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INSTITUTO POLITÉCNICO NACIONAL UNIDAD PROFESIONAL INTERDISCIPLINARIA DE BIOTECNOLOGÍA TÍTULO DEL TRABAJO DETERMINACIÓN DE ÁCIDO FÓLICO EN LECHE POR HPLC INFORME TÉCNICO DE LA OPCIÓN CURRICULAR EN LA MODALIDAD DE: ESTANCIA INDUSTRIAL LICONSA GERENCIA METROPOLITANA SUR S.A. de C. V. PARA OBTENER EL TÍTULO DE INGENIERO EN ALIMENTOS PRESENTA: ALVAREZ SÁNCHEZ OLIVIA ASESORES: DR. ENRIQUE DURÁN PÁRAMO (Interno) I. Q. ISAAC RODRÍGUEZ VICTORIA (Externo) EVALUADORES: M. EN C. PATRICIA VÁZQUEZ LOZANO M. EN C. SAMUEL SUAZO ABARCA Liconsa S.A. de C. V Gerencia Metropolitana Sur México D. F. Mayo del 2009 Departamento de Control de Calidad - 2 - AGRADECIMIENTOS A MI MAMÁ Gracias por acompañarme en las noches de desvelo, por estar conmigo en esos momentos de preocupación y angustia, por celebrar conmigo en los momentos de grandes logros y por acompañarme en los momentos de tristeza. Gracias mami lo logramos por fin nos graduamos. A MIS HERMANOS Por su apoyo y comprensión a lo largo de mi formación como profesionista, por compartir conmigo la alegría de haber llegado al final de esta etapa tan importante de mi vida. A MIS CUÑADOS Que fueron formando parte de mi familia proporcinando apoyo y confianza para poder realizar mis logros y metas a lo largo de mi vida muchas gracias. A MIS SOBRINITOS Por estar siempre a mi lado y llenar de alegría aquellos momentos difíciles, los quiero mucho. A MI PAPÁ Un gran hombre a quien quiero y recuerdo mucho. Que aunque no estés presente, siempre te tuve en mi mente que muchos de mis logros siempre pensé en ti, sé que estarías orgulloso de mí. - 3 - CONTENIDO ÍNDICE DE TABLAS………………………………………………………………….6 ÍNDICE DE FIGURAS………………………………………………………………...6 ABREVIATURAS……………………………………………………………………...7 RESUMEN…………………………………………………...…………………………8 1. ANTECEDENTES HISTÓRICOS LICONSA GMS S.A. DE C.V ...…........…..9 2. OBJETIVOS GENERALES DE LICONSA GMS S.A. DE C. V..……….....…14 2.1 Ubicación de la planta………………………………………………………15 2.2 Misión y visión……………………………………………………………..15 3. DISTRIBUCIÓN DE PERSONAL DEL DEPARTAMENTO DE CONTROL DE CALIDAD………………………………………………………………..……...16 4. INTRODUCCIÓN…….............................................................................................17 5. ÁCIDO FÓLICO…...................................................................................................17 5.1. Comportamiento químico de los compuestos de folato....................……....18 5.2. Análisis para la detección de folatos …...……….………..………………..19 5.3. Características funcionales del acido fólico ……………………..………...21 5.4. Acido fólico como precursor de la salud…….……………………………22 5.5. Acido fólico en los alimentos……………………………………………...23 5.6. Ingesta diaria recomendada de acido fólico en humanos........................….24 6. JUSTIFICACIÓN………………………………………………………………….25 7. OBJETIVOS GENERALES Y OBJETIVOS ESPECÍFICOS...….…………….27 8. METODOLOGÍA………………….…………………………………...………….28 9. MATERIALES Y MÉTODOS…………………………………………..………...29 9.1 Muestra de alimento………………………………………………………...29 9.2 Materiales analíticos…… ………..………………………………………...29 9.3. Método……..…………................................................................................30 9.4. Diagramas de bloques……………………………………...……………....31 9.4.1 Preparación del blanco……………………………...…….………31 9.4.2 Preparación del estándar para análisis por HPLC…...…………....32 9.4.3 Preparación de la muestra de LDP……………………………......33 9.4.4 Análisis de folatos con HPLC…………………………………….34 10. RESULTADOS……………......…………………………………………………..35 10.1 Estándares de ácido fólico………………………………………………...35 - 4 - 10.2 Muestras de LDP………………………………………………………….36 10.3 Muestras de LDP con la adición de estándar de ác. Fólico a diferentes concentraciones………………………………………………..……………….38 11. DISCUSIÓN……………….………………………………………………….....40 12. CONCLUSIONES……………………………………………………………....43 ANEXO 1…………………………………………………………………………….44 ANEXO 2…………………………………………………………………………….45 13. RECOMENDACIONES………………………..………………………………46 14. BIBLIOGRAFÍA………………...…………………………………………..….47 - 5 - Índice de Tablas y Figuras Tablas Página - Tabla 1. Principales fuentes de ácido fólico en alimentos consumidos en México………………………………………………………………………….23 - Tabla 2. Recomendaciones IDA para ácido fólico.…………………………….24 - Tabla 3. Cuadro de datos para elaborar la curva tipo del estándar de ácido fólico….………………………………………………………………………...44 Figuras Página - Figura 1. Croquis de ubicación de la planta Liconsa GMS……..……………...14 - Figura 2. Organigrama del departamento de Control de Calidad………............15 - Figura 3. Estructura del ácido fólico……………………………………...……17 - Figura 4. Degradación oxidativa de los folatos H4 …………….........................19 - Figura 5. Absorción y metabolismo de los folatos……………………………..21 - Figura 6. Efecto de la homocisteína sobre el sistema cardiovascular…….........22 - Figura 7. Cromatograma del STD de ácido fólico, con una concentración de 3.50µg/50mL; tR de 5.27 min………………………………………………….35 - Figura 8. Cromatograma del STD de ácido fólico, con una concentración de 3.50µg/100mL; tR de 5.27 min………………………………………………...35 - Figura 9. Cromatograma de la muestra de LDP, tR de ácido fólico 5.31min…36 - Figura 10. Cromatograma de la muestra de LDP, tR de ácido fólico 5.3min….36 - Figura 11. Cromatograma de la muestra de LDP, tR de ácido fólico 5.29min..37 - Figura 12. Cromatograma la muestra de LDP, tR de ácido fólico 5.35min…....37 - Figura 13. Cromatograma de la muestra de LDP con adición de STD de ácido fólico a concentración de 3.5µg/100mL; tR de ácido fólico 5.35 min………...38 - Figura 14. Cromatograma de la muestra de LDP con adición de STD de ácido fólico con concentración de 7µg/100mL; tR de ác. fólico 5.36 min…………...38 - Figura 15. Cromatograma de la muestra de LDP con adición de STD de ácido fólico con concentración de 10.5µg/100mL; tR ác. fólico de 5.37 min………..39 - Figura 16. Curva tipo del estándar de ácido fólico……………………….