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Artículo científico ISSN:2007-9559 Revista Mexicana de Agroecosistemas Vol. 8 (1) 59-67, 2021 Recibido: 19-marzo-2021 Aceptado: 21-mayo-2021 59 VARIACIÓN ESTACIONAL EN LA ACTIVIDAD OVÁRICA DE YEGUAS SACRIFICADAS EN UN RASTRO TIF DE ZACATECAS [SEASONAL VARIATION OF OVARIAN ACTIVITY IN MARES SLAUGHTERED IN A FEDERAL TYPE INSPECTION ABBATOIR IN ZACATECAS, MEXICO] Zimri Cortes-Vidauri1, Carlos Fernando Aréchiga-Flores1§, Marco Antonio López-Carlos1, Pedro Hernández-Briano1, Melba Rincón-Delgado1, Claudia E. Valdez-Miramontes1 1Unidad Académica de Medicina Veterinaria y Zootecnia. Universidad Autónoma de Zacatecas. Carretera Panamericana km 31.5 tramo Zacatecas-Fresnillo, Gral. Enrique Estrada, 98560, Zacatecas, México. Autor para correspondencia: (arechiga.uaz@gmail.com). RESUMEN El propósito del presente trabajo fue evaluar la presencia y tamaño de las estructuras ováricas de yeguas sacrificadas en un rastro Tipo Inspección Federal (TIF), como un indicador del patrón de estacionalidad reproductiva en el altiplano zacatecano de México [Latitud: 23.05, Longitud: -102.77]. Los ovarios fueron recolectados durante los meses de febrero a noviembre, registrando el número y tamaño de las estructuras ováricas (n=2,350) presentes: folículos (FOL) y/o cuerpos lúteos (CL). Se obtuvo un efecto significativo de la estación del año sobre el número, tamaño promedio y tamaño máximo folicular (P<0.0001). Sin embargo, el número y tamaño de los CL no presentó diferencias entre estación del año (P>0.05). Se encontró un mayor número de folículos en primavera-verano en comparación a otoño-invierno (P<0.0001). Durante el verano los folículos presentaron mayor tamaño y durante el otoño el menor tamaño (18.6 vs. 6.45 mm). En conclusión, se encontró una marcada estacionalidad en la actividad ovárica de las yeguas sacrificadas en un rastro TIF localizado en el altiplano del estado de Zacatecas, con mayor actividad folicular y lútea durante primavera y verano en comparación a otoño e invierno. En la latitud del altiplano (23°N), la actividad folicular parece iniciarse desde el mes de febrero. Palabras clave: cuerpo lúteo, estacionalidad reproductiva, folículo, ovarios, yegua. ABSTRACT The purpose of this work was to evaluate the presence and size of the ovarian structures of mares harvested in a TIF (Federal-Type Inspection) abattoir, as an indicator of the reproductive seasonality pattern in the highlands of Zacatecas, Mexico [Latitude: 23.05, Longitude: -102.77]. The ovaries were collected during the months of february to november, recording size and number of ovarian structures (n = 2,350) such as follicles (FOL) and/or corpora lutea (CL). A significant effect of season of the year (spring, summer, autumn y winter) was obtained on the number, average size, and maximum size of the follicles (P <0.0001). However, the number and size of the ovarian corpus luteum did not show differences between seasons of the year (P> 0.05). A greater number of follicles was found in spring-summer compared to autumn-winter (P <0.0001). During the summer, the follicles had the largest size and the smallest size during fall (18.6 vs. 6.45 mm). In conclusion, a marked seasonality was found in the ovarian activity of the mares harvested in a TIF abattoir located in the highlands of the state of Zacatecas, with greater follicular and luteal activity during spring and summer compared to autumn and winter. At the latitude of the highlands (23 ° N), the follicular activity seems to start since February, before spring initiation Index words: corpus luteum, seasonal reproduction, follicle, ovaries, mare. Artículo científico ISSN:2007-9559 Revista Mexicana de Agroecosistemas Vol. 8 (1) 59-67, 2021 60 INTRODUCCIÓN Las yeguas son hembras poliéstricas estacionales desde el punto de vista reproductivo, debido a que presentan actividad reproductiva durante la primavera y verano mediante la influencia de un fotoperiodo largo (es decir, la presencia de varias horas luz/día). La estacionalidad reproductiva está regulada en la yegua por el fotoperiodo, aunque puede verse influenciada por la disponibilidad de alimento y la temperatura ambiental (Guerin y Wang, 1994; Fitzgerald y