Descarga la aplicación para disfrutar aún más
Vista previa del material en texto
UNIVERSIDAD NACIONAL AUTONOMA DE MEXICO FACULTAD DE MEDICINA DIVISION DE POSGRADO INSTITUTO MEXICANO DEL SEGURO SOCIAL U.M.A.E. ESPECIALIDADES “DR. ANTONIO FRAGA MOURET” CENTRO MÉDICO NACIONAL, LA RAZA. “Importancia de las células NK, NKT y T reguladoras en trasplante alogénico de células hematopoyéticas”. TESIS PARA OBTENER EL GRADO DE ESPECIALIZACION EN HEMATÓLOGIA PRESENTA: CAROLINA GARCIA CASTILLO Asesor : Dr. Jorge Vela Ojeda México, D.F. 2008 UNAM – Dirección General de Bibliotecas Tesis Digitales Restricciones de uso DERECHOS RESERVADOS © PROHIBIDA SU REPRODUCCIÓN TOTAL O PARCIAL Todo el material contenido en esta tesis esta protegido por la Ley Federal del Derecho de Autor (LFDA) de los Estados Unidos Mexicanos (México). El uso de imágenes, fragmentos de videos, y demás material que sea objeto de protección de los derechos de autor, será exclusivamente para fines educativos e informativos y deberá citar la fuente donde la obtuvo mencionando el autor o autores. Cualquier uso distinto como el lucro, reproducción, edición o modificación, será perseguido y sancionado por el respectivo titular de los Derechos de Autor. Dr. Jesús Arenas Osuna División de Educación en Salud Dr. Jorge Vela Ojeda Titular del Curso Universitario Dra. Carolina García Castillo R4 Hematología. No. Protocolo Indice Antecedentes científicos………………………………………………………...…..5 Justificación……………………………………………………………….………….9 Planteamiento del problema……………………………………………………….10 Objetivos generales…………………………………………………………………11 Hipótesis……………………………………………………………………………..12 Material y métodos………………………………………………………………....13 Resultados…………………………………………………………………………..20 Discusión.........................................................................................................44 Conclusiones...................................................................................................47 Referencias bibliográficas…………………………………………………………48 Anexos …………………………………………………………………………..….52 Resumen Título: “Importancia de las células NK, NKT y T reguladoras en trasplante alogénico de células hematopoyéticas”. Objetivos: Evaluar la movilización de células NK, NKT y Tregs en el donador, estudiar el valor pronóstico de la cifra de células NK, NKT y Tregs y evaluar la reconstitución inmune en pacientes sometidos a alotrasplante. Material y métodos. Diseño: Se incluyeron 13 pacientes con enfermedades hematológicas sometidos a alotrasplante entre Septiembre de 2006 y Mayo de 2007. Los donadores fueron movilizados con filgrastim y se les tomaron muestras basales, 4 y 5 días después de filgrastim. Se tomaron muestras los días 0, 30, 100 y 180. Por citometría de flujo se determinó la cantidad de células nucleadas, CD34+ y subvariedades de linfocitos. Análisis estadístico: T pareada, rango logarítmico y curvas de Kaplan-Meier. Resultados: Se movilizaron células T. Siete de los 13 pacientes (54%) presentaron EICHa. Cinco (38%) desarrollaron EICHc. La mediana de células Tregs infundidas fue de 4.9 x(10)6/L. Existió una correlación directa entre la cantidad de células infundidas y el desarrollo de EICH, para algunos subtipos de células Tregs. En cuanto a las células NKT infundidas, hubo una correlación inversa con el desarrollo de EICHc. Con excepción de Tregs, los subgrupos de linfocitos se reconstituyeron al día 180. Conclusiones: Filgrastim moviliza células T a sangre periférica. Hay una correlación directa entre la dosis de Tregs y el desarrollo de EICH. La reconstitución inmune ocurre al día 180, con excepción de células Tregs. Palabras clave: Células NK, NK/T y Tregs. Abstract Title: “Clinical relevance of NK, NKT and regulatory T cells in allogeneic stem cell transplantation (ASCT)”. Purpose: To asses if NK, NKT and Tregs are mobilized to peripheral blood; to study the prognostic significance of NK, NKT and Tregs cells in relation to the dose received, and to asses the immune reconstitution after ASCT. Patients and methodos: Between September 2006 and May 2007, 13 patients with hematological diseases were enrolled. Donors were mobilized with filgrastim. Blood samples were collected before filgrastim and after 4 and 5 days of treatment, as well as from the apheresis products. Patient’s samples were obtained on days 0, 30, 100 and 180 after transplant. Flow cytometry was done in all samples to determine the CD34+ cells and lymphocyte subsets content. Statystical analysis: Paired T test, log-rank test, and Kaplan-Meier curves. Results: T cells were mobilized with filgrastim. Seven of 13 patients (54%) developed aGVHD and five (38%) cGVHD. The median dose of Tregs infused was 4.9 x(10)6/L. A direct correlation between the infused Tregs cell count and development of GVHD was observed. An inverse correlation was observed between NKT cell dose infused and cGVHD. With the exception of Tregs, almost all lymphocyte subsets were reconstituted at day 180 Conclusions: T cells were mobilized to peripheral blood. There is a