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1 UNIVERSIDAD NACIONAL AUTONOMA DE MEXICO FACULTAD DE MEDICINA DIVISION DE ESTUDIOS DE POSGRADO INSTITUTO MEXICANO DEL SEGURO SOCIAL UNIDAD MEDICA DE ALTA ESPECIALIDAD HOSPITAL DE CARDIOLOGIA DEL CENTRO MEDICO NACIONAL “SIGLO XXI” CARACTERIZACIÓN DE LA FRECUENCIA Y EXPRESIÓN DE CD86 EN CÉLULAS DENDRÍTICAS SLAN PROVENIENTES DE PACIENTES CON SÍNDROME CORONARIO AGUDO. TESIS PARA OBTENER EL TITULO DE: ESPECIALISTA CARDIOLOGIA PRESENTA: DR. UZIEL ENRIQUE MANZANO LÓPEZ ASESOR: M en C. DRA. MARIA ALEJANDRA GUADALUPE MADRID MILLER CIUDAD DE MEXICO AGOSTO 2016 UNAM – Dirección General de Bibliotecas Tesis Digitales Restricciones de uso DERECHOS RESERVADOS © PROHIBIDA SU REPRODUCCIÓN TOTAL O PARCIAL Todo el material contenido en esta tesis esta protegido por la Ley Federal del Derecho de Autor (LFDA) de los Estados Unidos Mexicanos (México). El uso de imágenes, fragmentos de videos, y demás material que sea objeto de protección de los derechos de autor, será exclusivamente para fines educativos e informativos y deberá citar la fuente donde la obtuvo mencionando el autor o autores. Cualquier uso distinto como el lucro, reproducción, edición o modificación, será perseguido y sancionado por el respectivo titular de los Derechos de Autor. 2 Caracterización de la frecuencia y expresión de CD86 en células dendríticas slan provenientes de pacientes con síndrome coronario agudo. Autores: Dr. Uziel Enrique Manzano López Residente de Cardiología Hospital de Cardiología, C.M.N. Siglo XXI. druzielmanzano@gmail.com Responsable: M en C. Dra. Alejandra Madrid Miller. Jefe de Investigación en Salud, Hospital de Cardiología, C.M.N. Siglo XXI. Teléfono: 56276900. Extensión: 22152. akmadrid@prodigy.net.mx Colaboradores: Dr. Francisco Blanco Favela. Jefe de la Unidad de Investigación Médica en Inmunología, Hospital de Pediatría, C.M.N. Siglo XXI. Teléfono: 56276900. Extensión: 22447. fblanco1@terra.com.mx D en C. Luis Chávez Sánchez. Investigador Asociado A Unidad de Investigación Médica en Inmunología, Hospital de Pediatría, C.M.N. Siglo XXI. Teléfono: 56276900. Extensión: 22447. luis_chz@hotmail.com 3 CONTENIDO 1. MARCO TEÓRICO 7 2. PLANTEAMIENTO DEL PROBLEMA 12 3. JUSTIFICACIÓN 13 4. OBJETIVO GENERAL 14 5. HIPOTESIS 15 6. MATERIAL Y MÉTODOS 16 7. CRITERIOS DE SELECCIÓN 17 8. OPERACIONALIZACION DE LAS VARIABLES 19 9. ANALISIS ESTADISTICO 23 10. ASPECTOS ÉTICOS 24 11. BIBLIOGRAFÍA 30 4 Resumen Caracterización de la frecuencia y expresión de CD86 en células dendríticas slan provenientes de pacientes con síndrome coronario agudo. *Manzano López, U. ** Madrid Miller, A. ***Blanco Favela, F. ****Chávez Sánchez, L. Departamento de Investigación en Salud, UMAE, Hospital de Cardiología, C.M.N. Siglo XXI. ** Unidad de Investigación Médica en Inmunología, Hospital de Pediatría, C.M.N. Siglo XXI. Las enfermedades cardiovasculares y en particular los síndromes isquémicos coronarios agudos (SICA), representan un grave problema de salud en el mundo. En países desarrollados y en algunos en vías de desarrollo estas patologías ocupan la principal causa de muerte. La cardiopatía isquémica incluye la arteriopatía coronaria crónica (angina estable) y SICA (angina inestable, infarto agudo de miocardio y muerte súbita). En México, los síndromes isquémicos agudos fueron la segunda causa de muerte en población general en el 2001, actualmente ocupan el primer lugar, originando 81,242 muertes por año, de las cuales 60,610 se presentaron en individuos mayores de 65 años y alrededor de 20,631 en individuos en edad productiva. En personas mayores de 75 años causa el 70% de todas las muertes. En el proceso aterogénico diversas estirpes celulares participan en la respuesta inmune especialmente las células dendriticas (DCs). Las DCs son células presentadoras de antígeno profesionales cruciales en la respuesta inmune innata y inducción de una respuesta inmune adaptativa a infecciones, así como, en el mantenimiento de la tolerancia inmunológica de los tejidos propios. Las DCs existen en dos estados funcionales el primero es un estado inmaduro en el cual se caracteriza por una alta expresión de moléculas del complejo principal de histocompatibilidad (MHC) clase I y clase II, expresan receptores para Fc, receptores para células muertas y receptores tipo lectina como el DEC-205, entre otros. Estas moléculas le dan la capacidad a la DCs inmaduras de internalizar antígenos exógenos y endógenos, los cuales son procesarlos para ser presentados en el contexto de las moléculas del MHC, además incrementan los niveles de CD40, CD80, CD83 y CD86; adicionalmente migran y presentan el antígeno a linfocitos T. Las DCs se acumulan en las lesiones ateroscleróticas y se sugiere que pueden estar jugando un papel importante en el proceso de la enfermedad. Las DCs arriban a la lesión por los receptores de quimiocinas CCR2 y CCR5, cuyos ligandos se expresan en la placa. Las DCs pueden ser activadas a través de los receptores tipo toll (TLR) que expresan en la superficie celular; además estudios in vitro han establecido que las DCs de pacientes con SICA expresan niveles alto de TLR4 y además pueden ser activadas a través de este receptor usando LPS. Recientemente, la subpoblación de DCs denominada DCs slan (slanDCs) en sangre periférica de humanos a cobrado interés, por su alta capacidad en secretar mediadores inflamatorios, la cual se identifica a través del anticuerpo M-DC8. Las células slanDCs, expresan CXCR1, CCR1, CCR5 y CCR7. Además, expresan CD83, CD86, así como, las moléculas del MHC clase I y clase II, lo que sugiere que son capaces de inducir respuestas inmunes. También, se ha demostrado que el estímulo de LPS en las slanDCs induce la secreción de TNF-α e IL-12p70. Estas evidencias sugieren un posible papel de las slanDCs en las enfermedades inflamatorias a través de la inducción y perpetuación de la inflamación, en particular en la enfermedad cardiovascular. La identificación de la 5 frecuencia, inmunofenotipica y funcional de las slan DCs en la enfermedad cardiovascular, nos permitirá encontrar una biomarcador molecular de la enfermedad que se pueda sugerirse en la clínica. Objetivos. 1) Comparar la frecuencia de las slanDCs de sangre periférica de pacientes con síndrome isquémico coronario y sujetos sanos. 2) Determinar el patrón de expresión de la molécula CD86 en las slanDCs en fresco de pacientes con síndrome isquémico coronario. 3) Demostrar que la activación de las slanDCs vía TLR2 y TLR4 induzcan un incremento en la expresión de CD86. Así como un incremento en la producción de TNF-α e IL-12, en pacientes síndrome isquémico coronario en comparación con sujetos sanos. Diseño del estudio. Desde el punto de vista clínico se trata de un diseño transversal. Sin embargo ya que se va a aplicar una maniobra se podría considerar un estudio clínico-básico concurrente. Grupos de estudio. Se incluirán 78 casos concurrentes de pacientes que ingresen a la UMAE, Hospital de Cardiología de Centro Médico Nacional SXXI, que cumplan con los criterios de selección. El grupo de sujetos sanos será de 26 de entre 45 a 75 años de edad, se reclutaran de banco de sangre. Ambos grupos serán sometidos a una valoración médica integral por un médico cardiólogo. Obtención de células mononucleares. Las células se obtendrán a partir de 20 ml de sangre heparinizada por lymphoprep. La viabilidad celular se realizara por exclusión con azul tripan. Determinación de la frecuencia y marcadores de superficie celulares en las células dendríticas slan. Las células mononucleares se resuspenderán en PBS-BSA (0.5%)- Na3N 0.2% pH=7.4 y se incubaran con los anticuerpos monoclonales anti- humanos: anti-CD3-PE, anti-CD14-PE, anti-CD19-PE y anti-CD56-PE (eBioscience), para excluir células del linaje de linfocitos T, linfocitos B, células NK y macrófagos. La identificación de las slanDc se realizará con anticuerpos anti-CD123-Violeta brillante 421, anti-HLA-DR-APC-Cy7, (BD Pharmingen), anti-CD11c-APC, anti-M-DC8-APC-FITC(Miltenyi Biotec MACS, Bergish Gladbach, Germany), así como con, anti-CD80-PECy5 , anti-CD86-PECy7, anti-CD40-PECy5, anti-TLR2-PECy7, anti-TLR4-PECy7 de eBioscience, San Diego, CA., anti-CCR2-PECy5 (R&D Systems, Inc., Minneapolis). Determinación