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UNIVERSIDAD NACIONAL AUTÓNOMA DE MÉXICO POSGRADO EN CIENCIAS BIOLÓGICAS FACULTAD DE MEDICINA " IDENTIFICACION DEL GEN CANDIDATO DE LA REGION CROMOSOMICA 5P RELACIONADO A LA CARCINOGENESIS CERVICAL " T E S I S QUE PARA OBTENER EL GRADO ACADÉMICO DE: MAESTRA EN CIENCIAS BIOLÓGICAS (BIOLOGÍA EXPERIMENTAL) P R E S E N T A: KARLA ITZEL VÁZQUEZ SANTILLÁN DIRECTOR DE TESIS: DR. MAURICIO SALCEDO VARGAS MÉXICO D.F. Octubre, 2007 UNAM – Dirección General de Bibliotecas Tesis Digitales Restricciones de uso DERECHOS RESERVADOS © PROHIBIDA SU REPRODUCCIÓN TOTAL O PARCIAL Todo el material contenido en esta tesis esta protegido por la Ley Federal del Derecho de Autor (LFDA) de los Estados Unidos Mexicanos (México). El uso de imágenes, fragmentos de videos, y demás material que sea objeto de protección de los derechos de autor, será exclusivamente para fines educativos e informativos y deberá citar la fuente donde la obtuvo mencionando el autor o autores. Cualquier uso distinto como el lucro, reproducción, edición o modificación, será perseguido y sancionado por el respectivo titular de los Derechos de Autor. Agradezco a la Universidad Nacional Autónoma de México en especial al Posgrado de Ciencias Biológicas, al Consejo Nacional de Ciencia y Tecnología (CONACYT) y al Instituto Mexicano del Seguro Social IMSS por darme la oportunidad de continuar con mi superación académica y personal. Agradezco también a los miembros de mi comité tutoral por la revisión que hicieron de mi trabajo y por sus valiosas sugerencias y comentarios que sirvieron para enriquecerlo. AGRADECIMIENTOS A mis padres por todo el apoyo que me han brindado, gracias por creer en mi y apoyarme siempre que lo he necesitado …… los amo. A toda mi familia por el cariño y apoyo que me han otorgado durante toda mi vida, en especial a mi abuelita, mi hermana , mi tía rosa gracias por quererme tanto. A mi tutor, el Dr. Mauricio Salcedo, por el invaluable apoyo que me brindo para la realización de este proyecto. A mis amigos y compañeros de laboratorio por su convivencia y amistad y por todos esos momentos tan divertidos, especialmente a Brenda, Paty, Jellow, Charlos, Hugo, gracias por todo, he aprendido mucho de ustedes, bueno de Hugo no. (jaja). A mis amigas anita, mir, wendy, barbara, gracias por apoyarme siempre y por todos esos momentos tan divertidos que hemos vivido. INDICE Resumen….…………………………………………………………………………………...1 Abstract………………………………………………………………………………………..2 Introducción El cáncer cérvico uterino como un problema de salud mundial…………………………..2 Historia natural del Cáncer de Cérvix………………………………...…………………….3 Factores de riesgo asociados a CaCU……………………………………………………..5 CaCU y virus de papiloma humano………………………………………………………….5 Alteraciones Cromosómicas …………………………………………………………………6 Hibridación genómica comparativa en metafases (HGCm)......………………………….9 Hibridación genómica comparativa sobre microarreglos (HGCa) ………………………14 Antecedentes……………………………………………………………………………..…...16 Justificación………………………………………………………………………….………..21 Objetivos……………………………………………………………………………………...22 Metodología …………………………………………………………………………………23 Resultados ……………………………………………………………………………………32 Discusión …………………………………………………………………………………….46 Conclusiones ………………………………………………………………………………..54 Referencias ………….……………………………………………………………….……. 55 RESUMEN El cáncer cérvico uterino representa un importante problema de salud a nivel mundial y en México este representa la primer causa de muerte entre la población femenina. La infección con virus de papiloma humano es considerada como el principal agente etiológico de la enfermedad, sin embargo, la infección por si sola no es suficiente para el desarrollo del CaCu, por lo que otros eventos como la acumulación de alteraciones cromosómicas son requeridos para el desarrollo del CaCU. Mediante metodologías de análisis genómico se ha identificado un patrón de alteraciones cromosómicas específico 0para este tipo de neoplasia y se ha determinado que la amplificación del brazo corto del cromosoma 5 es un evento que ocurre frecuentemente en carcinomas cervicales, lo cual sugiere la presencia de genes cuya ganancia de función puede ser ventajosa para la progresión hacia etapas avanzadas del CaCU. Sin embargo, aún no se han identificado los genes que son los verdaderos blancos de amplificación dentro de esta región, por lo que en este trabajo se analizaron los resultados derivados de Hibridación Genómica Comparativa sobre microarreglos (HGCm) aplicada a 5 líneas celulares derivadas de CaCU y en base a estos datos se identificó que el gen TRIO se amplifica en todas las líneas celulares. TRIO codifica una proteína con tres dominios funcionales, un dominio serina treonina cinasa y dos dominios de intercambio de guaninas que activan a GTPasas de la familia Rho. TRIO está involucrada en la remodelación del citoesqueleto de actina, proliferación celular, migración etc. Para determinar la amplificación de TRIO en 53 carcinomas cervicales y 20 lesiones premalignas, se realizó PCR en tiempo real con oligonucleótidos específicos para TRIO. La presencia de VPH y la tipificación de las secuencias virales también fue realizada en las muestras analizadas. TRIO se encontró amplificado en 75% de los tumores VPH+ y en 25% de los tumores VPH- sin embargo, ninguna de las lesiones premalignas presentó amplificación del gen. ABSTRACT: Cervical Cancer is a very important health problem World Wide and in Mexico it represents the first cause of death between female population. HPV infection is the principal aethiological factor involved in this disease, however single infection is not enough for the development of cervical cancer and others events like chromosomic alterations are required for cervical carcinogenesis. Several genomic analysis methods have detected a specific pattern of chromosomal imbalances in this type of tumor, and the amplification of chromosme 5p has been described as a recurrent event in cervical carcinomas. Amplification of short arm of chromosome 5 suggests the presence of genes whose gain of function seems to be highly advantageous in the progresion towards advanced stages of cervical carcinomas. However, at present, specific genes that suffer copy increase in the 5p region have not yet been identified, by such reason the results generated by Comparative Genomic Hybrization Arrays in 5 cancer cervical cell lines were analized and TRIO gene was amplified in all cell lines. Trio codes for a protein with a serine/threonine kinase domain and two guanine nucleotide exchange factor domains for the family of Rho- like GTPases. Trio has been involved in remodeling cytoskeletal actin. migration and cell proliferation. 53 cervical carcinomas and 20 premalignant lessions were analized by Real Time PCR to determinate if Trio gene was amplified. HPV presence was examinated in all simples too. Trio amplification was detected in 75% of tumors HPV positives and in 25% of tumors HPV negatives, none of premalignant lessions showed trio amplication. INTRODUCCIÓN: EL CÁNCER CERVICO UTERINO COMO UN PROBLEMA DE SALUD MUNDIAL El cáncer cervico uterino (CaCU) constituye un importante problema de salud pública en todo el mundo. La incidencia de CaCU es una de las mas altas, representando el segundo cáncer en frecuencia entre las mujeres a nivel mundial, y ocupa el primer lugar en muchos países en desarrollo. Aproximadamente 510,000 nuevos casos son reportados cada año de los cuales 80% se presentan en los países en vías de desarrollo; 68,000 casos en Africa, 77,000 en Latino América y 245,000 en Asia. Enel 2005 se registraron mas de 250,000 muertes por esta causa (1). En México, el CaCU ocupa el primer lugar en incidencia y mortalidad por tumores malignos, entre la población femenina, representando mas del 24% de todas las neoplasias malignas reportadas. (Gráfica 1). En el 2001 el 8% del total de muertes por neoplasias se debió a este cáncer, el cual registró una tasa de 21 por 100,000 mujeres de entre 25 y 64 años (2). El CaCU es una enfermedad que manifiesta pocos síntomas, esto aunado a la falta de información y a la ausencia de una cultura del autocuidado de la salud provocan que el diagnóstico del CaCU se realice en etapas muy avanzadas cuando el pronóstico es poco alentador. Aunque esta enfermedad puede evitarse en gran medida, las tasas de incidencia y mortalidad no han descendido significativamente en los últimos 40 años, por lo que hoy en día el CaCU sigue siendo uno de los problemas sociales y de salud más graves en nuestro país (3). Gráfica 1. Neoplasias más comúnmente reportadas en el Registro histopatológico de neoplasias malignas (2) HISTORIA NATURAL DEL CÁNCER DE CÉRVIX EL CaCU evoluciona a partir de neoplasias cervicales intraepiteliales (NIC) las cuales se han agrupado en NIC I, II y III de acuerdo con el porcentaje de alteraciones presentes en el epitelio cervical. En las NIC I o displasia leve hay alteraciones en el arreglo regular de la tercera parte del epitelio y existen escasos cambios celulares superficiales constituidos por células con abundante citoplasma y ligero crecimiento del núcleo. Las NIC II o displasia moderada se caracterizan por presentar alteraciones en las dos terceras partes inferiores del epitelio, las células presentan núcleos grandes y hay una pérdida de la relación núcleo/citoplasma. Las NIC III o displasia grave presentan alteraciones en todo el epitelio cervical, las células carecen de citoplasma y tienen núcleos aneuploides hipercrómicos (4). 