es.wikipedia.org/wiki/Fenilalanina https://es.wikipedia.org/wiki/Prolina https://es.wikipedia.org/wiki/Serina https://es.wikipedia.org/wiki/Treonina https://es.wikipedia.org/wiki/Tript%C3%B3fano https://es.wikipedia.org/wiki/Tirosina https://es.wikipedia.org/wiki/Valina 24 4.4 Betalactamasas. Como se mencionó anteriormente, las betalactamasas son enzimas producidas por la célula bacteriana, son las responsables de la resistencia que éstas exhiben ante la acción de antibióticos betalactámicos como las penicilinas, las cefalosporinas, monobactámicos y carbapenémicos.3,4,5 Son capaces de romper por hidrólisis el anillo betalactámico, impidiendo la acción del antibiótico. Las betalactamasas hidrolizan el anillo betalactámico antes que el antibiótico llegue al punto de unión con las PBP. (Proteínas enlazantes de penicilina).20,21,22 Todas las betalatamasas catalizan la misma reacción, se han aislado y caracterizado numerosos tipos de enzimas, que se clasifican en forma diversa, de acuerdo con su secuencia de aminoácidos, peso molecular o especificidad del substrato.20,21,22 La localización del gen que codifica la BETALACTAMASA es variable, pudiendo localizarse en el cromosoma o estar codificada por plásmidos.20,21,22 Las betalactamasas cromosómicas son universales en una bacteria específica, mientras que la presencia de betalactamasas codificadas por plásmidos es variable y transferible entre las diversas especies bacterianas.20,21,22 Se han realizado diversos intentos por clasificar a las betalactamasas, los criterios usados han sido peso molecular, punto isoeléctrico y sitio activo entre otros.2,4,5 25 Las sistematizaciones más difundidas de betalactamasas son la clasificación molecular de Ambler23 y la clasificación funcional de Bush, Jacoby y Medeiros24. Si bien Ambler en su clasificación considera la estructura molecular, su análisis se basa en estudios cristalográficos, homología estructural, homología secuencial y peso molecular 23 y no en alineamientos múltiples de la secuencia molecular de la estructura primaria, para generar cladogramas ortonormales mediante análisis multivariado, como es el objetivo de este trabajo. Ambler divide las betalactamasas en cuatro clases (A-D). La clase A son serinpenicilinasas, clase B metaloenzimas, clase C serin-cefalosporinasas y clase D serin-oxacilinasas.23 La clasificación de Bush-Jacoby-Medeiros también consta de cuatro grupos y diversos subgrupos.24 Se basa en las características funcionales, teniendo en cuenta distintos criterios como las propiedades bioquímicas (peso molecular, secuenciación de nucleótidos), las propiedades físicas (punto isoeléctrico), el espectro de hidrólisis, el espectro de inhibición, la codificación (plasmídica o cromosómica), etc. Esta clasificación es mucho más importante en el diagnóstico microbiológico de laboratorio ya que considera los substratos y los inhibidores de las betalactamasas clínicamente relevantes. 26 A continuación se presenta una tabla de una clasificación general de las betalactamasas. Figura 6. Figura 6. Una de las clasificaciones de las betalactamasas.27 4.4.1 Cefalosporinasas Son serin-betalactamasas que hidrolizan las cefalosporinas de amplio espectro, incluyenso a cefotaxima, ceftriaxona y ceftazidima, así como a monobactámicos como el aztreonam.25,26 Están presentes de forma natural en diversas enterobacterias y en bacilos gramnegativos no fermentadores como Pseudomonas aeruginosa y Acinetobacter baumannii. 25,26 Estas enzimas son capaces de resistir la inhibición por ácido clavulánico, sulbactam y tazobactam.24,25,26 Los microorganismos que producen esta betalactamasa, tienen un gen denominado AmpC, que favorece la expresión de la cefalosporinasa y están asociados a elevada virulencias y mortalidad. 25,26 Penicilasas Es una betalactamasa que hidroliza penicilinas como la penicilina V o penicilina G, y aminopenicilinas, ampicilina y amoxicilina. Están presentes en Staphylococcus aureus y son su principal mecanismo de resistencia.27 En la actualidad, la combinación de penicilinas o aminopenicilinas con inhibidores de betalactamasas como ácido clavulánico o sulbactam, hacen a los antibióticos estables a las penicilasas.27 https://es.wikipedia.org/wiki/Aztreonam 28 4.4.2 Enzimas de amplio espectro Son betalactamasas que hidrolizan las bencilpenicilinas, las amino, carboxi y ureido- penicilinas y cefalosporinas de espectro reducido como la cefazolina, cefalotina, cefuroxima y cefamandol. Ninguna de estas betalactamasas hidroliza cefalosporinas de tercera generación como la cefamicina, monobactams o carbapenems.24,28 Dentro de este grupo están incluidas betalactamasas TEM, SHV y las OXA.24,28 Las betalactamasas TEM deben su nombre a la paciente llamada Temoniera donde se aisló por primera vez esta enzima.24,28 La betalactamasa SHV su nombre hace referencia a sulfhydryl variable o variante sulfhídrica; inicialmente descrita en el género Klebsiella como betalactamasa cromosómica.24,28 y la variante OXA debe su nombre a su capacidad de hidrolizar la oxacilina.24,27,28 4.4.3 Enzimas de espectro extendido (BLEE) En los años 80 aparecen betalactamasas resistentes a cefalosporinas de tercera generación, a las que se les denominaron betalactamasas de espectro extendido (BLEE).29 Se ha propuesto que derivan de betalactamasas ya existentes que han sufrido mutaciones aleatorias por presión selectiva al introducir las cefalosporinas de tercera generación.30 Inicialmente estaban restringidas a Escherichia coli y Klebsiella , organismos que contenían las tres betalactamasas progenitoras de las BLEEs (TEM-1, TEM-2 y SHV-1).29,30 Las BLEEs se encuentran codificadas en plásmidos lo que permite su amplia y fácil diseminación no sólo entre cepas de la misma especie sino también entre cepas de distintas especies.29,30,31 Su aparición es especialmente importante por el amplio patrón de resistencia que provocan y son las principales responsables de infecciones nosocomiales graves y de infecciones de menor gravedad sumamente frecuentes como las infecciones urinarias (ITU)29,30,31. 