…….44 - 6 - - Figura 17. Cromatograma del STD de ácido fólico, a concentración de 3.50µg/100mL, tR de 5.27 min………………………………………………...45 - Figura 18. Cromatograma del STD de ácido fólico, a concentración de 3.50µg/100mL; tR de 5.3 min………………………………………………….45 - Figura 19. Cromatograma del STD de ácido fólico, a concentración de 3.50µg/100mL, tR de 5.36 min………………………………………………...46 Abreviaturas HPLC Cromatografía de líquidos de alta resolución LDP Leche descremada en polvo IDR Ingesta diaria recomendada UV Ultravioleta tR Tiempo de Retención STD Estándar GMS Gerencia Metropolitana Sur - 7 - RESUMEN La decisión de fortificar la leche Liconsa nace a partir de que el país pone en manifiesto la desnutrición y anemia siendo la población infantil la más afectada. Para contribuir a resolver esta problemática, la Secretaría de Desarrollo Social del Gobierno Federal, a través de Liconsa, trabajó intensamente para fortificar la leche con hierro, zinc, ácido fólico y vitaminas, elementos que se suman a los valores nutricionales de la leche Liconsa. El ácido fólico tiene una destacada función metabólica tienen una importante repercusión en la salud. Es esencialmente reconocido en la prevención de los defectos del tubo neural tal y como es la prevención de la aparición de espina bífida en neonatos (4). La metodología se llevó a cabo mediante una HOMOGENIZACIÓN de la muestra LDP con buffer de fosfatos a pH neutros, seguido de una EXTRACCIÓN que consiste en sometera la muestra homogenizada en un baño a ebullición durante 40 min. e inmediatamente enfriando con hielo, posteriormente la etapa de CENTRIFUGACIÓN durante 10 min. a 1200rpm, y decantar inmediatamente para llevar a cabo la FILTRACIÓN CON ACRODISCOS y el ANÁLISIS EN HPLC. En la referencia que se utilizó para llevar a cabo la metodología de la técnica implica el uso de la enzima conjugasa (γ-glutamilhidrolasa), para así poder hacer la transformación de poliglutamatos a monoglutamatos y de esta manera hacer más fácil la determinación por HPLC. Sin embargo no fue posible la utilización de ninguna solución enzimática debido a que el tiempo de adquisición de la enzima no estuvo dentro del lapso de las sesiones experimentales. Los resultados obtenidos sin el uso de la enzima fueron reproducibles ya que los tR oscilan entre 5.21 y 5.27min. Aún no se estandariza la técnica a causa de la falta de la enzima conjugasa que es con la que señala la técnica para la conversión de poliglutamatos a monoglutamatos. - 8 - 1. ANTECEDENTES HISTÓRICOS. En 1938, preocupado por la constante merma de la economía doméstica de las familias más desprotegidas, el Gobierno del Presidente Lázaro Cárdenas decidió crear el Comité Regulador del Mercado de las Subsistencias. En mayo de 1941 el Presidente Manuel Ávila Camacho promulgó una Ley en que advertía que era una exigencia inaplazable “atacar desde su origen la formación de los precios mediante una intervención activa del Gobierno en sus causas determinantes”, de esta manera y en sustitución del Comité Regulador, se creó la Nacional Distribuidora y Reguladora, S.A. de C. V. (NADYRSA) sociedad establecida por Ley. En mayo de 1944, en la Colonia Santa Julia de la Ciudad de México, se dio el primer antecedente de lo que hoy conocemos como el Programa de Abasto Social, al fundarse la primera lechería de la cadena planeada por NADYRSA. En 1945, frente a la grave escasez de leche que comenzó a sufrir el país como consecuencia de las secuelas de la Segunda Guerra Mundial, el Gobernador Lic. Javier Rojo Gómez comisionó al Lic. Francisco Doria Paz, Presidente del Consejo Consultivo de la Ciudad de México, para analizar la situación general del mercado lechero. Las indagaciones del comisionado mostraron una situación adversa: los introductores de leche del país no contaban con la suficiente capacidad para vender su producto a la población. En noviembre de 1946, un acuerdo presidencial que buscaba incentivar la inversión y abatir el rezago en la oferta del producto, otorgó las franquicias de exención de impuesto a la Empresa recientemente creada. De esta forma, el 13 de julio de 1949, se ordenó la liquidación de la Nacional Distribuidora y Reguladora, S.A. de C.V., para dar paso a la Compañía Exportadora e Importadora Mexicana, S.A. (CEIMSA), la cual quedó encargada del abastecimiento y regulación de los precios de los productos de primera necesidad. - 9 - En 1950 CEIMSA asumió la responsabilidad de elaborar, distribuir y vender la leche reconstituida. Tres años después Lechería Nacional, S.A. dejaría de operar por sí misma y empezaría a producirle a CEIMSA, arrendándole también 300 lecherías de su propiedad. En 1954 una planta rehidratadora construida por CEIMSA, inicia operaciones con 30,000 litros diarios, al tiempo que suscribe un contrato de maquila con la planta “CREMEX” para rehidratar otro tanto por día. Esto permite surtir adicionalmente 20 mil raciones, de un cuarto de litro cada una, al Instituto Nacional de Protección a la Infancia (INPI), para integrar el paquete de los desayunos escolares. La constante expansión en este rubro llevó a la necesidad de construir, en 1961, la Compañía Rehidratadora de Leche (CEIMSA, S.A.), a fin de que el Programa de Leche Reconstituida, se manejara con independencia y CEIMSA se concretara a las labores de coordinación, ya con su nueva estructura de sociedad mercantil del estado, bajo el nombre de Compañía Nacional de Subsistencias Populares, S.A. (CONASUPO, S.A.) y con la finalidad de regular y abastecer el mercado de productos básicos. Liconsa Hoy Para noviembre de 2000 y de acuerdo al artículo undécimo transitorio del Decreto de Presupuesto de Egresos de la Federación para ese ejercicio, se adscribe el Programa Tortilla y se consolida y unifican las Estructuras Administrativas de LICONSA, S.A. de C.V., que es un Empresa de Participación Estatal Mayoritaria en los términos de la Legislación vigente y del Fidelist que fue constituido como Fideicomiso Público del Gobierno Federal. En la actual administración se han construido alianzas estratégicas con Instituciones Públicas y Privadas para fortalecer a la Empresa y desarrollar proyectos innovadores. Asimismo, se han enfrentado escenarios internacionales adversos para adquirir la materia prima y ha impulsado negociaciones para mejorar paulatinamente los precios de la leche de importación. - 10 - Un hecho que es necesario resaltar es la fortificación de la leche, al adicionarle minerales como hierro, zinc, ácido fólico, vitaminas B2 Y B12, además de las vitaminas A y D que ya se le habían incorporado. Con ello, se tiene la certeza de contar con un producto de la más alta calidad, que combate de manera frontal la desnutrición y la anemia que afecta a una parte significativa de la población infantil en México. Las Reglas de Operación 2004 para el Programa de Abasto Social de Leche facultan a LICONSA, S.A. de C.V. para incorporar a su padrón de beneficiarios a nuevos grupos de la población, como son las mujeres de: 12 a 15 años, en período de lactancia y de 49 a 59 