Enviando por email 2-2 - Radiología en las Aves

Vista previa del material en texto

RADIOLOGÍA EN LAS AVES 
Lorenzo Crosta, med vet, PhD 
Consultas Veterinarias sobre Aves y Animales Exóticos y Silvestres 
CLINICA VETERINARIA VALCURONE 
Missaglia - Italia 
lorenzo_birdvet@yahoo.com 
RADIOLOGÍA en las AVES 
• En la medicina aviar hace falta un soporte 
comercial adecuado (kits diagnósticos, 
laboratorios especializados, parámetros de 
referencia, etc.), lo que al revez, representa el 
soporte diagnostico de cada día, para el medico 
veterinario que se ocupa de especies mas 
comunes. 
RADIOLOGÍA en las AVES 
•La radiología, con su simplicidad, y forma directa de 
ofrecer una imagen útil, y de fácil interpretación, es sin 
duda una de las principales herramientas de diagnóstico 
en medicina aviar. 
•En la actualidad el veterinario de pequeños animales 
ya tiene un aparato de radiología, que puede usar para 
tomar radiografías de aves. 
EL APARATO Y LOS VALORES DE 
EXPOSICIÓN 
Las aves son pacientes pequeños y con 
una alta frecuencia respiratoria 
... perdida de detalles por los 
movimientos del paciente 
PROBLEMA: 
EL APARATO Y LOS VALORES DE EXPOSICIÓN 
Disparar con tiempos muy rápidos : 
0.015 - 0.05 segundos. 
SOLUCIÓN: 
EL APARATO Y LOS VALORES DE EXPOSICIÓN 
Usar kilo-voltaje bastante bajo: 45 - 55 kv. 
Lo que permite obtener una más amplia gama de grises, 
que ayudará a diferenciar los tejidos en la placa revelada. 
SOLUCIÓN: 
EL APARATO Y LOS VALORES DE EXPOSICIÓN 
Valor total: 10-20 mAs. 
Por lo tanto se aconseja utilizar un aparato radiológico 
bastante potente, que pueda llegar a estos valores totales 
adoptando el tiempo más rápido posible. 
Aparatos que lleguen a 200 – 300 mA son perfectos. 
SOLUCIÓN: 
LA PELÍCULA 
 Películas mono-emulsión: mejor definición de la imagen. 
 Películas bi-emulsión : valores menores de exposición 
Aunque hoy en día se utilizan siempre mas aparatos 
radiológicos digitales, muchos veterinarios tienen todavía 
aparatos tradicionales, con película. 
LA PELÍCULA 
•Si el tamaño del paciente lo permite, es siempre mejor 
utilizar películas mono-emulsión para mamografía. 
•Debido a la elevada frecuencia respiratoria de las aves, 
se necesita dar preferencia a la rapidez de disparo, 
respecto a los demás valores de exposición. 
CHASIS Y PANTALLAS 
Chasis: casi todos se pueden utilizar. 
Pantallas: mejores las de tierras raras. 
 
Las aves se pueden radiografiar sin parrilla, 
poniéndolas directamente encima del chasis. 
INFORMACIONES GENERALES 
Visualizar el esqueleto de las aves es 
relativamente fácil. 
Diferenciar entre los distintos tejidos blandos 
no lo es… para nada… 
INFORMACIONES GENERALES 
La interpretación de las placas es difícil debido: 
• a la alta compactación de las vísceras, 
• a la falta de un diafragma que separe la cavidad 
torácica de la abdominal, 
• a la poca presencia de grasa perivisceral, que nos 
ayuda a diferenciar entre los distintos órganos. 
INFORMACIONES GENERALES 
Además la grasa de los pájaros presenta una radio-
opacidad similar a la de los tejidos blandos, 
dificultando esto la posterior interpretación. 
POR LO TANTO ES INDISPENSABLE: 
 
• un buen conocimiento de la anatomía radiológica de 
una especie en cuestión; 
 
• una posición totalmente simétrica del paciente, para 
evitar una interpretación errónea. 
INFORMACIONES GENERALES 
ANESTESIA SI - ANESTESIA NO 
• animales muy mansos 
• animales en condiciones críticas, en los cuales los 
riesgos de una anestesia son elevados 
• animales muy jóvenes 
SE PUEDE EVITAR LA ANESTESIA EN LOS SIGUIENTES 
CASOS : 
• pacientes nerviosos y poco manejables, 
• pacientes potencialmente peligrosos. 
 