11 % 13,60% 24,40% . Cervix D Piel Mama D Prostata • Estomago Estos tipos de lesiones pueden revertirse, persistir o progresar hacia cáncer, numerosos estudios han demostrado que las NIC 1 revierten a menudo espontáneamente, por el contrario, solo un pequeño porcentaje de las NIC II y III regresan o desaparecen, siendo su conducta mas frecuente hacia la persistencia o a la progresión (5, 6, 7). Hoy en día la clasificación mas utilizada para definir estas lesiones premalignas, es la del sistema Bethesda el cual considera a la NIC I como lesión intraepitelial de bajo grado (LIEBG) y a la NIC II y III como lesión intraepitelial de alto grado (LIEAG) (Figura 1) (8), Figura 1. Lesiones premalignas del cérvix El tiempo que tarda en evolucionar una NIC I hacia cáncer es desconocido, sin embargo se ha calculado que son aproximadamente 4 años los que tarda una lesión en progresar a su siguiente fase (9) y de 10 a 30 años lo que le toma a una NIC III para evolucionar a carcinoma invasor (10). La lesión se considera un carcinoma invasor cuando las células transformadas del epitelio cervical han rebasado la membrana basal e invadido el tejido adyacente, histológicamente hay varios tipos de carcinoma invasor, el mas frecuente (90 a 95%) es el carcinoma escamoso o epidermoide, siguiéndole en importancia el adenocarcinoma (4%) y otros tipos menos frecuentes entre los que se encuentran el carcinoide y el carcinoma de células claras (4). NIC I NIC 11 NIC 111 OISPLASIA LEVE DISPLASIA MODERADA OISPLASIA SEVERA LlEBG LlEAG FACTORES DE RIESGO ASOCIADOS A CACU Numerosos factores de riesgo han sido implicados en la etiología del CaCU, entre los cuales se encuentran: el consumo prolongado de anticonceptivos orales, inicio de vida sexual a temprana edad, elevado número de parejas sexuales (6 o mas), alta paridad (mas de 5 partos), hábitos higiénicos deficientes, tabaquismo y la infección con virus de papiloma humano (VPH) (11, 12). Las infecciones de transmisión sexual provocadas por Chlamydia trachomatis, (13) virus del Herpex simple 2 y virus de la insuficiencia humana (14) así como condiciones de bajo nivel socioeconómico y deficiencias nutricionales pueden también interferir como cofactores en el CaCU. Son varios los factores de riesgo que han sido implicados en diferentes momentos en la etiología del CaCU, sin embargo, el factor etiológico mas importante para el desarrollo del CaCU lo constituye la infección con virus de papiloma humano de alto riesgo (15-17). CACU Y VIRUS DEL PAPILOMA HUMANO. Actualmente es bien conocida la relación existente entre el VPH y el CaCu y numerosos estudios han revelado que la prevalencia de infección con VPH en CaCU es superior al 99.7%, lo cual significa que secuencias del VPH pueden ser encontradas virtualmente en todos los tumores cervicales (17,18). El VPH ha sido asociado claramente tanto con lesiones precursoras como en carcinoma invasor (19). A nivel mundial se estima que del 2% al 20% de la población femenina esta infectada con algún tipo de VPH. (20) En México se ha observado un porcentaje de infección de 16.7 % en mujeres menores de 25 años mientras que este porcentaje se reduce a 3.7 % en el grupo de edad de 35-44 años e incrementa progresivamente a 23% en mujeres mayores de 65 años (21). Hasta el momento se han identificado y secuenciado 85 tipos de VPH y se han caracterizado parcialmente 120 genotipos potenciales (22). Los VPH pueden agruparse en tipos cutáneos que infectan células epiteliales básales de la piel y tipos mucosos que infectan el tracto respiratorio y el epitelio anogenital. En base a su asociación con el CaCU y las lesiones precursoras, los VPH se clasifican como de alto riesgo (VPH-AR) , aquellos que se encuentran preferentemente en tumores invasores; los de mediano riesgo y los de bajo riesgo (VPH-BR), que se encuentran presentes en lesiones benignas, como los condilomas; los VPH-BR incluyen los tipos 6, 11, 42, 43 y 44 y los VPH-Ar incluyen los tipos 16, 18, 31, 33, 34, 35, 39, 45, 52 56, 58, 59, 66, 68 y 70, siendo el tipo 16 el que se encuentra con mayor frecuencia (23). Los VPH-AR contribuyen a la progresión maligna debido a la expresión continua de sus oncogenes virales E6 y E7, el principal efecto de la expresión de E6/E7 es interferir con el control del ciclo celular e iniciar un proceso a través del cual el genóma de la célula acumule cambios y adquiera un fenotipo maligno (revisado en 22). De tal manera que la infección con VPH-AR juega un papel importante en la carcinogénesis cervical, sin embargo, el hecho de que solo un pequeño porcentaje de las mujeres infectadas con el virus eventualmente desarrolla cáncer, aunado a los largos periodos de latencia entre el inicio de la infección y el desarrollo de la lesión, sugiere que la infección con algún tipo de VPH, incluso uno de alto riesgo es necesario pero no es suficiente para inducir el desarrollo del CaCU. Por lo tanto, es claro que otros eventos tales como amplificaciones o deleciones de regiones cromosómicas o cromosomas completos, deben de estar involucrados en el desarrollo del cáncer y que en conjunto con el virus estén provocando el desarrollo de las neoplasias cervicales. ALTERACIONES CROMOSÓMICAS La transformación maligna se inicia generalmente por una lesión genética debido a un error provocado durante la división celular o debido a daño genotóxico no reparado, este evento inicial ofrece0 una oportunidad para el desarrollo de otras altertaciones genéticas. De tal manera que cuando la combinación propia de lesiones genéticas se acumula en una célula, esta llega a ser maligna. Estas alteraciones genéticas son requeridas para el desarrollo y progresión tumoral (24). Los carcinomas cervicales frecuentemente adquieren alteraciones cromosómicas estructurales y numéricas, como translocaciones cromosómicas, deleciones y amplificacionesde ciertas regiones cromosómicas. Las alteraciones cromosómicas pueden acumularse a través de un proceso conducido por la inestabilidad genómica (25). La inestabilidad genómica crea un estado permisivo en el cual una célula puede adquirir sufcientes mutaciones y alteraciones, que le permiten llegar a ser una célula cancerosa, otorgándole de esta forma un mecanismo de plasticidad que le permite adaptar su genoma a las exigencias que se presentan durante la progresión tumoral (26). La inestabilidad genómica es una característica de los tumores epiteliales (27); en cancer de cérvix se desarrolla en etapas tempranas y puede ser detectada incluso en lesiones premalignas (28). La inestabilidad genómica puede dar lugar a células que no son viables y experimenten apoptosis o senecencia, pero también abre una ventana de oportunidades para la acumulación de aberraciones cromosómicas que den lugar a células capaces de superar los diferentes retos ambientales que surgen durante la progresión del cáncer (29). Esta acumulación de cambios genéticos permite a la célula alcanzar el umbral crítico necesario para la transformación maligna (26). El incremento en el número de copias (amplificación) es un mecanismo que conlleva a la expresión anormal de oncogenes y juega un papel importante en la patogénesis de muchos tumores sólidos (30). La amplificación ocurre como un resultado de rearreglos cromosómicos tales como duplicaciones, formación de isocromosomas, inserciones, translocaciones, fragmentos cromosómicos acéntricos, etc, lo cual puede afectar la dosis génica de numerosos genes simultáneamente. La amplificación ha sido asociada con la progresion tumoral, un peor pronóstico y resistencia a quimioterapia en una variedad de tumores (31). La descripción de alteraciones cromosómicas en células tumorales es de vital importancia para la identificación de oncogenes y genes supresores de tumor involucrados en el desarrollo y progresión de las neoplasias (30-33). Con la introducción de las técnicas de bandeo cromosómico en los 70s se lograron identificar algunas alteraciones cromosómicas en una gran cantidad de tumores malignos. En carcinomas cervicales se encontraron alteraciones que involucran principalmente a los cromosomas 1,3,5,17 y X, cabe destacar que el cromosoma 5 se encontró alterado en un mayor porcentaje de los tumores (77%), en donde la alteración mas común fue la formación de isocromosomas del brazo corto del cromosoma 5 (34-36). Esta alteración ha sido también detectada en líneas celulares derivadas de CaCu (37). Mediante técnicas citogenéticas empleadas en el análisis del CaCU hemos tenido una visión limitada de los cambios cromosómicos que se presentan en las células tumorales, debido principalmente a las dificultades técnicas para cultivar células epiteliales neoplásicas y a la complejidad de las alteraciones y rearreglos cromosómicos encontrados en las células tumorales, haciendo difícil la identificación de todas las alteraciones cromosómicas presentes en CaCU, por tal motivo se han desarrollado otras metodologias que nos permiten una mejor caracterización de las alteraciones cromosómicas presentes en las neoplasias. HIBRIDACIÓN GENÓMICA COMPARATIVA EN METAFASE En los últimos años ha existido un avance impresionante en el estudio de la genética molecular del cáncer y se han desarrollado diversas metodologías de alto rendimiento que nos permiten analizar un amplio panorama del genoma en un solo experimento; una de estas técnicas es la hibridación genómica comparativa en metafase (HGCm). La HGCm desarrollada por Kallionieme en 1992 (38) representa una poderosa herramienta para identificar cambios en el número de copias en el ADN, la principal ventaja de la HGCm es la posibilidad de crear un mapa genómico con las regiones de pérdida o ganancia de material genético, a