de citocinas intracelualres. Las células mononucleares se estimularan con 100 ng/ml de LPS de Escherichia coli serotype O111:B4 (100 ng/ml) (Sigma) o con 20 ng/ml de Pam3CSK4 (Alexis Biochemicals, Plymouth Meeting, PA, USA), concluida la incubación se realizará la tinción para identificar a las slanDC, así como las citocinas TNF e IL-12. Análisis estadístico. Análisis univariado de las variables continuas se describirán de acuerdo a su distribución (promedio ± desviación estándar, mediana y percentiles). Las características demográficas de la población se expresarán en porcentaje de frecuencia. Para el análisis bivariado de variables continuas y comparación de grupos de pacientes se emplearan t de Student o U de Mann Whitney. Para la comparación de variables cualitativas se empleará Chi 2 o prueba exacta de Fisher de acuerdo con valores esperados. Para la comparación de variables 6 cuantitativas entre grupos se empleará ANOVA o Kruskal Wallis de acuerdo con la distribución de los datos y homogeneidad de varianzas. Se considerara un valor de p ≤ 0.05. Aspectos éticos. Este protocolo corresponde aún estudio con riesgo mínimo de acuerdo al reglamento de la Ley General de Salud en materia de Investigación, ya que solo se tomará una muestra de sangre en una ocasión. Dado estas características se solicitará consentimiento verbal. Recursos, financiamiento y factibilidad. Pacientes: La UMAE Hospital de Cardiología, tiene un ingreso mensual promedio de 80 pacientes, de los cuales el 95 % aproximadamente es debido a síndrome coronario agudo. Recursos físicos y materiales: La Unidad de Investigación Médica en Inmunología, Hospital de Pediatría, CMN SXXI y la Unidad de Investigación Médica en Autoinmunidad, Hospital de Especialidades, CMN SXXI cuenta con los recursos, equipo y reactivos necesarios para llevar al cabo los experimentos así como el personal capacitado. Recursos financieros: Se someterá a evaluación del apoyo Financiero para el Desarrollo de Protocolos de Investigación y Desarrollo Tecnológico sobre Temas Prioritarios de Salud IMSS. Tiempo a desarrollarse: El protocolo se desarrollara en 3 años y medio. Experiencia del grupo. El Dr. Francisco Blanco Favela, cuenta con 62 artículos publicados en revistas internacionales, ha participado en 6 publicaciones de capítulo de libro en inglés, ha graduado a alumnos de posgrado de maestría y doctorado en ciencias, ha obtenido apoyos financieros en el IMSS y CONACYT. El Dr. Luis Chávez Sánchez, ha publicado 7 artículos en revistas internacionales, ha participado en la publicación de dos capítulos de libro en inglés, ha graduado a dos alumnos de licenciatura, ha obtenido un apoyo financiero en el IMSS y otro de CONACYT. La Dra. Alejandra Madrid Miller, ha publicado 6 artículos tanto en revistas nacionales e internacionales, colabora en la publicación de uh libro en español, ha graduado a diversos alumnos de especialidad, ha obtenido financiamientos en el IMSS. 7 Marco teórico Las enfermedades cardiovasculares y en particular los síndromes isquémicos coronarios agudos (SICA), representan un grave problema de salud en el mundo. En países desarrollados y en algunos en vías de desarrollo estas patologías ocupan la principal causa de muerte [1]. La cardiopatía isquémica incluye la arteriopatía coronaria crónica (angina estable) y SICA (angina inestable, infarto agudo de miocardio y muerte súbita) [2]. La angina es el síntoma más característico de la cardiopatía isquémica, manifestándose por dolor, opresión o malestar generalmente torácico; atribuible a isquemia miocárdica transitoria. La angina estable es aquella angina de esfuerzo en la que no ha habido cambios en su forma de presentación en las últimas 4 semanas e implica la no previsible aparición de complicaciones de forma inminente o evolución desfavorable en un futuro inmediato [2]. Los SICA incluyen la angina inestable, la cual representa la transición entre la enfermedad arterial coronaria estable y el estado en el que el paciente se encuentra en alto riesgo de presentar un infarto. De hecho, la angina inestable es la primera forma de presentación clínica en algunos pacientes, la cual se caracteriza clínicamente por dolor precordial de origen isquémico, o dolor en extremidades superiores, mandíbula y epigastrio, desencadenado con el esfuerzo o aún en reposo, con duración menor a 30 minutos cuyo inicio de los síntomas es menor a 8 semanas, en pacientes previamente asintomáticos. Sin embargo, en pacientes con antecedente de angina estable, se presenta con cambios en la frecuencia de los eventos de angina, o bien, en su duración, severidad y factores desencadenantes del evento, acompañado o no de síntomas neurovegetativos y/o alteraciones electrocardiográficas [3]. En el infarto agudo del miocardio, las manifestaciones clínicas habitualmente tienen una duración superior a los 30 minutos y existe elevación de marcadores séricos de necrosis miocárdica [4], como consecuencia de una isquemia severa ocasionada por una oclusión coronaria aguda de origen trombótico que se produce tras la ruptura de una placa aterosclerosa vulnerable [2]. En México, los síndromes isquémicos agudos fueron la segunda causa de muerte en población general en el 2001, actualmente ocupan el primer lugar, originando 81,242 muertes por año, de las cuales 60,610 se presentaron en individuos mayores de 65 años y alrededor de 20,631 en individuos en edad productiva. En personas mayores de 75 años causa el 70% de todas las muertes [5]. El SICA es más frecuente en el género masculino que en el femenino, con relación aproximada de 1:10, Sin embargo, en mujeres después de los 65 años de edad, se pierde ésta relación y se vuelven tan vulnerables como los hombres. La forma más frecuente de presentación clínica de la enfermedad coronaria en las mujeres es la angina de pecho, mientras que en los hombres se presenta más a menudo en forma de infarto del miocardio [2]. Los factores de riesgo asociados con enfermedades cardiovasculares incluyen: dislipidemia, diabetes mellitus, hipertensión arterial sistémica, tabaquismo, niveles elevados en plasma de homocisteína, concentraciones elevadas de lipoproteína a, alteración del balance entre radicales oxidantes y antioxidantes, la expresión del antígeno leucocitario humano, 8 infecciones por microorganismos como citomegalovirus, Chlamydia pneumoniae y Helicobacter pylori [6,7]. El proceso aterogénico se inicia con la disfunción endotelial que consiste en una pérdida de las funciones homeostáticas del endotelio (anti-adhesiva, anti-agregante, anti-proliferativa, anti-oxidante, anti-trombótica y reguladora del tono vasomotor) e incluyen un aumento de la permeabilidad endotelial a lipoproteínas de baja densidad las cuales son modificadas por lipoperoxidación en el espacio subendotelial iniciando la formación de la placa aterosclerosa [6,7]. Como consecuencia se observa la expresión de selectina-E, selectina-P, molécula de adhesión de plaquetas a células endoteliales-1, molécula de adhesión intercelular-1 y molécula de adhesión de células vasculares (VCAM) -1, las cuales producen la interacción entre las células T y los monocitos circulantes con las células endoteliales [8,9]. Además, moléculas quimiotractantes como la proteína quimiotractante de monocitos (MCP)-1 estimulan la migración y acumulación de leucocitos en el sitio de la lesión, también se ha descrito la participación de receptor (CCR2) en el desarrollo de la lesión aterosclerosa [10,11], resultados similares se han demostrado con la fraktalkina; otras quimiocinas que están involucradas en la formación de la lesión son MIP-1α, MIP-1β, así como, sus receptores (CCR1 y CCR5) [12]. En esta etapa de la lesión, las células musculares lisas migran a la placa estimuladas por el factor de crecimientoderivado de plaquetas y el factor de crecimiento de fibroblastos [6,7]. Los monocitos y macrófagos participan en la respuesta inmune innata y son células efectoras esenciales en la enfermedad aterosclerosa. Expresan en la superficie celular receptores “scavenger”, los cuales identifican e internalizan las partículas de lipoproteína de baja densidad oxidada (LDLox), induciendo su activación y transformación en células espumosas [13]. Además, en la lesión