29 El perfil de multirresistencia asociado a otros antibióticos no betalactámicos ocasiona un problema terapéutico de notables dimensiones.30,31 4. Enzimas de amplio espectro resistentes a inhibidores Con el descubrimiento de los inhibidores de betalactamasas como el ácido clavulánico sulbactam y tazobactam, se desarrollaron antibióticos estables a la acción hidrolítica de estas enzimas. Con la sistemática introducción a la terapéutica antimicrobiana, aparecieron cepas productoras de betalactamasa resistentes a los inhibidores.24, 30,31 4.5.1 Carbenicilinasas Son betalactamasas con actividad sobre las penicilinas y en especial carbenicilina, son inhibidas por ácido clavulánico. Están codificadas generalmente por plasmídos, ocasionalmente por vía cromosómica.32,33,34 4.5.2 Cloxacilinasas Son enzimas con actividad sobre penicilinas y en especial oxacilina (Oxacilinasas). Son inhibidas por el ácido clavulánico, aunque en menor grado que otras y codifican en general por vía plasmídica.32,33,34 30 4.5.3 Carbapenemasas Son betalactamasas con actividad sobre penicilinas, cefalosporinas y carbapenems. Son débilmente inhibidas por clavulánico, y están codificadas en los cromosamas bacterianos, su síntesis es fácilmente inducible.32,33,34 4.5.4 Metalo betalactamasas Se trata de una familia de enzimas de gran diversidad genética que tienen iones metálicos como cofactores enzimáticos.23,24,35,36 El mecanismo de acción de estas enzimas difiere de todas las betalactamasas conocidas, ya que en este caso no se producen uniones covalentes entre la enzima y el sustrato.23,24,35,36 Aquí cada átomo del ión metálico actúa polarizando distintas estructuras del anillo betalactámico, lo que lo hace sumamente vulnerable a la hidrólisis posterior por el sitio activo de la betalactamasa.23,24,35,36 Estas betalactamasas no se ven afectadas por el ácido clavulánico. Su espectro que abarca la mayor parte de betalactámicos, incluyendo carbapenemes, pero no aztreonam.23,24,35,36 Penicilinasas Son betalactamasas que actúan sobre penicilinas, no son inhibidas por el ácido clavulánico; no se ha determinado con precisión se clase molecular y están poco estudiadas y clasificadas.24,25,37 31 Existen otros tipos de resistencia a los antibióticos betalactámicos que involucran la resistencia natural, especie o grupo bacteriano; y que de manera general pueden clasificarse en4,5 : Inactivación enzimática: el principal mecanismo de inactivación es la hidrólisis, como sucede con las betalactamasas y los betalactámicos, Modificaciones en el sitio blanco: modificaciones en el gen que codifica el propio blanco del antibiótico, Alteraciones de la permeabilidad de la pared o de la membrana celular. Un análisis completo y profundo de las diversas distintas formas de resistencia, sale de las metas, objetivos y alcances de este trabajo, por lo que no será revisada. 32 4.5.5 Protein Data Bank El Protein Data Bank (banco de datos de proteínas) es un repositorio de descripciones experimentales de las estructuras moleculares de proteínas y ácidos nucleicos resueltos hasta el momento.9,12,13,14 Cada descripción es un archivo de texto que contiene las coordenadas atómicas de la molécula en cuestión en un formato que se llama PDB.9,12,13,14 Cuando se fundó el PDB contenía sólo 7 estructuras de proteínas. Desde entonces ha experimentado un crecimiento exponencial en el número de estructuras y nada parece indicar que el ritmo vaya a decaer.9,12,13,14 La búsqueda de las estructuras en código FASTA de las betalactamasas se realizó en la pantalla de trabajo al inicio de sesión del PDB mediante la solicitud de betalactamasas Figura 7. Figura 7. Pantalla de captura del PDB 33 A continuación se buscaron las betalactamasas reportadas en el PDB. Descargando el código FASTA para cada una de ellas de la pantalla Sequence del PDB. Figura 8. Figura 8. Descarga del código FASTA 34 4.5.6 BETALACTAMASAS SELECCIONADAS. Para cada betalactamasa reportada en el PDB, se descargó el código FASTA y se realizó un archivo en extensión TXT. Es importante mencionar que durante la revisión NO se encontró reportada en los bancos de datos alguna betalactamasa de microorganismos de cavidad oral. Las betalactamasas encontradas en el PDB fueron: Figura10. Cuadro betalactamasas seleccionadas. Penicilasas. 1ALQ, 1ZG4, 1JTD, 1SHV, 1LHY, Carbenicilinasas 1G6A, 1G68, Cefalosporinasas 1ZC2, 4R4R, 1E25, Cloxacilinasas 1M6K, 3LCE, 4X53, 3FV7. 35 5.1 La enzima 1M6Kes una betalactamasa monomérica aislada de Escherichia coli, es una hidrolasa serina activa ante oxilinasa y cloxacilina. Figura 11 Código FASTA: >1ALQ:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE MGQSEPIVLVIFTNKDNKSDKPNDKLISETAKSVMKEFAAGSKNAAKELNDLEK KYNAHIGVYALDTKSGKEVKFNSDKRFAYASTSKAINSAILLEQVPYNKLNKKV HINKDDIVAYSPILEKYVGKDITLKALIEASMTYSDNTANNKIIKEIGGIKK VKQRLKELGDKVTNPVRYEIELNYYSPKSKKDTSTPAAFGKTLNKLIANGKLSK ENKKFLLDLMLNNKSGDTLIKDGVPKDYKVADKSGQAITYASRNDVAFVYPK Estructura tridimensional: Figura11. Pantalla Betalactamasas seleccionadas. 36 5.2 La betalactamasa 3LCE es una enzima monomérica, pertenece a las hidrolasas serin activas. Fue aislada de Escherichia coli. Figura 12. Código FASTA: >3LCE:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE SITENTSWNKEFSAEAVNGVFVLCKSSSKSCATNDLARASKEYLPASTFKIPNA IIGLETGVIKNEHQVFKWDGKPRAMKQWERDLTLRGAIQVSAVPVFQQIAREV GEVRMQKYLKKFSYGNQNISGGIDKFWLEGQLRISAVNQVEFLESLYLNKLSA SKENQLIVKEALVTEAAPEYLVHSKTGFSGVGTESNPGVAWWVGWVEKETEV YFFAFNMDIDNESKLPLRKSIPTKIMES Estructura tridimensional Figura12. Pantalla Betalactamasas seleccionadas. 37 5.3 La betalactamasa 4X53 es una hidrolasa actúa contra las cefalosporinas, se aisló de Acinetobacter baumannii. Figura 13. El código FASTA es: >4X53:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE MHISSQQHEKAIKSYFDEAQTQGVIIIKEGKNLSTYGNALARANKEYVPASTFK MLNALIGLENHKATTNEIFKWDGKKRTYPMWEKDMTLGEAMALSADPVYQEL ARRTGLELMQKEVKRVNFGNTNIGTQVDNFWLVGPLKITPVQEVNFADDLAHN LPFKLETQEEVKKMLLIKEVNGSKIYAKSGWGMGVTSQVGWLTGWVEQANGK KIPFSLNLEMKEGMSGSIRNEITYKSLENLGII La estructura tridimensional es: Figura13. Pantalla Betalactamasas seleccionadas. 38 5.4 La enzima 3FV7, es una hidrolasa aislada de Staphuylococcus aureus. Figura 14 Su código FASTA: >3FV7:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE HISSQQHEKAIKSYFDEAQTQGVIIIKEGKNLSTYGNALARANKEYVPASTFKML NALIGLENHKATTNEIFKWDGKKRTYPMWEKDMTLGEAMALSAVPVYQELAR RTGLELMQKEVKRVNFGNTNIGTQVDNFWLVGPLKITPVQEVNFADDLAHNRL PFKLETQEEVKKMLLIKEVNGSKIYAKSGWGMGVTPQVGWLTGWVEQANGKK IPFSLNLEMKEGMSGSIRNEITYKSLENLGII La estructura tridimensional es: Figura14. Pantalla Betalactamasas seleccionadas. 