Se aconseja anestesiar todos pacientes en los cuales 
no hay riesgo en la anestesia. 
Siempre se utiliza isoflurano. 
PONER SIEMPRE BAJO ANESTESIA 
LOS SIGUIENTES PACIENTES: 
ANESTESIA SI - ANESTESIA NO 
Hasta hace poco tiempo, basándose en la fisiología 
anestésica de los mamíferos, se aconsejaba no 
anestesiar las aves para realizar estudios con 
medios de contraste, debido a la posible alteración 
en el tiempo del tránsito intestinal, durante o poco 
después de una anestesia. 
MEDIOS DE CONTRASTE Y ANESTESIA 
Hace unos años, un estudio piloto realizado entre 
la Dra. Angela Lennox, de los EEUU, y el equipo 
veterinario de Loro Parque, ha demostrado que la 
anestesia gaseosa con isoflurano no altera de 
forma significativa este tiempo. 
MEDIOS DE CONTRASTE Y ANESTESIA 
POSICIÓN DEL PACIENTE 
• una trampa especial de plexiglás, 
• inmovilizándolo con esparadrapos, 
• inmovilizándolo con otros materiales 
(guantes de plomo). 
El paciente esté anestesiado o no, puede 
posicionarse con: 
Trampa de plexiglás 
POSICIÓN DEL PACIENTE 
Uso correcto de la trampa de plexiglás 
POSICIÓN DEL PACIENTE 
Uso correcto de la trampa de plexiglás 
POSICIÓN DEL PACIENTE 
• Cabeza: ligeramente extendida 
• Alas: abiertas 90 grados, con respecto al cuerpo 
• Piernas: extendidas caudalmente, y paralelas al cuerpo 
• Quilla: idealmente proyectada encima de la columna 
vertebral 
• Escápulas, caderas y fémures: alineados 
Proyección ventro-dorsal : 
POSICIÓN DEL PACIENTE 
PROYECCIÓN 
VENTRO-DORSAL 
• Alas: extendidas dorsalmente y fijadas juntas. 
•Entre ellas se pondrá un pequeño espesor, para evitar una 
excesiva extensión del ala mas alejada de la mesa, y una posible 
rotación del cuerpo. 
• Patas: se fijan separadas. La más cercana a la mesa un poco 
craneal, y la otra más caudal. 
• Caderas, Costillas, Coracoides y Riñones: sobrepuestos 
POSICIÓN DEL PACIENTE 
Proyección latero-lateral : 
PROYECCIÓN LATERO-LATERAL 
PROYECCIÓN LATERO-LATERAL 
MEDIOS DE CONTRASTE 
 Sobretodo para el estudio del aparato digestivo. 
 También para averiguar a que aparato pertenecen 
masas radio-densas, e intracelómicas, que la radiología 
normal no permite diferenciar. 
 Una técnica raramente usada en aves es la urografía. 
 Sulfato de Bario: La solución comercial se debe 
diluir hasta obtener una concentración del 25 - 45 %. 
Se embucha tal solución a una dosis de 20 ml/Kg. 
 Iohexol (Omnigraf 300®): misma dosis. Teniendo 
presente que tiene un tiempo de tránsito casi del 
doble del SdB 
ESTUDIO DEL APARATO DIGESTIVO CON 
MEDIO DE CONTRASTE 1º 
•Mantener el paciente sin comer ± dos horas antes de la 
administración del medio de contraste. No alargar 
demasiado este ayuno porque puede alterarse el tiempo de 
tránsito. 
Efectuando estudios radiográficos con medios 
de contraste es necesario seguir las siguientes reglas: 
•Realizar siempre dos radiografías previas sin medio de 
contraste (VD y LL), antes de empezar el estudio. 
Efectuando estudios radiográficos con medios 
de contraste es necesario seguir las siguientes reglas: 
•Mantener el paciente sin comer ± dos horas antes de la 
administración del medio de contraste. No alargar 
demasiado este ayuno porque puede alterarse el tiempo 
de tránsito. 
•Evitar el uso de Sulfato de Bario si se sospecha de rotura 
intestinal. 
Efectuando estudios radiográficos con medios 
de contraste es necesario seguir las siguientes reglas: 
•Mantener el paciente sin comer ± dos horas antes de la 
administración del medio de contraste. No alargar 
demasiado este ayuno porque puede alterarse el tiempo de 
tránsito. 
•Realizar siempre dos radiografías previas sin medio de 
contraste (VD y LL), antes de empezar el estudio. 
Tiempo de Tránsito Intestinal Psittacus erithacus 
ESTUDIO DEL A. DIGESTIVO - M. DE CONTRASTE 
Tiempo de Tránsito Intestinal Gracula religiosa 
ESTUDIO DEL A. DIGESTIVO - M. DE CONTRASTE 
Guacamayo de frente roja 
(Ara rubrogenys) 
30 minutos 
ESTUDIO DEL APARATO DIGESTIVO CON M. DE 
CONTRASTE 
Guacamayo de frente roja 
(Ara rubrogenys) 
60 minutos 
ESTUDIO DEL APARATO DIGESTIVO CON M. DE 
CONTRASTE 
Guacamayo de frente roja 
(Ara rubrogenys)120 minutos 
ESTUDIO DEL APARATO DIGESTIVO CON M. DE 
CONTRASTE 
ESTUDIO DEL APARATO DIGESTIVO CON MEDIO 
DE CONTRASTE 
Guacamayo azul y amarillo (A. Ararauna) 
Inhalación accidental del medio de 
contraste 
El estudio urográfico se centra solo en los 
uréteres. 
• Por que las aves: 
 - no tienen vejiga, 
 - no tienen pelvis renal, 
 - no tienen uretra. 
Una técnica poco utilizada es la urografía 
ESTUDIO DEL APARATO URINARIO CON 
MEDIO DE CONTRASTE 
 De todas formas se pueden utilizar compuestos 
yodados (Renografin®) a una dosis de 700 - 800 mg 
de yodo/Kg PV. 
 Para estudiar patologías renales se utilizan 
normalmente otras técnicas, como por ejemplo 
biopsias. 
ESTUDIO DEL APARATO URINARIO CON 
MEDIO DE CONTRASTE 
UROLITIASIS EN UN 
PINGÜINO 
SALTAROCA 
Urografia discendente: 
es evidente la interrupción 
del ureter derecho 
(proyección DV)‏ 
1 min. post inoculación 
ASPECTO RADIOGRÁFICO DE LAS AVES 
CRÁNEO 
• El cráneo aviar esta constituido por varios senos, los 
cuales pueden tener un aspecto muy complejo. 
• En unos grupos taxonómicos (por ejemplo 
Psittaciformes), el pico superior se articula con el hueso 
frontal. 
• Los pájaros tienen una cadena de pequeños huesos 
escleróticos, muy visibles en el ojo. 
Ara ararauna, craneo 
Ara ararauna, 
craneo 
Poicephalus robustus, cráneo, LL 
Poicephalus robustus, 
cráneo, VD 
Osteomielitis de la 
rama mandibular 
Cacatúa negra de cola roja (Calyptorhynchus banksii), LL 
Absceso en la unión del hueso 
frontal con la ranfoteca superior 
Cacatúa negra de cola roja (Calyptorhynchus banksii) 
Aspecto externo de la lesion en la unión del 
hueso frontal con la ranfoteca superior 
Cacatúa de cresta amarilla mayor (Cacatua galerita)‏ 
Unión normal del hueso frontal con la ranfoteca superior 
Inseparable de cuello rosa (Agapornis roseicollis)‏ 
Proceso inflamatorio de la ranfoteca superior 
Tucano toco (Ramphastos toco)‏ 
Loro de Müller (Tanygnathus sumatranus), cráneo, DV 
Panoftalmitis y lisis de 
los huesos 
escleróticos 
Loro de Müller (Tanygnathus sumatranus)‏ 
Ojo izquiero 
Ojo derecho 
COLUMNA VERTEBRAL 
• Cervical: entre 10 y 25 vértebras, según la especie. Los 
loros suelen tener 12. 
• Torácica. 
• Sinsacrál: constituida por la fusión de las vértebras 
lumbares, sacráles y caudales. 
• Vértebras Caudales Libres. 
• Pigostilo: ultimas vértebras caudales fusionadas. 
Frailecillo (Fratercula arctica), 
cuello, LL & VD 
Aratinga wagleri, escoliosis 
CINTURA ESCAPULAR & ESTERNÓN 
La Cintura Escapular está formada por los siguientes 
huesos: 
• Clavículas: se unen para formar la forcula, 
• Coracoides: no hay análogo en los mamíferos, 
• Escápula: muy delgada y alargada 
 