se genera la placa fibrosa caracterizada por un crecimiento extracelular de lípidos, particularmente colesterol, ésteres de colesterol y matriz derivada de células musculares lisas [6]. Los macrófagos activados presentes en la placa, secretan citocinas pro- inflamatorias, entre las que se encuentran interleucina (IL)-1β, IL-8, TNF-α, factor estimulador de colonias de macrófagos y MCP-1. En etapas avanzadas de la placa se inicia la muerte celular de macrófagos por interferón (IFN)-γ. Por otro lado, la apoptosis o necrosis puede ser generada por la acumulación de lípidos promoviendo el avance del núcleo necrótico en la placa. Además, los macrófagos producen TNF-α, IL-1β y metaloproteinasas que pueden ser críticos en el daño a la lesión [6,7,13,14]. En la última etapa de la aterosclerosis ocurre ruptura o ulceración de la placa fibrosa lo que conduce a síndromes de angina inestable o al infarto de miocardio. La vulnerabilidad de la placa se origina por un adelgazamiento de la lesión y ocurre por inhibición de la secreción de matriz proveniente de células musculares lisas a través de IFN-γ secretado por linfocitos T. Los macrófagos degradan la matriz de la capa fibrosa por medio de colagensa intersticial, gelatinasa y estromilisina. La degradación de la capa fibrosa frecuentemente se origina en los hombros de la lesión y puede conducir a una hemorragia, las plaquetas activadas se adhieren a la arteria lesionada ocasionando la formación de un trombo y la oclusión de la arteria [6]. Con base en lo anterior, que da de manifiesto que diversas estirpes celulares participan en la respuesta inmune en la aterosclerosis especialmente los macrófagos [7]. Sin embargo, los macrófagos no son las únicas células presentadoras de antígeno presentes en la lesión aterosclerosa. Adicionalmente, se ha descrito la presencia de células dendriticas (DCs) en la placa aterosclerosa [15]. Las DCs son células profesionales presentadoras de antígeno 9 cruciales en la respuesta inmune innata y adaptativa a infecciones, así como, en el mantenimiento de la tolerancia inmunológica de los tejidos propios [16]. Las DCs existen en dos estados funcionales el primero es un estado inmaduro en el cual se caracteriza por una alta expresión de moléculas del complejo principal de histocompatibilidad (MHC) clase I y clase II contenidas en vesículas, en su superficie expresan receptores para Fc, receptores para células muertas y receptores tipo lectina como el DEC-205, entre otros [16- 19]. Estas moléculas le dan la capacidad a la DCs inmadura de internalizar antígenos exógenos y procesarlos para ser presentados en las moléculas del MHC, adicionalmente migran y presentan el antígeno a linfocitos T, en esta etapa las DCs carecen de la capacidad de inducir el “prime” en la respuesta inmune. En el segundo estado la DCs inmadura pasa a una DCs madura la cual sufre una desregulación en la adquisición de antígenos y en la capacidad de procesamiento de antígenos. Por otro lado, aumenta su inmunogenicidad a través de la expresión de altos niveles de moléculas de MHC, CD40, CD80, CD83 y CD86, permitiéndole inducir un “prime” en la respuesta inmune [20]. Las DCs representan una pequeña población células derivadas de medula ósea, sin embargo existen diferentes subtipos de DCs con distintas funciones inmunológicas [21]. Los subtipos encontrados en un estado de equilibrio (“steady-state”) en el ratón y en el humano incluyen a las DCs plasmacitoides (pDCs) y a las DCs convencionales (cDCs) en tejidos no linfoides, en circulación y en el tejido linfoide. Las cDCs residentes en el tejido linfoide incluyen subtipos de cDCs fenotipicamente diferentes y se localizan en el timo, bazo y nódulos linfoides. También, se pueden encontrar las cDCs en piel como las células de Langerhans localizadas en epidermis y a las DCs dermales situadas en las áreas dermales; a las DCs asociadas al tejido mucoso; a las DCs asociadas al tejido linfoide e incluye DCs de zona marginal, células interdigitantes asociadas a la zona de T, DCs de centro germinal y DCs timicas. Por otro lado, las DCs de tejido intersicial incluyen a las DCs de hígado y pulmón [22]. En condiciones inflamatorias, las DCs pueden derivar de monocitos [23]. Adicionalmente, las DCs pueden encontrarse en arterias normales y se localizan típicamente en el espacio sub-endotelial así como en la unión entre la media y la adventicia [24,25]. Hasta hora se ha propuesto que las DCs embebidas en la pared juegan un importante papel en la sobrevivencia de la pared arterial y en la tolerización contra autoantígenos a través del silenciamiento de las respuestas de los linfocitos T [26]. En 1995 se demostró por primera vez que las DCs se acumulan en las lesiones ateroscleróticas y se sugirió que las DC estarían jugando un papel importante en el proceso de la enfermedad [15]. La presencia de las DCs, en la placa aterosclerosa se ha confirmado mediante el uso de anticuerpos que reconocen marcadores presentes en las DCs en humanos y ratones (CD11c, CD1a, S-100, CD83, y DC-SIGN) [27]. La adhesión de las DCs al endotelio en el ateroma se origina a través de las moléculas de adhesión como: selectina E y P, así como, de VCAM-1 [28,29]. Otro mecanismo de adhesión de las DCs a la lesión se da a través de interacción con plaquetas [30]. El endotelio también es capaz de producir quimiocinas que permiten el reclutamiento de DCs a la lesión. Se ha demostrado la presencia de las quimiocinas CCL12, CCL5 y se sugieren como quimiotacticos para las DCs debido a que expresan en su superficie celular los receptores CCR2 y CCR5 [31,32]. Por otro lado, la deficiencia del receptor de CX3CR1 resulta en la disminución de la aterosclerosis y en el número de DCs presentes en la placa aterosclerosa [33], resultados similares se han encontrado en la deficiencia de CCR7 [34]. 10 Las DCs pueden ser activadas por del reconocimiento de patrones moleculares asociados a daño como también por patrones moleculares asociados a patógenos [35] a través de los receptores tipo toll (TLR) que expresan en la superficie celular [36]. Entre estos, se ha demostrado claramente que TLR2 y TLR4 juegan un papel clave en el desarrollo de la placa aterosclerosa [37]. In vitro se ha establecido que las DCs de pacientes con SICA sobre-regulan TLR4 y además pueden ser activadas a través de este receptor usando LPS [38]. En lo que respecta a TLR2 se sugiere una posible activación de las DCs por Chlamydia pneumoniae [39]. Por otro lado, publicaciones recientes indican que antígenos endógenos como LDL modificada oxidativamente activan a TLR2 y TLR4 [40,41] e incluso la LDLox induce la maduración de DCs sobre-regulando HLA-DR y CD86, las cuales participan en la inducción de la respuesta inmune adaptativa [42]. Además, las DCs secretan las quimiocinas CCL19 y CCL21 implicadas en orquestar la atracción de linfocitos T, así como citocinas entre las que se encuentra la IL-12, esta citosina sobre-regula positivamente el receptor CCR5 en linfocitos T, el cual participa en la acumulación de linfocitos T en la placa aterosclerótica [31] y se localizan cerca de las DCs [43]. La presentación de antígenos y las señales co-estimuladoras de las DCs hacia los linfocitos T son cruciales para su activación, induciendo una expansión clonal de linfocitos T en la lesión [44] y producción de IFN-γ [45]. También se ha descrito que linfocitos T CD8 y células NK se encuentran cerca de las DCs y estas son capaces de activar ambos tipos celulares aumentando su actividad citotóxica induciendo muerte celular de células endoteliales y células vascularesde músculo [46,47]. Las DCs posiblemente participen en la desestabilización de la placa ateroslcerosa a través de la activación de linfocitos T CD8, células NK y linfocitos T cooperadores. La secreción de IFN-γ derivado de los linfocitos T cooperadores activados ocasiona la activación de macrófagos presentes en la lesión a través de la secreción de metaloproteinasas que degradan la matrix extracelular lo que lleva a la desestabilización de la placa aterosclerosa [6]. Por otro lado, el análisis de las DCs en sangre periférica a cobrado interés en las enfermedades cardiovasculares. En sangre periférica se encuentran las DCs mieloides (mDCs) las cuales expresan CD1c, CD11c, CD33 y secretan IL-12. En contraste las DCs plasmacitoides (pDCs) expresan constitutivamente CD123 y son productoras de IFN-α [18]. Otras diferencias se encuentran en el perfil de expresión de TLR, las pDCs expresan abundantemente TLR7, TLR8, y TLR9. En contraste las mDCs expresan TLR2 y TLR4. Las mDCs representan el 0.2% y las pDCs el 0.1% de los leucocitos en sangre periférica [48]. Se ha reportado una disminución en la frecuencia de mDCs en sangre periférica de pacientes con SCIA comparado con los testigos. En contraste el número de pDCs no se altera y se sugiere que la disminución en la periferia de las mDCs se debe a un posible reclutamiento de las mDCs a la placa aterosclerosa [49]. En contrate, otros autores demuestran un incremento en el número de mDCs en pacientes con enfermedad cardiovascular con respecto a los testigos y reportan un número similar de las pDCs en ambos grupos [50]. Otros reportes indican una disminución tanto de mDCs, así como de las pDCs conforme avanza la enfermedad [51,52]. Por otro lado, otro reporte indica una disminución significativa de las pDCs en pacientes con enfermedad cardiovascular y las mDCs únicamente presentaron una tendencia baja a disminuir [53]. 