Biometria hematica - Rubí Hernández(1)

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Fecha: 26 de Octubre del 2020 
Nombre del módulo: Analiza y 
fracciona sangre con fines 
transfusionales 
Grupo: 5°A 
Número de actividad: 2 
Nombre de la actividad: Reporte 
documental de Biometría Hemática 
Nombre del alumno: Rubí Elena 
Hernández de los Santos 
 
B I O M E T R Í A H E M Á T I C A 
La biometría hemática es un estudio médico también conocido como hemograma. Se centra en 
observar y examinar la sangre, pero más en específico las células que están presentes en ella, es 
decir, los glóbulos rojos (eritrocitos), que son los que transportan oxígeno a todo el cuerpo; los glóbulos 
blancos (leucocitos), nos ayudan a combatir infecciones; y las plaquetas, que tienen como función 
principal detener hemorragias creando coágulos. 
D E T E R M I N A C I Ó N M A N U A L 
H E M O G L O B I N A 
Fundamento: La determinación de hemoglobina se basa en la formación de un complejo cromógeno 
estable que se mide a una longitud de onda de 525 nm. 
Método: Proceso químico libre de cianuro 
Metodología: 
1. De acuerdo con el volumen de la muestra se escoge entre el modo dilución o el completo. 
2. Después de agitar la muestra 10 veces manual o con el agitador rotatorio. En modo completo 
se coloca el tubo con la muestra en uno de los segmento de la aguja y se posiciona en sobre la 
misma. Se oprime el botón azul “Muestreo” y el equipo de manera automática realiza la 
aspiración de la muestra. 
3. En modo dilución se realiza dilución 1 a 1, se oprime menú/recuento/dilución, se introduce la 
muestra bajo la sonda de aspiración y oprimimos el botón azul “Muestreo”, se retira la copa 
cuando el equipo termine la aspiración de la muestra. 
4. Durante la aspiración de la muestra el equipo separa una alícuota de 12 µL de sangre total y 
los lleva a la válvula de segmentación. 
5. La jeringa del diluyente/reactivo envolvente dispensa 1.7 ml a través de la válvula de 
segmentación y transfiere la alícuota de hemoglobina a la cámara d e mezcla para el análisis 
de hemoglobina 
6. La jeringa de reactivo hemolizante HGB dispensa 0.9 ml de reactivo hemolizante en la cámara 
de muestra. La dilución se mezcla dando como resultado una dilución 1:218. 
7. Un diodo LED de baja potencia acoplado a la celda de flujo HGB mide la absorbancia de luz a 
555 nm. Se realiza n cinco lecturas separadas de hemoglobina de la muestra. Se elimina el 
valor mínimo y el valor máximo y se promedian las tres lecturas restantes para obtener el valor 
final de la hemoglobina en la muestra. 
8. La absorbancia es proporcional a la concentración de HGB en la muestra. 
Burd S., Thorup A., Hematología Clínica, 4ed., México, 
Editorial interamericana, 1978. 2. Arguelles R., 
Fundamentos de Hematología, España, Editorial 
Panamericana, 1994. 3. Williams W., Hematología, 2da., 
España, Editorial Salvat, 1983. 4. Rapaport S., 
Introducción a la Hematología, 2da., España, Editorial 
Salvat, 1993. 
9. Después de realizar las lecturas de hemoglobina, la celda de flujo H GB se lava con 
diluyente/reactivo envolvente. 
10. Se reporta en g/dL 
Valores de referencia: Hemoglobina (Hb). Mujeres: 12.1 – 15.1g/dL. Hombres: 13.8 – 17.2g/dL. 
Resultados: La hemoglobina, es la encargada de la fijación del oxígeno y el dióxido de carbono en la 
sangre. Conocer su concentración es de gran utilidad. 
- Si se encuentran disminuidos sugiere: - Anemia, Embarazo, Enfermedades Renales o pulmonares. 
Hemorragia. 
- Si se encuentran Aumentados sugiere: - Poliglobulias. - Tumores cerebrales. - una apoplejía 
(accidente cardiovascular agudo, infarto cerebral) - meningitis . - También en caso lugares de mucha 
altitud. Por sí solos no sirven de mucho. Es importante compararlos con la hemoglobina y el 
hematocrito. 
 