El Esternón, a excepción de los Ratities, presenta una 
quilla que sirve para anclar los potentes músculos 
pectorales 
Amazona ochrocephala, cintura escapular 
Amazona ochrocephala, claviculas 
Amazona ochrocephala, coracoide 
Amazona ochrocephala, escápula 
EXTREMIDADES SUPERIORES 
El esqueleto del ala está constituido por: 
• Húmero 
• Radio 
• Ulna: de mayor tamaño que el radio 
• Huesos del carpo: radial y ulnar 
• Carpo-metacarpo 
• Mano, que incluye: 
• huesos de la álula 
• dos metacarpianos 
• falanges 
Ara rubrogenys, ala 
Húmero 
Ara rubrogenys, ala 
Radio 
Ara rubrogenys, ala 
Ulna 
Ara rubrogenys, ala 
Carpo 
Carpometacarpo 
¿ Que aves es este ? 
Murciélago egipcio de la fruta (Rousettus aegyptiacus)‏ 
Notar como el radio es el hueso mayor del antebrazo 
(típico de los mamíferos)‏ 
Radio 
Omero 
Ulna 
¿ Que aves es este ? 
Amazona ochrocephala, 
osteosarcoma 
CINTURA PÉLVICA 
• Sinsacro, 
• Ileon e Isquion, que están fusionados 
• Pubis, independiente. 
La Cadera Aviar incluye: 
Ganso doméstico 
(Anser anser)‏ 
cintura pélvica 
Pigóstilo 
Art. 
Coxo- 
femoral 
Vertebras 
caudales 
Sinsacro 
Pubis 
Frailecillo (Fratercula arctica)‏ 
Agenesia bilateral de ambas las cabezas del femur 
Amazona oratrix 
lesiones graves de la 
cadera y de la columna 
sacral 
EXTREMIDADES INFERIORES 
• Fémur, 
• Rótula, 
• Tibio-tarso, 
• Fíbula (Peroné) 
• Tarso-metatarso, 
• Dedos (generalmente cuatro). 
El esqueleto de la extremidad inferior está 
constituido por: 
Fémur 
Tibio-tarso 
Tarso-metatarso 
KEA 
(Nestor notabils) 
Extremidades 
inferiores 
Fíbula 
Cacatua g. eleonora 
fractura de la 2ª 
falange de 2° 
dedo 
Halcón de Harris (Parabuteo unicinctus) 
fractura de 
dedo 
APARATO RESPIRATORIO 
El aparato respiratorio quizá es 
el aparato que más diferencia 
a las aves de los mamíferos. 
TRAQUEA 
Radiológicamente muy visible, porqué esta constituida 
por anillos cartilaginosos cerrados. 
 