11 Recientemente una tercera subpoblación de DCs denominada DCs slan (slanDCs) en sangre periférica de humanos acobrado interés la cual se identifica a través del anticuerpo M-DC8 [54]. Las células slanDCs representan del 0.6% al 2% de las células mononucleares de la sangre periférica siendo la mayoría de las DCs presentes en la sangre de los humanos y fenotípicamente expresan M-DC8+, CD1c-, CD11c+, CD16+, CD14-, C5aR+ y CD45RA+ los cuales difieren de los descritos previamente para las DCs [54,55]. Sin embargo, comparten otros marcadores similares a las DCs como: CD11c+ y CD123 dim. Adicionalmente, expresan los receptores CXCR1, CCR1, CCR5 y CCR7. Además, expresan CD83, CD86, así como, las moléculas del MHC clase I y clase II, lo que sugiere que son capaces de inducir respuestas inmunes [56]. Esto ha que dado de manifiesto en estudios in vitro donde se han demostrado que las slanDCs son potentes inductoras de respuestas primarias de linfocitos T antígeno específica a través de la inducción de la actividad citotóxica de linfocitos T [56,57], también son capaces de promover la proliferación, secreción de IFN-γ y citotoxicidad de células NK [57]. Las slanDCs inmaduras al ser estimuladas con LPS producen y secretan TNF-α [55,58]. Por otro lado, las slanDC maduras al ser estimuladas con LPS secretan IL-12p70 [59]. Estas evidencias sugieren un posible papel de las slanDCs en las enfermedades inflamatorias a través de la inducción y perpetuación de la inflamación. Interesantemente se ha demostrado la presencia de las slanDCs en la mucosa ileal de pacientes con enfermedad de Crohn’s [58], así como, en lesiones de psoriasis vulgaris en la epidermis y en el tejido pannus de la artritis reumatoide [59]. 12 Planteamiento del problema La aterosclerosis es una enfermedad inflamatoria crónica, en la cual participan diversas estirpes celulares del sistema inmune que incluye a las células dendríticas. Recientemente se ha demostrado una reducción en su frecuencia en sangre periférica en humanos bajo un proceso inflamatorio y se ha determinado su presencia en tejido de enfermedades inflamatorias e incluso al ser activadas con LPS son capaces de secretar citocinas inflamatorias como TNF-α e IL-12p70 involucradas en los procesos inflamatorios en el síndrome coronario agudo. Además, inducen la activación de linfocitos T a través de la secreción de IFN-γ y posiblemente direccionen la respuesta hacia una respuesta tipo TH1. Sugiriendo un papel relevante de la slanDCs en pacientes con síndrome coronario agudo, por lo que nos parece adecuado plantear: ¿Cual es la frecuencia y activación de las slanDC en la respuesta inflamatoria de pacientes con síndrome isquémico coronario, en comparación con la respuesta de slanDCs de sujetos sanos? 13 Justificación La enfermedad arterial coronaria aterosclerosa en sus diferentes presentaciones clínicas como síndromes isquémicos agudos son la segunda causa de muerte general en nuestra población. En la actualidad la enfermedad aterosclerosa se considera un proceso inflamatorio y durante su desarrollo participan diversas estirpes celulares del sistema inmune que incluye a las células dendríticas que son consideradas como las más potentes células presentadoras de antígeno; poseen una alta capacidad de estimular a linfocitos T, B, células NK y pueden direccionar la diferenciación del linfocito T cooperador hacia un linfocito cooperador 1. Recientemente se ha descubierto una población de células dendríticas denominadas slan y se ha demostrado su presencia en lesiones de enfermedades inflamatorias crónicas, más aún, posee la capacidad de inducir respuestas inflamatorias. Sin embargo, no existe información acerca del posible papel que juega la slanDCs en el síndrome isquémico coronario a través de la inducción y perpetuación de la inflamación, por lo que nos parece interesante explorar la frecuencia y activación de las slanDCs en pacientes con síndrome isquémico agudo. Será conveniente aclara que este protocolo corresponde al tema prioritario de enfermedades cardiovasculares de la convocatoria de la Coordinación de Investigación en Salud: Concurso de Apoyo Financiero para el Desarrollo de Protocolos de Investigación y Desarrollo Tecnológico sobre Temas Prioritarios de Salud IMSS. 14 Objetivo general Demostrar la frecuencia de las slanDCs, así como su estado de activación en la sangre periférica de síndrome isquémico coronario. Objetivos específicos 1. Comparar la frecuencia de las slanDCs de sangre periférica de pacientes con síndrome isquémico coronario y sujetos sanos. 2. Determinar el patrón de expresión de la molécula CD86 en las slanDCs en fresco de pacientes con síndrome isquémico coronario. 3. Demostrar que la activación de las slanDCs vía TLR2 y TLR4 induzcan un incremento en la expresión de CD86. Así como un incremento en la producción de TNF-α e IL-12, en pacientes síndrome isquémico coronario en comparación con sujetos sanos. 15 Hipótesis 1. Los pacientes con síndrome isquémico coronario presentaran una disminución en la frecuencia de las slanDCs en periferia con respecto a los sujetos sanos. 2. Las slanDCs provenientes pacientes con síndrome isquémico coronario presentaran niveles más elevados de las moléculas HLA-DR, CD80, CD86, CD40, TLR2, TLR4 y CCR2 con respecto a las slanDCs de los sujetos sanos. 3. Las slanDCs provenientes pacientes con síndrome isquémico coronario presentaran niveles más elevados de TLR2, TLR4, CD80, CD86, CD40, HLA-DR, CCR2, TNF-α e IL-12, al ser activadas con LPS y/o Pam3CSK4 con respecto a las slanDCs de los sujetos sanos. 16 Material y métodos Diseño del estudio Desde el punto de vista clínico se trata de una cohorte mientras que por la maniobra experimental se trata de un estudio experimental. Grupos de estudio Se incluirá casos concurrentes, de pacientes que ingresen al Hospital de Cardiología de Centro Médico Nacional SXXI, que cumplan con los criterios de selección. Los pacientes con síndrome coronario agudo se incluirán dentro de las 48 horas de iniciados los síntomas en la Unidad de Cuidados Intensivos Cardiovasculares para la toma de muestras y los pacientescon angor estable se considerará la toma de muestra después del cateterismo cardiaco diagnóstico una vez que se demuestre la presencia de lesiones significativas. El grupo de sujetos sanos pareados por edad, se reclutaran de banco de sangre. 17 Criterios de Inclusión 1. Pacientes de cualquier género, menor de 75 años. 2. Pacientes con diagnóstico de infarto agudo del miocardio o angina inestable, dentro de las 72 hrs de iniciados los síntomas. 3. El diagnostico de infarto se considerará con 2 de los siguientes criterios: A. Dolor precordial de tipo isquémico ≥ 30 min. de duración, acompañado o no de disnea, diaforesis, nausea y/o vómito. B. Elevación de CPK total mayor al 150% de su valor basal normal. C. Desnivel positivo o negativo del segmento ST igual o mayor de 1 mm en 2 o más derivaciones que vean la misma cara o presencia de BRIHH de reciente aparición. 