McManus, 2000; Nagy et al., 2000; Donadeu y Watson, 2007; Cortés-Vidauri et al., 2018), así como por algunas alteraciones y/o enfermedades (Arthur, 1969; Hughes et al., 1980). Así pues, el fotoperiodo se convierte en una señal ambiental que regula la secreción de la hormona melatonina por parte de la glándula pineal (Freedman et al., 1979; Ginther, 1992; Sharp, 1998; Williams et al., 2012). La melatonina se incrementa durante la fase de obscuridad, reduciendo o inhibiendo la liberación de GnRH por parte del hipotálamo, generando así un periodo de ausencia de actividad reproductiva o anestro estacional (Fitzgerald et al., 2002). En la yegua, los días cortos (otoño e invierno), se asocian a la caída en la secreción de gonadotropinas y a la consecuente disminución en la actividad ovárica y por ende ausencia de ciclicidad estral (Fitzgerald et al., 2002; Cortés-Vidauri et al., 2018; Ginther et al., 2018). En México el fotoperiodo largo se presenta durante las estaciones de primavera y verano (Saltiel-Cohen et al., 1982; Vázquez-Dueñas et al., 2004; López-Pérez et al., 2010; Cortés-Vidauri et al., 2018). La estación reproductiva inicia con el desarrollo de folículos durante el ciclo estral (Espinoza- Villavicencio et al., 2007; Ginther et al., 2018). Durante el invierno la incidencia de ovulaciones es mínima o ausente (Irvine et al., 2000; Oberhaus y Paccamonti, 2013), incrementándose paulatinamente durante la primavera y alcanzando su máximo en el verano, disminuyendo durante el otoño, aunque algunas yeguas son capaces de mostrar una estacionalidad mínima o nula estacionalidad (Ginther et al., 2018), principalmente si se encuentran cerca de la línea ecuatorial (Carranza et al., 2017; Borja et al., 2019). El propósito del presente trabajo fue evaluar la presencia y tamaño de estructuras ováricas de yeguas sacrificadas en rastro TIF, como un indicador del patrón de estacionalidad reproductiva en el altiplano zacatecano de México [Latitud: 23.05; Longitud: -102.77]. MATERIAL Y MÉTODOS Se recolectaron los ovarios (n=599) de yeguas sacrificadas en un rastro TIF de la comunidad de Gral. Félix U. Gómez, en el municipio de Gral. Enrique Estrada, Zacatecas, México, localizado en el altiplano zacatecano a una altura de 2,150 m sobre el nivel del mar [Latitud: 23.05; Longitud: -102.77]. Se analizó in situ post morten la presencia de estructuras ováricas (n=2,350) en los ovarios de yeguas sacrificadas en la planta de sacrificio equino. El análisis incluyó los meses de febrero a noviembre. Se determinó la variación estacional de la función reproductiva de las yeguas al evaluar el número y tamaño de las estructuras ováricas presentes, folículo ovárico (FOL) y/o cuerpo lúteo (CL). Los folículos fueron clasificados en chicos (10 a 15 mm), medianos (15 a 30 mm), y grandes (mayores a 30 mm) al medirse con un calibrador digital 6” Vernier; los cuerpos lúteos se clasificaron en chicos y grandes (Saltiel et al., 1982; Espinoza-Villavicencio et al., 2007). Los datos fueron analizados bajo un diseño completamente al azar considerando el efecto de estación climática (primavera, verano, otoño e invierno) y el efecto de mes utilizando el procedimiento GLM (Modelos Generales Lineales) del paquete estadístico SAS (SAS, 2010). Cuando se detectaron diferencias significativas para los efectos considerados, se establecieron las diferencias entre tratamientos mediante la prueba de Duncan (Steel y Torrie, 1996). Las proporciones de las categorías de tamaño en CL y FOL fueron analizadas mediante prueba de Chi-cuadrada o prueba exacta de Fisher (Steel y Torrie, 1996). Artículo científicoISSN:2007-9559 Revista Mexicana de Agroecosistemas Vol. 8 (1) 59-67, 2021 61 RESULTADOS Y DISCUSIÓN Se determinó un efecto significativo (P<0.0001) de estación del año (primavera, verano, otoño e invierno) sobre el número, tamaño promedio y tamaño máximo de los folículos (Cuadro 1) de las yeguas sacrificadas en un rastro TIF del altiplano Zacatecano [Latitud: 23.05; Longitud: -102.77]. Cuadro 1. Estacionalidad de la actividad ovárica (media + D.E.) de yeguas sacrificadas en un rastro TIF del Altiplano en Zacatecas, México. Estación del año n Número de folículos Tamaño folicular promedio Tamaño folicular máximo Primavera 