En algunas especies tiene una forma particular: 
• En los Minás o Beos forma un ángulo con ápex ventral, 
en la entrada al tórax; 
• En las Grullas, sobretodo en algunas especies, forma 
como un “ovillo”; 
• En los machos de muchos Anseriformes forma una 
bulla muy bien evidente en las placas. 
Cacatúa negra de cola roja 
(Calyptorhynchus banksii), LL 
Tráquea cervical 
Grulla damisela [Grus (Anthropoides) virgo] 
Tráquea torácica 
Miná [Gracula religiosa] 
Tráquea torácica 
Tucan toco [Ramphastos toco] 
Tráquea torácica 
PULMONES 
En la proyección latero-lateral aparecen como una 
imagen en forma de “nido de abeja”, debido a la 
estructura de la porción más distal de los 
parabronquios. 
Las enfermedades pueden aumentar la 
radiodensidad de tal imagen, o tal vez disminuirla, 
hasta desaparecer. 
Ara ararauna: 
Área pulmonar, 
proyección VD 
Ara ararauna: área pulmonar, proyección LL 
PULMONES 
Imagen de “nido de abeja”, 
SACOS AÉREOS 
• Los sacos aéreos (generalmente nueve), son 
evidentes y aparecen como zonas oscuras (llenas de 
aire) al interior del cuerpo. 
• Es normal que tengan una tonalidad gris análoga 
a la del aire externo de alrededor del ave (teniendo 
presente que hay unos tejidos blandos en el 
medio). 
SACOS AÉREOS 
• En el caso de existir aerosaculitis, el aspecto 
radiológico de los sacos aéreos puede variar, tanto 
sea en la forma, en la tonalidad del gris o por la 
presencia de lesiones focales. 
 