años. Se reabrió la planta industrial Xalapa y se fusionó como las demás plantas productoras a las Gerencias Estatales, Metropolitanas y de Programas de Abasto Social, consolidando la producción y el abasto social de leche. LICONSA, S.A. de C.V. produce más de mil millones de litros de leche al año con 10 plantas industriales. El proceso de producción incluye la rehidratación, reconstitución, enriquecimiento y fortificación de leche en polvo descremada, el envasado de leche entera en polvo y pasteurización, homogenización y envasado de leche fresca de producción nacional. Se consolida la estrategia de servicios y valores agregados en las lecherías, tales como servicios telefónicos, correo y venta de productos básicos, además de una mayor vinculación con el sector salud para otorgar orientación alimentaria y nutricional en los puntos de atención. La calidad del desempeño institucional ha sido ampliamente reconocida, toda vez que algunas plantas industriales han obtenido la Certificación ISO 9000:2001, así como el premio Intragob, el distintivo a la Empresa Socialmente Responsable, la Certificación en Equidad y Género, así como cuatro Certificados de Acreditación como Laboratorios de Prueba. El 31 de diciembre de 2003, concluye la operación del Programa Tortilla. - 11 - Desde el año 2004 se publicas las Reglas de Operación para el Programa de Adquisición de Leche Nacional, que tiene como objetivo comprar leche a pequeños y medianos productores nacionales. La compra de leche nacional se adquiere con las características de leche fresca y leche en polvo (entera y descremada), como insumo para la pasteurización y reconstitución de la leche y es por conducto de la red de acopio y enfriamiento integrada hasta el momento por 38 Centros de Acopio ubicados en los Estados de Campeche, Chihuahua, Guanajuato, Jalisco, Michoacán, Querétaro, Veracruz y Zacatecas; sin embargo, también se capta leche nacional proveniente de productores y proveedores de otros Estados del país. La compra o adquisición de leche nacional en el año 2005, ha registrado un incremento relevante, motivado por dos razones. La primera, es el precio establecido parala adquisición de leche nacional, el cual es muy atractivo para los productores, ya que es de 3.64 pesos por litro, lo que a su vez minimiza el efecto de la estacionalidad en los precios del mercado. La segunda razón, es la red de acopio y enfriamiento con la que cuenta LICONSA, S.A. de C. V., que permite una mayor participación de las distintas cuencas lecheras del país, lo que representa el beneficio de 8,650 productores. Este programa no provoca distorsiones en el mercado nacional de leche, ya que el lácteo adquirido se incorpora íntegramente al proceso productivo de LICONSA para atender el Programa de Abasto Social que le es propio. La tendencia para futuros ejercicio, será la compra de mayores volúmenes a productores nacionales y se pretende continuar con la disminución de leche en polvo importada. Después de más de 65 meses (1 de junio de 2001) sin que se modificara el precio de la leche Liconsa, el 17 de noviembre de 2006 aumentó de $3.50 a $4.50 por litro. Además de generar ahorros a las familias inscritas en el Padrón de Beneficiarios se han comprobado las propiedades nutricionales de la leche, ya que el Instituto Nacional de Salud Pública presentó en abril de 2006 los resultados del estudio “Segunda - 12 - evaluación del impacto de la leche fortificada LICONSA en el estado de nutrición de los niños beneficiarios del Programa de Abasto Social de Leche”, y que fue realizado durante dos años, es decir, 2004 y 2005 en el cual se comparó la efectividad de la leche administrada a niños que tenían entre 12 y 30 meses de edad al inicio del estudio, el cual destaca los siguientes resultados: Los niños que consumieron leche fortificada por dos años tuvieron tres veces menos anemia que los que no la tomaron y el 62 por ciento registra menos deficiencia de hierro. Lo que permite concluir que la fortificación de la leche es efectiva para disminuir la prevalencia de anemia y mejorar la concentración de hemoglobina. Uno de los hallazgos más importantes fue que los niños que toman la leche LICONSA alcanzaron una estatura mayor de 2.6 centímetros y este aumento de talla se asoció a una mejor masa muscular de 700 gramos más que los niños que no consumieron leche LICONSA. El impacto de la leche fortificada tiene un efecto positivo de corregir de manera temprana la deficiencia de hierro (entre los 12 y 24 meses de edad de los niños). Los niños que en cualquier período de tiempo recibieron leche fortificada LICONSA dedicaron mayor tiempo a la actividad física ligera, moderada e intensa que los que nunca recibieron leche fortificada. Por otra parte, LICONSA al cierre de 2006 dispondrá de una infraestructura de acopio y enfriamiento conformada por una red de 49 Centro de Acopio, algunos de ellos operados por asociaciones de productores, en 17 Entidades Federativas con una capacidad total en tanques de 1’060,500 litros diarios. El precio de compra a los productores durante ese año fue de $3.84 pesos por litro la leche fría y $3.70 por litro de leche caliente. - 13 - 2. OBJETIVOS GENERALES DE LICONSA S.A. DE C. V. Objeto Social de Liconsa, S.A. de C. V. La Sociedad tiene por objeto Coadyuvar al fomento económico y social del país, participando en: a) El tratamiento industrial de leche fresca o en polvo, así como de otros productos lácteos, a través de plantas propias, rentadas o contratadas con el sector privado. b) La distribución y venta de leche fluida pasteurizada o en polvo a los sectores urbanos y rurales en pobreza, en establecimientos propios, rentados, o de particulares a través de cualquier canal de distribución que se precise en las Reglas de Operación del Programa de Abasto Social de Leche, previamente autorizado por el Órgano de Gobierno de la Empresa. La adquisición, renta u obtención en comodato de bienes muebles e inmuebles, equipo, materiales y materias primas como leche líquida o en polvo, de origen nacional o internacional, que se utilicen para desarrollar las actividades necesarias para el cumplimiento del objeto social. La celebración de toda clase de actos, contratos y convenios, de cualquier naturaleza, necesarios para el cumplimiento del objeto social. Objetivos Generales El objetivo de este Manual es el de establecer de manera clara la organización interna de LICONSA, S.A. de C.V., a partir de su Estructura Orgánica y de la distribución de las funciones entre las áreas que la conforman, a fin de optimizar su operación para la consecución de sus objetivos, metas y el ejercicio eficiente de sus recursos. - 14 - 2.1 Ubicación de la Planta Calle: Santa Catarina, No. 2, Colonia: Santa Catarina, C.P. 56619 Fig. 1. Croquis de ubicación de la planta Liconsa GMS 2.2 Misión - Visión MISIÓN Es una Empresa de Participación Estatal Mayoritaria que industrializa y distribuye leche de alta calidad, a un precio accesible, en apoyo de la alimentación y nutrición a los beneficiarios de familias en condiciones de pobreza, para contribuir al desarrollo de capital humano. - 15 - VISIÓN Ser la Empresa líder del Sector Desarrollo Social, de vanguardia, autofinanciable, que atienda con elevada vocación de servicio, al total de la población objetivo, mejorando los procesos en industrialización y distribución de leche de alta calidad nutricional a precio accesible. 