232 4.3 + 2.6 b 10.0 + 5.6 b 14.2 + 9.0 b Verano 157 3.6 + 1.6 c 12.4 + 8.9 a 18.6 + 13.3 a Otoño 58 3.0 + 1.4 d 4.3 + 3.2 c 6.5 + 5.7 c Invierno 133 5.5 + 2.6 a 11.7 + 4.4 a 17.8 + 7.7 a abc Literales diferentes en la misma columna indican diferencias entre tratamientos (P<0.05). En el cuadro 2 se muestra que durante el verano los folículos presentaron mayor tamaño mientras que durante el otoño se observó el menor tamaño (18.6 vs. 6.45 mm). Desde el invierno se detectaron folículos grandes, sugiriendo que la estacionalidad reproductiva inicia antes en estas latitudes y/o no es tan marcada dicha estacionalidad, debido presumiblemente a la gran variación en cuanto a la condición corporal y/o la procedencia de las yeguas sacrificadas en ese tipo de establecimiento (yeguas provenientes de México, E.U.A. y Canadá). Cuadro 2. Efecto de la estación del año sobre el tamaño de los folículos ováricos de yeguas sacrificadas en un rastro TIF del Altiplano en Zacatecas, México. Estación del año† Folículos grandes Folículos medianos Folículos chicos Total P< ‡ Primavera 8.2 (19) 26.7 (62) 65.1 (151) 100 (232) 0.0001 Verano 28.0 (44) 28.0 (44) 44.0 (69) 100 (157) 0.0187 Otoño - - - 10.3 (6) 89.7(52) 100 (58) 0.0001 Invierno 7.5 (10) 57.1 (76) 35.3 (47) 100 (133) 0.0001 Total 12.6 (73) 32.4 (188) 55 (319) 100 (580) 0.0001 Los folículos fueron clasificados en chicos (10 a 15 mm), medianos (15 a 30 mm) y grandes (mayores a 30 mm) † No se observaron folículos grandes en la estación invernal. ‡ Prueba de Chi-cuadrado para proporciones iguales. El tamaño de los cuerpos lúteos ováricos no presentó diferencias entre estación del año (P=0.8154). Sin embargo, se observó un mayor porcentaje de CL con respecto al total del año en primavera, seguido de verano y menor en el otoño (P<0.05). El mayor (P<0.05) número de cuerpos lúteos se encontró durante el otoño y fue menor en las estaciones de primavera y verano (Cuadro 3). Al considerar el mes del año se encontró un efecto significativo de mes sobre el número total y el tamaño de los folículos ováricos (P<0.001). El mayor número total de folículos ováricos se obtuvo durante los meses de febrero a mayo; sin embargo, el tamaño máximo de los folículos se obtuvo en los meses de julio y agosto, observándose una reducción drástica del tamaño durante los meses de septiembre a noviembre (Cuadro 4). Artículo científico ISSN:2007-9559 Revista Mexicana de Agroecosistemas Vol. 8 (1) 59-67, 2021 62 Cuadro 3. Efecto de la estación sobre el número, tamaño y localización de los cuerpos lúteos en los ovarios de yeguas sacrificadas en un rastro TIF del Altiplano en Zacatecas, México. Estación del año† Porcentaje total de cuerpos lúteos (% total de CL´s) (Frecuencia) No. de CL (media + d.e.) Tamaño de CL (media + d.e) Primavera 64.9 (50) 1.1 + 0.3 b 19.7 + 6.6 Verano 32.5(25) 1.0 + 0.2 b 20.6 + 5.1 Otoño 2.6 (2) 1.5 + 0.7 a 21.1 + 11.3 Valor de P 0.0378 <0.05 0.8154 CL= Cuerpo lúteo abc Literales diferentes en la misma columna indican diferencias entre tratamientos (P<0.05). † No se observaron CL’s en la estación invernal. ‡ Valor de P para prueba exacta de Fisher. Cuadro 4. Efecto del mes del año sobre el número y tamaño folicular en los ovarios de yeguas sacrificadas en un rastro TIF del Altiplano en Zacatecas, México. Mes n Número total de folículos ováricos (media + d.e.) Tamaño máximo folicular (media + d.e.) Febrero 99 5.9 + 2.5 a 19.8 + 7.0 bc Marzo 60 4.9 + 3.0 b 12.6 + 7.3 e Abril 71 4.3 + 2.9 bc 14.6 + 7.7 de Mayo 106 4.0 + 2.3 bcd 17.0 + 10.6 cd Junio 94 4.0 + 2.3 bcd 24.0 + 8.7 ab Julio 45 3.7 + 1.9 cd 27.8 + 9.7 a Agosto 54 3.2 + 1.3 cd 21.4 + 11.9 b Septiembre 42 4.0 + 1.5 bcd 8.1 + 7.6 f Octubre 40 3.0 + 1.3 d 7.1 + 6.0 f Noviembre 12 2.0 + 0.0 e 3.2 + 1.1 g abcdefg Literales diferentes en la misma columna indican diferencias entre tratamientos (P<0.05). Además, el mes del año no afectó (P<0.81540) el tamaño de CL, pero tuvo efecto (P>0.05) sobre el número promedio de CL observados, con un número menor en los meses de estación reproductiva y mayor hacia los meses de septiembre y octubre (Cuadro 5). Estudios previos realizados en el Sur de México (15ºN– 22ºN), encontraron un patrón de ovulación estacional similar, en donde en los meses de enero