39 5.5 La cefalosporinasa 1E25, aislada de Pseudomona aeuroginosa, pertenece a las hidrolasas serín activas.Figura 15. El código FASTA es: >1E25:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE QSPLLKEQIESIVIGKKATVGVAVWGPDDLEPLLINPFEKFPMQSVFKLHLAMLV LHQVDQGKLDLNQTVIVNRAKVLQNTWAPIMKAYQGDEFSVPVQQLLQYSVS HSDNVACDLLFELVGGPAALHDYIQSMGIKETAVVANEAQMHADDQVQYQNW T SMKGAAEILKKFEQKTQLSETSQALLWKWMVETTTGPERLKGLLPAGTVVAHK TGTSQIKAGKTAATNDLGIILLPDGRPLLVAVFVKDSAESSRTNEAIIAQVAQTAY QFELKKLSALSPN La estructura tridimensional es: Figura15. Pantalla Betalactamasas seleccionadas. 40 5.6 La enzima 1ALQ es una hidrolasa, aislada de Staphilococcus aureus; hidroliza la cefalosporina y cefalexina. Figura 16. Código FASTA: >1AQL:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE AKLGSVYTEGGFVEGVNKKLSLFGDSIDIFKGIPFAAAPKALEKPERHPGWQGT LKAKSFKKRCLQATLTQDSTYGNEDCLYLNIWVPQGRKEVSHDLPVMIWIYGG AFLMGASQGANFLSNYLYDGEEIATRGNVIVVTFNYRVGPLGFLSTGDSNLPG NYGLWDQHMAIAWVKRNIEAFGGDPDNITLFGESAGGASVSLQTLSPYNKGLI KRAISQSGVGLCPWAIQQDPLFWAKRIAEKVGCPVDDTSKMAGCLKITDPRAL TLAYKLPLGSTEYPKLHYLSFVPVIDGDFIPDDPVNLYANAADVDYIAGTNDMD GHLFVGMDVPAINSNKQDVTEEDFYKLVSGLTVTKGLRGANATYEVYTEPWA QDSSQETRKKTMVDLETDILFLIPTKIAVAQHKSHAKSANTYTYLFSQPSRMPIY PKWMGADHADDLQYVFGKPFATPLGYRAQDRTVSKAMIAYWTNFARTGDPN TG HSTVPANWDPYTLEDDNYLEINKQMDSNSMKLHLRTNYLQFWTQTYQALPTV La estructura tridimensional es: Figura16. Pantalla Betalactamasas seleccionadas. 41 5.7 La proteína 1G68, obtenida de Escherichia coli es activa frente a carbenicilina se expresa como una carbenicilinasa. Figura 17 Código FASTA: >1G68:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE SSSKFQQVEQDVKAIEVSLSARIGVSVLDTQNGEYWDYNGNQRFPLTSTFKTI ACAKLLYDAEQGKVNPNSTVEIKKADLVTYSPVIEKQVGQAITLDDACFATMTT SDNTAANIILSAVGGPKGVTDFLRQIGDKETRLDRIEPDLNEGKLGDLRDTTT PKAIASTLNKFLFGSALSEMNQKKLESWMVNNQVTGNLLRSVLPAGWNIADRS GAGGFGARSITAVVWSEHQAPIIVSIYLAQTQASMEERNDAIVKIGHSIFDVYTS QSR La estructura tridimensional es: Figura17. Pantalla Betalactamasas seleccionadas. 42 5.8 La Enzima 1G6A es una betalactamasa aislada de Pseudomona aeruginosa. Es una hidrolasa de carbenicilina. Figura 18. El código FASTA es: >1G6A:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE SSSKFQQVEQDVKAIEVSLSARIGVSVLDTQNGEYWDYNGNQRFPLTSTFKTI ACAKLLYDAEQGKVNPNSTVEIKKADLVTYSPVIEKQVGQAITLDDACFATMTT SDNTAANIILSAVGGPKGVTDFLRQIGDKETRLDRIEPDLNEGKLGDLRDTTT PKAIASTLNKFLFGSALSEMNQKKLESWMVNNQVTGNLLRSVLPAGWNIADKS GAGGFGARSITAVVWSEHQAPIIVSIYLAQTQASMEERNDAIVKIGHSIFDVYTS QSR La estructura tridimensional es: Figura18. Pantalla Betalactamasas seleccionadas. 43 5.9 La enzima 1SHV, pertenece a las hidrolasas y se encuentra en Escherichia coli y Klebsiella pneumoniae. Figura 19 Su código FASTA es: >1SHV:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE SPQPLEQIKLSESQLSGRVGMIEMDLASGRTLTAWRADERFPMMSTFKVVLC GAVLARVDAGDEQLERKIHYRQQDLVDYSPVSEKHLADGMTVGELCAAAITMS DNSAANLLLATVGGPAGLTAFLRQIGDNVTRLDRWETELNEALPGDARDTTTP AS MAATLRKLLTSQRLSARSQRQLLQWMVDDRVAGPLIRSVLPAGWFIADKTGA GERGARGIVALLGPNNKAERIVVIYLRDTPASMAERNQQIAGIGAALIEHWQR La estructura tridimensional es: Figura 20. Pantalla Betalactamasas seleccionadas. 44 5.10La enzima 4R4R es una betalactamasa aislada de Pseudomona aureginosa. Figura 21. El código FASTA es: >4R4R:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE HPETLVKVKDAEDQLGARVGYIELDLNSGKILESFRPEERFPLTSTFKVLLCGA VLSRVDAGQEQLGRRIHYSQNDLVEYSPVTEKHLTDGMTVRELCSAAITMSDN TAANLLLTTIGGPKELTDFLRQIGDKETRLDRIEPDLNEGKLGDLRDTTTPKA IASTLRKLLTGELLTLASRQQLIDWMEADKVAGPLLRSALPAGWFIADKSGAGE RGSRGIIAALGPDGKPSRIVVIYTTGSQATMDERNRQIAEIGASLIKHW La estructura tridimensional es: Figura 21. Pantalla Betalactamasas seleccionadas. 45 5.11 La enzima 1LHY, hidrolasa de Escherichia coli. Resistente a inhibidores como el ácido clavulanico. Figura 22 Código FASTA: >1LHY:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE HPETLVKVKDAEDQLGARVGYIELDLNSGKILESFRPEERFPMMSTFKVLLCGA VLSRVDAGQEQLGRRIHYSQNDLVEYSPVTEKHLTDGMTVRELCSAAITMSDN TAANLLLTTIGGPKELTAFLHNMGDHVTRLDRWEPELNEAIPNDERDTTMPAA MATTLRKLLTGELLTLASRQQLIDWMEADKVAGPLLRSALPAGWFIADKSGAG ERGSSGIIAALGPDGKPSRIVVIYTTGSQATMDERNRQIAEIGASLIKHW La estructura tridimensional es: Figura 22. Pantalla Betalactamasas seleccionadas. 46 5.12 La betalactamasa1ZG4, es una hidrolasa de Escherichia coli. Figura 23. El código FASTA: >1ZG4:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE MSIQHFRVALIPFFAAFCLPVFAHPETLVKVKDAEDQLGARVGYIELDLNSGKIL ESFRPEERFPMMSTFKVLLCGAVLSRIDAGQEQLGRRIHYSQNDLVEYSPVTE KHLTDGMTVRELCSAAITMSDNTAANLLLTTIGGPKELTAFLHNMGDHVTRL DRWEPELNEAIPNDERDTTMPVAMATTLRKLLTGELLTLASRQQLIDWMEADK VAGPLLRSALPAGWFIADKSGAGERGSRGIIAALGPDGKPSRIVVIYTTGSQAT MDERNRQIAEIGASLIKHW La estructura tridimensional es: Figura 23. Pantalla Betalactamasas seleccionadas. 47 5.13 La enzima 1JTD es una hidrolasa de Escherichia coli. Figura 24. Código Fasta: >1JTD:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE HPETLVKVKDAEDQLGARVGYIELDLNSGKILESFRPEERFPMMSTFKVLLCGA VLSRVDAGQEQLGRRIHYSQNDLVEYSPVTEKHLTDGMTVRELCSAAITMSDN TAANLLLTTIGGPKELTAFLHNMGDHVTRLDRWEPELNEAIPNDERDTTMPVA MATTLRKLLTGELLTLASRQQLIDWMEADKVAGPLLRSALPAGWFIADKSGAG ERGSRGIIAALGPDGKPSRIVVIYTTGSQATMDERNRQIAEIGASLIKHW La estructura tridimensional es: Figura24. Pantalla Betalactamasas seleccionadas. 48 5.14 La enzima 1ZC2 es una hidrolasa codificada por plásmidos obtenida de Klebsiella pneumonie. Figura 25 El Código FASTA: >1ZC2:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE AAKTEQQIADIVNRTITPLMQEQAIPGMAVAVIYQGKPYYFTWGKADIANNHPV TQQTLFELGSVSKTFNGVLGGDAIARGEIKLSDPVTKYWPELTGKQWQGIRLL HLATYTAGGLPLQIPDDVRDKAALLHFYQNWQPQWTPGAKRLYANSSIGLFGA LAVKPSGMSYEEAMTRRVLQPLKLAHTWITVPQNEQKDYAWGYREGKPVHVS PGQLDAEAYGVKSSVIDMARWVQANMDASHVQEKTLQQGIALAQSRYWRIGD MYQGLGWEMLNWPLKADSIINGSDSKVALAALPAVEVNPPAPAVKASWVHKT GSTG GFGSYVAFVPEKNLGIVMLANKSYPNPVRVEAAWRILEKLQ La estructura tridimensional es: 49 Figura25. Pantalla Betalactamasas seleccionadas. 5.15 La enzima 1K03, es una betalactamasa de Pseudomona aeuroginosa, pertenece a las hidrolasas, actúa sobre cefepimeceftizidima, imipenem, meropenem. Figura26 Su código FASTA es: >1KO3:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE EYPTVSEIPVGEVRLYQIADGVWSHIATQSFDGAVYPSNGLIVRDGDELLLIDTA WGAKNTAALLAEIEKQIGLPVTRAVSTHFHDDRVGGVDVLRAAGVATYASPST RRLAEVEGNEIPTHSLEGLSSSGDAVRFGPVELFYPGAAHSTDNLVVYVPSA SVLYGGCAIYELSRTSAGNVADADLAEWPTSIERIQQHYPEAQFVIPGHGLPG GLDLLKHTTNVVKAHTN La estructura tridimensional es: Figura 26. Pantalla Betalactamasas seleccionadas. 