direct correlation between the Tregs dose and development of GHVD. The immune reconstitution was completed at day 180 after transplant, with the exception of Tregs cells. Key words: T, NK, NK/T, Tregs cells. Antecedentes científicos: El Trasplante Alogénico de Células Hematopoyéticas (TACH) es una terapia curativa para un número creciente de enfermedades hemato- oncológicas que ponen en peligro la vida. A la fecha, más de 30,000 trasplantes están siendo realizados mundialmente cada año [1]. El pronóstico de un paciente quien ha recibido un TACH, es determinado por varios factores que incluyen el estado clínico del paciente, la toxicidad del régimen de acondicionamiento, el éxito del injerto, la duración de la inmunosupresión, el desarrollo de Enfermedad Injerto Contra Huésped (EICH), y la recaída de la neoplasia, lo cuál se asocia, entre otras cosas, con la fuerza del efecto Injerto Contra Tumor (ICT) [2]. Las células T aloreactivas contenidas en el injerto, tienen un papel central en EICH, efecto ICT y velocidad del injerto; esas células también son capaces de “limpiar” la médula ósea del receptor y atacar a las células del huésped que, de otro modo, podrían iniciar aloreacciones contra las células madre del donador. La eliminación de las células residuales tumorales, podría también ser atribuida a esas células, que destruyen a las células tumorales alogénicas, debido a que expresan el mismo blanco del antígeno leucocitario de histocompatibilidad (HLA) clase I que las células sanas del paciente [3]. Una demostración directa de que los linfocitos del donador son capaces de prevenir el crecimiento tumoral en el receptor, es probada por la capacidad de la infusión de linfocitos del donador de inducir remisión en pacientes con Leucemia Mieloide Crónica (LMC) que recaen después de un TCH [4]. Durante el TACH, el paciente es infundido con una preparación de células obtenidas del donador, que no contiene únicamente células madre hematopoyéticas (CMH), sino también, una gran variedad de subgrupos linfocitarios diferentes tales como Natural Killer (NK), Natural Killer T (NKT), células dendríticas y células T reguladoras (Tregs) [5]. Durante la última década, el uso de sangre periférica como una fuente de CMH para TACH, se ha incrementado considerablemente [6,7]. Durante el proceso conocido como movilización, la administración de G-CSF favorece la migración de los progenitores linfo-hematopoyéticos a la sangre periférica. Las células tallo expresan en su superficie el marcador CD34+. Esta fuente de aloinjerto puede contener hasta 10 veces más células CD3+, 50 veces más células CD14+, y19 veces más células CD56+ que los injertos de médula ósea. Ese hecho, parece afectar el injerto, el desarrollo de EICH, el efecto ICT, y probablemente incluso la supervivencia [8,9]. Consecuentemente, es muy importante conocer, como ha sido el caso para las células CD34+, si la dosis de esas células juega algún papel en el resultado clínico de pacientes tratados con TACH. El subgrupo de células NK CD16+ CD56deb, ejerce una función citolítica potente in vitro, con un potencial proliferativo y productor de citocinas bajo. En contraste, el subgrupo CD16deb CD56bri ejerce actividad citolítica leve, prolifera más vigorosamente en respuesta a citocinas tales como IL-2, y secreta citocinas inflamatorias [10]. Las células NKT coexpresan en el humano, una cadena invariante del Receptor de Células T (TCR) alfa (Valfa24Jalfa15) y TCR Vbeta11. Esas células tienen potente actividad supresora y antitumoral, debido a que producen citocinas como IL-4, IL-10, IL-13, e IFN gamma, lo cuál inicia una respuesta Th1 o Th2 [11]. La capacidad de las células NKT para suprimir EICH ha sido demostrada en modelos murinos de trasplante de médula ósea (TMO). Este fenómeno es dependiente de citocinas supresoras tales como IL-4 [12]. El poder de las células NKT para destruir tumores es mediado por exocitosis de gránulos (perforina, interacciones Fas-FasL, TNF y TRAIL) [13, 14]. La producción de citocinas Th1 por esas células, tales como IL-2, e IFN gamma, resulta en la activación de otras células antitumorales importantes como NK, CD4+, CD8+, células B, neutrófilos, macrófagos y células dendríticas. Se ha demostrado que las células NKT son capaces de lisar células tumorales de diferentes neoplasias hematológicas tales como leucemia mieloide aguda (LMA) y leucemia granulocítica crónica (LGC) [15]. En modelos murinos de TACH, Baker y cols, demostraron que la infusión de células CD8+NKT a una dosis de 2-5 x 107, resultó en supervivencia prolongada, sin riesgo de desarrollar EICH, en comparación a los ratones que no la recibieron [16]. Nuestro grupo ha demostrado que la dosis de células NKT contenida en el aloinjerto, es un factor pronóstico independiente para supervivencia libre de enfermedad (SLE) y supervivencia global (SG). Los pacientes que recibieron < 1.5 x 107/kg de células NKT tuvieron mejor supervivencia [17]. Las células Tregs suprimen la respuesta inmune a aloantígenos. La circulación