4. Se considerará como angina inestable con 2 de los siguientes criterios: i. Dolor precordial de tipo isquémico con duración menor de 30 min. cuyo inicio de presentación desde el primer evento sea menor de 8 semanas, o que en este tiempo exista cambios en el patrón de presentación de los eventos de angina en pacientes con angina estable previa, o angina 48 hrs a 4 semanas después de un infarto del miocardio. Acompañado o no de síntomas neurovegetativos. ii. Cambios electrocardiográficos en el segmento ST y/o en la onda T. iii. Ausencia de elevación de marcadores de necrosis miocárdica (CPK total o MB). 5. Se consideraran pacientes con angor estable: A. considerarán pacientes en clase funcional II o III por angina de acuerdo con la clasificación de la Sociedad Cardiovascular Canadiense (CCS) B. Ausencia de datos que sugieran cambios en el patrón de presentación de los eventos de angina al menos en los últimos 2 meses o la presencia de eventos de angor en reposo o presencia de cambios electrocardiográficos en el segmento ST en reposo. C. Pacientes que ingresen a nuestro hospital programados para la realización de estudio angiográfico donde se demuestre la presencia de al menos 50% de estenosis de una o más arterias coronarias epicárdicas. 6. Consentimiento verbal informado al familiar del paciente para su aceptación de ingreso al presente estudio. Criterios de exclusión 1. Pacientes que cursen con síndrome anémico. 2. Antecedentes de enfermedad neoplásica, inflamatoria crónica o proceso infeccioso activo. 3. Antecedentes de tratamiento previo con anti-inflamatorios o inmunosupresores. 4. Niveles de creatinina ≥ 1.6 mg/dl. 5. Trombocitopenia o discrasia sanguínea conocida. 6. Pacientes a los que no se logre obtener la cantidad de sangre necesaria para los ensayos. 18 7. Pacientes en los que no se logre obtener el número de monocitos necesarios para los experimentos. Criterios de no Inclusión 1. Negativa a ingresar al protocolo. 2. Datos de sangrado mayor activo. Tamaño de la muestra Se cálculo para un valor de delta de 89 (diferencia de las medias de producción de TNF por monocitos)60, con un poder de la prueba de 0.80 y valor de alfa del 95%, con los que nos da un tamaño de muestra de 26 por grupo. 19 Variables (Definición de variables) Variables Independiente Células provenientes de los diferentes grupos: I. pacientes con síndrome coronario agudo II. pacientes con angor estable III. sujetos sanos. Definición conceptual: Los pacientes son síndrome coronario agudo son aquellos que presentan manifestación clínica de isquemia aguda o necrosis miocárdica aguda debida a reducción del flujo coronario, aporte de oxígeno miocárdico insuficiente, desequilibrio entre el aporte y demanda de oxígeno, asociada a la enfermedad arterial coronaria con erosión o ruptura de la placa aterosclerosa y la subsecuente oclusión parcial o toral de la luz del vaso. Se considera paciente con angor estable aquel que presenta dolor precordial de tipo isquémico que no ha modificado su forma de presentación en los último 2 meses, habitualmente se presenta con el esfuerzo y cede con el reposo. Se considera que un sujeto sano a la ausencia de enfermedad o estado patológico alguno. Definición operativa: se considera pacientes con síndrome coronario agudo a aquellos que ingresen con diagnóstico de angina inestable, infarto agudo de miocardio sin elevación del segundo ST o infarto con elevación del segmento ST. Se considerara pacientes con angor estable aquel que presenta eventos de angina en clase funcional II-III de la CCS, o bien, que cuente con prueba inductora de isquemia positiva, que requiera de estudio de angiografía coronaria donde se demuestre al menos la presencia de obstrucción de >50% de alguna arteria coronaria epicárdica. Se considera a sujetos sanos a aquellos en quienes de descarte la presencia de signos o síntomas de isquemia miocárdica, enfermedad inflamatoria crónica, neoplásica o infecciosa. Tipo de variable: nominal Escala de medición: grupo I , grupo II y grupo III Variables dependientes Citocina pro-inflamatoria Definición conceptual: Citocina pro-inflamatoria es un proteína producida por diversos tipos celulares de la respuesta inmune, participando en la inducción, expresión y regulación de otras moléculas de la respuesta inflamatoria o inmune. Definición operacional: Se considera citocina pro-inflamatorias el TNF se realizaran mediciones de proteína en el sobrenadante del cultivo celular mediante ELISA. Escala de medición: Variable de razón. Tipo de Variable: Cuantitativa continúa. 20 Moléculas coestimulatorias: CD80, CD86, CD40 y HLA-DR. Definición conceptual: CD80 y CD86 moléculas de superficie celular presente en células presentadoras de antígenos. Proporcionan un estímulo necesario para la activación del linfocito T. CD40 molécula de superficie celular presente en células presentadoras de antígenos y se requiere para su activación. HLA-DR es una molécula de superficie celular presente en las células presentadoras de antígenos. Proporciona un estímulo necesario para la activación de linfocitos T. Definición operacional: Se realizaran las mediciones de las moléculas mediante citometría de flujo. Escala de medición: Variable de razón. Tipo de variable: Cuantitativa continúa. TLR: TLR2 y TLR4 Definición conceptual: Receptor tipo toll reconoce una variedad de patrones moleculares asociados a patógenos. Definición operacional: Se realizaran mediciones de la proteína de superficie celular mediante citometría de flujo. Escala de medición: Variable de razón. Tipo de variable: Cuantitativa continúa. Slan (6-Sulfo LacNAc) Definición conceptual: Es una modidicación de un carbohidrato de la glucoproteína P- selectina ligando-1 se expresa característicamente en una subpoblación de células mononucleares. Definición operacional: Se realizaran mediciones de la proteína de superficie celular mediante citometría de flujo. Escala de medición: Variable de razón. Tipo de variable: Cuantitativa continúa. 21 Métodos Toma de muestras de sangre La muestra sanguínea se obtendrá de vía venosa a partir de catéter periférico, previa asepsia y antisepsia, se obtendrá un volumen de 15 ml de sangre venosa en tubos que contienen 1000 U heparina por ml de sangre. En caso de no contar con catéter periférico se realizará punción de vena periférica Obtención de células mononucleares A partir de 15 ml de sangre se diluirán en PBS 1X a pH= 7.4 en una relación 1:3 posteriormente 7 ml de sangre diluida se colocaran sobre 4 ml de lymphoprep (Axis-Shield, Liverpool, UK) y se centrifugarán a 2000 rpm 30 minutos se recuperara el anillo entre el lymphoprep (Axis-Shield) y plasma, se lavaran las células mononucleares 2 veces con PBS 1X, el paquete recuperado se resuspenderá en 2 ml de medio RPMI al 10% de surero fetal bovino (Invitrogen Carlsbad, CA). La viabilidad celular se realizara por exclusión con azul tripan. Determinación de la frecuencia y marcadores de superficie celulares en las células dendríticas slan Las células mononucleares se resuspenderán en PBS-BSA (0.5%)- Na3N 0.2% pH=7.4 y se incubaran con los anticuerpos monoclonalesanti-humanos: anti-CD3-PE, anti-CD14-PE, anti-CD19-PE y anti-CD56-PE (eBioscience), para excluir células del linaje de linfocitos T, linfocitos B, células NK y macrófagos. La identificación de las slanDc se realizará con anticuerpos anti-CD123-Violeta brillante 421, anti-HLA-DR-APC-Cy7, (BD Pharmingen), anti-CD11c-APC, anti-M-DC8-APC-FITC (Miltenyi Biotec MACS, Bergish Gladbach, Germany), así como con, anti-CD80-PECy5 , anti-CD86-PECy7, anti-CD40-PECy5, anti- TLR2-PECy7, anti-TLR4-PECy7 de eBioscience, San Diego, CA., anti-CCR2-PECy5 (R&D Systems, Inc., Minneapolis) durante 20 minutos en oscuridad a 4oC, posteriormente se lavaran dos veces con PBS-BSA (0.5%)- Na3N 0.2% pH=7.4 y se fijaran con 35 μl de PBS p-formaldehído 1%. Los niveles de las moléculas se superficie se medirán utilizando el citometro de flujo FACS Canto (BD Biosciencies). Por otro lado, se realizaran cultivos celulares, los cuales se estimularan con LPS y Pam3CSK4 y se determinaran los niveles de TLR2, TLR4, CD80, CD86, CD40, HLA-DR y CCR2. Los niveles de expresión se cuantificaran midiendo la intensidad media de fluorescencia (IMF) de cada muestra utilizando el software