50 5.16 La betalactamasa 4BP0 obtenida de Pseudomona aureoguinosa, es una metaloenzima o metalo-beta-lactamasa. Figura 27 El código FASTA es: >4BP0:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE GPKSSDHVDLPYNLTATKIDSDVFVVTDRDFYSSNVLVAKMLDGTVVIVSSPFE NLGTQTLMDWVAKTMKPKKVVAINTHFHLDGTGGNEIYKKMGAETWSSDLTK QLRLEENKKDRIKAAEFYKNEDLKRRILSSHPVPADNVFDLKQGKVFSFSNELV EVSFPGPAHSPDNVVVYFPKKKLLFGGCMIKPKELGYLGDANVKAWPDSARR LKKFDAKIVIPGHGEWGGPEMVNKTIKVAEKAVGEMRL La estructura tridimensional es: Figura 27. Pantalla Betalactamasas seleccionada 51 5.17 La enzima 1JJT obtenida de Pseudomona aureoguinosa es una metaloenzima que hidroliza de manera eficiente los antibióticos betalactámicos Figura 28 El código FASTA es: >1JJT:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE AESLPDLKIEKLDEGVYVHTSFEEVNGWGVVPKHGLVVLVNAEAYLIDTPFTAK DTEKLVTWFVERGYKIKGSISSHFHSDSTGGIEWLNSRSIPTYASELTNELLKK DGKVQATNSFSGVNYWLVKNKIEVFYPGPGHTPDNVVVWLPERKILFGGCFI KPYGLGNLGDANIEAWPKSAKLLKSKYGKAKLVVPSHSEVGDASLLKLTLEQA VKGLNESKKPSKPSN La estructura tridimensional es: Figura 28. Pantalla Betalactamasas seleccionadas. 52 5.18 La betalactamasa 2YNV es una hidrolasa aislada de pseudomona auruginiosa. Figura 29 El código FASTA es: >2YNV:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE SQGHKPLEVIKIEDGVYLHTSFKNIEGYGLVDSNGLVVLDNNQAYIIDTPWSEE DTKLLLSWATDRGYQVMASISTHSHEDRTAGIKLLNSKSIPTYTSELTKKLLARE GKPVPTHYFKDDEFTLGNGLIELYYPGAGHTEDNIVAWLPKSKILFGGCLV RSHEWEGLGYVGDASISSWADSIKNIVSKKYPIQMVVPGHGKVGSSDILDHTID LAESASNKLMQPTAEASAD La estructura tridimensional es: Figura 29. Pantalla Betalactamasas seleccionadas. 53 1M6K es una oxacillinasa serin-activa obtenida de Escherichia coli. Figura 30 Su Código FASTA es: >1M6K:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE STDISTVASPLFEGTEGCFLLYDASTNAEIAQFNKAKCATQMAPDSTFKIALSLM AFDAEIIDQKTIFKWDKTPKGMEIWNSNHTPKTWMQFSVVWVSQEITQKIGLNK IKNYLKDFDYGNQDFSGDKERNNGLTEAWLESSLKISPEEQIQFLRKIINH NLPVKNSAIENTIENMYLQDLDNSTKLYGKTGAGFTANRTLQNGWFEGFIISKS GHKYVFVSALTGNLGSNLTSSIKAKKNAITILNTLNL La estructura tridimensional es: Figura 30. Pantalla Betalactamasas seleccionadas. 54 VI CRUSTAL OMEGA. 6.1 Crustal Omega. Con estos códigos FASTA almacenados en una base de datos con extensión TXT, se realizó el análisis multivariado de secuencias moleculares en el servidor CLUSTAL OMEGA. Figura 30. Del Instituto Europeo de Bioinformática del Campus Hixton de la Universidad de Cambridge.10 Figura 30. Pantalla Betalactamasas seleccionadas. A continuación se le da enviar (submit). Clustal Omega envía los resultados por correo electrónico. 55 VII RESULTADOS A continuación se presentan las alineaciones de secuenciación múltiple de las betalactamasas: CLUSTAL O(1.2.2) multiple sequence alignment 1M6K:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE --------------------------STDISTVASP--------- -------------L- 3LCE:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE --------------------------SITENTSWNK--------- -------------EF 4X53:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE ----------------------MHISSQQHEKAIKS--------- -------------YF 3FV7:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE -----------------------HISSQQHEKAIKS--------- -------------YF 1ZC2:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE ------------------ AAKTEQQIADIVNRTITPLMQEQAIPGMAV----------AV 1KO3:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE --------------------------------------------- --------------- 4BP0:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE --------------------------------------------- --------------- 1JJT:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE --------------------------------------------- --------------- 2YNV:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE --------------------------------------------- --------------- 1E25:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE --------------------------------------------- -QSPLLKEQIESIVI 1ALQ:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE MGQSEPIVLVIFTNKDNKSDKPNDKLISETAKSV---MKEFA--- AGSKNAAKELNDLEK 1G68:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE ------------------------------------------- SSSKFQQVEQDVKAIEV 1G6A:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE ------------------------------------------- SSSKFQQVEQDVKAIEV 1SHV:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE --------------------------------------------- --SPQPLEQIKLSES 4R4R:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE --------------------------------------------- --HPETLVKVKDAED 1LHY:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE --------------------------------------------- --HPETLVKVKDAED 1ZG4:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE ------------------------ MSIQHFRVALIPFFAAFCLPVFAHPETLVKVKDAED 1JTD:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE --------------------------------------------- --HPETLVKVKDAED 1M6K:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE - FEGTEGCFLLYDASTNAEIAQFNKAKCATQMAPDSTFKIALSLMAFD---AEII-DQKT 3LCE:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE SAEAVNGVFVLCKSS- SKSCATNDLARASKEYLPASTFKIPNAIIGLE---TGVIKNEHQ 4X53:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE DEAQTQGVIIIKEGK- NLSTYGNALARANKEYVPASTFKMLNALIGLE---NHKA-TTNE 3FV7:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE DEAQTQGVIIIKEGK- NLSTYGNALARANKEYVPASTFKMLNALIGLE---NHKA-TTNE 1ZC2:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE IYQGKPYYFTWGKA---- DIANNHPVTQQTLFELGSVSKTFNGVLGGDAIARGEIKLSDP 1KO3:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE ------------------------------EYPTVSE-- IPVGEVRLYQIADGVWSHIAT 56 4BP0:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE ------------------------------- GPKSSDHVDLPYNLTATKIDSDVFVVTDR 1JJT:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE ----------------------------------AE---- SLPDLKIEKLDEGVYVHTSF 2YNV:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE ----------------------------------SQ---- GHKPLEVIKIEDGVYLHTSF 1E25:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE GKKATVGVAVWGPD----DLEP- LLINPFEKFPMQSVFKLHLAMLVLHQVDQGKLDLNQT 1ALQ:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE KYNAHIGVYALDTK----SGKE- VKFNSDKRFAYASTSKAINSAILLEQVPY--NKLNKK 1G68:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE SLSARIGVSVLDTQ----NGEY- WDYNGNQRFPLTSTFKTIACAKLLYDAEQGKVNPNST 1G6A:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE SLSARIGVSVLDTQ----NGEY- WDYNGNQRFPLTSTFKTIACAKLLYDAEQGKVNPNST 1SHV:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE QLSGRVGMIEMDLA---- SGRTLTAWRADERFPMMSTFKVVLCGAVLARVDAGDEQLERK 4R4R:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE QLGARVGYIELDLN---- SGKILESFRPEERFPLTSTFKVLLCGAVLSRVDAGQEQLGRR 1LHY:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE QLGARVGYIELDLN---- SGKILESFRPEERFPMMSTFKVLLCGAVLSRVDAGQEQLGRR 1ZG4:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE QLGARVGYIELDLN---- SGKILESFRPEERFPMMSTFKVLLCGAVLSRIDAGQEQLGRR 1JTD:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE QLGARVGYIELDLN---- SGKILESFRPEERFPMMSTFKVLLCGAVLSRVDAGQEQLGRR . 1M6K:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE IFK---------WDKT----------------------PKGM--- --EIWNSNHTPKTWM 3LCE:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE VFK---------WDGK----------------------PRAM--- --KQWERDLTLRGAI 4X53:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE IFK---------WDGK----------------------KRTY--- --PMWEKDMTLGEAM 3FV7:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE IFK---------WDGK----------------------KRTY--- --PMWEKDMTLGEAM 1ZC2:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE VTKYWPELTGKQWQGIRLLHLATYTAGGLPLQIPDDVRDKAALLHFYQNWQPQWTPGAK- 1KO3:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE QS----------FDG------AVYPSNGL-IVRD---GDELLL-- ----IDTAWGAKNT- 4BP0:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE DF----------YS-----------SNVLVAKML---DGTVVI-- ----VSSPFENLGT- 1JJT:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE EE----------VNG-----WGVVPKHGL-VVLV---NAEAYL-- ----IDTPFTAKDT- 2YNV:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE KN----------IEG-----YGLVDSNGL-VVLD---NNQAYI-- ----IDTPWSEEDT- 1E25:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE VI-----------------------------------VNRAKV-- ----LQNTWAPIMK- 1ALQ:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE VH-----------------------------------INKDDI-- ----V--AYSPILE- 1G68:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCEVE-----------------------------------IKKADL-- ----V--TYSPVIE- 1G6A:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE VE-----------------------------------IKKADL-- ----V--TYSPVIE- 1SHV:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE IH-----------------------------------YRQQDL-- ----V--DYSPVSE- 4R4R:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE IH-----------------------------------YSQNDL-- ----V--EYSPVTE- 1LHY:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE IH-----------------------------------YSQNDL-- ----V--EYSPVTE- 1ZG4:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE IH-----------------------------------YSQNDL-- ----V--EYSPVTE- 1JTD:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE IH-----------------------------------YSQNDL-- ----V--EYSPVTE- 57 1M6K:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE QFSVVWVSQEITQ--------------- KIGLNKIKNYLKDFDYGNQDFSGDKERNNGLT 3LCE:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE QVSAVPVFQQIAR--------------- EVGEVRMQKYLKKFSYGNQNISG------GID 4X53:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE ALSADPVYQELAR--------------- RTGLELMQKEVKRVNFGNTNIGT------QVD 3FV7:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE ALSAVPVYQELAR--------------- RTGLELMQKEVKRVNFGNTNIGT------QVD 1ZC2:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE RLYA---NSSIGLFGALAVKPSGMSYEEAMTRRVLQPLKL---- AHTWITV--PQNEQKD 1KO3:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE AALLAEIEKQIGL-PVT-RAVSTHFHDDRVGGVDVLRAAG---- VATYASP-------ST 4BP0:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE QTLMDWVAKTMKP-KKV-VAINTHFHLDGTGGNEIYKKMG---- AETWSSD-------LT+ 1JJT:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE EKLVTWFVERG-Y-KIK-GSISSHFHSDSTGGIEWLNSRS---- IPTYASE-------LT 2YNV:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE KLLLSWATDRG-Y-QVM-ASISTHSHEDRTAGIKLLNSKS---- IPTYTSE-------LT 1E25:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE AY----QGDEFSV-PVQQLLQYSVSHSDNVACDLLFELVG---- GPAALHD-------YI 1ALQ:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE KY----VGKDIT---LKALIEASMTYSDNTANNKIIKEIG---- GIKKVKQ-------RL 1G68:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE KQ----VGQAIT---LDDACFATMTTSDNTAANIILSAVG---- GPKGVTD-------FL 1G6A:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE KQ----VGQAIT---LDDACFATMTTSDNTAANIILSAVG---- GPKGVTD-------FL 1SHV:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE KH----LADGMT---VGELCAAAITMSDNSAANLLLATVG---- GPAGLTA-------FL 4R4R:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE KH----LTDGMT---VRELCSAAITMSDNTAANLLLTTIG---- GPKELTD-------FL 1LHY:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE KH----LTDGMT---VRELCSAAITMSDNTAANLLLTTIG---- GPKELTA-------FL 1ZG4:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE KH----LTDGMT---VRELCSAAITMSDNTAANLLLTTIG---- GPKELTA-------FL 1JTD:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE KH----LTDGMT---VRELCSAAITMSDNTAANLLLTTIG---- GPKELTA-------FL . 