y febrero se encontraron ovulaciones en el 10% de los casos y casi 100% en los meses de Julio y Agosto (Saltiel et al., 1982). Otros estudios realizados en Venezuela con una variación en la latitud y horas luz por día (10° N y un máximo de 12 h y 46 min en el día más largo) también han demostrado la estacionalidad reproductiva, a pesar de localizarse cercanos al Ecuador (Quintero et al., 1995; 2000; Vilhanová et al., 2021). Aunque se ha reportado que yeguas cercanas a la línea ecuatorial ciclan prácticamente todo el año (Carranza et al., 2017). Así mismo, estudios realizados por Ginther et al. (2018), mencionan que la actividad folicular del ciclo estral es mayor durante la primera mitad de la temporada reproductiva, como lo indica la presencia de un mayor número de folículos medianos (≥ 20 mm), y de mayor diámetro folicular. Sin embargo, en el presente estudio, se encontró una mayor cantidad de folículos grandes en verano en comparación a la primavera. Artículo científico ISSN:2007-9559 Revista Mexicana de Agroecosistemas Vol. 8 (1) 59-67, 2021 63 Cuadro 5. Efecto de mes del año en el número, tamaño y localización de los cuerpos lúteos en los ovarios de yeguas sacrificadas en un rastro TIF del Altiplano en Zacatecas, México. Mes N No. de CL (media + d.e.) Tamaño de CL (media + d.e.) Abril 11 1.1 + 0.0 b 15.1 + 3.3 Mayo 39 1.1 + 0.3 b 21.1 + 6.8 Junio 13 1.0 + 0.0 b 20.2 + 5.0 Julio 11 1.0 + 0.0 b 21.1 + 5.0 Agosto 8 1.1 + 0.0 b 21.5 + 6.3 Septiembre 4 1.2 + 0.5 ab 20.5 + 3.3 Octubre 2 1.5 + 0.7 a 21.5 + 11.3 CL= Cuerpo lúteo abc Literales diferentes en la misma columna indican diferencias entre tratamientos (P<0.05). † No se observaron CL’s en la estación invernal. ‡ Valor de P para prueba exacta de Fisher. Las yeguas se reproducen en forma estacional con fotoperiodo alto (muchas horas luz/día ò primavera- verano), y así presentan sus partos en la temporada más adecuada para la supervivencia de su descendencia (Bronson y Heideman, 1994; Escobar, 1997). La actividad folicular de las yeguas se interrumpe durante los meses de fotoperiodo (otoño e invierno) y se le denomina la estación anovulatoria. Conforme se van incrementando las horas luz durante el día, el número y diámetro promedio de los folículos se va incrementando durante 2 o 3 meses (periodo transicional), hasta que ocurre la ovulación. Igualmente, se incrementa la angiogénesis y cantidad de fluido folicular y presencia de hormonas en dicho fluido (Meinecke et al., 1987; Müller et al., 2009). Durante el periodo transicional, los folículos crecen y decrecen secuencialmente (Ginther, 1979). Durante el ciclo estral, el folículo de mayor diámetro presenta un perfil promedio unimodal al evaluarlo por ultrasonido (Pierson y Ginther, 1987), y por ello el diámetro folicular es muy importante en la maduración folicular (Gastal et al.,1997). Sin embargo, pueden aparecer folículos preovulatorios grandes y en ocasiones hasta una ovulación durante la primera mitad del diestro (Stabenfeldt et al., 1972; Vandeplassche et al., 1979), indicando que la actividad folicular sustancial puede en ocasiones ocurrir durante la primera parte del ciclo estral, antes de la actividad ovárica que da origen al folículo ovulatorio (Ginther, 1990; 1992; Ginther et al., 2004, 2018). En el presente estudio se encontraron folículos durante el mes de febrero, es decir un mes antes de iniciar la primavera o temporada reproductiva, lo que pudiera indicar una ampliación de la temporada reproductiva en las yeguas adaptadas al altiplano mexicano. Sin embargo, una variante en el presente estudio es que en esos rastros sacrifican yeguas provenientes de Canadá, Estados Unidos y Centro-Norte de México, y pudieran existir yeguas con un patrón de actividad reproductiva totalmente diferente por provenir de lugares diferentes y con fotoperiodos diferentes (Boeta el al., 2006; Pérez et al., 2010). El efecto del fotoperiodo se realiza por medio de la hormona melatonina, secretada en la glándula pineal durante las horas oscuras (Diekman et al., 2002). Por lo tanto, se establecen diferentes patrones de secreción a través del año, un periodo de mayor y otro con menor duración de melatonina, los cuales determinan las temporadas de anestro y de ovulación