apartir de pequeñas cantidades de ADN, permitiendo un análisis global de los desbalances cromosómicos presentes en los tumores, los cuales pueden ser relevantes en la etiología de las neoplasias, o pueden tener importancia en el diagnóstico o pronóstico de la enfermedad (39). La HGCm se basa en la comparación de dos poblaciones de ADN genómico, una derivada de células tumorales y la otra derivada de células con cariotipo normal, las cuales son marcadas con fluorocromos diferentes, por lo general, se utiliza fluoresceina (verde) para marcar el genoma tumoral y rodamina (rojo) para el genoma normal, ambos ADN son mezclados en cantidades equimolares e hibridados sobre cromosomas en metafase de un sujeto cariotípicamente normal. La hibridación se llevará a cabo de una manera competitiva sobre sus secuencias complementarias en los cromosomas en metafase, de tal manera que la cantidad relativa de ADN que se une a sus secuencias blanco está directamente relacionada con la abundancia relativa de esta secuencia. Las diferencias en las intensidades de fluoresencia sobre los cromosomas reflejan el cambio en el número de copias de secuencias correspondientes en el genoma tumoral, si los cromosomas o regiones cromosómicas se presentan en igual número de copias tanto en el tumor como en la muestra normal, la fluoresencia observada será una mezcla de igual contribucion de fluorecencia verde y roja, pero si existen deleciones de regiones cromosómicas en el genoma tumoral la señal sera predominantemente roja y si existen amplificaciones la señal se reflejara predominantemente verde. Figura 2. De esta forma, la HGCm permite obtener un mapa de las regiones que sufren cambios en el número de copias de ADN en todo el genoma en un solo experimento (38). Esta técnica ha sido usada para identificar regiones cromosómicas involucradas en la carcinogenesis de un amplio espectro de tumores y ha servido como un punto de partida inicial para la busqueda de nuevos genes implicados en cáncer (40-43). En CaCu, la HGC sobre metafases ha sido aplicada para el análisis de todos los estadios de la enfermedad, DNA Control DNA Tumora l Sin cambio s Perdida Ganancia Resultado de la hibridación hibridación Figura 2. Hibridación Genómica Comparativa sobre metafases desde lesiones premalignas hasta carcinoma invasor, detectándose un patron de alteraciones cromosómicas particulares para este tipo de tumor (44-50). La figura 3 muestra un histograma de las aberraciones cromosómicas presentes en 383 carcinomas cervicales invasores, provenientes de datos generados mediante HGCm, los cuales se encuentran depositados en la base de datos Progenetix (www.progenetix.com). En este histograma podemos observar la suma de los cambios cromosómicos presentes en carcinomas invasores, en donde la amplificación del cromosoma 3q y 5p, así como la perdida del cromosoma 2q son uno de los eventos mas comunes en esta neoplasia. Figura 3. Desbalances cromosómicos detectados en 383 casos de CaCU mediante HGCm. Las alteraciones descritas hasta el momento reflejan un patron de cambios cromosómicos asociados con estados particulares de la transformación cervical y con comportamientos biológicos específicos, encontrándose que el número de aberraciones cromosómicas incrementa significativamente en la transición de lesiones premalignas a carcinoma invasores y continúa incrementando con el estadio del tumor, indicando que la acumulación de alteraciones cromosómicas puede ser importante para la progresión del CaCU (45, 48, 49, 51, 52). Mediante el uso de HGCm se han descrito varias alteraciones cromosómicas recurrentes en tumores y en líneas celulares derivadas de CaCU, estas regiones incluyen ganancias en el cromosoma 3q, 5p, 1q, 8q, 20q, 17q y pérdidas de los cromosomas 2q, 3p, 4, 6q, 11q, 13q y 18q. La ganancia del cromosoma 3q ha sido reportada en todos los estudios de HGC y fue primero consideradacomo un posible marcador para la transición entre NIC III y carcinoma invasor. Ried et al 1999, propusieron un modelo en el cual las lesiones premalignas aún no presentan alteraciones específicas, siendo la ganancia del cromosoma 3q el evento inicial en el desarrollo de carcinoma cervical etapa 1, seguido de la ganancia del cromosoma 1q, 5p, 8q, 20q y la pérdida del 2q en etapas avanzadas del CaCU (52). Figura 4. Sin embargo, otros grupos han reportado que la ganancia del cromosoma 3q es un evento frecuente aún en lesiones premalignas del cérvix (44). Figura 4. Modelo de adquisición de alteraciones cromosómicas en diferentes etapas de la progresión del CaCu (Ried et al, 1999) Además de la ganancia del 3q, también se han encontrado alteraciones como ganancias en 1q, 8q, y pérdidas en 11q, 13q y 6q en etapas tempranas de la progresión, sugiriendo que otros eventos además de la ganancia del cromosoma 3q están involucrados en la carcinogénesis cervical. Muchas de estas alteraciones también están presentes en tumores invasores, indicando que juegan un papel importante en la progresión del CaCU. Estudios recientes reportan que la amplificación con alto número de copias del brazo corto del cromosoma 5 es un evento recurrente durante la progresión de etapas avanzadas del CaCU, observándose en la mayoría de los casos la amplificación de todo el brazo (44, 47, 52, 53). Algunos estudios que combinan el uso de HGCm con otras técnicas como la cariotipificación espectral (SKY) han descrito la formacion de isocromosomas del 5p en carcinomas cervicales (54). La amplificación de todo el brazo corto del cromosoma 5 sugiere la presencia de genes cuya ganancia de funcion puede ser altamente ventajosa en la progresion hacia estados avanzados del CaCU. La mayoría del los estudios concuerdan que la ganancia del cromosoma 5p solo es observada en etapas avanzadas del CaCU, sin embargo, Aubele et al (1998) encuentran ganancia del 5p en lesiones premalignas y consideran este evento como un marcador de la progresión (55). Algunos autores han descrito alteraciones cromosómicas con valor pronóstico, como la pérdida del cromosoma 11p y 18q y la sobreexpresión de EGFR asociadas con un peor pronóstico en CaCU y la pérdida del cromosoma 9p asociado a metastasis, lo cual refleja la importancia de identificar alteraciones cromosómicas particulares en esta neoplasia (48, 56). Gracias a la aplicación de HGC sobre metafase se han logrado definir alteraciones cromosómicas recurrentes en todas las etapas del CaCU, destacando de esta manera las regiones que pueden contener genes importantes involucrados en la progresión del Carcinoma Cervical. Sin embargo, mediante la HGCm, tenemos solo cierta idea acerca de los genes que son los verdaderos blancos de amplificación o deleción, ya que las alteraciones genéticas reportadas por esta metodología involucran regiones citogenéticas que pueden contener una gran cantidad de genes dentro de ellas. Por tal motivo, actualmente se ha desarrollado una técnica llamada Hibridación Genómica Comparativa sobre microarreglos. HIBRIDACIÓN GENÓMICA COMPARATIVA SOBRE MICROARREGLOS La Hibridación Genómica Comparativa sobre microarreglos (HGCa) permite la detección de amplificaciones y deleciones específicas que no pueden ser identificadas por medio de HGCm (57). Esta técnica tiene la ventaja de que las pérdidas y/o ganancias pueden ser mapeadas por la posición del gen en cuestión y no de acuerdo a bandas citogéneticas como en HGCm convencional, obteniendo así una lista de genes candidatos dentro de la región de interés. Al igual que la HGCm, la HGC sobre microarreglos compara la abundancia relativa de secuencias genómicas específicas en el genoma tumoral, utilizando el genoma normal como referencia. En la HGCa los cromosomas en metafase son reemplazados por clonas genómicas bien definidas, generalmente representadas en cromosomas artificiales de bacterias (BACs), las cuales son arregladas en soportes sólidos y son utilizadas como blancos de hibridación. (58). La HGCa también utiliza como fuente de análisis el ADN proveniente de células tumorales y células normales, los cuales son marcados diferencialmente, mezclados en cantidades equimolares e hibridados sobre las clonas impresas en el arreglo. De esta forma las clonas con una señal predominantemente verde son las secuencias que están ganadas en el tumor, las clonas con una señal roja son las que han sufrido pérdidas y las clonas representadas en amarillo son las que se encuentran en el mismo número de copias en ambos genomas (Figura 5). Figura 5.- Hibridación Genómica Comparativa sobre microarreglos Gracias a que la información de las clonas esta vinculada directamente con bases de datos genómicas, podemos conocer la posición exacta de las clonas a lo largo del cromosoma y los genes que se encuentran dentro de estas. De manera que la HGCa nos ofrece una mayor posibilidad de identificar los genes o las secuencias blanco específicas cuya amplificación puede ser importante en la biología del tumor. C,omooomo. (50 M b) 1,,'2_'q2~ ' , Ce<.-.c;;,.<_ • ...:___ _ __ .-;:::::;:::::::::::::;::~~:::::::::;;::::::::;:::: C ....... g .... _ .. • •••• a Puntos <lel .-.eglo " " ' ___ ~~~~~:;::::::.