in vivo y la localización tisular de Tregs durante una respuesta inmune adaptativa no es clara. La inflamación inducida por irradiación o aloinjerto conduce a reducción paralela de la proliferación de células T efectoras en órganos linfoides y tejidos periféricos. El trasplante de Tregs confiere protección a largo plazo desde estímulos inflamatorios sistémicos. La supresión ocurre durante fases multipasos de la inflamación, pero es óptima en la fase inicial, proporcionando protección contra la EICH mientras mantiene el efecto injerto contra tumor incluso con dosis fisiológicas de Tregs debido a su expansión in vivo [18]. La respuesta inmunológica posterior al TCH se caracteriza por ser deficiente con una duración y gravedad variable según la manipulación del injerto, el tipo de trasplante, desarrollo de EICH y nivel de actividad tímica residual. Las dosis escalonadas de quimioterapia citorreductora utilizadas en el trasplante alogénico de células tallo periféricas resultan en profunda perturbación de la respuesta inmune. Mientras una recuperación más temprana de la inmunidad innata (serie mieloide y NK) resulta en reconstitución de la inmunidad protectora contra muchos agentes bacterianos, los niveles absolutos de la función de los linfocitos T y B permanecen anormales por varios meses resultando en susceptibilidad prolongada a patógenos virales. La reconstitución de estas células parece derivar de células de diferente origen. Se considera que puede ser secundaria a la expansión de linfocitos maduros infundidos, linfocitos T residuales que han sobrevivido a la quimioterapia de acondicionamiento y al desarrollo de células T nativas dependientes e independientes del timo [17]. Justificación: La EICH se presenta en 50 a 60% de los pacientes sometidos a alotrasplante, y de ellos 12 a 15% presentan EICH grave, la mayoría de estos últimos, desafortunadamente fallece por complicaciones infecciosas. La EICH es el resultado de la interacción de células T inmunológicamente competentes derivadas del donante con los antígenos tisulares del receptor. Esta entidad puede afectar la piel, el tracto gastrointestinal y el hígado. En la actualidad la EICH constituye el mayor problema después de que se realiza un TCH alogénico. Además, aquellos pacientes que no fallecen por complicaciones de la EICH, suponen un impresionante costo hospitalario, debido a aumento de días de estancia hospitalaria, antibióticos, uso de G-CSF, transfusiones, inmunosupresores, etc. Objetivos generales: a. Evaluar la movilización de las células NK, NKT y Tregs en un donador sano después de aplicación de G-CSF. b. Estudiar el valor pronóstico de la cifra de células NK, NKT y Tregs en pacientes sometidos a trasplante alogénico. c. Evaluar la reconstitución inmune de los pacientes trasplantados. Objetivos específicos: a. Cuantificar por citometría de flujo a las células NK, NKT y Tregs en donador sano (basal). b. Cuantificar las mismas células en el donador después de cinco días de haber recibido G-CSF a 10 mcg/kg. c. Correlacionar la cantidad de células con la presencia de EICH. d. Correlacionar la cantidad de células con la SLE. e. Correlacionar la cantidad de células con la SG. f. Estudiar la reconstitución inmune celular después del trasplante. Material y métodos: a. Equipo - Analizador automático para citometría hemática modelo Cell Dyn 3000 marca Abbott. - Citómetro de flujo modelo “FACScalibur” de Becton Dickinson utilizando el programa de “Cell Quest Pro”, versión 3.2.1 “apple system” 7.6.1 y el programa para CBA (Cytometric Bead Array). b. Anticuerpos. - NK. CD3-, CD16+, CD56+. - NKT (invariantes). CD3+, CD16+, CD56+. Valfa24 y Vbeta11. - Tregs. CD4+, CD25bri (FoxP3). - Control de isotipo: . CD45 acoplado a isotiocianato de fluoresceína (FITC). . CD34 acoplado a ficoeritrina (PE). . CD19 acoplado a PE. . CD3 acoplado a PerCP. . CD4 acoplado a FITC. . CD8 acoplado a PE. . CD25 acoplado a PE. . CD62L acoplado a PE. . FoxP3 acoplado a PE. . Valfa24 acoplado a PE. . Vbeta11 acoplado a PE. . CD16+CD56+ acoplados a PE. . Células leucémicas como control “positivo” de CD34. . Perlas calibradoras. Se utilizaron 1 x 106 células mononucleares obtenidas de las bolsas de cosecha y de las muestras obtenidas tanto del paciente como del donador. c. Material. - Tubos para el citómetro de flujo (Falcon 2052). - Tubos de plástico 12 X 75. - Tubo “vacutainer” tapón lila 12 X 75. - Papel “parafilm”. - Portaobjetos. - Pipetas automáticas de 1.0, 0.1, 0.05, 0.02 mL. - Puntas para pipetas automáticas. d. Método: Se incluyeron a todos los pacientes que completaron el protocolo de trasplante de médula ósea del servicio de hematología del Hospital de Especialidades del CMN “La Raza” y fueron aceptados por el Comité de Trasplante de Células Hematopoyéticas y tuvieran un donador relacionado. Para la movilización, al donador se le administró Filgrastim a dosis de 10 Mcg/kg/día x 5 días, iniciando 6 días previos al TACH. El día correspondiente a la 4ª. y 5ª. dosis se realizó aféresis de células tallo y se tomaron muestrastanto al donador como a las bolsas recolectadas. El paciente a su ingreso inició quimioterapia de acondicionamiento con esquema BUCY (Busulfán/ciclofosfamida) ó Busulfán/Fludarabina. El esquema se eligió de acuerdo a las condiciones propias de cada paciente. Una vez completado el acondicionamiento se realizó la infusión de células tallo y se tomaron las muestras, como sigue: 1. Basal de Sangre Periférica (SP) (al donador antes de recibir FEC-G). 