FlowJo software (Tree Star, San Carlos, CA). Determinación de citocinas intracelulares 2x106 células mononucleares se estimularan con 100 ng/ml de LPS de Escherichia coli serotype O111:B4 (100 ng/ml) (Sigma) y con 20 ng/ml de Pam3CSK4 (Alexis Biochemicals, Plymouth Meeting, PA, USA) a 37oC durante 2 horas, concluida la incubación a todos los pozos se les adicionarán 0.2 μL de Golgi-Stop (BD Biosciences) y se incubaran durante 18 horas. Después los slanDC se teñirán con los anticuerpos anti-CD123- Violeta brillante 421, anti-HLA-DR-APC-Cy7, (BD Pharmingen), anti-CD11c-APC, anti- M-DC8-APC-FITC (Miltenyi Biotec MACS, Bergish Gladbach, Germany), durante 20 minutos en oscuridad. Posteriormente, se lavarán dos veces con Perm/Wash (BD Biosciences) y se fijarán con 35 μL de PBS paraformaldehído al 1%. Los slanDC se lavarán dos veces con Perma/Wash y se adicionarán 100 μL de la solución Cytofix/Cytoperm (BD 22 Biosciences) por 20 minutos a 4° C en oscuridad. Las células se lavarán dos veces con Perm/Wash y después se les adicionará por separado los anticuerpos monoclonales anti- humanos anti-TNF-α-PE (eBioscience) y anti-IL-12-PE (eBioscience) y se incubarán 1 hora a 4° C en oscuridad, y terminada la incubación se lavarán dos veces con Perm/Wash y se resuspenderá en 350 μL de regulador para su análisis en el citómetro de flujo FACS Canto (BD Biosciences). 23 Análisis estadístico Análisis univariado de las variables continuas se describirán de acuerdo a su distribución (promedio ± desviación estándar , mediana y percentiles). Las características demográficas de la población se expresarán en porcentaje de frecuencia. Para el análisis bivariado de variables continuas y comparación de grupos de pacientes se emplearan t de Student o U de Mann Whitney. Para la comparación de variables cualitativas se empleará Chi 2 o prueba exacta de Fisher de acuerdo con valores esperados. Para la comparación de variables cuantitativas entre grupos se empleará ANOVA o Kruskal Wallis de acuerdo con la distribución de los datos y homogeneidad de varianzas. Se considerara un valor de p ≤ 0.05. 24 Aspectos éticos Este protocolo corresponde aún estudio de riesgo mínimo de acuerdo al reglamento de la Ley General de Salud en materia de Investigación, ya que solo se tomará una muestra de sangre en una ocasión. Dado estas características se solicitará consentimiento verbal. La información de los expedientes de los pacientes será confidencial y la cual será exclusivamente utilizada con fines de la investigación de la enfermedad cardiovascular. La identidad del paciente se protegerá a través de identificar a los pacientes con números secuenciales, los cuales serán almacenados en una base de datos que contendrá la información, en un disco duro exclusivo para el protocolo de investigación, el cual tendrá solo acceso la Dra. Alejandra Madrid Miller a través de una clave, protegiéndose la información a personas no autorizadas. Se anexa hoja de consentimiento verbal. 25 Recursos, financiamiento y factibilidad Pacientes: La UMAE Hospital de Cardiología, tiene un ingreso mensual promedio de 80 pacientes, de los cuales el 95 % aproximadamente es debido a síndrome coronario agudo. Recursos físicos y materiales: La Unidad de Investigación Médica en Inmunología, Hospital de Pediatría, CMN SXXI y la Unidad de Investigación Médica en Autoinmunidad, Hospital de Especialidades, CMN SXXI cuenta con los recursos, equipo y reactivos necesarios para llevar al cabo los experimentos así como el personal capacitado. Recursos financieros: Se someterá a evaluación del Concurso de Apoyo Financiero para el Desarrollo de Protocolos de Investigación y Desarrollo Tecnológico sobre Temas Prioritarios de Salud IMSS. Tiempo a desarrollarse: El protocolo se desarrollara en 3 años y medio. Caracterización de la frecuencia y activación de las células dendríticas slan provenientes de pacientes con síndrome coronario agudo. Cronograma de actividades Etapa 1 Duración: 6 meses Descripción de la etapa: Estandarización de las técnicas en particular en cuanto a la caracterización fenotípica de las células dendríticas slan, así como la expresión de TLR2, TLR4, CD80, CD86, CD40, HLA-DR y CCR2. Además, se establecerán los rangos de normalidad en sujetos sanos, posteriormente estos datos se compararan con lo que se encuentren en los pacientes con síndrome coronario agudo. Productos entregables: Se podría poner a la disposición de quien lo necesite la metodología para determinar fenotípicamente a las células dendríticas slan, así como la expresión de TLR2, TLR4, CD80, CD86, CD40, HLA-DR y CCR2. También, estaremos en condiciones para brindar apoyo técnico y científico en el uso del citometro a cualquier Servicio o Unidad de Investigación que lo solicite. Etapa 2 Duración: 6 meses Descripción de la etapa: Se determinará la frecuencia de las células dendríticas slan en circulación en los pacientes y sujetos sanos. Productos entregables: Se podría poner a la disposición de quien lo necesite la metodología para determinar la frecuencia de las células dendríticas slan en circulación en pacientes. Etapa 3 Duración: 6 meses Descripción de la etapa: Los procedimientos estandarizados en la etapa 1 se aplicaran para determinar la expresión de TLR2, TLR4, CD80, CD86, CD40, HLA- DR y CCR2, en las células dendríticas slan provenientes tanto de los pacientes como de los sujetos sanos. 26 Productos entregables: Se podría poner a la disposición de quien lo necesite la metodología para determinar la expresión de TLR2, TLR4, CD80, CD86, CD40, HLA-DR y CCR2 en las células dendríticas slan en pacientes. Etapa 4 Duración: 6 meses Descripción de la etapa: Se realizaran los análisis estadísticos para determinar las diferencias en la expresión de las moléculas estudiadas, así como la frecuencia de las células dendríticas slan entre los pacientes y los sujetos sanos. También, se realizaran las asociaciones entre la frecuencia de las células dendríticas slan con las diferentes manifestaciones clínicas de pacientes con síndrome coronario agudo. Así como el estado que guarda la expresión de TLR2, TLR4, CD80, CD86, CD40, HLA-DR y CCR2, en las células dendríticas slan con respecto las manifestaciones de enfermedad, así como con la evolución de las mismas. Productos entregables: Se podría tener enviado a publicar los primeros resultados de este proyecto a una revista indexada y con circulación internacional. Etapa 5 Duración: 6 meses Descripción de la etapa: Estandarización de cultivos de las células dendríticas slan provenientes de sujetos sanos, así como de la activación de estos células vía TLR2 y TLR4 y determinar la respuesta en base a la expresión de las moléculas: TLR2, TLR4, CD80, CD86, CD40, HLA-DR y CCR2. Productos entregables: Se tendrán las condiciones óptimas para la activación de TLR2 y TLR4, lo que permitirádeterminar las distintas moléculas en las células dendríticas slan de pacientes. En esta etapa se podría trasferir la tecnología antes mencionad a los laboratorios que así lo requieran. Etapa 6 Duración: 6 meses Descripción de la etapa: Se realizaran los cultivos celulares de las células dendríticas slan provenientes de pacientes y sujetos sanos. Se llevaran a cabo los experimentos de activación vía TLR2 y TLR4 y determinar la respuesta de las células dendríticas slan en cuanto a la expresión de las moléculas: TLR2, TLR4, CD80, CD86, CD40, HLA-DR y CCR2. Con los resultados obtenidos se tratara de asociar la respuesta de las células dendríticas slan provenientes de los pacientes con las manifestaciones de enfermedad así como con la evolución de la misma. Productos entregables: Se realizará un escrito con los resultados generados, los cuales se enviaran para su publicación. También, se podría trasferir la tecnología con los parámetros de normalidad y sus posibles implicaciones clínicas de los resultados obtenidos para una posible caracterización de los pacientes con síndrome coronario agudo. Etapa 7 Duración: 6 meses Descripción de la etapa: De los cultivos celulares se identificaran las células dendríticas slan de sujetos sanos y de pacientes, y se cuantificaran los niveles de 27 TNF-α e IL-12. Posteriormente se asociaran los niveles de esta citocinas con la expresión de las moléculas estudiadas