respectivamente (Guillaume et al., 1995). Existen además dos periodos de transición: primavera y otoño (Donadeu y Pedersen, 2008; Ginther et al., 2003ª). Se han sugerido dos ondas foliculares durante el ciclo estral de la yegua, sobre la base de perfiles bimodales de FSH (Evans e Irvine, 1975). Cada onda incluye la aparición de varios folículos. Un folículo de la primera onda post-ovulatoria se convierte en folículo dominante y crece hasta alcanzar un promedio de 16 mm en un lapso de 6 d permaneciendo estable por otros 6 d y luego sufre atresia. El folículo dominante Artículo científico ISSN:2007-9559 Revista Mexicana de Agroecosistemas Vol. 8 (1) 59-67, 2021 64 de la 2a o 3a oleada folicular se convierte en el folículo ovulatorio. Existen 2 factores fundamentales que pudieran influir sobre la actividad ovárica y estos sería la edad y el estado nutricional (Claes et al., 2015). En el presente estudio no se pudo contar con la información individual de las yeguas de las que provenían los ovarios recolectados y eso representa una limitante para el estudio. De igual manera no se cuenta con los perfiles hormonales de las yeguas, ni las concentraciones de hormonas en fluido folicular (Meinecke et al., 1987). Otro factor pudiera ser el genotipo o raza la cual también no se conoce con precisión, solo se puede generalizar mencionando que la mayoría de las yeguas sacrificadas eran de genotipos Criollas, Cuarto de Milla o encastadas de Cuarto de Milla y algunas Mustango, principalmente las provenientes de Canadá y Estados Unidos. Según Kenney y Ganjam (1975), las anormalidades ováricas más comunes en Canadá son: 1) el tumor de las células de la granulosa que produce estrógenos; 2) los folículos grandes que producen estrógenos en potrancas de 4 meses de edad, y 3) una neoplasia con una estructura adrenal ectópica que produce progesterona. Otro estudio, Bosu et al. (1982) reporta la presencia tumores de las células de la granulosa, quistes foliculares, hematomas e hipoplasias en yeguas de Canadá. Cabe mencionar que en el presente trabajo no se detectaron anormalidades ováricas durante el estudio. En los últimos años la ultrasonografía ó ecografía se ha convertido en una herramienta útil para el seguimiento del desarrollo folicular en yeguas in vivo (Pierson y Ginther, 1985). Sin embargo, debido a que los ovarios de la yegua poseen una estructura única diferente a otros mamíferos, considerando su mayor tamaño, las técnicas histológicas convencionales no han sido útiles en observar la estructura microscópica interna. Por ello, algunos estudios in vitro han recurrido a la microscopía estructural interna en tercera dimensión (3D-ISM) para estudiar el ovario de la yegua. Esta técnica computarizada de vanguardia (3D-ISM), ha permitido conocer más a detalle la disposición anatómica del ovario y los mecanismos complejos del desarrollo folicular en la yegua (Kimura et al., 2001). Por lo anterior, los resultados obtenidos en el presente estudio, aunque incipientes, permiten suponer que pudieran utilizarse los ovarios de yegua recolectados in situ en rastros de la región, y trasladarlos al laboratorio para la obtención de ovocitos que pudieran destinarse para la validación de la técnica de maduración y fertilización in vitro de ovocitos equinos (Dell'Aquila et al., 1996; 1997; Squires, 1996), y algunos otros proyectos de investigación que incluyen el cultivo de gametos (Dell'Aquila et al., 1997; Maclellan et al., 2002; McPartlin et al., 2009) en el Laboratorio de Biología de la Reproducción de la Unidad Académica de Medicina Veterinaria y Zootecnia de la Universidad Autónoma de Zacatecas o en otros laboratorios con infraestructura apropiada. CONCLUSIÓN Existe una marcada estacionalidad en la actividad ovárica de las yeguas sacrificadas en un rastro TIF localizado en el altiplano del estado de Zacatecas, con mayor actividad folicular y lútea durante primavera y verano en comparación a otoño e invierno. En la latitud del altiplano (23°N), la actividad folicular parece iniciarse desde el mes de febrero. LITERATURA CITADA Arthur, G.H. 1969. The ovary of the mare in health and disease. Equine Veterinary Journal, 1(4), 153-156. https://doi.org/10.1111/j.2042-3306.1969.tb03361.x. Boeta, M., A. Porras, L.A. Zarco and R. Aguirre-Hernández. 