2. Día 4. (Al donador después de la 4a. dosis de FEC-G). 3. Día 5. (Después de la 5a. dosis). 4. Bolsa de aféresis 1. 5. Bolsa de aféresis 2. Posterior al trasplante en los días +30, +100 y + 180. A partir de muestras de sangre periférica y de las bolsas de cosecha (provenientes de donadores sanos) se tomó una alícuota de 3 ml previa homogeneización y partiendo de este volumen, se realizaron las siguientes determinaciones: - Se cuantificaron las células nucleadas en el analizador automático para BH Cell Dyn 3000 (x106/mL). - Se realizó el análisis morfológico con la tinción de Wright para determinar la cantidad de células con morfología linfoide y su relación con la cantidad de células progenitoras hematopoyéticas por unidad. - Se ajustó la cantidad de células nucleadas a 1 x 106 /100 mL de PBS a partir de la cual se tomaron alícuotas de 150 µL para ser depositadas en los tubos de Falcon, posteriormente se determinó la cantidad de células positivas para TCRs por citometría de flujo para cada bolsa de cosecha. d. Criterios de inclusión. - Septiembre de 2006 a Mayo de 2007 . - Pacientes con enfermedades onco-hematológicas en remisión completa. - Edad: 16 a 55 años. - Aceptados por el Comité de Trasplante de Células Hematopoyéticas. - Expectativa de vida > 3 meses. - Consentimiento informado. - Panel viral negativo a VIH, HB y C, y CMV. e. Criterios de exclusión. - Recaída. - Deseo de abandonar el protocolo. - Embarazo. Resultados Se incluyeron a pacientes mayores de 17 años y menores de 49, la edad promedio al trasplante fue de 35 años, y la mediana de 32 (Tabla 1). Tabla 1 Statistics EDAD 13 0 34.62 32.00 10.28 17 49 Valid Missing N Mean Median Std. Deviation Minimum Maximum Filgrastim logró movilizar células mononucleadas (Figura 1). Figura 1 Los linfocitos totales mostraron una tendencia a movilizarse a sangre periférica con el empleo de filgrastim (Figura 2). Figura 2 Las células NK también tendieron a movilizarse a sangre periférica con el empleo de filgrastim (Figura 3). Figura 3 Las células Tregs (CD4+/CD62+) presentaron una discreta tendencia a movilizarse a sangre periférica (Figura 4). Figura 4 Se determinaron los días en que ocurrió el injerto de eritrocitos, neutrófilos y plaquetas; también la cantidad de los diferentes subtipos celulares infundidos. Los datos relacionados con el total de la dosis transfundida de las diferentes variedades celulares, se encuentran resumidos en la tabla 2. Tabla 2 Statistics 9 4 11.0000 11.0000 6.8557 1.00 24.00 9 4 12.8889 15.0000 5.2068 1.00 20.00 9 4 11.22 11.00 8.33 1 28 12 1 380.0833 308.0000 214.8562 165.00 873.00 12 1 372.6667 335.4500 128.9378 142.00 609.60 12 1 35.3250 26.8000 22.2775 14.80 96.80 12 1 22.1333 6.2500 41.3001 .80 148.00 12 1 11.6771 4.9050 13.4316 .10 36.23 12 1 1.3153 1.0020 1.6137 .01 5.65 12 1 2.1668 .3508 6.2845 .02 22.10 12 1 12.6002 9.5150 16.7376 .02 61.28 7 6 .1921 7.500E-02 .3285 .00 .93 12 1 5.6100 6.0760 4.7996 .06 15.42 12 1 3.2733 2.9400 2.0387 1.15 7.19 INJ. ERIT. INJ. NEUT. INJ. PLAQ. CNT infundidas Linfos totales infundidos NK totales infundidas NKT totales infundidas CD4-25 tot infundidas CD4 CD62L tot infunfifo CD62L CD25 tot infunfifo CD4 FoxP3 total infundido CD62L FoxP3 total infundido FoxP3 CD25 total infundido CD34 infundidas Valid Missing N Mean Median Std. Deviation Minimum Maximum Se realizó un panel muy amplio de marcadores inmunofenotípicos, y se determinaron las diferentes variedades de cada subtipo de células Tregs. Se determinaron las cantidades de células nucleadas, linfocitos, células NK, NKT y Tregs tanto antes del trasplante, como a los días 100 y 180, los hallazgos más importantes se encuentran en la tabla 3. Statistics 7 0 2600.0000 2500.0000 848.5281 1800.00 4200.00 7 0 4957.1429 3500.0000 3252.1055 1400.00 9600.00 4 3 3200.0000 3350.0000 1485.4853 1300.00 4800.00 7 0 .3671 .3300 .1100 .22 .51 7 0 .3714 .3900 4.880E-02 .30 .43 4 3 .3100 .3450 .1192 .14 .41 7 0 922.8571 810.0000 317.3129 550.00 1504.00 7 0 1830.2857 1505.0000 1230.0299 546.00 3840.00 4 3 920.7500 930.5000 456.0975 416.00 1406.00 7 0 72.3794 60.1600 36.2900 32.00 140.62 7 0 274.1857 213.7000 300.7148 35.60 914.00 4 3 69.5250 47.5000 64.4526 20.00 163.10 7 0 21.2786 21.8700 18.1878 .55 45.40 7 0 70.7429 24.8000 136.9292 .00 380.00 4 3 15.8750 12.9000 15.8811 .80 36.90 7 0 48.4843 49.1400 32.7907 .66 91.50 7 0 108.6371 9.0000 135.8641 1.60 324.60 4 3 14.3825 12.9500 15.0317 1.23 30.40 7 0 20.1186 1.6300 41.4849 .04 112.75 7 0 1.4671 1.0000 1.3813 .30 3.90 4 3 6.0075 6.0000 5.7894 .23 11.80 7 0 