y con las manifestaciones de enfermedad, así como con la evolución de las mismas. También, se realizaran los análisis estadísticos con las correlaciones de los resultados obtenidos y se estructurará un manuscrito para su publicación. Productos entregables: Se podría trasferir la tecnología con los parámetros de normalidad y sus posibles implicaciones clínicas de los resultados obtenidos y sus posibles implicaciones en la caracterización de los pacientes con síndrome coronario agudo. Se enviara a publicar los resultados de este proyecto a una revista indexada y con circulación internacional. Además, este proyecto permitirá que se gradúe un alumno de Licenciatura y uno de Maestría en Ciencias, de los alumnos graduados en este protocolo seré el tutor. También, se podrá dar apoyo técnico y científico en el uso del citometro a cualquier Servicio o Unidad de Investigación que lo solicite. Caracterización inmunofenotípica y funcional de las subpoblaciones de monocitos en pacientes con síndrome coronario agudo Desglose del presupuesto Gasto de inversión Equipo de laboratorio y médico. $250 000.00 Equipo de cómputo. $0.00 Herramientas y accesorios. $0.00 Subtotal $250 000.00 Gasto Corriente Artículos materiales y útiles diversos. $2 685 000.00 Gastos de trabajo de campo. $0.00 Difusión de los resultados de Investigación. $25 000.00 Pago por servicios externos. $0.00 Honorarios por servicios profesionales. $0.00 Viáticos, pasajes y gastos de transportación. $40 000.00 Gastos de atención a profesores visitantes, técnicos o expertos visitantes. $0.00 Compra de libros y suscripción a revistas. $0.00 Material de oficina. $0.00 Publicación o producción de libros y revistas. $0.00 Documentos y servicios de información. $0.00 Registro de patentes y propiedad intelectual. $0.00 Validación de concepto tecnológico. $0.00 Animales para el desarrollo del protocolos de investigación. $0.00 Apoyo a estudiantes de maestría o doctorado que participen en el desarrollo de protocolos de investigación $0.00 Subtotal $2 750 000.00 28 Total $3 000 000.00 Justificación de cada rubro de gasto Gasto de inversión: En este apartado lo único que solicitamos en una centrifuga refrigerada de la marca Hettich modelo Universal 320 R, cuyo costo es de $250 000.00 pesos M/N, por las siguientes razones: Desafortunadamente el laboratorio donde se procesaran las muestras no cuenta con este equipo y consideramos que este aparato es necesario para la realización del proyecto que estamos proponiendo, por que nos permitiría realizar los experimento de una manera más eficaz. Actualmente, dependemos de que se nos faciliten la centrifuga otro laboratorio. Gasto Corriente: Artículos materiales y útiles diversos. Dada la amplitud del proyecto consideramos que $ 2 685 000.00 pesos M/N del financiamiento debe ser invertido exclusivamente en reactivos a fin de garantizar que se cumplan con los objetivos. Este rubro es muy importante para el desarrollo del proyecto, los gastos consisten en material necesario para realizar los experimentos. Durante la realización de este proyecto se compraran de manera continua anticuerpos dirigidos contra las moléculas que estudiaremos como son: anti-TLR2, anti-TLR4, anti- CD80, anti-CD86, anti-CD40, anti-HLA-DR, anti-CCR2, anti-CD123-Violeta brillante 421, anti-HLA-DR-APC-Cy7, (BD Pharmingen), anti-CD11c-APC, anti-M-DC8-APC- FITC (Miltenyi Biotec MACS, Bergish Gladbach, Germany), los cuales utilizaremos para la caracterización y separación de las células dendríticas slan provenientes de pacientes como de sujetos sanos, así como anticuerpos anti-CD3-PE, anti-CD14-PE, anti-CD19-PE y anti-CD56-PE, para descartar linaje. También, se adquirirá material para cultivo de células como medios de cultivo, suero fetal bovino, antibióticos, entre otros; así como reactivos para activación de las poblaciones celulares (LPS, Pam3CSK4). También, se adquirirán de manera constante anticuerpos para la determinación de citocinas intracelulares, así como kits para realizar estos procedimientos. En todas las etapas que abarca este proyecto se comprara constantemente material de plástico en general (tubos de 15 ml, de 50 ml, placas de cultivo, pipetas serológicas, entre otros materiales), reactivos para el citómetro de flujo y reactivos diversos, de tal forma que proponemos que el gasto de reactivos se proporcione de la siguiente manera: Etapa Duración Gasto 1 6 meses $ 383,571.43 2 6 meses $ 383,571.43 3 6 meses $ 383,571.43 4 6 meses $ 383,571.43 5 6 meses $ 383,571.43 6 6 meses $ 383,571.43 7 6 meses $ 383,571.43 Subtotal $ 2 685 000.00 29 Difusión de los resultados de Investigación. En este apartado solicitamos el apoyo económico de 25 000.00 pesos M/N para gastos de publicación de los resultados. Viáticos, pasajes y gastos de transportación. En esta sección se solicitan $40 000.00 para participar en al menos en un congreso internacional de alto prestigio relacionado con nuestra área de investigación, para discutir los resultados obtenidos con nuestros pares y se utilizaran para el pago de pasajes y de hospedaje. 30 Bibliografía 1. Levi F, Lucchini F, Negri E, La Vecchia C. Trends in mortality from and cerebrovascular diseases in Europe and other areas of the World. Heart 2002;88:119-124. 2. Ruesga Zamora EA. Cardiología. 1a Ed. El Manual Moderno. México. 2005:535- 540. 3. Thygesen K, Alpert JS, White HD, Joint ESC/ACCF/AHA/WHF Task Force for the Redefinition of Myocardial Infarction. Universal definition of myocardial infarction. Eur Heart J 2007;28:2525-2538. 4. Overbaugh KJ. Acute coronary syndrome. Am J Nurs 2009;109:42-52. 5. http://inegi.org.mx/inegi/contenidos/espanol/prensa/contenidos/estaadisticas/20 06/muertos06.pdf 6. Ross R. Mechanisms of disease. New Engl J Med 1999;340:115-126. 7. Libby P. Inflammation in atherosclerosis. Nature 2002;420:868-874. 8. Ley K, Laudanna C, Cybulsky MI, Nourshargh S. Getting to the site of inflammation: the leukocyte adhesion cascade updated. Nature Rev Immunol 2007;7:678-689. 9. Davies MJ, Gordon JL, Gearing AJ. The expression of the adhesion molecules ICAM-1, VCAM-1, PECAM and E-selectin in human atherosclerosis. J Pathol 1993;171:223-229. 10. Boring L, Gosling J, Cleary M, Charo IF. Decreased lesion formation in CCR2−/− mice reveals a role for chemokines in the initiation of atherosclerosis. Nature 1998;394:894-897. 11. Gu L, Okada Y, Clinton SK, Gerard C, Sukhova GK, Libby P, Rollins BJ. Absence of monocyte chemoattractant protein-1 reduces atherosclerosis in low density lipoprotein receptor-deficient mice. Mol Cell 1998;2:275-281. 12. Surmi BK, HastyAH. The role of chemokines in recruitment of immune cells to the artery wall and adipose tissue. Vascul Pharmacol 2010;52:27-36. 13. Mazzone T. Scavenger receptors in atherosclerosis. Arterioscler Thromb Vasc Biol 2000;20:2506-2508. 14. Netea GM, Kullberg JB, Demacker NMP, Liesbeth EH, Verver-Jansen JG, Hijmans A, van Tits HJ, Hoenderop GJ, Willems GM, Van der Meer WM, Stalenhoef FH. Native LDL potentiate TNF-α and IL-18 production by human mononuclear cells. J Lipid Res 2002;43:1065-1071. 15. Bobryshev YV, Lord RS. S-100 positive cells in human arterial intima and in atherosclerotic lesions, Cardiovasc Res 1995;29:689–696. 16. Banchereau J, Steinman RM. Dendritic cells and the control of immunity. Nature 1998;392:245–252. 17. Steinman RM. The dendritic cell system and its role in immunogenicity. Annu Rev Immunol 1991;9:271-296. 18. Dhodapkar, KM, Krasovsky J, Williamson B, Dhodapkar, MV. Anti-tumor monoclonal antibodies enhance cross-presentation of cellular antigens and the generation of myelomaspecific killer T cells by dendritic cells. J Exp Med 2002;195:125–133. 31 19. Bonifaz LC, Bonnyay DP, Charalambous A, Darguste DI, Fujii S, Soares H, Brimnes MK, Moltedo B, Moran TM, Steinman RM. In vivo targeting of antigens to maturing dendritic cells via the DEC-205 receptor improves T cell vaccination. J Exp Med 2004;199:815– 824. 20. Reis e Sousa C. Dendritic cells in a mature age. Nat Rev Immunol 2006;6:476-483. 21. Shortman K, Liu YJ. Mouse and human dendritic cell subtypes. Nat Rev Immunol 2002;2:151–161. 22. Li Wu1, Yong-Jun Liu. Development of dendritic-cell linages. Immunity 2007;26:741-750. 