2006. Ovarian activity of the mare during winter and spring at a latitude of 19° 21′ north. Journal of Equine Veterinary Science, 26(2), 55-58. https://doi.org/10.1016/j.jevs.2005.12.003. Borja, D.D., X.M. Farez, J.A.B Valdés, A.V. Gil, R.G. Viera, R.O. Méndez y. G.G. Viera. 2019. Recursos, comportamiento reproductivo y cuidado animal de unidades de crianza equina en el Azuay, Ecuador. https://revistas.reduc.edu.cu/index.php/rpa/article/view/ e2835. https://doi.org/10.1111/j.2042-3306.1969.tb03361.x https://doi.org/10.1016/j.jevs.2005.12.003 https://revistas.reduc.edu.cu/index.php/rpa/article/view/%20e2835 Artículo científico ISSN:2007-9559 Revista Mexicana de Agroecosistemas Vol. 8 (1) 59-67, 2021 65 Bosu, W.T.K., S.C. Van Camp, R.B. Miller and R.A.R. Owen. 1982. Ovarian disorders: clinical and morphological observations in 30 mares. The Canadian Veterinary Journal, 23(1),6. PMCID: PMC1790073 PMID: 7066859. Carranza, J., W.A. Yoong, C. Mateos, B. Caña-Vergara, C.L. Gómez and V. Macías. 2017. Reproductive phenology of creole horses in Ecuador in the absence of photoperiod variation: The effects of forage availability y flooding affecting body condition of mares. Animal Science Journal, 88(12): 2063- 2070. https://doi.org/10.1111/asj.12818. Claes, A., B.A. Ball, K.E. Scoggin, A. Esteller‐ Vico, J.J. Kalmar, A.J. Conley and M.H.T. Troedsson. 2015. The interrelationship between anti‐ Müllerian hormone, ovarian follicular populations and age in mares. Equine veterinary journal, 47(5), 537-541. https://doi.org/10.1111/evj.12328. Cortés-Vidauri, Z., C. Aréchiga-Flores, M. Rincón-Delgado, F. Rochín-Berumen, M.A. López-Carlos and G. Flores-Flores. 2018. Mare reproductive cycle: A Review (Revisión: El Ciclo Reproductivo de la Yegua). Abanico Veterinario, 8(3), 14-41. http://dx.doi.org/10.21929/abavet2018.83.1. Dell'Aquila, M.E., Y.S. Cho, P. Minoia, V. Traina, S. Fusco, G.M. Lacalandra and F. Maritato. 1997. Intracytoplasmic sperm injection (ICSI) versus conventional IVF on abattoir-derived and in vitro- matured equine oocytes. Theriogenology, 47(6), 1139-1156. https://doi.org/10.1016/S0093- 691X(97)00095-2. Dell'Aquila,M.E., S. Fusco, G.M. Lacalandra and F. Maritato. 1996. In vitro maturation and fertilization of equine oocytes recovered during the breeding season. Theriogenology, 45(3), 547-560. https://doi.org/10.1016/0093-691X(95)00402-T. Donadeu, F. X. and H.G. Pedersen. 2008. Follicle development in mares. Reproduction in Domestic Animals, 43, 224-231. https://doi.org/10.1111/j.1439-0531.2008.01166.x. Donadeu, F. X. and E.D. Watson. 2007. Seasonal changes in ovarian activity: lessons learnt from the horse. Animal Reproduction Science, 100(3-4), 225-242. https://doi.org/10.1016/j.anireprosci.2006.12.001. Espinoza-Villavicencio, J.L., R. Ortega Pérez, A. Palacios- Espinosa, J. Valencia-Méndez y C.F. Aréchiga- Flores. 2007. Crecimiento folicular ovárico en animales domésticos: una revisión. Interciencia, 32(2), 93-99. Versión impresa. Fitzgerald, B.P. and C.J. McManus. 2000. Photoperiodic versus metabolic signals as determinants of seasonal anestrus in the mare. Biology of reproduction, 63(1): 335-340. https://doi.org/10.1095/biolreprod63.1.335. Fitzgerald, B.P., S.E. Reedy, D.R. Sessions, D.M. Powell and C.J. McManus. 2002. Potential signals mediating the maintenance of reproductive activity during the non-breeding season of the mare. Reproduction-Cambridge-Supplement, 115-120. www.isinet.com/wok.wos. Freedman, L.J., M.C. Garcia and O.J. Ginther. 1979. Influence of photoperiod and ovaries on seasonal reproductive activity in mares. Biology of reproduction, 20(3), 567-574. https://doi.org/10.1095/biolreprod20.3.567. Gastal, E.L., M.O. Gastal, D.R. Bergfelt and O.J. Ginther. 1997. Role of diameter differences among follicles in selection of a future dominant follicle in mares. Biology of reproduction, 57(6), 1320- 1327. https://doi.org/10.1095/biolreprod57.6.1320. Ginther, O.J. 1990. Folliculogenesis during the transitional period and early ovulatory season in mares. Reproduction, 90(1), 311-320. https://doi.org/10.1530/jrf.0.0900311. Ginther, O.J. 1992. Reproductive biology of the mare. Wisconsin, USA: Ed. Equiservices Publishing, Cross Plains. NII Article ID (NAID) 10006076063. Ginther, O.J., M.A. Beg, F.X. Donadeu and D.R. Bergfelt. 