~~~~oo.:::;~ ..,,~ . .. ... _ .. o de <opIO' - -- - -- - Los otros dos reportes combinan la aplicación de microarreglos de expresión con HGCa para analizar los perfiles de expresión y el cambio en número de copias de un gran número de genes en CaCU. En 2006, Lying et al identifican genes asociados con fenotipos metastásicos de carcinomas cervicales e investigan si el cambio en el número de copias de estos genes juega un rol en la regulación de los transcritos, ellos encuentran 31 genes diferencialmente expresados en tumores con nodos positivos y negativos, de los cuales 8 están fuertemente asociados con fenotipos metastásicos, 5 de ellos exhibieron una expresión relacionada significativamente con el volumen tumoral, por lo que probablemente juegan un rol en el crecimiento tumoral. Ninguno de los genes identificados se encuentra en el brazo corto del cromosoma 5. Los cambios en el número de copias de los genes diferencialmente expresados parecen estar involucrados en el desarrollo de los fenotipos metastásicos solo en algunos casos, pero en la mayoria de los tumores otros mecanismos de regulación transcripcional deben estar involucrados (60). En 2007, Narayan et al, utilizaron arreglos de 9206 ADNcs para analizar 29 carcinomas cervicales, ellos reportan 17 amplicones recurrentes y 6 regiones deletadas, esas regiones contienen varios genes conocidos involucrados en transcripción, apoptosis, remodelación del citoesqueleto, transporte iónico, metabolismo de drogas y respuesta inmune. La mayoria de las clonas fueron mapeadas a los cromosomas X, 1, 5, 3, 19 y 20. Mediante microarreglos de expresión se analizaron los patrones de expresión de los genes dentro de los amplicones reportados por HGCa y se identificaron algunos genes sobreexpresados en CaCU, entre los cuales esta el gen SKP2 (proteina asociada a cinasa fase S) localizado en el 5p12-13 (61). SKP2 es una F-box proteína y parte del complejo SCF que actua como una ubiquitina ligasa E3 en reguladores del ciclo celular como p21, p27 y ciclina D1. La sobreexpresión de SKP2 ha sido reportada en linfomas, carcinomas colorectales, orales y de próstata. La expresión de SKP2 ha sido relacionada con el grado de malignidad y con un peor pronóstico en carcinomas orales y linfomas (revisado en 62). ANTECEDENTES Numerosos estudios han demostrado el enorme potencial de la HGC sobre microarreglos para identificar genes candidatos involucrados en el desarrollo de muchas neoplasias. En Cáncer Cervico Uterino solo existen tres reportes que emplean HGCa para definircambios específicos en el número de copias. En 2005, Hidalgo et al utilizaron arreglos de 861 clonas que representan 287 regiones cromosómicas que son comúnmente alteradas en cáncer y reportan amplificación en los genes: RBP1-RBP2 (proteína de unión a retinol) mapeado en la región cromosómica 3q21-q22, DAB2 (disabled homolog 2, mitogen-responsive phosphoprotein) en el cromosoma 5p13, TP63 (3q27- 129) y EGFR (Receptor del factor de crecimiento epidermal) en el cromosoma 7p12.3- p12.1. DAB2 localizado en el 5p13 se encontró amplificado en el 58.8% de los tumores, este gen ha sido identificado como un gen supresor de tumor en carcinoma de próstata y de ovario. DAB2 está involucrado en mediar el requerimiento para el anclaje de las células epiteliales a la membrana basal, y la pérdida de expresión de este gen ha sido asociada con la transicion de células epiteliales de ovario a lesiones premalignas, sin embargo, la amplificación de este gen parece contraria a su papel como un gen supresor de tumor (59). Los otros dos reportes combinan la aplicación de microarreglos de expresión con HGCa para analizar los perfiles de expresión y el cambio en número de copias de un gran número de genes en CaCU. En 2006, Lying et al identifican genes asociados con fenotipos metastásicos de carcinomas cervicales e investigan si el cambio en el número de copias de estos genes juega un rol en la regulación de los transcritos, ellos encuentran 31 genes diferencialmente expresados en tumores con nodos positivos y negativos, de los cuales 8 están fuertemente asociados con fenotipos metastásicos, 5 de ellos exhibieron una expresión relacionada significativamente con el volumen tumoral, por lo que probablemente juegan un rol en el crecimiento tumoral. Ninguno de los genes identificados se encuentra en el brazo corto del cromosoma 5. Los cambios en el número de copias de los genes diferencialmente expresados parecen estar involucrados en el desarrollo de los fenotipos metastásicos solo en algunos casos, pero en la mayoria de los tumores otros mecanismos de regulación transcripcional deben estar involucrados (60). En 2007, Narayan et al, utilizaron arreglos de 9206 ADNcs para analizar 29 carcinomas cervicales, ellos reportan 17 amplicones recurrentes y 6 regiones deletadas, esas regiones contienen varios genes conocidos involucrados en transcripción, apoptosis, remodelación del citoesqueleto, transporte iónico, metabolismo de drogas y respuesta inmune. La mayoria de las clonas fueron mapeadas a los cromosomas X, 1, 5, 3, 19 y 20. Mediante microarreglos de expresión se analizaron los patrones de expresión de los genes dentro de los amplicones reportados por HGCa y se identificaron algunos genes sobreexpresados en CaCU, entre los cuales esta el gen SKP2 (proteina asociada a cinasa fase S) localizado en el 5p12-13 (61). SKP2 es una F-box proteína y parte del complejo SCF que actua como una ubiquitina ligasa E3 en reguladores del ciclo celular como p21, p27 y ciclina D1. La sobreexpresión de SKP2 ha sido reportada en linfomas, carcinomas colorectales, orales y de próstata. La expresión de SKP2 ha sido relacionada con el grado de malignidad y con un peor pronóstico en carcinomas orales y linfomas (revisado en 62). La amplificación de SKP2 se ha descrito en líneas celulares derivadas de CaCU, y se ha encontrado una correlación entre la expresión del transcrito y la proteína con la amplificación de este gen. La expresión de SKP2 fue también monitoreada en una línea celular derivada de una lesión intraepitelial de bajo grado, la cual exhibe cambios morfológicos progresivos de acuerdo al número de pases, formación de un isocromosoma 5p en el pase 24 y adquicisión de un fenotipo invasor en un pase posterior. La expresión de SKP2 fue analizada en los pases 11 y 20 (antes de la formación del isocromosoma) y en los pases 24, 43 y 60 (despues de la ganancia del 5p), encontrándose un incremento en la expresión de 4 veces en el pase 24, manteniéndose este nivel de expresión en los pases posteriores. SKP2 no se expresa en queratinocitos cervicales normales pero en líneas celulares derivas de CaCU su expresión correlaciona con la amplificación del 5p (62). El incremento en la expresión de SKP2 correlaciona con la expresión reducida de p27. P27 y SKP2 han sido implicados en el desarrollo de metástasis. Se han observado bajos niveles de p27 en muchos tumores y son asociados con la sobreexpresión de SKP2. Estos resultados sugieren que la sobreexpresión de SKP2 está asociada con la amplificación del cromosoma 5p y puede juegar un papel importante en la progresión del tumor. hTERT (la subunidad catalítica de la telomerasa) localizado en el 5p15.33 ha sido también propuesto como un gen candidato, debido al papel que la telomerasa juega en una gran cantidad de neoplasias, sin embargo, Mattwehs et al demostraron que no existe correlación alguna entre la ganancia del cromposoma 5p y el nivel de actividad de la telomerasa (53). La mayoría de los estudios que han utilizado HGCm han revelado que la amplificación en alto número de copias del brazo corto del cromosoma 5p es un evento recurrente durante la progresión de etapas avanzadas del CaCu. Esto sugiere la presencia de genes, que al alterar su número de copias puedan desempeñar algún papel importante para la progresión del CaCU. Gracias a la utilización de la HGC sobre microarreglos en CaCU se han podido definir los genes que son los verdaderos blancos de amplificación, sin embargo hasta el momento solo el gen SKP2 dentro de la región cromosómica 5p ha podido ser identificado. Análisis detallados de las alteraciones en el número de copias del brazo corto del cromosoma 5 han sido realizados en carcinomas de vejiga, pulmón, carcinomas orales de células escamosas y sarcomas (63, 64, 66-68). Coe et al en 2005 elaboraron un arreglo que consiste de 491 clonas que abarca el brazo corto del cromosoma 5 desde la región 5p11 hasta 5p15.33 para analizar 15 líneas celulares derivadas de cáncer de pulmón. Ellos describen además de la ganancia conocida de los genes SKP2 y TERT, la amplificación recurrente de dos clonas, en las cuales se encuentra el gen TRIO (proteína con triple dominios funcionales) y el gen ANKH (ankylosis, progressive homologue) respectivamente y los proponen como nuevos posibles oncogenes (63). Garnis et al, también utilizaron un arreglo con clonas específicas correspondientes al cromosoma 5p, y describen regiones mínimas de amplificación en carcinomas in situ de pulmón, dentro de las cuales identifican 2 genes candidatos para cáncer de pulmón, el gen GNDF (factor neutrófico derivado de una línea celular glial) y el gen TRIO. El gen GNDF es un ligando para el producto del oncogen RET y se expresa normalmente durante el desarrollo del pulmón pero está ausente en la etapa adulta. La reactivación de esta proteína en lesiones tempranas y su amplificación en carcinomas in situ sugieren que este desempeña un rol en la tumorigenesis (64). El producto del gen TRIO es una proteína con tres dominios funcionales que está involucrada en coordinar los rearreglos del citoesqueleto y la matriz celular necesarios para el crecimiento y la migración celular (65). Por otra parte Adamowicz et al, identificaron genes localizados dentro del cromosoma 5p posiblemente involucrados en la progresión tumoral en 34 sarcomas de tejido suave usando arreglos de 418 clonas que representan el 99% del brazo corto del cromosoma 5. En este estudio identifican 4 regiones con amplificación recurrente en alto número de copias y analizan la