23. Naik SH, Metcalf, D van Nieuwenhuijze, A Wicks I, Wu L, O’Keeffe M, Shortman K. Intrasplenic steady-state dendritic cell precursors that are distinct from monocytes. Nat Immunol 2006;7:663–671. 24. Ma-Krupa W, Jeon MS, Spoerl S, Tedder TF, Goronzy JJ, Weyand CM. Activation of arterial wall dendritic cells and breakdown of self-tolerance in gian t cell arteritis. J Exp Med 2004;199:173–183. 25. O. Pryshchep W. Ma-Krupa BR, Younge JJ, Goronzy CM, Weyand. Vessel-specific Toll-like receptor profiles in human medium and large arteries. Circulation 2008;118:1276–1284. 26. Steinman RM, Hawiger D, Liu K, Bonifaz L, BonnyayD, Mahnke K, Iyoda T, Ravetch J, Dhodapkar M, Inaba K, Nussenzweig M. Dendritic cell function in vivo during the steady state: a role in peripheral tolerance. Ann NY Acad Sci 2003:987:15–25. 27. Bobryshev YV. Dendritic cells in atherosclerosis: current status of the problem and clinical relevance. Eur Heart J 2005;26:1700–1704. 28. Bobryshev YV, Lord RS, Rainer SP, Munro VF. VCAM-1 expression and network of VCAM-1 positive vascular dendritic cells in advanced atherosclerotic lesions of carotid arteries and aortas. Acta Histochem 1996;98:185–194. 29. Alvarez D, Vollmann EH, von Andrian UH. Mechanisms and consequences of dendritic cell migration. Immunity 2008;29:325–342. 30. Langer HF, Daub K, Braun G, SchonbergerT, May AE, SchallerM, Stein GM, Stellos K, Bueltmann K, Siegel-Axel D, Wendel HP, Aebert H, Roecken M, Seizer P, Santoso S, Wesselborg S, Brossart P, Gawaz M. Platelets recruit human dendritic cells via Mac-1/JAM-C interaction and modulate dendritic cell function in vitro. Arterioscler Thromb Vasc Biol 2007;27:1463–1470. 31. Zhang X, Niessner A, Nakajima T, Ma-Krupa W, Kopecky SL, Frye RL, Goronzy JJ, Weyand CM. Interleukin 12 induces T-cell recruitment into the atherosclerotic plaque. Circ Res 2006;98:524–531. 32. Charo IF, Taubman MB. Chemokines in the pathogenesis of vascular disease. Circ Res 2004:95;858–866. 33. Liu P, Yu YR, Spencer JA, Johnson AE, Vallanat CT, Fong AM, Patterson C, Patel DD. CX3CR1 deficiency impairs dendritic cell accumulation in arterial intima and reduces atherosclerotic burden. Arterioscler Thromb Vasc Biol 2008;28:243-250. 34. Luchtefeld M, Grothusen C, Gagalick A, Jagavelu K, Schuett H, Tietge UJ, Pabst O, Grote K, Drexler H, Förster R, Schieffer B. Chemokine receptor 7 knockout attenuates atherosclerotic plaque development. Circulation 2010;122:1621-1628. 32 35. Matzinger P. Friendly and dangerous signals: is the tissue in control?. Nat Immunol 2007;8:11–13. 36. Schreibelt G, Tel J, Sliepen KH, Benitez-Ribas D, Figdor CG, Adema GJ, de Vries IJ. Toll-like receptor expression and function in human dendritic cell subsets: implications for dendritic cell-based anti-cancer immunotherapy. Cancer Immunol Immunother 2010;59:1573-1582. 37. Curtiss LK, Tobias PS. Emerging role of Toll-like receptors in atherosclerosis. J Lipid Res 2009;50:S340-S345. 38. Wang L, Li D, Yang K, Hu Y, Zeng Q. Toll-like receptor-4 and mitogen-activated protein kinase signal system are involved in activation of dendritic cells in patients with acute coronary syndrome. Immunology 2008;125:122-130. 39. Naiki Y, Sorrentino R, Wong MH, Michelsen KS, Shimada K, Chen S, Yilmaz A, Slepenkin A, Schröder NW, Crother TR, Bulut Y, Doherty TM, Bradley M, Shaposhnik Z, Peterson EM, Tontonoz P, Shah PK, Arditi M. TLR/MyD88 and liver X receptor alpha signaling pathways reciprocally control Chlamydia pneumoniae-induced acceleration of atherosclerosis. J Immunol 2008;181:7176- 7185. 40. Chávez-Sánchez L, Madrid-Miller A, Chávez-Rueda K, Legorreta-Haquet MV, Tesoro-Cruz E, Blanco-Favela F. Activation of TLR2 and TLR4 by minimally modified LDL in human macrophages and monocytes triggers the inflammatory response. Human Immunol 2010;8:737-744. 41. Chávez-Sánchez L, Chávez-Rueda K, Legorreta-Haquet MV, Zenteno E, Ledesma- Soto Y, Montoya-Díaz E, Tesoro-Cruz E, Madrid-Miller A, Blanco-Favela F. The activation of CD14, TLR4, and TLR2 by mmLDL induces IL-1beta, IL-6, and IL- 10 secretion in human monocytes and macrophages. Lipids Health Dis 2010;9:117. 42. Zaguri R, Verbovetski I, Atallah M, Trahtemberg U, Krispin A, Nahari E, Leitersdorf E, Mevorach D. 'Danger' effect of low-density lipoprotein (LDL) and oxidized LDL on human immature dendritic cells. Clin Exp Immunol 2007;149:543-552. 43. Bobryshev YV, Lord RS. Mapping of vascular dendritic cells in atherosclerotic arteries suggests their involvement in local immune-inflammatory reactions. Cardiovasc Res 1998;37:799–810. 44. Stemme S, Rymo L, Hansson GK. Polyclonal origin of T lymphocytes in human atherosclerotic plaques. Lab Invest 1991;65:654–660. 45. Han JW, Shimada K, Ma-Krupa W, Johnson TL, Nerem RM, Goronzy JJ, Weyand CM. Vessel wall-embedded dendritic cells induce T-cell autoreactivity and initiate vascular inflammation. Circ. Res 2008;102:546–553. 46. Bobryshev YV, Lord RS. Co-accumulation of dendritic cells and natural killer T cells within rupture-prone regions in human atherosclerotic plaques. J. Histochem Cytochem 2005;53:781–785. 47. Gewaltig J, Kummer M, Koella C, Cathomas G, Biedermann BC. Requirements for CD8 T-cell migration into the human arterial wall. Hum Pathol 2008;39:1756– 1762. 48. Niessner A, Weyand CM. Dendritic cells in atherosclerotic disease. Clin Immunol 2010;134:25–32. 33 49. Yilmaz A, Weber J, Cicha I, Stumpf C, Klein M, Raithel D, Daniel WG, Garlichs CD. Decrease in circulating myeloid dendritic cell precursors in coronary artery disease. J Am Coll Cardiol 2006;48:70-80. 50. Shi H, Ge J, Fang W, Yao K, Sun A, Huang R, Jia Q, Wang K, Zou Y, Cao X. Peripheral-blood dendritic cells in men with coronary heart disease. Am J Cardiol. 2007;100:593-597. 51. Yilmaz A, Schaller T, Cicha I, Altendorf R, Stumpf C, Klinghammer L, Ludwig J, Daniel WG, Garlichs CD. Predictive value of the decrease in circulating dendritic cell precursors in stable coronary artery disease. Clin Sci 2009;116:353-363. 52. Van Brussel I, Van Vré EA, De Meyer GR, Vrints CJ, Bosmans JM, Bult H. Decreased numbers of peripheral blood dendritic cells in patients with coronary artery disease are associated with diminished plasma Flt3 ligand levels and impaired plasmacytoid dendritic cell function. Clin Sci 2010 Dec 10. [Epub ahead of print 53. Fukunaga T, Soejima H, Irie A, Fukushima R, Oe Y, Kawano H, Sumida H, KaikitaK, Sugiyama S, Nishimura Y, Ogawa H. High ratio of myeloid dendritic cells to plasmacytoid dendritic cells in blood of patients with acute coronary syndrome. Circ J 2009;73:1914-1919. 54. Schäkel K, Mayer E, Federle C, Schmitz M, Riethmüller G, Rieber EP. A novel dendritic cell population in human blood: one-step immunomagnetic isolation by a specific mAb (M-DC8) and in vitro priming of cytotoxic T lymphocytes. Eur J Immunol 1998;28:4084-4093. 55. Scha¨ kel K, Kannagi R, Kniep B, Goto Y, Mitsuoka C, Zwirner J, Soruri A, von Kietzell M, Rieber E. 6-Sulfo LacNAc, a novel carbohydrate modification of PSGL- 1, defines an inflammatory type of human dendritic cells. Immunity 2002;17:289– 301. 56. de Baey A, Mende I, Riethmueller G, Baeuerle PA. Phenotype and function of human dendritic cells derived from M-DC8(+) monocytes. Eur J Immunol 2001;31:1646-16455. 57. Schmitz M, Zhao S, Deuse Y, Scha¨ kel K, Wehner R, Wohner H, Holig K, Wienforth F, Kiessling A, Bornhauser M, Temme A, Rieger MA, Weigle B, Bachmann M, Rieber EP. Tumoricidal potential of native blood dendritic cells: direct tumor cell killing and activation of NK cell-mediated cytotoxicity. J Immunol 2005;174:4127–4134. 58. de Baey A, Mende I, Baretton G, Greiner A, Hartl WH, Baeuerle PA, Diepolder HM. A subset of human dendritic cells in the T cell area of mucosa-associated lymphoid tissue with a high potential to produce TNF-alpha. J Immunol 2003;170:5089-5094. 59. Schäkel K, von Kietzell M, Hänsel A, Ebling A, Schulze L, Haase M, Semmler C, Sarfati M, Barclay AN, Randolph GJ, Meurer M, Rieber EP. Human 6-sulfo LacNAc-expressing dendritic cells are principal producers of early interleukin-12 and are controlled by erythrocytes. Immunity 2006;24:767-777. 60. Bradley JR. TNF-mediated inflammatory disease. J Pathol 2008;214:149-160. Portada Contenido Resumen Texto Bibliografía
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