7.1243 2.0700 12.9401 .04 36.00 7 0 2.0729 1.2000 2.6657 .30 7.80 4 3 5.6950 5.8500 5.4066 .23 10.85 7 0 62.0800 34.9000 74.4422 .13 200.00 7 0 52.9443 8.1000 97.2418 .45 266.80 4 3 3.7700 2.7500 3.9280 .28 9.30 3 4 1.3567 1.5200 1.2431 .04 2.51 6 1 2.1667 1.0000 2.8668 .27 7.77 3 4 67.9333 2.9000 113.5082 1.90 199.00 6 1 20.9883 13.5500 24.7629 .13 64.44 7 0 40.0943 2.8000 90.4735 .46 244.40 4 3 4.3200 2.7500 4.9749 .28 11.50 CNT basal CNT día 100 CNT día 180 Linfocitos % basal Linfocitos % día 100 Linfocitos % día 180 Linfocitos totales basal Linfocitos totales día 100 Linfocitos totales día 180 NK basal NK día 100 NK día 180 NKT basal NKT día 100 NKT día 180 CD4 CD25 basal CD4 CD25 día 100 CD4 CD25 día 180 CD4 CD62L basal CD4 CD62L día 100 CD4 CD62L día 180 CD62L CD25 Basal CD62L CD25 día 100 CD62L CD25 día 180 CD4 FoxpP3 basal CD4 FoxP3 día 100 CD4 FoxP3 día 180 CD62L FoxP3 basal CD62L FoxP3 día 100 CD62L FoxP3 día 180 CD25 FoxP3 basal CD25 FoxP3 día 100 CD25 FoxP3 día 180 Valid Missing N Mean Median Std. Deviation Minimum Maximum Se trasplantaron 13 pacientes, correspondiendo 10 (77%) al género masculino y 3 (23%) al femenino (Tabla 4) Tabla 4 GENERO 10 76.9 76.9 76.9 3 23.1 23.1 100.0 13 100.0 100.0 1 2 Total Valid Frequency Percent Valid Percent Cumulative Percent En cuanto al tipo de padecimiento, se incluyeron enfermedades oncológicas11/13 (85%) y no oncológicas 2/13 (15%). Dentro de las primeras, cinco pacientes tenían leucemia granulocítica crónica (38%), tres con leucemia mieloide aguda (23%), dos con linfoma no Hodgkin (15%), uno con síndrome mielodisplásico hipoplásico (8%). Dentro de las causas no oncológicas el 100% lo constituyó la Anemia Aplásica con dos pacientes (15% del total) (Tabla 5). Tabla 5 ENF. 2 15.4 15.4 15.4 5 38.5 38.5 53.8 3 23.1 23.1 76.9 2 15.4 15.4 92.3 1 7.7 7.7 100.0 13 100.0 100.0 AAG LGC LMA LNH SMDh Total Valid Frequency Percent Valid Percent Cumulative Percent En cuanto al estado de la enfermedad al momento del trasplante, las características principales se resumen en la Tabla 6. Tabla 6 EDO. ENF. 2 15.4 15.4 15.4 1 7.7 7.7 23.1 2 15.4 15.4 38.5 2 15.4 15.4 53.8 4 30.8 30.8 84.6 1 7.7 7.7 92.3 1 7.7 7.7 100.0 13 100.0 100.0 AAG FB FC FC TEMP RC RP SMDh Total Valid Frequency Percent Valid Percent Cumulative Percent Abreviaturas: AAG: Anemia Aplásica Grave, FB: Fase Blástica, FC: Fase Crónica, FC TEMP: Fase Crónica Temprana, RC: Remisión Completa, RP: Remisión Parcial, SMDh: Síndrome Mielodisplásico hipoplásico.Con respecto a los regímenes de acondicionamiento, los más empleados fueron aquellos basados en busulfán (Tabla 7). Tabla 7 ACOND. 4 30.8 30.8 30.8 5 38.5 38.5 69.2 1 7.7 7.7 76.9 1 7.7 7.7 84.6 2 15.4 15.4 100.0 13 100.0 100.0 BU-CY2 BU-FLU CEAC CY GAL-CY Total Valid Frequency Percent Valid Percent Cumulative Percent Abreviaturas: BU-CY2: Busulfán-Ciclofosfamida, BU-FLU: Busulfán-Fludarabina, CEAC: , CY: Ciclofosfamida, GAL-CY: Globulina Antilinfocito-Ciclofosfamida. La profilaxis para EICH se basó principalmente en el empleo de Ciclosporina A (Tabla 8) Tabla 8 PROF. EICH 3 23.1 23.1 23.1 6 46.2 46.2 69.2 3 23.1 23.1 92.3 1 7.7 7.7 100.0 13 100.0 100.0 CsA-MM CsA-MTX CsA MM Total Valid Frequency Percent Valid Percent Cumulative Percent Abreviaturas: CsA-MM: Ciclosporina A-Micofenolato de Mofetilo, CsA-MTX: Ciclosporina A-Metotrexate, CsA: Ciclosporina A, MM: Micofenolato de Mofetilo. De los 13 pacientes, siete presentaron algún grado de EICH aguda (54%) y seis pacientes no la presentaron (Tabla 9). Tabla 9 EICHA 4 30.8 30.8 30.8 1 7.7 7.7 38.5 1 7.7 7.7 46.2 1 7.7 7.7 53.8 6 46.2 46.2 100.0 13 100.0 100.0 CUTANEO HEPATICO IN, CU,HE INT MUCOC NO Total Valid Frequency Percent Valid Percent Cumulative Percent Abreviaturas: IN: Intestinal, CU: Cutáneo, HE: Hepático, MUCOC: Mucocutáneo. Con respecto a la Enfermedad Injerto Contra Huésped crónica, esta se presentó en grados variables en cinco de los trece pacientes (38%), y 62% de los pacientes no la desarrollaron (Tabla 10) Tabla 10 EICHC 1 7.7 7.7 7.7 1 7.7 7.7 15.4 1 7.7 7.7 23.1 1 7.7 7.7 30.8 1 7.7 7.7 38.5 8 61.5 61.5 100.0 13 100.0 100.0 CRONEXT GIV HE.GI.CU HE.GI.CU IV HEP. CUT. HEPATICO NO Total Valid Frequency Percent Valid Percent Cumulative Percent Abreviaturas: CRONEXT GIV: Enfermedad injerto contra huésped Crónico Extenso Grado IV. HE: Hepático, GI: Gastrointestinal, CU: Cutáneo. Seis de los trece pacientes (46%) desarrollaron algún proceso infeccioso (Tabla 11). Tabla 11 INFECCIO 2 15.4 15.4 15.4 2 15.4 15.4 30.8 1 7.7 7.7 38.5 1 7.7 7.7 46.2 7 53.8 53.8 100.0 13 100.0 100.0 CANDIDIASIS CATETER NEUM. ATIP. NEUMONIA NO Total Valid Frequency Percent Valid Percent Cumulative Percent Diez de trece pacientes (77%) desarrollaron algún grado de mucositis siendo el grado I el más frecuente en cinco pacientes (38%) (Tabla 12). Tabla 12 MUCOSITI 3 23.1 23.1 23.1 5 38.5 38.5 61.5 2 15.4 15.4 76.9 2 15.4 15.4 92.3 1 7.7 7.7 100.0 13 100.0 100.0 NO SI SI II SI III SI IV Total Valid Frequency Percent Valid Percent Cumulative Percent La