expresión de los genes localizados dentro de estas regiones, entre los cuales están TERT, TRIO, SKP2, NKD2 y IRX2. De los genes analizados TRIO se encontró sobreexpresado en todos los casos, mientras que IRX2 y NKD2 solo se sobreexpresaron en 30% de los casos. El análisisde expresión de estos genes revela que TRIO, IRX2 y NKD2 son afectados por la amplificación en alto número de copias así como sobre regulados en una manera dependiente de la dosis génica. Estos genes representan blancos de amplificación en sarcomas de tejido suave y pueden jugar un rol importante durante la progresión de la enfermedad (66). En carcinomas orales escamosos, Baldwin et al (67) reportan una ganancia de una región de 0.58 megabases localizada en el 5p15.2, en 45% de los casos, dentro de esta región se encuentra el gen TRIO. En este estudio también analizaron la expresión de TRIO, la cual fue significativamente mas alta en las células cancerosas en comparación con las células normales. En carcinoma de vejiga, Zheng et al, (68) analizan 7 genes localizados en la región 5p15.31-5p15.1 mediante hibridación in situ fluorescente (FISH) usando tumores y líneas celulares con amplificación del cromosoma 5p conocida previamente por HGC. De los 7 genes analizados TRIO se encontró amplificado en un mayor número de casos. La amplificación de este gen fue analizado en 2317 tumores y se encontró asociado fuertemente con un fenotipo invasor, con la etapa del tumor y con proliferación celular rápida. La expresión de RNAm y el número de copias fue evaluado en 59 tumores y se encontró una gran correlación entre la sobreexpresión y la amplificación de TRIO. La fuerte asociación de la amplificación del gen TRIO con la proliferación celular y con etapas avanzadas de la enfermedad sugieren que TRIO puede actuar como un oncogen en tumores de vejiga (68). JUSTIFICACIÓN El Incremento en el número de copias es un mecanismo importante que conlleva a la expresión anormal de oncogenes que pueden ser importantes en el desarrollo y mantenimiento del CaCu. La amplificación de oncogenes es un mecanismo genético involucrado en el desarrollo de muchos tumores sólidos. Además los genes amplificados frecuentemente actúan como marcadores de comportamiento tumoral, pronóstico, respuesta a drogas, y pueden representar blancos para futuras terapias moleculares contra el cáncer. La caracterización detallada de las regiones cromosómicas amplificadas ha facilitado la identificación y caracterización de los genes involucrados en el desarrollo del cáncer. Sin embargo, en la mayoría de las regiones cromosómicas amplificadas en CaCU aún no se conocen oncogenes que puedan contribuir con el desarrollo y progresión de esta neoplasia, sugiriendo que muchos genes blancos de amplificación aún no han sido identificados. La amplificación del brazo corto del cromosoma 5 es un evento recurrente durante la progresión de etapas avanzadas del CaCU, lo cual sugiere la presencia de genes cuya ganancia de función puede ser ventajosa para la progresión hacia etapas avanzadas del CaCU. Varios genes candidatos situados en el cromosoma 5p han sido analizados, sin embargo solo la amplificación del gen Skp2 ha sido involucrada en la progresión del cáncer cérvico uterino. Skp2 parece jugar un papel importante en la adquisición de un fenotipo invasor, ya que puede favorecer el crecimiento de las células tumorales independiente de la adhesión celular. Aunque el papel de Skp2 parece ser importante en la progresión del CaCU, la amplificación de todo el brazo corto del cromosoma 5 sugiere la activación de mas genes los cuales pueden ser relevantes en la patogénesis y progresión del CaCU. Por lo que la identificación de estos genes puede contribuir enormemente a nuestro entendimiento de las bases moleculares del desarrollo del CaCU. OBJETIVO GENERAL: Identificar un gen blanco de amplificación localizado en la región cromosómica 5p como posible marcador asociado a CaCu. OBJETIVOS PARTICULARES: -Identificar in sílico el gen candidato asociado a CaCU -Detección de la amplificación del gen mediante PCR en tiempo real -Identificación del tipo viral presente en las muestras derivadas de CaCU. METODOLOGÍA: IDENTIFICACIÓN DE LAS CLONAS AMPLIFICADAS Salcedo et al (datos no publicados), utilizaron arreglos que consisten de 3200 BACs por triplicado, que representan la mayor parte del genoma, para identificar las alteraciones cromosomicas presentes en 5 líneas celulares derivadas de CaCU. A partir de esos datos generados por HGC sobre microarreglos, se detectaron los cambios en el número de copias de las clonas correspondientes al brazo corto del cromosoma 5 mediante la relación de fluorescencia entre el ADN tumoral y el normal y se determinaron como ganancias aquellas regiones donde la relación fluorescencia T/N sea mayor a 1.25 y como amplificaciones a las regiones con una relación mayor a 2. Para determinar la localización citogenética de las clonas y los genes que representan, se utilizó la base de datos Genome browser (http://genome.ucsc.edu/) de la Universidad de California Santa Cruz (UCSC), que nos permitió mapear las clonas de acuerdo a su localización exacta en el genoma, así como también nos brindó información acerca de los genes conocidos dentro de esa región. Sin embargo, algunas de estas clonas no pudieron ser localizadas por este método, por lo que se utilizó un programa llamado Match Minner que está disponible públicamente (http://discover.nci.nih.gov/matchminer) y que utiliza información de cuatro bases de datos publicas como UCSC, Omim, Unigene, Locus Link y affimetrix, lo cual nos permite obtener información automatizada como localización citogenética, información de los genes, su función, genbank, unigene, etc. Para algunas de las clonas no pudo obtenerse información con respecto a los genes que representan, por lo que se utilizó el programa Map Viewer (http://www.ncbi.nlm.nih.gov/mapview/) del Centro Nacional de Información Biotecnológica (NCBI), el cual nos permite navegar sobre la secuencia del genoma para obtener información acerca de los genes, los transcritos y las clonas que se encuentran en esa región. Una vez obtenida esta información, se utilizaron las herramientas disponibles en la página SOURCE de la Universidad de Stanford (http://genome-www5.stanford.edu/cgi- bin/source/sourceSearch) para determinar las función de dichos genes y las rutas en las que pueden intervenir. SOURCE es una herramienta que de forma dinámica colecta datos derivados de diversas bases de datos científicas y que compila información genética y de biología molecular disponibles acerca de los genes de diversas especies, incluido el ser humano. En base a todo ello se identificó el gen candidato de la región 5p. OBTENCIÓN DE LAS MUESTRAS Se utilizaron 53 carcinomas invasores y 20 lesiones intraepiteliales de alto y bajo grado obtenidas del Departamento de Patología del Hospital General de México y del Departamento de Ginecología Oncológica del Hospital de Oncología del Centro Médico Siglo XXI. Todos los tumores analizados corresponden al tipo histológico epidermoide. Las muestras obtenidas corresponden a tejidos incluidos en parafina, de los cuales se realizaron cortes de 5m y se tiñeron con hematoxilina eosina, con la finalidad de identificar las áreas en donde se encuentra el tejido tumoral o las lesiones. EXTRACCIÓN DE ADN Una vez identificadas las áreas de interés, se obtuvieron cilindros de tumor de 2mm de diámetro mediante una aguja de extracción de médula ósea y se depositaron en un tubo eppendorf de 1.5ml. Los tejidos fueron desparafinados en 150µl de Xilol a 56°C dos veces por 20 minutos, se centrifugaron, decantaron, y finalmente se les adicionó alcohol al 100%, se centrifugaron, se elimino el alcohol y se dejaron secar. El ADN se purificó mediante el kit de extracción Wizard (Promega) siguiendo las recomendaciones del fabricante. Brevemente las muestras fueron digeridas con 200µl de solución de lisis nuclear y 5µl de proteínasa K (20mg/ml) durante 48 horas a 56°C.Posteriormente se les agregó 3µl de RNAsa (10µg/ml), y se incubó durante 30 minutos a 37°C. La proteínas fueron removidas con 200µl de solución precipitadora de proteínas (acetato de amonio), se centrifugó por 3 minutos a 14,000 rpm y el sobrenadante fue transferido a un nuevo tubo con 600µl de isopropanol para precipitar el ADN, finalmente la pastilla se lavó dos veces con etanol al 70% y se resuspendió en 50µl de agua destilada. La calidad del ADN fue analizada en un gel de agarosa al 1% y la concentración del ADN se determinó mediante un espectrofotómetro (nanodrop ND 100). DETECCIÓN DEL VPH La detección de VPH se llevó a cabo mediante PCR utilizando oligonucleótidos específicos que reconocen una secuencia del gen E6 del VPH16 y amplifican una región de 126 pares de bases. La reacción se llevó a cabo en un volumen final de 50µl que contenía MgCl2 2Mm, buffer de PCR 10x, 10mM de cada dNTP, 50 picomoles de oligonucleótido, y 1 unidad de Taq Polimerasa (Promega) la reacción se llevó acabo en 40 ciclos, cada ciclo incluyó 1 minuto de desnaturalización a 94º, la alineación a 40º durante 2 minutos, y finalmente la extensión a 72º durante 1.5 minutos. Se utilizaron 150 ng de ADN genómico como templado en cada reacción; como control positivo se utilizó ADN de la línea celular SIHA (VPH16) y para el control negativo solo se omitió el templado. Las muestras negativas para VPH16 fueron sometidas a otra PCR con los oligonucleótidos GP5/GP6 que reconocen la región L1 de una gran cantidad de tipos virales (11, 16, 18, 30, 31, 33, 35, 39, 40, 43, 45, 51, 52, 54, 55, 