2003. Mechanism of follicle deviation in monovular farm species. Animal Reproduction Science, 78(3–4), 239-257. https://doi.org/10.1016/S0378-4320(03)00093-9. Ginther, O.J., E.L. Gastal, M.O. Gastal and M.A. Beg. 2018. Seasonal influence on equine follicle dynamics. Animal Reproduction, 1(1), 31-44. https://doi.org/10.1111/asj.12818 https://doi.org/10.1111/evj.12328 http://dx.doi.org/10.21929/abavet2018.83.1 https://doi.org/10.1016/S0093-691X(97)00095-2 https://doi.org/10.1016/S0093-691X(97)00095-2 https://doi.org/10.1016/0093-691X(95)00402-T https://doi.org/10.1111/j.1439-0531.2008.01166.x https://doi.org/10.1016/j.anireprosci.2006.12.001 https://doi.org/10.1095/biolreprod63.1.335 http://www.isinet.com/wok.wos https://doi.org/10.1095/biolreprod20.3.567 https://doi.org/10.1095/biolreprod57.6.1320 https://doi.org/10.1530/jrf.0.0900311 https://doi.org/10.1016/S0378-4320(03)00093-9 Artículo científico ISSN:2007-9559 Revista Mexicana de Agroecosistemas Vol. 8 (1) 59-67, 2021 66 Ginther, O.J., E.L. Gastal, M.O. Gastal, D.R. Bergfelt, A.R. Baerwald and R.A. Pierson. 2004.Comparative study of the dynamics of follicular waves in mares and women. Biology of reproduction, 71(4), 1195-1201. https://doi.org/10.1095/biolreprod.104.031054. Guerin, M. and X. Wang. 1994. Environmental temperature has an influence on timing of the first ovulation of seasonal estrus in the mare. Theriogenology, 42, 1053-1060. https://doi.org/10.1016/0093- 691X(94)90127-5. Hughes, J.P., P.C. Kennedy and G.H. Stabenfeldt. 1980. Pathology of the ovary and ovarian disorders in the mare. In 9th International Congress on Animal Reproduction and Artificial Insemination, 16th- 20th June 1980. I. Plenary sessions. Editorial Garsi. pp. 203-222. Irvine, C.H. 1995. The nonpregnant mare: a review of some current research y of the last 25 years of endocrinology. Biology of Reproduction, 52(1), 343-360. https://doi.org/10.1093/biolreprod/52.monograph_series1.343. Irvine, C.H., S.L. Alexander and A.O. McKinnon. 2000. Reproductive hormone profiles in mares during the autumn transition as determined by collection of jugular blood at 6 h intervals throughout ovulatory y anovulatory cycles. Journal of Reproduction y Fertility, 118(1), 101-110. Kenney, R.M. and V.K. Ganjam. 1975. Selected pathological changes of the mare uterus and ovary. Journal of Reproduction and fertility. Supplement. 1:335-339. PMID: 1060802. Kimura, J., A. Tsukise, H. Yokota, Y. Nambo and T. Higuchi. 2001. The application of three‐ dimensional internal structure microscopy in the observation of mare ovary. Anatomia, Histologia, Embryologia, 30(5), 309-312. https://doi.org/10.1046/j.1439-0264.2001.00335.x. López-Pérez, L.M., L. Zarco-Quintero y A.M. Boeta-Acosta. 2010. Inducción de la actividad ovárica en yeguas criollas con un programa de fotoperiodo artificial en la latitud 19 9'N. Veterinaria México. Veterinaria México, versión impresa. 41(2), 89-100. Maclellan, L.J., E.M. Carnevale, M.C. Da Silva, C.F. Scoggin, J.E. Bruemmer and E.L. Squires. 2002. Pregnancies from vitrified equine oocytes collected from super-stimulated and non-stimulated mares. Theriogenology, 58(5), 911-919. https://doi.org/10.1016/S0093-691X(02)00920-2. McPartlin, L.A., S.S. Suarez, C.A. Czaya, K. Hinrichs and S.J. Bedford-Guaus. 2009. Hyperactivation of stallion sperm is required for successful in vitro fertilization of equine oocytes. Biology of Reproduction, 81(1), 199-206. https://doi.org/10.1095/biolreprod.108.074880. Meinecke, B., H. Gips and S. Meinecke-Tillmann. 1987. Progestagen, androgen and oestrogen levels in plasma and ovarian follicular fluid during the oestrous cycle of the mare. Animal Reproduction Science, 12(4), 255-265. https://doi.org/10.1016/0378-4320(87)90097-2. Müller, K., C. Ellenberger and H.A. Schoon. 2009. Histomorphological and immunohistochemical study of angiogenesis and angiogenic factors in the ovary of the mare. Research in veterinary science, 87(3), 421-431. https://doi.org/10.1016/j.rvsc.2009.04.011. Nagy, P., D. Guillaume and P. Daels. 2000. Seasonality in mares. Animal Reproduction Science, 60: 245- 262. https://doi.org/10.1016/S0378-4320(00)00133-0. Oberhaus, E.L and D. Paccamonti. 