3. DISTRIBUCIÓN DE PERSONAL EN EL DEPARTAMENTO DE CONTROL DE CALIDAD. 20 3 TOTAL 23 Coordinador ( 1 ) Microbiologia 15 Secretaria ( 1 ) 9 JEFE DE DEPARTAMENTO DE CONTROL DE CALIDAD SPS IV Coordinador ( 1 ) Fisicoquimicos 15 Tec. Quimico ( 1 ) Mat. Prim. e Insumos 12 CONFIANZA SINDICALIZADOS PERSONAL Ayudante especial ( 2 ) Tec. Muestreador ( 2 ) Envasado 11 Tec. Muestreador ( 1 ) Lecherias 11 Tec. en act y estadist.( 1 ) de los sist. de gestion 11 Ayudante especial ( 1 ) Tec. Químico ( 3 ) A. Microbiología 12 Tec. Químico ( 1 ) A. Microbiología 12 Tec. Muestreador ( 1 ) Mat. Prim. y Mat. de Envase 11 Tec. quimico (3) A. Fisicoquimicos 12 Tec. Muestreador ( 3 ) Proceso 11 Figura 2. Organigrama del departamento de Control de Calidad - 16 - 4. INTRODUCCIÓN. En México se presentan tasas inaceptablemente altas de desnutrición concentradas en la población pobre. A la vez tenemos tasas crecientes de sobrepeso y obesidad. Los niños desnutridos pierden entre un 12 y 15% de su potencial intelectual corren un riesgo dentro de 8 a 12 veces mayor de contraer enfermedades infecciosas y son mas propensos a padecer enfermedades crónico degenerativas. Estos factores se traducen a través del tiempo en una menor productividad laboral y consecuentemente en una menor capacidad de generar ingresos y de salir de la pobreza. La decisión de fortificar la leche Liconsa nace a partir de que el país pone en manifiesto la desnutrición y anemia, siendo este un grave problema de salud pública, en especial de los mexicanos en condiciones de pobreza y dentro de ese sector, la población infantil es la más afectada. Para contribuir a resolver esta problemática, la Secretaría de Desarrollo Social del Gobierno Federal, a través de Liconsa, trabajó intensamente para fortificar la leche que distribuye a través de su programa de Abasto Social de Leche, con los principales micronutrientes, de los que la dieta de amplios sectores poblacionales acusa déficit. A partir del año 2002 la leche Liconsa se fortificó con hierro, zinc, ácido fólico yvitaminas, elementos que se suman a los valores nutricionales de la leche Liconsa. Para la verificación de dicha fortificación se llevan a cabo diferentes análisis para la determinación cuantitativa de la adición de micronutrientes. 5. ÁCIDO FÓLICO. El ácido fólico (2-amino-4-hidroxi-6-metil-pteridina Ac. P-aminobenzoico Ac. L-glutámico) es un compuesto pteridino heterocíclico con la siguiente estructura (Fig. 3). - 17 - El término «folato» se utiliza de forma genérica para denominar las distintas formas químicas derivadas del ácido fólico, una de las vitaminas del grupo B, por lo que es hidrosoluble. Figura 3. Estructura del ácido fólico (Fennema 1992) 5.1 Comportamiento químico de los compuestos folatos. El nombre genérico de folatos describe a diferentes formas de vitaminas constituidas de un anillo de pteridina además del ácido p-aminobenzoico y de uno a seis ácidos glutámicos. El organismo humano no puede sintetizar el ácido fólico por lo que depende totalmente de la ingesta en los alimentos. El ácido fólico se encuentra en forma natural como poliglutamatos los cuales son convertidos a monoglutamatos por medio de una conjugasa encontrada en las vellosidades intestinales (γ metil carboxipeptidasa), facilitándose con ello su absorción en la parte alta del intestino delgado; todos los monoglutamatos por medio de una reductasa son convertidos a tetrahidrofolatos (THF) y dihidrofolatos; los THF son los compuestos biológicamente activos, el monoglutamato 5 metil THF es la forma predominante en el suero. - 18 - Normalmente se posee alrededor de 5 a 20 mg de ácido fólico en diversos depósitos corporales, ya en el interior de la célula los monoglutamatos pierden su grupo metilo por medio de una reacción que requiere cianocobalamina, transformándose de nuevo en poliglutamatos, los cuales a su vez son receptores de folatos, con lo que se cierra el círculo para su utilización; la mitad de los depósitos corporales se encuentran en el hígado en forma de poliglutamato de 5 metil THF. Los humanos no pueden sintetizar el ácido fólico y son totalmente dependientes de las fuentes alimentarias; los folatos normalmente presentes en los alimentos se encuentran en forma de poliglutamatos, mientras que los folatos sintéticos contienen únicamente monoglutamatos. El ácido fólico sintético de los complementos vitamínicos no requiere de esta conversión a través de la conjugasa (7). Los compuestos de folato más importantes que surgen de forma natural en los alimentos lo son el 5 metil tetrahidrofolato (5Me-H4 folato), 5-formil tetrahidrofolato (5HCO-H4 folato) y el tetrahidrofolato (H4 folato). Los compuestos de folato son considerados como la vitamina más inestable del complejo B, esto, principalmente por calor y oxidación. Además de que puede surgir la interconversión entre cada una de las moléculas, dependiendo del ambiente oxidativo y del pH del medio en que se encuentre. 