56, 58, 59, 66 etc.). Los oligonucleótidos amplifican un producto de 150 pares de bases. La reacción se llevó a cabo en un volumen final de 50µl, la cual contenía MgCl2 3.5mM, buffer de PCR 10X, 10mM de cada dNTP, 50 picomoles de oligonucleótidos, y 1 unidad de Taq Polimerasa (Promega). La reacción consistió de 40 ciclos, cada uno incluyó desnaturalización por 1 minuto a 94ºC, alineación a 40ºC durante 2 minutos, y finalmente la extensión a 72ºC durante 1.5 minutos. Se utilizaron 150 ng de ADN genómico como templado en cada reacción; como control positivo se utilizó ADN de la línea celular SIHA y para el control negativo solo se omitió el templado. Para la visualización, los productos se corrieron en un gel de agarosa al 1.5% teñidos con bromuro de etidio y se visualizaron en un transiluminador de luz U.V EaglyEye 2 (Stratagen). SECUENCIACIÓN Los productos de PCR fueron purificados con el kit Wizard SV Gel and PCR Clean Up System (Promega), el cual remueve nucleótidos no incorporados, oligonucleótidos, y otros residuos, dejando solamente el producto de PCR. Los productos fueron cuantificados mediante un gel de agarosa al 2% con el sistema Low Mass (Fermentas). Posteriormente los productos fueron marcados mediante una reacción de PCR con el kit BigDye Terminator v3 Cycle Sequencing Ready Reacción. La mezcla de reacción se llevó a cabo en un volumen final de 20ml, la cual contenía 0.5 ml del Terminador Ready Mix, 3.2 picomoles del oligonucleótido GP5+ y 3 ng del producto. La reacción de marcaje consistió de un ciclo de desnaturalización a 96ºC por un minuto, seguido de 25 ciclos de desnaturalización a 96ºC por 30 segundos, alineamiento a 55ºC por 10 segundos, y elongación a 60ºC por 4 minutos y finalmente un ciclo de extensión a 72ºC por un minuto. Posteriormente las muestras fueron purificadas con el kit DyeEx (Quiagen), liofilizadas y desnaturalizadas con formamida. La secuenciación se realizó en el secuenciador automático Applied Biosystems 373. Para determinar el tipo viral de las muestras, las secuencias obtenidas fueron comparadas con las secuencias reportadas en el GeneBank mediante el programa BLAST. (http://www.ncbi.nlm.nih.gov/BLAST/) AMPLIFICACIÓN DEL GEN TRIO Para determinar la amplificación del gen TRIO se realizó una cuantificación relativa mediante PCR en tiempo Real utilizando el sistema de oligonucleótidos D-Lux (invitrogen). Este sistema consta de un par de oligonucleótidos, uno de los cuales esta marcado con un fluoróforo en el extremo 3’. El oligonucleótido marcado tiene una secuencia de 4 a 6 nucleótidos en su extremo 5’ que es complementaria a la secuencia del extremo 3’ formando una estructura de tallo y burbuja, cuya configuración evita la emisión de fluorescencia, de manera que cuando el oligonucleótido se incorpora al ADN este efecto es interrumpido resultando en un incremento significativo en la señal de fluorescencia. El diseño de los oligonucleótidos se realizó con el programa D-Lux designer (https://orf.invitrogen.com/lux/); a partir de la secuencia obtenida del ensembl genome browser www.ensemble.org, sin embargo el programa no soporto las 380,000 pares de bases del gen, por lo que se tuvo que partir de una secuencia mas pequeña. El programa de diseño, utiliza el algoritmo de BLAST para identificar secuencias únicas y secuencias compartidas por otros genes, y en base a esto se eligió una parte del gen con regiones únicas, porque los oligonucleótidos diseñados a partir de regiones con un gran número de secuencias compartidas resultaron en oligonucleótidos inespecíficos y que pueden alinearse con una gran cantidad de genes. Una vez obtenida una serie de posibles oligonucleótidos, estos fueron cargados en el programa BLAST para asegurar que fueran específicos para el gen de interés. Los oligonucleótidos se eligieron de acuerdo a su especificidad, contenido de GCs, Tm y al tamaño del amplicon generado. Así mismo, se obtuvieron oligonucleótidos para el gen microglobulina b2 para utilizarlo como gen de referencia y realizar la cuantificación relativa. Ambos oligonucleótidos (TRIO y β2m) fueron marcados con el fluoroforo FAM (6-carboxifluoresceina) La PCR en tiempo real se llevó a cabo en el equipo LightCycler 2.0 de Roche, como control positivo se utilizó una línea celular derivada de CaCU (INBL) la cual tiene » Oesigned LUX'" Primers "" ,' .................................................... -'''';;' "-, '"-- ...... - c_ ... _."'-. r .... __ J r_ .... .,...J ..... "'- __ IIU"' ___ ~~- " ~ _ 1~TTCTT"""""""""ICC<~ " -e """. """"""" "' Te(; TCAT ATIC"C"¡;O""""octt , ~- " ~ _IOlle""""""" ...... ,,,,,,,,, " -""" ."""""'"'" ~ CGlCAI 'TTCAúeG'<.::CocttG """."''''' " ~ _'OTTerr"""""" ...... ,,,,,,,,, " -""". """""",,,u , ~ ICG'CA''''~ ~- " '" _llTIC"G'NXccr""""""" ~-" , '" (.('ATTGM"GTTCr<>Gt.:;e' "0 " -"""."- " ., _"""""""""'C"''''''''"'' " -~--. '" """'rr ......... rrCT""'.:;e' ,,~ • """ .¡., ... " ., _""e""NX=cc..-a " -"""jIImIlO""" '" CArr ......... TTC'<;G'XT. '" e ~~- " '" ~T<;GrrCG<"""T"GA<G " -""".~""" , '" ",eoe",",e_"""""""" e • :-~,_u " ,.,. ~'GNGCG.IG"G''''' ' ""CAT~,,,,"OOG''CTCTCA ., - :::::> amplificado el brazo corto del cromosoma 5, y como control negativo se utilizó agua. La reacción se llevó a cabo en un volumen final de 10ml, que contenía 5ml de QPCR super mix (1.2 Unidades de Taq Polimerasa, Tris-HCL 20mM pH 8.4, KCL 50mM, MgCl2 4mM, 200mM de cada dNTP y 1 Unidad de Uracil ADN Glicosilasa) , 2mM de cada primer y 1 ml BSA (2.5mg). La amplificación de ambos productos (TRIO y β2m) se llevó a cabo mediante el siguiente programa: activación de la enzima UDG 2 min a 50oC, un ciclo de desnaturalización a 95oC por 10 segs, seguido por 45 ciclos de denaturalización 95oC por 10 segs, alineamiento 62oC por 5 segs y extensión 72oC por 10 seg. La adquisición de la fluorescencia se llevo a cabo durante el ciclo de alineamiento. Por último para evaluar la especificidad de la amplificación, se llevó a cabo un ciclo adicional de 95oC, 70oC por 10 segs y finalmente 95oC realizándose la adquisición continua de la fluorescencia en esta ultima temperatura. Todas las muestras fueron analizadas por duplicado y solo se tomaron en cuenta los duplicados conun coeficiente de variación menor a 0.5 Para evaluar la eficiencia de la reacción se construyó una curva de eficiencia con diluciones de un ADN control a 1 ng, 5 ng, 10 ng y 50 ng. La curva se realizó con todas las diluciones por duplicado hasta obtener una eficiencia cercana a 2. El equipo Roche Light cycler mide los cambios de fluorescencia ciclo a ciclo en cada muestra y genera un perfil cinético de la amplificación del ADN en los 45 ciclos de reacción. El número de ciclos en el cual la amplificación entra a la fase exponencial (llamado punto de cruzamiento o CP) fue determinado con ayuda del software del Light cycler version 4.0 y este número fue utilizado como un indicador de la cantidad de ADN blanco en cada tejido; de esta manera, un valor de CP bajo, indica una alta cantidad de ADN inicial. Para la cuantificación relativa se utilizó un gen de referencia con una sola copia (microglobulina β2), de manera que una copia del gen debe ser encontrado en todas las muestras. Para normalizar los resultados finales se utilizó como calibrador ADN de tejido cervical sin alteraciones, en el cual ambos genes TRIO y β2m deben tener igual número de copias ya que las células normales no presentan alteración alguna en dosis génica. Los resultados fueron expresados como la relación TRIO/β2m de cada muestra dividido por la relación TRIO/β2m del calibrador. Los datos generados de la amplificación de TRIO y β2m en las muestras y el calibrador, fueron cargados en el software de cuantificación relativa del Light Cycler, el cual calcula la razón TRIO/β2m automáticamente. Las muestras con una razón TRIO/β2m mayor a 2.00 fueron consideradas positivas para amplificación de TRIO y las muestras con una razón TRIO/β2m menor a 2.00 fueron consideradas negativas para la amplificación de TRIO. La especificidad de la amplificación se evaluó mediante una curva de disociación; de esta manera es posible identificar la temperatura en la que se disocian las cadenas de ADN correspondientes al producto amplificado, esta temperatura es específica de cada fragmento de ADN según su tamaño, esto nos permite identificar la presencia de dímeros o amplificaciones inespecíficas ya que al graficarse se observan varios picos de disociación o un solo pico si se trata de un producto único. El software del sistema LightCycler lleva a cabo automáticamente este proceso construyendo una gráfica de la detección de fluorescencia en función de la temperatura. Tabla 1. oligonucleótidos utilizados Oligonucleótido Secuencia Gen Fragmento Sentido 5’-TTTGTTACTGTGGTAGATACTAC-3’ Antisentido 5’-GAAAAATAAACTGTAAATCATATTC-3’ E6 126 pb Sentido 5’-TTTGTTACTGTGGTAGATACTAC-3’ Antisentido 5’-GAAAAATAAACTGTAAATCATATTC-3’ GPs 150 pb Sentido 5´- CATCAGGGACAGGGAACTCTCA -3´ Antisentido 5’- cgactcAAAGCCTGAACGGAGAGTcG -3’ TRIO 107 pb Sentido 5´ ACATACCTTGGTTGATCCACTT-3´ Antisentido 5- catctgTTGCTCTATACGTGGCAGATG-3´ B2M 68 pb ANÁLISIS ESTADÍSTICO Para determinar si existía alguna relación entre presencia de VPH y amplificación de TRIO se realizaron pruebas de Chi cuadrada con el paquete estadístico SPSS 12.0 para MacOS. Las pruebas fueron consideradas como significantes cuando los valores de P fueron menores a 0.05. RESULTADOS Salcedo et al (datos no publicados), utilizaron arreglos que comprenden todo el genoma para analizar las alteraciones en el número de copias de 5 líneas celulares derivadas de CaCu (HELA, CASKY, INBL, SIHA, VIPA). Las