1M6K:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE EAWLESSLKISPEEQIQFLRKI----------------------- ----INHNLPVKNSA 3LCE:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE KFWLEGQLRISAVNQVEFLESL----------------------- ----YLNKLSASKEN 4X53:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE NFWLVGPLKITPVQEVNFADDL----------------------- ----AHNRLPFKLET 3FV7:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE NFWLVGPLKITPVQEVNFADDL----------------------- ----AHNRLPFKLET 1ZC2:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE YAWGYREGKPVHVSPGQLDAEAYGVKSSVIDMARWVQANMDASHVQEKTLQQGIALA--- 1KO3:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE RRLAEVEGNEIPTHSLE---------------------------- --------------- 4BP0:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE KQLRLEENKKDRIKAAEFYKN----EDLKRR-------------- --------------- 1JJT:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE NELLKKDGKVQA---TN---------------------------- --------------- 2YNV:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE KKLLAREGKPVP---TH---------------------------- --------------- 1E25:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE QSMGIKETAVVANEAQM---H----ADDQVQYQNWTSMKGAAE- ILKK-FEQKTQLSETS 1ALQ:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE KELGDKVTNPVRYEIEL---N----YYSPKSKKDTSTPAAFGK- TLNK-LIANGKLSKEN 1G68:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE RQIGDKETRLDRIEPDL---N----EGKLGDLRDTTTPKAIAS- TLNK-FLFGSALSEMN 58 1G6A:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE RQIGDKETRLDRIEPDL---N----EGKLGDLRDTTTPKAIAS- TLNK-FLFGSALSEMN 1SHV:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE RQIGDNVTRLDRWETEL---N----EALPGDARDTTTPASMAA- TLRK-LLTSQRLSARS 4R4R:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE RQIGDKETRLDRIEPDL---N----EGKLGDLRDTTTPKAIAS- TLRK-LLTGELLTLAS 1LHY:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE HNMGDHVTRLDRWEPEL---N----EAIPNDERDTTMPAAMAT- TLRK-LLTGELLTLAS 1ZG4:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE HNMGDHVTRLDRWEPEL---N----EAIPNDERDTTMPVAMAT- TLRK-LLTGELLTLAS 1JTD:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE HNMGDHVTRLDRWEPEL---N----EAIPNDERDTTMPVAMAT- TLRK-LLTGELLTLAS 1M6K:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE IEN------------TIENMYLQDLDNSTKLYGKTG- AGFTANRTLQNGWFE-------- 3LCE:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE QLI------------V- KEALVTEAAPEYLVHSKTGFSGVGTESNPGVAWWV-------- 4X53:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE QEE------------V-KKMLLIKEVNGSKIYA--- KSGWGMGVTSQVGWLT-------- 3FV7:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE QEE------------V-KKMLLIKEVNGSKIYA--- KSGWGMGVTPQVGWLT-------- 1ZC2:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE --QSRYWRIGDMYQGLGWEMLNWPLKADSIINGSDSKVA-LAA-- --LPAVEVNPPAPAV 1KO3:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE --------------------------------GLSSSGDAVRF-- ---GPVELFYPGAAH 4BP0:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE ------------------ILSSHPVPADNVFDLKQGKVFSFSN-- ---ELVEVSFPGPAH 1JJT:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE --------------------------------SFSGVNYWLVK-- ---NKIEVFYPGPGH 2YNV:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE --------------------------------YFKDDEFTLGN-- ---GLIELYYPGAGH 1E25:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE QALLWKWMVETT--- TGPERLKGLLPAGTVVAHKTGTSQIKAGKTAATNDL-GIILLPDG 1ALQ:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE KKFLLDLMLNNK---SGDTLIKDGVPKDYKVADKSGQAITYAS-- --RNDV--AFVYPK- 1G68:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE QKKLESWMVNNQ---VTGNLLRSVLPAGWNIADRSGAGG-FGA-- --RSIT--AVVWSEH 1G6A:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE QKKLESWMVNNQ---VTGNLLRSVLPAGWNIADKSGAGG-FGA-- --RSIT--AVVWSEH 1SHV:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE QRQLLQWMVDDR---VAGPLIRSVLPAGWFIADKTGAGE-RGA-- --RGIV--ALLGPNN 4R4R:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE RQQLIDWMEADK---VAGPLLRSALPAGWFIADKSGAGE-RGS-- --RGII--AALGPDG 1LHY:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE RQQLIDWMEADK---VAGPLLRSALPAGWFIADKSGAGE-RGS-- --SGII--AALGPDG 1ZG4:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE RQQLIDWMEADK---VAGPLLRSALPAGWFIADKSGAGE-RGS-- --RGII--AALGPDG 1JTD:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE RQQLIDWMEADK---VAGPLLRSALPAGWFIADKSGAGE-RGS-- --RGII--AALGPDG 1M6K:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE -------GFIISKSGHKYVFVSALTGNLGSNLTSSIKAKK----- -NAITIL-----NTL 3LCE:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE -------GWVEKETEV-YFFAFNMDIDNESKLPLRKS-------- -IPTKIM-----ESE 4X53:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE -------GWVEQANGKKIPFSLNLEMKEGMSGSIRNE-------- -ITYKSL-----ENL 3FV7:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE -------GWVEQANGKKIPFSLNLEMKEGMSGSIRNE-------- -ITYKSL-----ENL 1ZC2:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE K-----ASWVHKTG-STGGFGSYVAFVPEKNLGIVMLANKSY--- PNPVRVE-------- 59 1KO3:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE STD-NLVVYVPSAS---VLYGGCA- IYELSRTSAGNVADADLAEWPTSIERIQQHYPEAQ 4BP0:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE SPD-NVVVYFPKKK---LLFGGCM-IKP--- KELGYLGDANVKAWPDSARRL--KKFDAK 1JJT:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE TPD-NVVVWLPERK---ILFGGCF-IKP--- YGLGNLGDANIEAWPKSAKLLKSKYGKAK 2YNV:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE TED-NIVAWLPKSK---ILFGGCL- VRSHEWEGLGYVGDASISSWADSIKNIVSKKYPIQ 1E25:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE R-PLLVAVFVKDSA---ES------- SRTNEAIIAQVAQTAYQFELKKLSALSPN----- 1ALQ:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE --------------------------------------------- --------------- 1G68:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE QAPIIVSIYLAQTQ---AS------- MEERNDAIVKIGHSIFDVYTSQSR---------- 1G6A:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE QAPIIVSIYLAQTQ---AS------- MEERNDAIVKIGHSIFDVYTSQSR---------- 1SHV:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE KAERIVVIYLRDTP---AS------- MAERNQQIAGIGAALIEHWQR------------- 4R4R:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE KPSRIVVIYTTGSQ---AT------- MDERNRQIAEIGASLIKHW--------------- 1LHY:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE KPSRIVVIYTTGSQ---AT------- MDERNRQIAEIGASLIKHW--------------- 1ZG4:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE KPSRIVVIYTTGSQ---AT------- MDERNRQIAEIGASLIKHW--------------- 1JTD:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCEKPSRIVVIYTTGSQ---AT------- MDERNRQIAEIGASLIKHW--------------- 1M6K:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE NL------------------------------------- 3LCE:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE GIIGG---------------------------------- 4X53:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE GII------------------------------------ 3FV7:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE GII------------------------------------ 1ZC2:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE ------AAWRILEKLQ----------------------- 1KO3:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE FVIPGHGLPGGLDLLKHTTNVVKAHTN------------ 4BP0:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE IVIPGHGEWGGPEMVNKTIKVAEKAVGEMRL-------- 1JJT:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE LVVPSHSEVGDASLLKLTLEQAVKGLNESKKPSKPSN-- 2YNV:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE MVVPGHGKVGSSDILDHTIDLAESASNKLMQPTAEASAD 1E25:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE --------------------------------------- 1ALQ:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE --------------------------------------- 1G68:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE --------------------------------------- 1G6A:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE --------------------------------------- 1SHV:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE --------------------------------------- 4R4R:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE --------------------------------------- 1LHY:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE --------------------------------------- 1ZG4:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE --------------------------------------- 1JTD:A|PDBID|CHAIN|SEQUENCE --------------------------------------- El alineamiento de estructuras múltiples anterior nos muestra básicamente una comparación de los aminoácidos, donde se ubican las identidades entre aminoácidos. El porcentaje de identidad se define como los aminoácidos idénticos que poseen entre proteínas entre el número total de aminoácidos de la proteína a comparar. 60 Los resultados de secuenciación anterior, son relativamente difíciles de leer, toda vez que se superponen las cadenas de las 20 betalactamasas, pero nos verifica que se realizó de manera correcta y sin errores el alineamiento estructural múltiple. Una mejor forma de identificar el porcentaje de identidad se realiza en la matriz de identidad. Figura 31 Que imprime CLUSTAL OMEGA y que se presenta a continuación: Figura 31. Pantalla Matriz de Identidad. 61 7.1 Interpretación de Matriz de identidad. La forma de interpretar la matriz anterior es la siguiente: La tabla representa una matriz comparativa de forma simétrica. Para encontrar el porcentaje de identidad entre dos betalactamasas, se ubica la primera en la parte izquierda y la otra en la parte superior, el cruce de ambas refiere el porcentaje de identidad. Por ejemplo la betalactamasa 1ZG4 tiene un porcentaje de identidad del 99.62 % con respecto a la 1JTD. Estas dos betalactamasas tienen el porcentaje de identidad más alto encontrado en el estudio. La betalactamasa 1ZG4, es una BLEE tipo TEM-1 de Escherichia coli obtenida en 2005 por Stec y colaboradores. La enzima 1JTD obtenida en 2001, también es una BLEE tipo TEM-1 mutante obtenida de una cepa silvestre de Escherichia coli. La menor identidad ocurrió entre la 1M6K y la 2YNV con un 10.87%. La 1M6K es una hidrolasa serina monomérica activa ante oxilinasa y cloxacilina aislada de Escherichia coli, mientras que la 2YNV es una metalobetalactamasa aislada de pseudomona auruginiosa. A continuación se muestra el cladograma ortonormal. Figura 32 obtenido mediante análisis multivariado de componentes principales generado por el servidor CLUTAL OMEGA: 62 Figura 32. Pantalla Cladograma orto-normal Betalactamasas seleccionadas. B~n(~ l en~: @ daoo~ram Real lM6K.AI'DBIDICHAIN ISEQUENCE Ol 78J l JlCE_ AI'D81DICHAlNISEQUENCE Ol0077 4XI3 J IPDBIDICHAJNISEQUENCE 0,OO4J4 JM J I'OBIOICHAINISEQUENCE 0,ooJ86 lE1IJ I'OBIOICHAIN ISEQUENCE 0.18671 lAlQJI'OBIOICHAINISEQUENCE Ol15J9 lG68JI'OBIDIC AIN ISEQUENCE O,OOJJ lG6AJI'OBIOICHAINISEQUENCE 0,OO)J9 ISHV J i'OBIOICHAIN ISEQUENCE 0.1653 4R4RJI'DBIDICHAIN ISEQUENCE 0,OJ116 IlHU I'OBIDICHAlNISEQUENCE 0,00479 lZG4JIPOBIOICHAINISEQUENCE 0,00211 lJTD Ji'OBIO IC~AIN ISEQUENCE 0,00119 lZCt AI'OBIOICHAIN ISEQUENCE 0,40761 lKOt AI'D810ICHAlNISEQUENCE 0,l491J 4BPOJIPOBIDIC AIN ISEQUENCE 0,lJ161 lJJ1JI'OBIOICHAINISEQUENCE 0,26847 1YNUI'OBIOICHAIN ISEQUENCE 0,17978 63 7.2 Cladograma. El análisis del cladograma Figura 33. Muestra la existencia de tres grandes familias de betalactamasas, a las que denominaremos 1, 2 y 3. Las secuencias moleculares de las betalactamasas, generaron la presencia de varias subfamilias. El primer clado o familia 1, tiene a su vez 2 subfamilias: Figura 33.Cladograma Clado o Familia 1 Betalactamasas seleccionadas. 64 65 La primera subfamilia está conformada por las betalactamasas 1M6K, 3LCE, 4X53 y 3FV7. Todas ellas son hidrolasas serina activas, es decir tienen serina en el sitio activo. La segunda subfamilia contiene las betalactamasas 1E25, 1ALQ, 1G68, 1G6A, 1SHV, 4R4R, 1LHY, 1ZG4 y 1JTD. Estas enzimas son hidrolasas activas, sumamente resistentes a los inhibidores como el clavulanato, y en todas ellas han ocurrido mutaciones puntuales y aparecen arginina y serina en sus sitios activos. La segunda familia está conformada por betalactamasas codificadas por plásmidos. Figura 34 Figura. 34 Cladograma 2 familia codificada por plasmidos Betalactamasas seleccionadas. El tercer grupo o familia la componen metaloenzimas hidrolíticas, es decir betalactamasas que tienen cofactores metálicos en su sitio activo. Figura 35. Figura 35 Familia 3 o metaloenzimas hidroliticas. Betalactamasas seleccionadas. 66 Los resultados obtenidos en este trabajo pueden resumirse en el siguiente esquema: Figura 36. Figuras 36 Esquema resultante de betalactamasas seleccionadas. Por otro lado, la clasificación molecular de Ambler refiere 4 familias o clases. Figura 37. La clase A que agrupa las serinpenicilinasas, clase B las metaloenzimas, clase C a serin-cefalosporinasas y clase D las serin- oxacilinasas.23 BETALACTAMASAS Familia 1 Serina en el sitio activo Resistentes a clavulonato, arginina y serina en el sitio activo Familia 2 Codificadas por plásmidos Familia 3 Metaloproteínas 67 Figuras 37 Esquema la clasificación molecular de Amber. En su clasificación, no hay diferencia molecular entre las betalactamasas de origen cromosómico o plasmídico,23 situación que sí ocurrió en nuestro estudio. Con respecto a las metaloenzimas o clase B, Ambler considera 3 subfamilias: B1, B2 y B3. Las subfamilias B1 y B3 engloban enzimas con amplio espectro de acción que actuan frente a la mayoría de los betalactámicos excepto monobactámicos, mientras que B2 son Carbapenemasas las cuales presentan poca acción frente a penicilinas y cefalosporinas.23 68 En nuestro caso encontramos 4 subfamilias de metaloenzimas: Figura 38 Figuras 38 Subfamilias de metaloenzimas. 