cistitis se presentó en tres pacientes (23%) (Tabla 13). Tabla 13 CISTITIS 10 76.9 76.9 76.9 3 23.1 23.1 100.0 13 100.0 100.0 NO SI Total Valid Frequency Percent Valid Percent Cumulative Percent La mediana de la Supervivencia Global de los 13 pacientes fue de 12 meses (Figura 5). Figura 5 A 12 pacientes se les determinó la cantidad de células Tregs infundidas, observando una media de 11.7 X 10(6)/L, una mediana de 4.9 X 10(6)/L, con una desviación estándar de 4.1. Al correlacionar la dosis infundida con la existencia o no de EICH aguda, se observó una relación directamente proporcional entre la cantidad de células infundidas y el desarrollo de EICH aguda (Figura 6). Figura 6 La determinación de células CD4+, CD62L (selectina)+, también observó el mismo patrón; es decir, los pacientes que desarrollaron EICH crónico, recibieron dosis mayores de estas células (Figura 7). Figura 7 La dosis de células CD4+/CD25+ (Tregs) fue mayor en los pacientes que desarrollaron EICH crónica que en los que no desarrollaron esta complicación (Figura 8). Figura 8 En relación al desarrollo de EICH crónico, y la cantidad de células FoxP3/CD25+, se observó una relación directa con el número de células infundidas (Figura 9). Figura 9 La misma relación directa se observó en relación a la dosis infundida de células CD25+/FoxP3+ y el desarrollo de EICH crónica (Figura 10). Figura 10 La relación entre Tregs selectina+ y EICHa si siguió el patrón lógico esperado, es decir, a mayor número de Tregs infundidas, menor EICH, tanto en su forma aguda (Figura 11), como en su forma crónica (Figura 12). Figura 11 Figura 12 Sin embargo, con respecto a las células NKT infundidas, se observó una relación inversa entre la cantidad de células infundidas y el desarrollo de EICH crónica (Figura 13). Figura 13 Con respecto a la reconstitución inmune, se observó un aumento no significativo en la cantidad de células nucleadas al día 100 y 180 con respecto del basal (Figura 14). Figura 14 Las células NKT presentaron un aumento para el día 100, sin embargo, para el día 180, la reconstitución inmune era casi completa, con una cuenta de las mismas, discretamente inferior a la basal (Figura 15). Figura 15 La reconstitución de las células Tregs CD4+/FoxP3+ no ocurrió, incluso en el día 180 después del trasplante, siguió un patrón descendente con respecto al tiempo, por lo menos hasta ese día (Figura 16). Figura 16 La reconstitución inmune de los linfocitos fue completa al día 180, presentando un aumento significativo al día 100 (Figura 17). Figura 17 Discusión La correlación entre células Tregs y EICH aguda y crónica es directamente proporcional a la dosis infundida, igual como sucede en los primeros modelos de EICH en ratón. Recientemente la atención ha sido dirigida hacia Tregs y su potencial para atenuar EICH y autoinmunidad en modelos murinos, revisados en Bach, Shevach y Wood y Sakaguchi [19 y 20]. Las Tregs fenotípicamente se caracterizan por la coexpresión de CD4 y CD25, tanto en ratones, como en humanos, pueden inhibir la activación de células T autoreactivas en forma antígeno-específica, de una forma dependiente de contacto celular [21]. CD25 también es expresado por células T recientemente activadas y es por lo tanto un marcador no confiable para Tregs. FOXP3, el cuál codifica un factor de transcripción también conocido como Scurfin, fue identificado como un gen regulador clave requerido para el desarrollo y actividad funcional de células Tregs [22]. A diferencia de CD25, FoxP3 es expresado exclusivamente por Tregs y no por células T activadas y es de tal manera un marcador molecular confiable para cuantificar Tregs en sangre periférica. Varios estudios han demostrado que las células Tregs suprimen EICH en modelos animales [23] Tregs humanas y murinas comparten muchas características, pero en humanos, esos datos son conflictivos, posiblemente debido a diferencias en las técnicas de fenotipificación empleadas para caracterizar esas células. En el presente estudio, se determinó la movilización celular con filgrastim en donadores sanos, así como la reconstitución inmune de los diferentes subtipos de células T reguladoras y se correlacionó la cantidad de células infundidas con algunas características clínicas relevantes. Se incluyeron 13 pacientes, de los cuáles cinco (38%) desarrollaron algún grado de Enfermedad Injerto Contra Huésped. Esta alta incidencia es debida a que se consideraron todos los grados de EICH. Seis pacientes (48%) presentaron algún proceso infeccioso, lo cuál es esperado dado que la mayoría de ellos fueron sometidos a regímenes de acondicionamiento mieloablativo. Una complicación observada frecuentementefue la presencia de mucositis en diez pacientes (77%), esta incidencia alta, también se debió a la inclusión de mucositis grado I en 50% de los pacientes que la desarrollaron. La mediana de supervivencia global al momento de realizar el análisis fue de 12 meses, esto debido al poco tiempo de seguimiento del estudio. Doce de los trece pacientes contaron con un