 
neumonía, aerosaculitis. Amazona pretrei, 
 
 
 neumonía, 
 aerosaculitis. 
 Amazona pretrei, 
Ara ararauna 
aerosaculitis 
Fíjense en la diferencia de 
tonalidad del gris entre el 
aire exterior del cuerpo y 
los sacos aéreos. 
Psittacus erithacus aerosaculitis 
 
Las lesiones son mas claras en la 
proyección lateral 
APARATO 
CIRCULATORIO 
El aparato circulatorio aviar 
se constituye, más o menos, 
de las mismas porciones de 
las cuales se constituye el 
análogo aparato en los 
mamíferos 
CORAZÓN 
• En muchas especies el corazón está puesto 
entre la segunda y la sexta costilla torácica. 
• El ancho de la base cardiaca debería ser, 
más o menos, el 50% del ancho máximo de la 
cavidad celómica. 
Radiografía de un 
Guacamayo rojo (Ara 
macao ) en buena salud. 
El tamaño del corazón 
(1), se puede evaluar en 
función del ancho de la 
cavidad celómica. (2). 
El hígado (3) se situa 
abajo del corazón, y sus 
lóbulos envuelven el 
apex cardíaco 
CORAZÓN 2° 
• El corazón forma, junto con el hígado, una 
figura de reloj de arena, cuya silueta puede variar 
por ciertas patologías. 
• Las únicas alteraciones cardiacas 
radiológicamente evidentes son: 
- cardiomegalia, 
- microcardia, 
- aterosclerosis, con mineralización de los 
grandes vasos cardíacos. 
Ara ararauna 
silueta cardiaca 
hígado 
Ara macao, aterosclerosis de los grandes vasos cardiacos 
Amazona ochrocephala 
cardiomegalia 
 
 
APARATO DIGESTIVO 
El aparato digestivo 
de las aves es 
relativamente corto, 
comparado al de los 
mamíferos. 
Se divide en: 
 esófago cerv., 
 buche, 
 esóf. torac., proventrículo, 
 ventrículo, 
 intestino, 
 cloaca. 
ESÓFAGO CERVICAL y BUCHE 
- En la proyección VD, están en el lado derecho. 
 
- En algunas especies (Columbiformes), el buche se 
extiende hasta el lado izquierdo. 
 
- Si el buche está solo en el lado izquierdo, siempre 
es patológico. 
Ara rubrogenys 
Buche, bario, LL Buche, bario, VD 
 
 
PROVENTRÍCULO y VENTRÍCULO 
- Proventrículo: 
• En la proyección VD está ligeramente a la izquierda de la 
línea media, 
• En la proyección LL está dorsal al hígado . 
 