clonas impresas en el arreglo que corresponden al brazo corto del cromosoma 5p son 27 y abarcan desde la región 5p12 hasta la 5p15.33. Para determinar la localización citogenética de las clonas y los genes que representan, se utilizaron los programas Match minner y Genome Browser. La tabla 2 muestra la localización citogenética de cada clona así como los genes que se encuentran dentro de cada región. En la figura 6 se muestra la estrategia seguida para identificar los genes que se encuentran dentro de las clonas que no pudieron ser relacionadas con ningún gen conocido mediante los programas Match Minner y Genome Browser. A través del programa Map Viewer se identificaron los genes que se encuentra dentro de la región correspondiente a cada clona. Figura 6. Estrategia utilizada para la identificación de los genes correspondientes a cada clona. Table 2. Identificación de las clonas y genes que representan Genes Banda Citogenética Clonas RP1-24H17 CRR9, SLC6A3, AYTL2 5p15.33 RP11-94J21 IRX2, CE1 5p15.33 RP11-20B3 5p15.33 RP11-103L11 IRX1 5p15.33 RP11-82M24 RP11-227M19 LOC340094 5p15.32 RP11-58A5 5p15.32 RP11-35K22 MED10 5p15.31 RP11-36H5 ADCY2 5p15.31 RP11-46O23 CMBL, MARCH6, CCT5 5p15.2 RP11-145B1 DAP 5p15.2 RP11-72C10 CTNND2 5p15.2 RP11-29N3 TRIO 5p15.2 CTD-2040C2 LOC402198 5p15.2-5p15.1 RP11-5N8 FBXL7 5p15.1 RP11-135M13 FBXL7 5p15.1 RP11-261B20 MYO10 5p15.1 RP11-260E18 5p15.1 RP11-269º14 LOC285697 5p15.1 RP11-88L18 PDZD2 5p13.3 RP11-5N11 PDZD2, GOLPH3 5p13.3 RP11-67P13 ADAMTS2 5p13.3 RP11-94E6 KIAA1770 5p13.2 RP11-85N3 FLJ23577 5p13.2 RP11-253B9 5p12 RP11-9G14 Mediante la relación de la fluorescencia entre el ADN tumoral y ADN normal se determinaron las clonas que sufren cambios en su número de copias y se determinó que las clonas CTD-2040C2(TRIO), RP1129N3 (CTNND2) y RP1158A5 (LOC340094) estuvieron amplificadas en las 5 líneas celulares analizadas. Una vez conocidos los genes que sufren ganancias en su número de copias, se realizó una búsqueda de las funciones principales de cada gen y de los procesos biológicos en los cuales participan. La mayoría de los genes analizados participan en procesos metabólicos celulares, procesos metabólicos de macromoléculas, comunicación celular y adhesión celular principalmente. También se encontraron genes que participan en la organización de la matriz extracelular y apoptosis. (Tabla 3) De los genes analizados solo 3 han sido asociados con el desarrollo de cáncer; el gen PDZD2 cuyas funciones aún no son bien conocidas, puede participar en etapas tempranas de la tumorigénesis en próstata (69); sin embargo, en un estudio más reciente se demostró que PDZD2 ejerce efectos antiproliferativos en células cancerosas de próstata y puede disparar apoptosis independiente de p53 (70). Por tal motivo, PDZD2 puede funcionar como un supresor de crecimiento para las células cancerosas de próstata en lugar de actuar como un oncogen que favorezca el desarrollo tumoral. El gen ADAMTS12 codifica una proteína involucrada en la regulación de la adhesión celular, y puede jugar un rol en células pulmonarias durante el desarrollo fetal o en procesos tumorales a través de su actividad proteolítica. Por último el gen TRIO que ha sido involucrado con los procesos de remodelación del citoesqueleto y la matriz extracelular necesarios para el crecimiento y migración celular y ha sido considerado un oncogen en carcinomas de vejiga. Tabla 3.- Principales funciones de los genes presentes en el arreglo. Gen Simbol Nombre Función Proceso Biológicos Asociado con enfermedad CRR9 Proteína relacionada a resistencia a cisplantino Asociado con la apoptosis mediada por cisplantin Ciclo celular y apoptosis SLC6A3 Familia de transportador de solutos 6 (transportador de neurotransmisor, dopamina) miembro 3 Transportador. Termina la acción de dopamina por su alta afinidad a la reabsorción dependiente de sodio dentro de las terminales presinápticas. Es un blanco de estimulantes psicomotores como anfetamina y cocaína. Transporte de neurotransmisor Déficit de atención, trastorno bipolar y otros desordenes psiquiátricos. AYTL2 Como acetiltransfersa2 Respiración. Sintetiza fosfatidilcolina en pulmón. Desarrollo de músculo IRX2 Proteína iroquois homeobox 2 Juega múltiples roles durante la formación de embriones vertebrados. Regulación de la Transcripción IRX1 Proteína iroquois homeobox 1 Desarrollo embrionario, incluyendo regiones específicas del sistema nervioso central Regulación de la Transcripción CEI Expresión coordinada al gen homeobox IRXA2 - - ADCY2 Adenilate ciclasa 2 Involucrada en la Biosíntesis de AMPc, Cascada de señalización intracelular. Biosíntesis de nucleótidos cíclicos CMBL Homólogo de Carboxymetileno butenolidasa - - MARCH6 Dedos de aro asociados a membrana (C3HC4) 6 Actividad de proteína ubiquitina ligasa Proteolisis dependiente de ubiquitina CCT5 chaperonina que contiene TCP1, subunidad 5 Juega un rol en el plegamiento de actina y tubulina Plegamiento de proteínas DAP Proteína asociada a muerte Mediador positivo de apoptosis. Ciclo celular y apoptosis CTNND2 Catenina (Proteína asociada a caderina), delta 2 (proteína con brazos repetidos relacionada con plakofolina neural) Involucrado en la organización molecular de uniones sinápticas Regula moléculas de adhesión. Adhesión Celular Transducción de señales Desarrollo Adhesión de neuronas TRIO Tres dominios funcionales Migración celular Promueve el intercambio de GDP por GTP Coordina los rearreglos de la matriz extracelular y el cito esqueleto necesarios para la migración celular y crecimiento Comunicación celular Fosforilación Amplificación en sarcomas y carcinoma de vejiga. Rol en tumorigenesis. FBXL7 Proteína con caja F y repeticiones ricos en leucina 7 Involucrada en reconocimiento del sustrato para la degradación dependiente de ubiquitina Elemento de respuesta requerido para la interpretación o generación de señales que conducen a la represión de glucosa Proteólisis dependiente de ubiquitina MYO10 Miosina X Unión a actina Actividad motora Transducción de señales PDZD2 Proteína que contiene dominios PDZ 2 Unión al C Terminal de receptores transmembranales o canales iónicos Señalización intracelular Sobreexpresa- do en próstata. Puede participar en etapas tempranas de la tumorigénesis. GOLPH3 Golgi fosfoproteína 3 Juega un rol regulador en el trafico de golgi Transporte Trafico celular ADAMTS12 Metaloproteasa y desintegrina con motivos trombospondina tipo 1 Enzima procesadora de procolageno I y aminopéptido II. Regulación de adhesión celular Degradación de proteínas Modificación post-traduccional de proteínas Ampliamente expresado en carcinomas gástricos. Puede jugar un rol en procesos tumorales por su actividad proteolítica El gen TRIO consiste de 58 exones los cuales están distribuidos en una región de 380kb en el cromosoma 5p15.2 (71). El gen codifica para una proteína que comprende dominios parecidos a espectrina, dos dominios de factor de intercambio de guaninas (GEF) y un dominio cinasa serina/treonina. Los factores de intercambio de guaninas (GEF) activan a las GTPasas acelerando el intercambio de GDP por GTP. Uno de los dominios (GEFD1) activa a RhoG y a Rac, mientras que el otro (GEFD2) activa a RhoA. (72). Las GTPasas de la familia Rho tienen diferentes efectos en la estructura y función celular; dependiendo del tipo celular estas GTPasas pueden inducir protrusiones particulares de la superficie generadas por reacciones de remodelación de actina que cambian la forma de la célula e influencian la adhesión y locomoción celular (73, 74). GTPasas de la familia Rho también afectan el ciclo celular y la transcripción génica, y participan como intermediarios en la transformación maligna causada por mutantes Ras (75). Todos los factores de intercambio de guaninas que activan a GTPasas de la familia Rho incluyendo a TRIO, comparten el dominio DH, el cual es una región catalítica de la proteína que es responsable de la actividad de intercambio de guaninas, y el dominio PH que es responsable de la localización subcelular de la proteína. Mediante su dominio PH TRIO puede interactuar con el extremo C- terminal de filamina A y mediante esta interacción puede participar en la remodelación del citoesqueleto (76). TRIO se expresa normalmente en una gran variedad de tejidos; principalmente en corazón, músculo esquelético, cerebro, páncreas, placenta, riñón, hígado y pulmón. La amplificación de TRIO ha sido asociada con crecimiento tumoral y proliferación celular en carcinoma de vejiga (68). TRIO también se ha encontrado amplificado en carcinomas de pulmón y sarcomas (63,64,66). En base a que TRIO parece jugar un papel importante en el desarrollo tumoral y a que este gen es blanco de amplificación en líneas celulares derivadas de Cáncer Cervico- uterino, se decidió realizar un análisis para conocer el estatus del gen en carcinomas escamosos del cérvix y en lesiones premalignas. Para este propósito se obtuvieron y procesaron 53 carcinomas cervicales y 20 lesiones premalignas incluidas en parafina, de las cuales se extrajo el ADN y se corrió en un gel de agarosa al 1%. El ADN obtenido de las muestras se encuentra degradado, como se observa en la figura 7. El ADN obtenido de tejidos embebidos en parafina no es muy útil para ciertas metodologías en donde se requiere ADN de alto peso molecular, sin embargo, este ADN aunque se encuentra degradado por el efecto de los fijadores, es muy útil cuando se realizan análisis de PCR en tiempo real y se pueden obtener excelentes resultados (77), además de que los tejidos embebidos en parafina representan una manera fácil y óptima de obtener ADN proveniente de células tumorales en su mayoría. Figura 7.