5.2 Análisis para la detección de folatos. La detección de este nutriente en un alimento es de mucha cautela; esto a consecuencia de las cantidades tan bajas en que se encuentra en los alimentos, también al alto nivel de inestabilidad que posee. La forma principal de folato que naturalmente se presenta en los alimentos es la de 5-metil-folato H4. La degradación oxidativa de este compuesto se produce por conversión dando, al menos dos productos (Fig.4). El primero presumiblemente, se trata del 5-metil-5,6-dihidrofolato (5-metil-folato H2) que retiene la actividad vitamínica dado que puede, de nuevo, reducirse fácilmente al 5-metil-folato H4. - 19 - La estabilidad de los folatos puede verse afectada por el efecto del pH, de la concentración de oxígeno y la temperatura. El ácido fólico es generalmente la forma más estable; resiste la oxidación aunque su estabilidad disminuye en medios ácidos. La composición iónica del medio influye también de forma significativa en la estabilidad de la mayoría de los folatos. Los folatos son degradados por los iones superoxidos aunque no se ha determinado la cuantía de las pérdidas de folatos en los alimentos inducidas por tales radicales (7). Figura 4. Degradación oxidativa de los folatos H4 (Fennema). - 20 - Los folatos deben ser primero extraídos de la matriz del alimento. Esto es usualmente acompañado por tratamiento de calor con soluciones amortiguadoras que contengan antioxidantes y a un pH cercano al neutral, con variables importantes como: el tiempo de calentamiento, temperatura, tipo y concentración de antioxidantes utilizados. Luego se añade una composición enzimática para llevar a cabo la hidrólisis de estos componentes. El efecto de componentes no folatos en la muestra debe ser eliminado antes de la determinación de folato para evitar interferencias. Esta limpieza es requerida si el método de HPLC es el utilizado para la detección, esto para mayor claridad en los resultados obtenidos. Finalmente, es la etapa de la determinación. Para las formas naturales de folato se requiere el detector de luz UV además de un detector de fluorescencia; a diferencia de la detección de ácido fólico la cual solo requiere evaluación a través del detector de luz UV (6). 5.3 Características funcionales del ácido fólico. Los folatos (más conocidos genéricamente como ácido fólico) son un componente esencial de la dieta, necesario para la formación de las células de las series blanca y roja de la sangre, y las células epiteliales del tracto digestivo. Especialmente en estas células de rápida multiplicación y en otras células, los folatos forman parte de las reacciones de transferencia de carbono, destacando por su importancia las implicadas en el metabolismo del ADN, ARN y aminoácidos. El papel fundamental del ácido fólico es el de actuar como una coenzima necesaria para formar varios compuestos clave como son: formación de nucleoproteínas, necesarias en la división celular y en la transmisión de rasgos hereditarios. Participación en la síntesis de tiamina, vitamina necesaria en la formación de la nucleoproteína del DNA. El ácido fólico desempeña el papel de transporte básico del grupo C, para la formación del grupo hemo, proteína de la hemoglobina. El ácido fólico es de fácil absorción en el sistema gastrointestinal y llevado por la sangre a los tejidos, se almacena principalmente en el hígado y es excretado por la orina y heces fecales. - 21 - Los folatos sufren cambios en su forma iónica en función del pH. los cambios en la carga del anillo de pteridina son responsables, en parte, de la dependencia del pH en relación con la estabilidad de los folatos y del comportamiento de los mismos durante la separación cromatográfica. En la mayoría de los casos, el ácido fólico (con el anillo de pteridina totalmente oxidado) exhibe una estabilidad sustancialmente mayor que la de los folatos H4 o los folatos H2. La estabilidad de cada folato depende exclusivamente de la naturaleza química del anillo de pteridina sin influencia alguna de la longitud de la cadena poliglutamilo. El ácido fólico, debido a su excelente estabilidad, es la única forma de folato que se añade a los alimentos, si bien ello se hace en muy pocos productos. Las pérdidas globales de folatos de un alimento dependen de la magnitud de la extracción, de las formas químicas presentes y de la naturaleza del entorno químico (catalizadores, oxidantes, pH, iones tampón, etc.). Por ello, es difícil predecir la retención de folato en un alimento determinado (7). Figura 5. Absorción y metabolismo de los folatos 5.4 Ácido fólico como precursor de la salud. Los folatos, debido a su destacada función metabólica, tienen una importante repercusión en la salud. Juegan un papel esencial reconocido en la prevención de los - 22 - defectos del tubo neural taly como es la prevención de la aparición de espina bífida en neonatos (4), y existen claras evidencias epidemiológicas que sugieren que unos niveles elevados de homocisteína en plasma (>15μmol/L) constituye un factor de riesgo independiente para las enfermedades cardiovasculares (2). Sin embargo, una ingesta elevada de ácido fólico reduce los niveles de homocisteína de modo que una dosis extra de 200μg de ácido fólico diaria provoca una reducción de 11-12% de los niveles de homocisteína plasmática (6). Figura 6. Efecto de la homocisteína sobre el sistema cardiovascular. 5.5 Ácido fólico en los alimentos. El ácido fólico (ácido pteroil-L-glutámico) se encuentra en la naturaleza sólo en cantidades trazas. Las formas de los folatos que principalmente se encuentran naturalmente en los vegetales, animales y microorganismos son las especies químicas poliglutamilo de los 5,6,7,8-tetrahidrofolatos (folatos H4) (fig. 4) en los que los dobles enlaces del anillo de la uterina están reducidos (7). - 23 - Tabla 1. Principales fuentes de ácido fólico en alimentos consumidos en México. 5.6 Ingesta Diaria Recomendada de ácido fólico en humanos En 1968 se describió por vez primera la relación entre niveles bajos de folatos en la gestación y defectos del tubo neural. En 1992 se recomienda la ingesta de 0.4mg/día de ácido fólico en mujeres en edad reproductiva, para 1995 se permitió la suplementación de los cereales con ácido fólico y es hasta 1998 cuando se lleva a cabo la suplementación de harinas comerciales con 0.140mg de ácido fólico por l00mg de harina, con lo que se añade 0.1mg/ día a la dieta normal, sugiriéndose incrementar la suplementación a 0.350mg/ 100mg de harina. Con esta campaña se pretende que a toda mujer en edad reproductiva, se le provea y recomiende una ingesta diaria de ácido fólico de 0.4mg, especialmente durante la etapa periconcepcional (tres meses previos al embarazo y hasta la semana 12 de gestación) y en aquellas mujeres que, por antecedentes o condición social o geográfica - 24 - se identifique alto riesgo para defectos del tubo neural, deben ingerir de 4mg. de ácido fólico durante su etapa periconcepcional (7). Es por tanto comprensible que durante periodos de rápida multiplicación y crecimiento celulares los requerimientos de folato en la dieta