2013. Review of management of anestrus and transitional mares. In: http://www.ivis.org. Pierson, R.A. and O.J. Ginther. 1985. Ultrasonic evaluation of the preovulatory follicle in the mare. Theriogenology, 24(3), 359-368. https://doi.org/10.1016/0093-691X(85)90228-6. Quintero, B., M. Manzo, T. Diaz, O. Verde, N. Benacchio and L. Sifontes. 1995. Seasonal changes in ovarian activity y estrous behavior of Thoroughbred mares in a tropical environment. Biology of Reproduction, 52 (monograph_series 1), 469-474. https://doi.org/ 10.1093/biolreprod/52.monograph_series1.469. Quintero, B., M. Porter, D. Sharp, B. Cleave and T. Diaz. 2000. Effect of season on LH concentrations y LH pulse dynamics in mares located in the tropics. In Abstracts of the 14th International Congress on Animal Reproduction, 2000, Stockholm, Sweden. Stockholm: ICAR. pp. 290. ICAR. International Congress On Animal Reproduction http://animalreproduction.org info@animalreproduction.org. https://doi.org/10.1095/biolreprod.104.031054 https://doi.org/10.1016/0093-691X(94)90127-5 https://doi.org/10.1016/0093-691X(94)90127-5 https://doi.org/10.1093/biolreprod/52.monograph_series1.343 https://doi.org/10.1046/j.1439-0264.2001.00335.x https://doi.org/10.1016/S0093-691X(02)00920-2 https://doi.org/10.1095/biolreprod.108.074880 https://doi.org/10.1016/0378-4320(87)90097-2 https://doi.org/10.1016/j.rvsc.2009.04.011 https://doi.org/10.1016/S0378-4320(00)00133-0 http://www.ivis.org/ https://doi.org/10.1016/0093-691X(85)90228-6 https://doi.org/%2010.1093/biolreprod/52.monograph_series1.469https://doi.org/%2010.1093/biolreprod/52.monograph_series1.469 http://animalreproduction.org/ Artículo científico ISSN:2007-9559 Revista Mexicana de Agroecosistemas Vol. 8 (1) 59-67, 2021 67 Saltiel, A., A. Calderon, N. Garciand H.P. Hurley. 1982. Ovarian activity in the mare between latitude 15º y 22 N.J Reprod Fertil Suppl, 32:261-267. PMID: 6962860. SAS. 2010. SAS User’s Guide Statistics. SAS Institute, Inc. Cary, N.C. Sharp, D.C. 1998. Horse. In: Knobill, E. and J.D. Neill. Encyclopedia of Reproduction. Vol. 2. San Diego Ca. USA: Ed. Academic Press, pp.:680-693. Short, R.V. 1962. Steroids in the follicular fluid and the corpus luteum of the mare. A'two-cell type' theory of ovarian steroid synthesis. Journal of Endocrinology, 24(1), 59-63. https://joe.bioscientifica.com/ Sirois, J., B.A. Ball and J.E. Fortune. 1989. Patterns of growth and regression of ovarian follicles during the oestrous cycle and after hemiovariectomy in mares. Equine Veterinary Journal, 21(S8), 43-48. https://doi.org/10.1111/j.2042-3306.1989.tb04672.x. Squires, E.L. 1996. Maturation and fertilization of equine oocytes. Veterinary clinics of North America: equine practice, 12(1), 31-45. https://doi.org/10.1016/S0749-0739(17)30293-6. Squires, E.L. and O.J. Ginther. 1975. Follicular and luteal development in pregnant mares. Journal of reproduction and fertility. Supplement, (23), 429-433. PMID: 1060820. Steel, R.G.D. and J.H. Torrie. 1996. Principles and procedures of statistics. Second edition, Mcgraw-Hill Book Company. N.Y. Vázquez-Dueñas, S., F.J. Escobar-Medina., F. De la Colina-Flores and S. Hayden-Valles. 2004. Comportamiento reproductivo de yeguas Pura Sangre Inglés en un criadero con partos al principio del año. Revista Biomédica, 15(1), 27-31. https://doi.org/10.32776/revbiomed.v15i1.370. Vilhanová, Z., F. Novotný, I. Valocký, V. Hura, P. Hornaková and M. Karamanová. 2021. Effect of seasonal environmental changes on selected reproductive parameters in mares. Bulgarian Journal of Veterinary Medicine, 24 (2):208218. https://doi.org/10.15547/bjvm.2019-0083. Williams, G.L., J.F. Thorson, L.D. Prezotto, I.C. Velez, R.C. Cardoso and M. Amstalden. 2012. Reproductive seasonality in the mare: neuroendocrine basis y pharmacologic control. Domestic Animal Endocrinology, 43(2), 103-115. https://doi.org/10.1016/j.domaniend.2012.04.001. https://joe.bioscientifica.com/ https://doi.org/10.1111/j.2042-3306.1989.tb04672.x https://doi.org/10.1016/S0749-0739(17)30293-6 https://doi.org/10.32776/revbiomed.v15i1.370 https://doi.org/10.1016/j.domaniend.2012.04.001
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