panel inmunofenotípico amplio. En este estudio se observó una relación directa entre la cantidad de células Tregs y el desarrollo de EICHa, lo cuál puede ser explicado por el pequeño tamaño de muestra, o porque existen diferentes subtipos de células Tregs, que podrían estar implicadas en procesos inmunoprotectores, o bien potenciadores de la respuesta inmune. De hecho la población CD4+CD25+ puede tener una gran cantidad de células T activadas, mas que reguladoras, por ello, para diferenciar las verdaderas células T con capacidad reguladora, se usa FoxP3 y otros marcadores. Se observó también un patrón directamente proporcional entre el desarrollo de EICH y la cantidad de células Tregs selectina+ (CD4+/CD62L) y CD4+/CD25+, tanto para la forma aguda como para la crónica, y del subtipo de células Tregs FoxP3/CD25+ y EICH crónica, lo cuál podría sugerir que estos subtipos de células Tregs tienen un efecto estimulante para el desarrollo de EICH. Las células Tregs con positividad para CD62L (selectina) son muy importantes, ya que selectina es necesaria para que los linfocitos Tregs viajen a los tejidos en donde existe un intenso fenómeno inflamatorio ocasionado por EICH. La cantidad de células NKT y CD62L/FoxP3, se comportaron como verdaderas células reguladoras de la respuesta inmune, pues se observó un patrón inversamente proporcional para el desarrollo de EICHc, por lo que estos subtipos celulares podrían ser los principalmente implicados en el efecto protector hacia los tejidos del receptor, lo cual concuerda con estudios previos y con el marco teórico del estudio. La reconstitución inmune de los linfocitos T y las células NKT fue completa al día 180 del trasplante, sin embargo, en el caso de las células Tregs CD4+/FoxP3, no ocurrió por lo menos hasta el día 180 del trasplante, lo cuál podría indicar que los diferentes subtipos de células Tregs, tienen periodos diferentes de reconstitución y que posiblemente su maduración y selección en timo pueda ser mas retardada. Conclusiones Existe una movilización adecuada de los diferentes subtipos celulares mediante la estimulación de un donador sano con FILGRASTIM. La reconstitución inmune de los linfocitos T y de algunos subtipos de células Tregs es completa para el día 180. Existen algunos subtipos de células Tregs que no presentan reconstitución inmune para el día 180 del trasplante. En este estudio, dada la pequeña muestra estudiada no se puede concluir, pero la tendencia orienta a que existen subtipos de células Tregs que tienen efecto protector sobre el desarrollo de EICH tanto aguda como crónica y otros subtipos con efecto que favorece el desarrollo de esta complicación. Las células NKT se comportan como reguladoras con respecto a EICH, al igual que las Tregs CD62L +. Es necesario realizar un seguimiento más prolongado para determinar el tiempo de reconstitución inmune de todos los subtipos de células Tregs e incluir más pacientes para que los resultados tengan mayor consistencia. Referencias bibliográficas: 1. Little M, Storb R (2002). History of haematopoietic stem-cell transplantation. Nat Rev Cancer 2:231-238. 2. Wagner JE, Zahurak M, Piantadosi S, Geller RB, Vogelsang GB, Wingard JR, Saral R, Griffin C, Shah N, Zehnbauer BA (1992). Bone marrow transplantation of chronic myelogenous leukemia in chronic phase: evaluation of risks and benefits. J Clin Oncol 10:779-789. 3. Fefer A (1999) Hematopoietic cell transplantation. In: Thomas ED, Blume KG, Forman SJ (eds) Blackwell Science, Malden, MA, pp 316-326. 4. Vela-Ojeda J, García-Ruiz Esparza MA, Reyes-Maldonado E, Jiménez Zamudio L et al (2004). Donor lymphocyte infusions for relapse of chronic myeloid leukemia after allogeneic stem cell transplantation: prognostic significance of the dose of CD3+ and CD4+ lymphocytes. Ann Hematol 83:295-301. 5. Parham P, McQueen KL (2003) Alloreactive killer cells: hindrance and help for haematopoietic transplants. Nat Rev Immunol 3:108-122. 6. Blaise D, Kuentz M, Fortanier C, Bourhis JH, Milpied N, Sutton L, Jouet JP, Attal M, Bordigoni P, Cahn JY, Boiron JM, Schuller MP, Moatti JP, Michallet M (2000) Randomized trial of bone marrow versus lenogratim- primed blood cell allogeneic transplantation in patients with early-stage leukemia: a report from the Societe Francaise de Greffe de Moelle. J Clin Oncol 18:537-546. 7. Schmitz N, Beksac M, Hasenclever D, Bacigalupo A, Ruutu T, Nagler A, Gluckman E, Russel N, Apperley JF, Gorin NC, Szer J, Bradstock K, Buzyn A, Clack P, Borkett K, Gratwohl A; European Group for Blood and Marrow Transplantation (2002) Transplantation of mobilized peripheral blood cells to HLA identical siblings with standard risk leukemia. Blood 100:761-767. 8. Korbling M, Huh YO, Durett A, Mirza N, Miller P, Engel H, Anderlini P, Van Beisen K, Andreeff M, Przepiorka D, Deisseroth AB, Champlin RE (1995) Allogeneic blood stem cell transplantation: peripheralization and yield of donor derived primitive hematopoietic progenitor cells (CD34+,Thy-Idim) and lymphoid subsets, and possible predictors of engrafment and graft-versus-host disease. Blood 86: 2842-2848. 