sean mayores (9). Así, por ejemplo, durante los periodos de gestación o lactancia la ingesta diaria recomendada (IDR) pasa de 200 a 400 µg/día (3). Tabla 2. Ingesta Diaria Recomendada (DRI) para ácido fólico Ingesta Dietaria Recomendada (DRI) para ácido fólico Etapa de vida Edades Hombres (μg/día) Mujeres (μg/día) Infantes 0 – 6 meses 65 (IA)* 65 (IA)* Infantes 7 – 12 meses 80 (IA)* 80 (IA)* Niños 1 – 3 años 150 150 Niños 4 – 8 años 200 200 Niños 9 – 13 años 300 300 Adolescentes 14 – 18 años 400 400 Adultos 19 años o más 400 400 Embarazadas 18 años o menos - 600 Embarazadas 19 años o más - 600 Lactantes 18 años o menos - 500 Lactantes 19 años o más - 500 *IA: Ingesta Adecuada 6. JUSTIFICACIÓN. Ante la importancia de los folatos en la salud y de su papel en el metabolismo, surge la necesidad de establecer valores adecuados de ingesta, que sean fiables y estén basados en datos contrastados. Es, por tanto, prioritario aumentar el interés y la formación de los consumidores acerca de esta vitamina, especialmente mujeres, con la - 25 - finalidad de aumentar su nivel de folato, así como de explorar las posibilidades de promocionar lo beneficiosas que son para la salud algunas fuentes de folatos Tradicionalmente, los folatos procedentes de los alimentos eran determinados por el Método Microbiológico (8). Con este ensayo se obtiene el resultado de folatos totales, ya que no discrimina entre las diferentes formas químicas de folatos. El método está basado en el crecimiento de un microorganismo, generalmente el Lactobacillus rhamnosus variedad casei, que responde a las formas monoglutámicas así como a las di- y triglutámicas (10). No obstante, estos datos pueden ser enmascarados por la presencia en la muestra de compuestos no folatos que pueden activar o inhibir el crecimiento del microorganismo. Surge así la necesidad de investigar nuevos métodos de determinación de folatos en alimentos que permitan la diferenciación entre las diferentes formas químicas, lo que permite obtener datos más exactos y fiables. Para la separación de las diferentes formas se han desarrollado métodos de HPLC que permiten diferenciar y cuantificar las distintas formas derivadas tras una extracción previa de la matriz del alimento y la posterior deconjugación por incubación con la enzima conjugasa (11) Las técnicas utilizando el sistema de HPLC también poseen grandes ventajas como el permitir mayor rapidez en la detección total de folatos, además de permitir resultados individuales de los diferentes tipos de folato presentes en los alimentos, esto a diferencia del método microbiológico. El ácido fólico utilizado como suplemento posee una eficacia 1.7 veces mayor que los folatos que naturalmente existen en los alimentos (10). La forma en los alimentos (ácido fólico o folatos) y su disponibilidad (mono o poliglutámica) son esenciales para conocer nuestras necesidades reales en la dieta. Por lo tanto la necesidad de establecer un método fiable de determinación de ácido fólico en leche y con esto poder brindar recomendaciones más reales y científicas, así como consejos para la obtención de una nutrición más óptima en cuanto a ácido fólico se refiere. - 26 - Tal es el caso del la cuantificación de ácido fólico, ya que se busca la técnica adecuada para la realización del análisis cuantitativo dentro de Liconsa Gerencia Metropolitana Sur. 7. OBJETIVOS GENERALES Y ESPECÍFICOS. Objetivos Generales. Implementación de la técnica para la determinación de ácido fólico en leche en polvo por Cromatografía de Líquidos de Alta Resolución (HPLC). Detectar el ácido fólico en muestras de leche en polvo. Objetivos Específicos Reducir los egresos generados debido a la realización de la determinación fuera de la planta. Estandarizar la técnica. - 27 - 8. METODOLOGÍA. Debido a que la cromatografía de fase inversa, que es la más utilizada, se caracteriza por que la fase estacionaria es no polar o débilmente polar y el disolvente es más polar. Un disolvente menos polar tiene mayor fuerza eluyente. La cromatografía de fase inversa elimina las colas de los picos, porque la fase estacionaria tiene pocos puntos que adsorban con fuerza a ningún soluto originando colas. En una separación con fase inversa, la fuerza eluyente disminuye a medida que el disolvente se hace más polar. Combinando adecuadamente acetonitrílo-metanol, se dispone de una gama suficiente de interacciones bipolares, por puentes de hidrógeno, para separar un gran número de compuestos por cromatografía de fase inversa. Haciendo la mezcla de acetonitrílo- metanol; el metanol es el segundo disolvente orgánico que tiene mayor viscosidad y una longitud de onda de corte mayor (5). Haciendo caso a esta referencia se procedió a hacer un cambio en la fase móvil para así poder eluir la muestra y de esta manera poder detectar el ácido fólico en ella, ya que se esta trabajando con dos compuestos que ocasionan interacciones altamente dipolares. Experimentalmente ésta fase móvil no produjo resultados aceptables en la determinación de ácido fólico por lo que de acuerdo a la referencia consultada Vahteristo et. al. (1998) lo correspondiente es una mezcla de acetonitrílo-buffer de fosfatos 90:10, de esta manera el pH de la muestra se mantendría ya que el buffer de fosfatos tiene la función de ser un amortiguador de pH. Losgrupos folatos son altamente degradables en contacto con el aire y luz, se propone trabajar en condiciones de reducida luminosidad (casi a oscuras) y evitando el contacto con el aire, esto se logra colocando la muestra bajo una atmósfera de nitrógeno a fin de proteger los compuestos folatos de que se lleve a cabo una oxidación. Los folatos en los alimentos están presentes en distintas formas químicas y en varios estados de oxidación con diferentes sustituyentes del átomo de carbono y diferente grado de conjugación con el ácido glutámico. Se ha estimado que un 80% de los folatos presentes de forma natural en los alimentos se encuentra en forma poliglutámicas y el resto como glutamatos. Las formas poliglutamáticas no son - 28 - asimilables por el organismo, ya que necesitan una desconjugación previa hasta formas monoglutamaticas. Esta transformación es realizada por la enzima g-glutamilhidrolasa o folato conjugasa (8). Los folatos para su análisis cromatográfico requieren ser hidrolizados enzimáticamente a formas monoglutamatos antes de poder ser cuantificados. 9. MATERIALES Y MÉTODOS. 9.1 Muestra de alimento. Leche Descremada en Polvo (LDP) enriquecida con ácido fólico. 