- ADN extraído a partir de tejidos embebidos en parafina Una vez obtenido el ADN de todas las muestras, se realizó una PCR con oligonucleótidos específicos para VPH16 y se encontró un 40% de muestras positivas para este tipo viral (figura 8). Figura 8. Amplificación del Virus de Papiloma Humano tipo 16 Las muestras negativas para VPH16 fueron sometidas a otra PCR con oligonucleótidos que reconocen la región L1 de un gran número de tipos virales (figura 9). 85% de los tumores, 57% de las LIEBG y 83% de las LIEAG fueron positivos para VPH (Figura 10). 126pb C+ C- 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 Figura 9. Amplificación del Virus de Papiloma Humano con oligonucleótidos Gps Figura 10. Prevalencia de VPH en tumores y lesiones premalignas. Las muestras positivas fueron purificadas y secuenciadas, en la figura 10 se muestra un ejemplo del resultado de la secuenciación del fragmento de PCR del gen L1 de VPH. Posteriormente, para determinar el tipo viral, las secuencias fueron comparadas con las ya reportadas en el genebank mediante el programa BLAST. Figura 10. Electroferograma de la secuencia de un fragmento del gen L1 de VPH16 C- C+ 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 M 11 12 13 14 15 16 17 18 19 150pb Los tipos virales mas frecuentes encontrados en los tumores fueron el VPH16 (70%), VPH31 (9%) y VPH11 (7%), también se encontraron VPH18, VPH45, VPH39 y VPH58 en menor frecuencia. Grafica 2. Tipos de VPH detectados en carcinomas invasores. En lesiones premalignas los tipos virales encontrados fueron VPH16(50%), VPH58(20%), VPH18(10%) VPH33(10%), VPH11 (10%). Grafica 3. Tipos de VPH encontrados en lesiones premalignas. 9% 10% .~ ", I , ' , . VPH16 . VPH31 VPHll . VPH18 . VPH45 . VPH39 . VPH58 . VPH16 . VPH58 50% VPH18 . VPH33 . VPHll Para detectar la amplificación del gen TRIO se utilizaron oligonucleótidos D-Lux específicosque amplifican un fragmento de 107 pares de bases. Los oligonucleótidos se alinean en uno de los intrones del gen, el fragmento amplificado corresponde a una región que va desde el nucleótido 339,570 al 339, 677. Para realizar la cuantificación relativa se utilizaron oligonucleótidos que amplifican un fragmento de 68 pares de bases del gen microglobulina β2. En la figura 11 se observa una curva de eficiencia realizada con diluciones seriales de un ADN con concentración conocida. Se realizaron dos curvas de eficiencia, una para el gen TRIO y otra para el gen β2m, en ambos casos la eficiencia fue cercana a 2, este valor indica que en cada ciclo se duplica la cantidad de producto durante la reacción, por lo que las reacciones tuvieron una buena eficiencia. Figura 11. Curva de eficiencia con diluciones seriales de ADN Se realizó un análisis de curvas de disociación para ambos productos (TRIO y b2m), en este análisis se identificó la temperatura a la cual el producto de doble cadena se disocia en ADN de cadena sencilla. En las figuras 12 y 13 se muestran curvas de disociación para el gen TRIO, en la primera reacción se observan dos picos, uno que corresponde probablemente a dímeros de oligonucleótidos y el otro correspondiente al producto amplificado (T=87). En la segunda curva se observa solo un pico específico 50ng 5ng 1ng del producto amplificado del gen TRIO. En ambas reacciones se utilizaron las mismas condiciones, a diferencia que en la segunda reacción se utilizó una concentración menor de cada oligonucleótido. Debido a que la La Debido a que la presencia de dímeros de oligonucleótidos disminuye la eficiencia de la reacción y obscurece el análisis y determinación del punto de cruzamiento (CP), todas las reacciones de PCR en tiempo real se realizaron con 2mM de cada oligonucleótido a la cual no se forman dímeros de oligonucleótidos. El gen TRIO se encontró amplificado en 66% (35/53) de los tumores analizados; sin embargo, este porcentaje se eleva al tomar en cuenta solo las muestras infectadas con algún tipo de VPH (73% 33/45); con respecto a las muestras negativas para VPH, TRIO solo se encontró amplificado en el 25% de los tumores (2/8). El análisis estadístico mostró que existe una relación dependiente entre presencia de VPH y amplificación del gen en los tumores analizados. En cuanto a las lesiones intraepiteliales de bajo y alto grado, ninguna presentó amplificación del gen (Grafica 4). Figura 13.- Curva de disociación utilizando una concentración de 2mM de cada oligonucleótido. Grafica 4.- Amplificación del gen TRIO en tumores y lesiones premalignas También se realizaron pruebas estadísticas para determinar si existía una relación entre el tipo viral y amplificación del gen, sin embargo no se encontraron diferencias significativas (P > 0.05). En la figura 14 y 15 se muestran las amplificaciones del gen TRIO y β2m en 7 tumores y un tejido normal. En ambas reacciones se utilizaron 25ng de ADN geonómico. En la figura 14 se puede observar que todos los tumores tienen CPs menores al CP del genoma normal, lo cual indica que hay un mayor número de copias del gen en el genoma tumoral y por lo tanto son requeridos menos ciclos para alcanzar la fase exponencial. En la figura 15 se observa que los tumores analizados tienen CPs similares. 35 30 25 20 15 10 5 O ~----~------~----~------~------r Tumores Tumores Tumores LIEBG LIEAG VPH+ VPH- . Trio amplificado • Trio normal La figura 16 muestra la amplificación del gen TRIO en tumores y lesiones premalignas. En esta gráfica se observa que las lesiones tienen CPs muy similares al del genoma normal, además de que los CPs de las lesiones premalignas son mayores que los CPs de los tumores analizados lo cual indica que hay menor número de copias del gen en las lesiones y por lo tanto se requieren mas ciclos para alcanzar el umbral de detección. Figura 14. Amplificación de TRIO en carcinomas cervicales. Figura 15. Amplificación de β2m en carcinomas cervicales. Figura 16. Amplificación de TRIO en tumores y lesiones premalignas. DISCUSIÓN La amplificación del brazo corto del cromosoma 5 ha sido reportada en varios tipos de tumores y es un evento recurrente durante la progresión del cáncer cervico uterino. Alteraciones dentro de la región cromosómica 5p fueron primero descritas mediante el uso de técnicas de citogenética clásica, observaron pequeños cromosomas metacéntricos en metafases de carcinomas cervicales, los cuales corresponden a isocromosomas del 5p (34-37). Posteriormente, estudios empleando HGC describieron alteraciones en esta región y la mayoría coinciden en que la ganancia del cromosoma 5p es observada solo en etapas avanzadas de la enfermedad (44, 47, 52, 53). A pesar de la innegable utilidad de estas técnicas, su limitada resolución solo ha permitido describir alteraciones a nivel de bandas cromosómicas y aún no se han identificado los genes blancos de amplificación. Mediante HGC sobre microarreglos se han podido definir alteraciones específicas identificándose los genes que se amplifican frecuentemente en una gran variedad de tumores; en cérvix solo existen tres reportes que han empleado esta plataforma para describir alteraciones específicas de esta neoplasia, y hasta el momento solo se ha logrado identificar al gen SKP2(5p13); SKP2 es una proteína que actúa como ubiquitin ligasa en proteínas reguladoras del ciclo celular como p21, p27 y ciclina D1 (78x). Numerosos estudios describen la amplificación del gen SKP2 en un gran número de tumores y han encontrado una relación entre la sobrexpresión de este gen con el grado de malignidad y con un pobre pronóstico (79-81), esto sugiere que la amplificación de SKP2 puede jugar un papel importante en la progresión tumoral. Pese a que ya se ha demostrado que hay alteraciones en el número de copias del gen SKP2 en tumores derivados del cérvix, la amplificación de todo el brazo corto del cromosoma 5 sugiere la presencia de mas de un gen cuya amplificación puede ser importante en el desarrollo o progresión del CaCU. En este trabajo se analizaron los resultados obtenidos mediante HGC sobre microarreglos aplicada a 5 líneas celulares derivadas de CaCU con la finalidad de identificar un gen blanco de amplificación dentro de la región cromosómica 5p cuya función pueda jugar un rol importante para la progresión del CaCu. A partir de estos datos, se identificaron 3 clonas (CTD-2040C2-TRIO, RP1129N3-CTNND2 y RP1158A5-LOC340094) que están amplificadas en las 5 líneas celulares; con respecto al gen SKP2 no obtuvimos ninguna información ya que este no se encuentra dentro de las regiones del arreglo; el componente de la telomerasa (hTERT) que también ha sido involucrado en la tumorigénesis, tampoco se encuentra en el arreglo, sin embargo Dowen et al consideran que la actividad de hTERT no esta relacionada con la amplificación del cromosoma 5p (62). De los genes analizados dentro del arreglo, la mayoria participa en procesos importantes para la progresión tumoral, como la adhesión celular, comunicación celular, organización de la matriz extracelular etc (82), sin embargo de todos los genes presentes en el arreglo, solo 3 han sido relacionados directamente con algún tipo de cáncer; el gen PDZD2 que participa en etapas tempranas de la tumorogenesis en próstata, el gen ADAMTS12 involucrado en cáncer de pulgmón y el gen TRIO involucrado en cáncer de vejiga, pulmón, sarcomas, carcinomas orales (63, 64, 66-68). El gen TRIO no ha sido aún implicado en el desarrollo y/o progresión del cáncer cérvico uterino, este es el primer trabajo en el que se reporta la amplificación
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