9. Arat M, Arslan O, Gürman G, Dalva K, Ozcan M, Ugur A, Ilhan O (2004) The impact of granulocyte colony stimulating factor at content of donor lymphocytes collected for cellular immunotherapy. Transfus Apher Sci 30:9-15. 10. Cooper MA, Fehniger TA, Caligiuri MA (2001) The biology of human natural killer-cell subsets. Trends Immunol 22:633-640. 11. Smyth MJ, Crowe NY, Hayakawa Y, Takeda K, Yagita H, Godfrey DI (2002) NKT cells-conductors of tumor immunity? Curr Opin Immunol 14:165-171. 12. Zeng D, Lewis D, Dejbakhsh-Jones S, Lan F, García-Ojeda M, Sibley R, Strober S (1999) Bone marrow NK1.1-and NK1.1+T cells reciprocally regulate acute graft versus host disease. J Exp Med 189:1073-1081. 13. Gansuvd B, Hagihara M, Yu Y, Inoue H, Ueda Y, Tsuchiya T, Masui A, Ando K, Nakamura Y, Munkhtuvshin N, Kato S, Thomas JM, Hotta T (2002) Human umbilical cord blood NK T cells kill tumors by multiple cytotoxic mechanisms. Hum Imunol 63:164-175. 14. Nieda M, Nicol A, Koezuka Y, Kikuchi A, Lapteva N, Tanaka Y, Tokunaga K, Suzuki K, Kayagaki N, Yagita H, Hirai H, Juji T (2001) TRAIL expresion by actived human CD4+ Valfa24NKT cells induces in vitro and in vivo apoptosis of human myeloid leukemia cells. Blood 97:2067-2074. 15. Linn YC, Lau LC, Kam Hui M (2002) Generation of cytokine-induced killer cells from leukaemic samples with in vitro citotoxicity against autologous and allogeneic leukaemic blasts. Br J Haematol 116:78-86. 16. Baker, Verneris MR, Ito M, Shizuru JA, Negrin RS (2001) Expansion of cytolytic CD8+ natural killer cells with limited capacity for graft-versus- host disease induction due to interferon gamma production. Blood 97:2923-2931. 17. J. Vela-Ojeda, García-Ruiz Esparza, E. Reyes-Maldonado (2006) Clinical relevance of NK, NKT and dendritic cell dose in patients receiving G-CSF-mobilized peripheral blood allogeneic stem cell transplantation. Ann Hematol 85:113-120. 18. Vu H. Nguyen, Robert Zeiser, Daniel L, et. al. (2007) In vivo dynamics of regulatory-Tcell trafficking and survival predict effective strategies to control graft-versu-host-disease following allogeneic transplantation. 109; 2649-2656. 19. Bach JF. Regulatory T cells under scrutiny. Nat 20. Rev. Immunol. 2003;3: 189-198. 20. Wood KJ, Sakaguchi S. RegulatoryT cells in transplantation tolerance. Nat Rev Immunol. 2003. 3; 199-210. 21. Sakaguchi S, SakaguchiN, Asano M, Itoh M, Toda M. Immunologic self- tolerance maintained by activated T cells expressing IL-2 receptor alpha- chains (CD25): breakdown of a single mechanism of self-tolerance causes various autoimmune diseases. J Immunol. 1995; 155: 1151-22. 22. Hori S, Nomura T, Sakaguchi S. Control of regulatory T cell development by the transcription factor FOXP3. Science. 2003; 299: 1057-1061. 23. Taylor PA, Lees CJ, Blazar BR. The infusion of ex vivo activated and expanded immune regulatory cells inhibits graft-versus-host disease lethality. Blood. 2002; 99: 3493-3499. Anexo 1. HEMATOLOGIA HOJA DE RECOLECCION DE DATOS PROTOCOLO “Importancia de las células NK, NK/T y T reguladoras en trasplante alogénico de células hematopoyéticas”. Nombre del paciente: Sexo: Edad : Número de filiación: Teléfono: Dirección: Nombre del donador: Pruebas de Histocompatibilidad Sexo del donador: Edad del donador: Fecha de la movilización: Dosis utilizada de Filgrastim: : Complicaciones durante la movilización: Cantidad de NK, NKT y Tregs movilizadas Anexo 2 1 Estadios clínicos de la EICHa según los criterios de Glucksberg Organo I II III IV Piel Rash maculopapular <25% superficie corporal Rash maculopapular del 25 al 50% superficie corporal Eritrodermia generalizada Descamación y bulas Hígado Bilirrubina de 2 a 3 mg/dL Bilirrubina de 3 a 6 mg/dL Bilirrubina de 6 a 15 mg/dL Bilirrubina >15 mg/dL Intestino Diarrea de 500 a 1000 ml/día Diarrea de 1000 a 1500 ml/día Diarrea >1500 ml/día Ileo doloroso Fuente: Glucksberg H. Store R, Fefer A. Clinical manifestation of graft versus host disease in human recipients of marrow from HLA-matched siblings donors. Transplantation. 1974; 18: 295-304. 2 Anexo 3 Clasificación de EICHc Componente Puntos Medidas Evaluador Piel Rash eritematoso, esclerosis, úlceras o prurito % superficie corporal C Ojos Prueba de Shirmer bilateral sin anesthesia, síntomas Mm Escala 0-10 C P Boca Eritema, hiperqueratosis, úlceras, síntomas Puntuación 0-15 P C Hematológico Plaquetas, eosinófilos Número/mcl, % C Gastrointestinal Síntomas esofágicos, diarrhea 0-3 C Hígado Bilirrubina, ALT, fosfatasa alcalina Mg/dL, U/L C Pulmón Bronquiolitis obliterante FEV1 C Escala de síntomas 30 puntos 0-100 P Actividad global Gravedad de los síntomas 0-10 P/C Abreviaturas: ALT: Alanino amino transferasa, C: Evaluado por el clínico, FEV1: Volumen espiratorio forzado del primer segundo, P: Reportado por el paciente. 3 Portada Índice Resumen Antecedentes Justificación Objetivos Material y Métodos Resultados Discusión Conclusiones Referencias Bibliográficas Anexos
Compartir