9.2 Materiales analíticos. Reactivos Los reactivos usados son específicos para cromatografía líquida como: acetonitrílo, Metanol y agua todos de grado HPLC. Patrones Ácido fólico (AF o PGA) Equipo Para este estudio se utilizó un cromatógrafo de líquidos de alta resolución (HPLC) de marca Perkin Elmer, modelo serie 200, equipado con una bomba cuaternaria, automuestreador, horno con temperatura ajustada a 35°C, con una columna SUPELCO Discovery C18 de 25cm x 4.6mm, loop de inyección de 200 µl, detector ultravioleta con una longitud de onda de 290 nm. El cromatógrafo de líquidos de alta resolución (HPLC) es controlado por un PC con software HP. - 29 - 9.3 Método. Preparación de soluciones • Buffer de Fosfátos pH 6.5 – 7.85 Para un litro de solución se pesan 3.404g de KH2PO4 y 3.919g de NaHPO4 y se afora con agua destilada (el pH se verifica antes de iniciar la sesión experimental). • Bufer de Fosfátos pH 2.2 (fase móvil) Para un litro de solución se pesan 3.404g de KH2PO4 y 3.919g de NaHPO4 y se afora con agua grado HPLC; el pH se ajusta con HCl 6N. • Solución de HCl 6N Para un litro de solución se miden 220mL en probeta de 1000mL y se adiciona agua destilada hasta completar un litro. • Ácido Ascórbico 2% Para 200mL se pesan 4g y se afora con agua destilada. - 30 - 9.4 Desarrollo Experimental. 9.4.1 Preparación del Blanco Adicionar 50mL de buffer de fosfatos pH.6.5-7.85 Homogenizar y someterlo en atmósfera de N2 durante 10seg. Colocar en parrilla a ebullición durante 40min con agitación constante. Homogenizar Enfriar inmediatamente con hielo. Homogenizar y transferir a matraces de 100ml y aforar con buffer pH 6.5 – 7.85. α - 31 - 9.4.2 Preparación del Estándar para análisis por HPLC Adicionar 1 mL de sol. Estándar de ác. Fólico en un matraz ámbar. Adicionar 50mL de buffer de fosfatos pH.6.5-7.85 Adicionar 10mL de ác. Ascórbico 2%. Homogenizar y someterlo en atmósfera de N2 durante 10seg. Colocar en parrilla a ebullición durante 40min con agitación constante. Homogenizar Enfriar inmediatamente con hielo. Homogenizar y transferir a matraces de 100ml y aforar con buffer pH 6.5 – 7.85. α - 32 - 9.4.3 Preparación de la muestra de Leche en Polvo Descremada Pesar de 10g de leche en polvo descremada LDP. Adicionar 50mL de buffer de fosfatos pH.6.5-7.85 Adicionar 10mL de ác. Ascórbico 2%. Homogenizar y someterlo en atmósfera de N2 durante 10seg. Colocar en parrilla a ebullición durante 40min con agitación constante. Homogenizar Enfriar inmediatamente con hielo. Homogenizar y transferir a matraces de 100ml y aforar con buffer pH 6.5 – 7.85. Someter la muestra a centrifugación durante 10min. A 1200rpm. Filtrar la muestra en filtros Whatman Nº 4 y colocarlos en envase ámbar. α - 33 - Purificación de folatos Tomar 5mL y aplicar N2. Introducir a un baño a 37 °C durante 3hrs. Enfriar inmediatamente con hielo. Filtrar la muestra en filtros Whatman Nº 4 y colocarlos en envase ámbar. El tratamiento para el blanco, estándar de ácido fólico y muestra de LDP se llevó a cabo en un sistema de HPLC de la siguiente manera: 9.4.4 Análisis de Folatos con HPLC Estabilizar el sistema con gradiente de acetonitrílo y Fosfato (90:10 , pH 2.2) Ajustar la columna a temperatura de 35°C Longitud de onda de 290nm. α Fijar el flujo de inyección - 34 - 10. RESULTADOS. 10.1 Estándares de ácido fólico Figura 7. Cromatograma del STD de ácido fólico, con una concentración de 3.50µg/mL; tR de 5.26 min. Figura 8. Cromatograma del STD de ácido fólico, con una concentración de 3.50µg/mL; tR de 5.27 min. - 35 - 10.2 Muestras de Leche en polvo descremada (LDP) Figura 9. Cromatograma de la muestra de leche en polvo descremada, tR de ácido fólico 5.31min. Figura 10. Cromatograma de la muestra de leche en polvo descremada, tR de ácido fólico 5.35min. - 36 - Figura 11. Cromatograma de la muestra de leche en polvo descremada, tR de ácido fólico 5.29min Figura 12. Cromatograma de la muestra de leche en polvo descremada, tR de ácido fólico 5.33min - 37 - 10.3 Muestras de leche en polvo descremada (LDP) con la adición de estándar de ácido fólico a diferentes concentraciones. Figura 13. Cromatograma de la muestra de leche en polvo descremada con adición de STD de ácido fólico a concentración de 3.5µg/mL; tR de ácido fólico 5.32 min. Figura 14. Cromatograma de la muestra de leche en polvo descremada con adición de STD de ácido fólico con concentración de 7µg/mL; tR de ácido fólico 5.36 min. - 38 - Figura 15. Cromatograma de la muestra de leche en polvo descremada con adición de STD de ácido fólico con concentración de 10.5µg/mL; tR ácido fólico de 5.37 min. - 39 - 11. DISCUSIÓN. El objetivo de este trabajo es mostrar un método optimizado que permita la extracción e identificación adecuada del ácido fólico en leche en polvo descremada (LDP) con equipo de vanguardia como lo es el sistema de HPLC; para lo cual se hace referencia en autores que han desarrollado métodos reproducibles y confiables como es el caso de Vahteristo et. al. 1998, pues después de este aporte que hizo el método se ha utilizado para la extracción de ácido fólico en diferentes alimentos y los resultados en la mayoría de ellos han sido reproducibles y se han estandarizado y validado. Para la implementación de la técnica de extracción de ácido fólico se consultaron las etapas del método cromatográfico empleado para el análisis de folatos en alimentos basado en el método de Vahteristo et al. (1996); para el cual las etapas de extracción son: homogeneizado, extracción con buffer de fosfatos, desconjugación, purificación, filtración, y el análisis en HPLC; llevando a cabo este procedimiento en el laboratorio de Liconsa GMS se hizo una modificación sometiendo la muestra a un proceso de centrifugación debido a que el cromatógrafo no cuenta con una precolumna la cual pueda hacer más fácil y limpia la inyección en la columna para la obtención del cromatograma. Los estándares de ácido fólico se trabajaron tal cual se indica en el desarrollo experimental, se hicieron variacionesen cuanto al volumen de solubilización esto como se puede observar en la fig. 6 y 7 no produce variaciones considerables en los tiempos de retención de esta forma al procesar la muestra de con volumen de 100mL en lugar de 50mL hace más fácil la filtración en los acrodiscos. Al hacer la inyección en el cromatógrafo de la muestra de leche en polvo descremada se observaron varios picos en el cual hay uno que se aproxima al tiempo de retención que se obtuvo al procesar el