7.3 Subfamilia 1. Metaloenzimas con zinc que hidrolizan carbapenems. 7.4 Subfamilia 2. Metalo-betalactamasas, que catalizan la hidrólisis de casi todos los antibióticos etalactámicos, al igual que todas las metalobetalactamas usa Zn++ como cofactor enzimático; tiene características estructurales que confieren resistencia a inhibidores como clavulanato. 7.5 Subfamilia 3. Metaloenzimas de zinc codificadas por plásmidos que hidrolizan de manera eficiente los antibióticos betalactámicos, incluyendo los carbapenems. Subfamilia 4. Metalobetalactamasas codificadas por el gen bla(GIM-1), que regula la expresión de tales enzimas, descubiertas en Pseudomonas aeruginosa, más recientemente se ha informado su presencia en la familia Enterobacteriaceae. 69 VIII CONCLUSIONES Del Protein Data Bank se obtuvo el código FASTA para 20 betalactamasas de importanciaclínica. NO se encuentra reportada en los bancos de datos revisados alguna betalactamasa de microorganismos de cavidad oral.9 Se realizó el alineamiento secuencial múltiple de las betalactamasas estudiadas mediante el servidor CLUSTAL OMEGA del Instituto Europeo de Bioinformática de la Universidad de Cambridge, campus Hinxton, en Inglaterra.10 El alineamiento de estructuras múltiples nos muestra la ubicación de identidades entre aminoácidos. Se generó la matriz de identidad mediante el servidor CLUSTAL OMEGA, la cual es una matriz comparativa de forma simétrica donde se presentan los porcentajes de identidad entre dos betalactamasas. La mayor identidad se encontró entre la betalactamasa 1ZG4 y 1JTD, con un porcentaje del 99.62 %. La betalactamasa 1ZG4, es una BLEE tipo TEM-1 de Escherichia coli obtenida en 2005 por Stec y colaboradores. La enzima 1JTD obtenida en 2001, también es una BLEE tipo TEM-1 mutante obtenida de una cepa silvestre de Escherichia coli. La menor identidad ocurrió entre la 1M6K y la 2YNV con un 10.87%. La 1M6K es una hidrolasa serina monomérica activa ante oxilinasa y cloxacilina aislada de Escherichia coli, mientras que la 2YNV es una metalobetalactamasa aislada de pseudomona auruginiosa. Se construyó un árbol filogenético o dendograma de máxima verosimilitud donde se ubica la clasificación de las betalactamasas estudiadas. 70 Los resultados muestran la existencia de tres grandes familias diferentes de betalactamasas las cuales a su vez presentan diferentes subfamilias A continuación se presenta el Cladograma: Figura 40. Figuras 40 Cladograma y la representación de este en sus tres Familias obtenidas. B~lKh lell9lh: @ Cla~ogram Real IM6K J IPDBIDICHAINISEQUENCE 0.l7831 3LCUIPDBIDICHAINISEQUENCE 030077 4X5tAIPDBIDICHAINISEQ UENCE 0,00434 ¡Pl7 J IPDBIDICHAlNISEQUENCE 0,00386 IE25 J IPDBIDICHAINISEQUENCE 0.38671 IALQJIPDBIDICHAINISEQUENCE 032539 IG68J IPDBIDICHAINISEQUENCE 0,0033 IG6UIPDBIDICHAlNISEQ UENCE 0,00039 ISHUIPDBIDICHAlNISEQUENCE 0.1653 4R4R J IPDBIDICHAINISEQUENCE 0,03226 IlJIUIPDBIDICHAINISEQUENCE 0,00479 IZGUIPDBIDICHAINISEQUENCE 0,00251 lITO J IPDBIDICHAlNISEQUENCE 0,00129 IZCtAIPDBIDICHAlNlSEQUENCE 0,40761 IKOlJlPDBIDICHAINISEQUENCE 0.l4923 4BPOJIPDBIDICHAINISEQUENCE 0.33161 UJT J IPD BIDICHllNISEQUENCE 0,26847 2YNUIPDBIDICHAlNISEQUENCE 0,27978 71 El análisis del cladográfico muestra la existencia de tres grandes familias de betalactamasas, a las que denominamos familias 1, 2 y 3. Las secuencias moleculares de las betalactamasas, generaron varias subfamilias. El primer clado o familia 1, tiene a su vez 2 subfamilias. La primera subfamilia está conformada por las betalactamasas 1M6K, 3LCE, 4X53 y 3FV7. Todas ellas son hidrolasas serina activas. La segunda subfamilia contiene las betalactamasas 1E25, 1ALQ, 1G68, 1G6A, 1SHV, 4R4R, 1LHY, 1ZG4 y 1JTD. Estas enzimas son hidrolasas activas, sumamente resistentes a los inhibidores como el clavulanato, y en todas ellas han ocurrido mutaciones puntuales y aparecen arginina y serina en sus sitios activos. La segunda familia está conformada por betalactamasas codificadas por plásmidos. El tercer grupo o familia la componen metaloenzimas hidrolíticas, es decir betalactamasas que tienen cofactores metálicos en su sitio activo, las 4 subfamilias de las metalobetalactamasas son: Subfamilia 1. Metaloenzimas con zinc que hidrolizan carbapenems. Subfamilia 2. Metalo-betalactamasas, que catalizan la hidrólisis de casi todos los antibióticos etalactámicos, al igual que todas las metalobetalactamas usa Zn como cofactor enzimático; tiene características estructurales que confieren resistencia a inhibidores como clavulanato. Subfamilia 3. Metaloenzimas de zinc codificadas por plásmidos que hidrolizan de manera eficiente los antibióticos betalactámicos, incluyendo los carbapenems. Subfamilia 4. Metalobetalactamasas codificadas por el gen bla(GIM-1), que regula la expresión de tales enzimas, descubiertas en Pseudomonas aeruginosa, más recientemente se ha informado su presencia en la familia Enterobacteriaceae 72 Los resultados obtenidos en este trabajo pueden resumirse en el siguiente esquema: Figuras 41 Esquema resultante de esta investigación. Existen algunas diferencias entre la clasificación molecular de Ambler y la encontrada en este trabajo. Amber no realizó cladogramas ortonomales mediante análisis multivariado, su clasificación obedece a estudios cristalográficos, homología estructural, homología secuencial y peso molecular. 23 No se encontraron reportado betalactamasas producidas por microorganismos de cavidad oral. Se recomienda proseguir este estudio con más betalactamasas y verificar la posible semejanza de cladogramas ortonomales mediante análisis multivariado con la clasificación de Amber. BETALACTAMASAS Familia 1 Serina en el sitio activo Resistentes a clavulonato, arginina y serina en el sitio activo Familia 2 Codificadas por plásmidos Familia 3 Metaloproteínas 73 BIBLIOGRAFIA. 1. Wilke M S, Lovering L A, Strynadka CJ. β-Lactam antibiotic resistance: a current structural perspective. Current Opinion in Microbiology, 8:525–533, 2005. 2. Yamada M, Watanabe T, Takeuchi Y. 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