- Ventrículo: se puede identificar fácilmente, porque 
muchas veces tiene gritt, o material radio-opaco. 
• En la proyección LL está puesto caudo-ventralmente al 
proventrículo, 
• En la proyección VD está ligeramente a la izquierda de la 
línea media, 
Proventrículo 
Ventrículo 
Ara rubrogenys 
Cacatua s. abbotti 
PDD 
Proventricular 
Dilatation 
Disease 
Ara ararauna: dilatación de 
proventrículo 
Paciente ABV positivo (PCR y serología) 
Cacatua alba: dilatación de 
proventrículo 
Este paciente es negativo tanto a la biopsia de buche, como 
al test de Bornavirus (PCR y serología) 
 
 
INTESTINO 
• Las diferentes porciones del intestino no se pueden 
distinguir bien, 
• a menos que contengan aire o líquidos (y esto siempre se 
debe considerar anormal). 
Excepciones : 
• jóvenes no destetados; 
• Minás y Tucanes: en estos pájaros la presencia de 
fluidos no es anómala, pero sí lo es la de gases. 
Amazona auropalliata 
Parálisis Intestinal 
Psittacus erithacus 
Ileo paralítico 
BAZO 
 No es un órgano que se pueda identificar siempre en 
las placas, 
 El bazo normal (no patológico) solo se puede ver en la 
proyección LL, 
 En los psitácidos es un órgano redondo, que aparece 
en la parte dorsal de la unión entre proventrículo y 
ventrículo. 
Ara ararauna, bazo 
• en muchas aves y sobretodo en los loros, en la 
proyección VD, el hígado aparece junto al corazón para 
formar una figura de reloj de arena. 
 
• La alteración de tal silueta puede depender de: 
 una patología cardiaca; 
 una hepatopatía; 
 una patología del proventrículo. 
HÍGADO 1° 
• En la proyección VD los márgenes hepáticos no 
deberían pasar una raya que vaya de la articulación 
escápulo-humeral hasta el acetábulo. 
• En la proyección LL el hígado no debe pasar el 
esternón. 
HÍGADO 2° 
Ara ararauna 
silueta cardiaca 
hígado 
reloj de arena 
cardio-hepático 
• Están divididos en tres lóbulos (craneal, medio y 
caudal). 
 
• Desde ellos salen los uréteres, que desembocan 
directamente en la cloaca (urodeo), porque las aves 
no tienen vejiga urinaria. 
RIÑONES 
•No se ven bien en las proyecciones VD, 
• Pero son fácilmente identificables en las 
proyecciones LL, 
• Su silueta se encuentra en la parte dorsal de 
la cavidad celómica, como si estuvieran 
“colgando” del sinsacro. 
RIÑONES 
Amazona brasiliensis, silueta renal 
Chalcopsitta sintillata, tumor renal 
(Chalcopsitta 
sintillata)‏ 
tumor renal: 
visión 
necroscópica 
Son bien visibles en la proyección LL, donde 
aparecen como cuerpos ligeramente radio-
densos, situados cráneo-ventrales al lóbulo 
craneal del riñón. 
GONADAS 
GONADAS 
No obstante, conocer el sexo de un ave por 
via radiológica, todavía no es posible. Las 
únicas excepciones son las hembras muy 
cerca de la puesta... pero esto acontece 
“radiológicamente” pocas veces. 
GONADAS 
APARATO REPRODUCTOR 
Búho de anteojos (Pulsatrix perspicillata) 
… huevo… 
OTRAS TÉCNICAS 
Águila esteparia (Aquila nipalensis) granuloma pulmonar 
endoscopia y tomografía axial computarizada 
OTRAS TÉCNICAS 
Guacamayo jacinto (Anodorhynchus hyacinthinus) 
tumor lateralmente al ojo izquierdo 
tomografía axial computarizada 
OTRAS TÉCNICAS 
Inseparable de cuello rosa (Agapornis roseicollis)‏ 
Calcificación de la pared gastrica 
tomografía axial computarizada 
RADIOLOGÍA 
AVIAR 
Lorenzo Crosta, med vet, PhD 
Consultas Veterinarias sobre Aves y Animales Exóticos y Silvestres 
CLINICA VETERINARIA VALCURONE 
Missaglia - Italia 
lorenzo_birdvet@yahoo.com