estándar, el tiempo de retención de esta muestra fue de 5.31min, aunque se observan dos antes de éste para lo cual se prosiguió inyectando mas muestras para poder verificar la reproducibilidad del cromatograma. - 40 - En la fig. 10 se observa la semejanza que este tiene con el cromatograma de la fig. 9, nuevamente aquí se observa un pico en el tiempo de retención 5.35min. Éste pico es el más próximo al tR de los estándares procesados. Las variaciones de las alturas en cuanto a los picos observados en los cromatogramas pueden deberse a la limpieza en el momento de trabajar o bien en la limpieza de la columna ya que durante las sesiones experimentales fue detectado que la columna retenía fácilmente la acumulación de sólidos, debido a esto no todos los cromatogramas tienen una altura que sea homogénea, a pesar de esta variante sigue saliendo un pico en el tR cercano al detectado en el proceso de los estándares. El tratamiento enzimático al que debe ser sometida la muestra debe llevarse a cabo con la enzima cojugasa (11), debido a que esta enzima convierte los poliglutamatos en monoglutamatos haciendo la identificación por HPLC de manera más fácil y rápida. Se realizó la curva tipo de los estándares de ácido fólico a concentraciones de 3.5µg/mL, 7 µg/mL, 10.5 µg/mL, 14 µg/mL y 17.5 µg/mL, en donde la identificación del ácido fólico se efectúa en un tiempo de retención oscila entre 5.21 y 5.27 min. La respuesta al comportamiento de los estándares trabajados fue lineal (Anexo 1). Durante el procedimiento se trabajaron muestras de leche en polvo descremada y muestras de leche en polvo descremada con la adición de estándar a concentraciones de 3.5µg/mL, 7µg/mL y 10µg/mL; para lo cual se utilizó como referencia los cromatogramas de la curva tipo a dichas concentraciones para tener como referencia el tiempo de retención que podría identificarse el ácido fólico (Anexo 2). Las muestras de leche en polvo descremada, fueron trabajadas con aforos de 100mL debido a que en aforos de 50mL la frecuencia con la que se rompía la membrana de los acrodiscos por los cuales es filtrada la muestra es alta. A pesar de que la muestra era diluida al doble no afecta para la identificación del ácido fólico; esto se comprobó en el tratamiento de los estándares. La filtración de la muestra es fundamental pues en esta etapa se reduce el tamaño de partícula de la muestra a identificar, esta filtración es de las etapas finales del proceso por lo cual debe de hacerse de manera adecuada para - 41 - facilitar la inyección y la identificación del ácido fólico; pues mientras menor sea la cantidad de materia extraña los cromatogramas saldrán limpios. La adición del antioxidante ácido ascórbico no interfiere en la detección del ácido fólico ni en los tiempos de retención, este antioxidante es utilizado debido a la susceptibilidad de los folatos en condiciones oxidativas; el ácido ascórbico otorga estabilidad a las condiciones alcalinas (11). La estabilidad de las soluciones en cuanto a pH eran comprobadas regularmente previo a cada análisis, a fin de comprobar que las concentraciones si correspondían con las determinadas cuando dichas soluciones fueron preparadas para su almacenamiento. Por cuestiones de tiempo no fue posible trabajar con la enzima conjugasa que es la recomendada por referencia bibliográfica Vahteristo et. al. 1998. Aún cuando no se trabajó con dicha enzima los resultados son favorables y reproducibles, ya que se estuvo trabajando con varias muestras en las cuales se comprobó que es viable trabajar la técnica. - 42 - 12. CONCLUSIONES. • Se logró la identificación del ácido fólico en muestras de leche en polvo descremada, con la técnica propuesta. • Los resultados son reproducibles en un 85% de las muestras de leche en polvo descremada procesadas con esta técnica. • El método es fiable y reproducible, aunque para llevar a cabo la estandarización de la técnica es necesario trabajar con la conjugasa para valorar cual de los dos métodos es el más confiable para la cuantificación del ácido fólico. • El pH óptimo para la extracción del ácido fólico es de 6.85 + 0.15. • En el proceso de extracción del ácido fólico el ácido ascórbico utilizado como antioxidante otorga una mayor estabilidad y no interfiere para la identificación. • El cambio de la fase móvil fue fundamental ya que es una mezcla de acetonitrílo – buffer de fosfatos en proporciones de 90:10, lo que ayuda a mantener estable el pH del ácido fólico. • La sensibilidad a la luz, calor y oxígeno de esta molécula la hacen susceptible a los métodos empleados en la preparación de los alimentos, ya que se pierde gran cantidad al lixiviarse con el agua de cocción, puesto que es una vitamina hidrosoluble. • La optimización del método cromatográfico, permite resultados fiables, rápidos para la extracción e identificación del ácido fólico en leche en polvo descremada. - 43 - ANEXO 1 Tlabla 3. Cuadro de datos para elaborar la curva tipo del estándar de ácido fólico. Área Concentración de ácido fólico (µg/mL) 131202 3.5 273588 7 131386 10.5 155746 14 164781 17.5 Figura 16. Curva tipo del estándar de ácido Fólico - 44 - ANEXO 2. Figura 17. Cromatograma del STD de ácido fólico, a concentración de 3.50µg/mL, tR de 5.27 min. Figura 18. Cromatograma del STD de ácido fólico, a concentración de 3.50µg/mL; tR de 5.3 min. - 45 - Figura 19. Cromatograma del STD de ácido fólico, a concentración de 3.50µg/mL, tR de 5.36 min. 13. RECOMENDACIONES. • La adquisición de una precolumna compatible con la columna del cromatógrafo para hacer que la muestra al ser inyectada sea más pura. • Las condiciones físicas de trabajo son en un cuarto con luminosidad roja ya que esta es la de menor intensidad y se evita de esta manera la oxidación del ácido fólico durante la extracción. • Los pH’s de las soluciones deben verificarse antes de iniciar la sesión experimental para evitar variaciones en los resultados. - 46 - 14. BIBLIOGRAFÍA. 1. Badui Dergal, Salvador. 2006. Quimica de los alimentos. México, cuarta edición. Pearson Educación. 2. Boushey C. J., Beresford S.A., Omenn G.S., Motulsky A.G. 1995. A quantitative assessment of plasma homocysteine as a risk factor for vascular disease. Probable benefits of increasing folic acid intakes. J. Am. Med. Assoc. 274: 1049-57. 3. Centers For Disease Control. 1992. Recommendations for the use of folic acid to reduce the number of cases of spina bifida and other neural tube defects. 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