 
H E M A T O C R I T O 
Fundamento: Se calcula a partir del recuento de ERITrocitos y del volumen corpuscular medio 
mediante la ecuación: HCT = (WBC x MCV) / 10 BC 3000. Se cuenta y distribuye a las células por 
tamaño por medio de la detección y medición de los cambios en la resistencia eléctrica cuando una 
partícula (como unas células) en un líquido conductor pasa a través de una pequeña apertura 
Método: Impedancia. 
Metodología: 
1. De acuerdo con el volumen de la muestra se escoge entre el modo dilucion o el completo. 
2. Después de agitar la muestra 10 veces manual o con el agitador rotatorio. En modo completo 
se coloca el tubo con la muestra en uno de los segmento de la auja y se posiciona en sobre la 
misma. Se oprime el botón azul “Muestreo” y el equipo de manera automática realiza la 
aspiración de la muestra. 
3. En modo dilución se realiza dilución 1 a 1, se oprime menú/recuento/dilución, se introduce la 
muestra bajo la sonda de aspiración y oprimimos el botón azul “Muestreo”, se retira la copa 
cuando el equipo termine la aspiración de la muestra. 
4. Durante la aspiración de la muestra, se separa un alícuota de 1.67 l en la válvula de 
segmentación para el análisis de WBC/PLT. 
5. La jeringa del diluyente/reactivo envolvente dispensa 2.79 ml de diluye nte en la válvula de 
segmentación. La muestra y el diluyente son dirigidos a la camára de mezcla de WBC/PLT, 
donde la dilución es mezclada, dando lugar a una dilución de 1:1675. 
6. La bomba de transferencia de muestra conduce la dilución WBC/PLT de la cámara de mezcla 
a la tobera de inyección de muestra de la celda de flujo óptica: La jeringa volumétrica inyecta 
24 L de esa dilución sobre la corriente del reactivo envolvente. A continuación se procede al 
enfoque hidrodinámico de la muestra, con objeto de alinear las células en una sola hilera, a su 
paso por la celda de flujo óptica, que es una cámara de cuarzo. La fuente luminosa es un rayo 
laser de Helio-neón polarizad o verticalmente. 
7. Los parámetros eritrocitarios se calculan utilizando los datos de sensor 0ª, 10ª y 90 ª. 
8. Se reporta en células mill/µL 
9. Esquema de celda de flujo óptica: 
10. 1.- Tobera de inyección d e muestra 
11. 2.- Corriente de reactivo envolvente. 
12. 3.- Corriente de la muestra. 
13. 4.- Ángulos diferentes de luz esparcida. 
Valores de referencia: Mujeres: 36-46 % Hombres: 41-53 % 
Resultados: Hemoglobina Corpuscular media (HCM) 27-34pcr. Se expresa en picogramos. Expresa 
la cantidad de Hemoglobina contenida en cada Eritrocito, por ende la capacidad de trasporte y 
fijación de oxigeno y dióxido de carbono que pose el eritrocito. Permite valorar Pigmentación de los 
eritrocitos. 
Si HCM Se encuentra NORMAL: Homocromía/ normocromía Celular. 
Si HCM Se encuentra ELEVADA: Hipercromía Celular. 
Si HCM Se encuentra DISMINUIDA: Hipocromía Celular. 
Durante la reticulocitosis permanece normal o ligeramente elevado. 
L E U C O C I T O S 
Fundamento: Se mide directamente y se expresa de la siguiente forma: WBC = n° x 103 cel/mcL BC 
3000. Se cuenta y distribuye a las células por tamaño por medio de la detección y medición de los 
cambios en la resistencia eléctrica cuando una partícula (como una células) en un líquido conductor 
pasa a través de una pequeña apertura 
Método: Impedancia. 
Metodología 
1. De acuerdo con el volumen de la muestra se escoge entre el modo dilucion o el completo. 
2. Después de agitar la muestra 10 veces manual o con el agitador rotatorio. En modo completo 
se coloca el tubo con la muestra en uno de los segmento de la auja y se posiciona en sobre la 
misma. Se oprime el botón azul “Muestreo” y el equipo de manera automática realiza la 
aspiración de la muestra. 
3. En modo dilución se realiza dilución 1 a 1, se oprime menú/recuento/dilución, se introduce la 
muestra bajo la sonda de aspiración y oprimimos el botón azul “Muestreo”, se retira la copa 
cuando el equipo termine la aspiración de la muestra. 
4. La jeringa de reactivo hemolizante WBC dispensa 0.973 ml de reactivo hemolizante a través 
de la válvula de segmentación, de los cuáles 20 mL se transfieren a la cámara de mezcla 
WBC/calefactor WOC. 
5. Está alícuota de la muestra y el reactivo son dirigidos hacia la cámara de mezclaWBC/calefactor WOC, donde se mezcla la dilución. Finalmente, se obtiene una dilución 1:50. 
La muestra diluida permanece en la cámara de mezcla durante 14 segundos para la hemólisis 
de eritrocitos . 
6. La bomba de transferencia de muestra conduce la dilución WBC de la cámara de 
mezcla/calefactor WOC a la tobera de inyección de muestra de la celda flujo óptica. 
7. El diluyente/reactivo envolvente, sometido a una presión constante e n el depósito, se 
transfiere a la celda de flujo óptica. 
8. La jeringa volumétrica dispensa secuencialmente 46.5 L de la dilución WBC en la celda de 
flujo con una presión ( y velocidad) inferior a la del diluyente/reactivo envolvente 
9. Se reportan en Cél/mm3 
Valores de referencia: 4,8-10,5 mil/mm³ (en unidades SI: 4,5-10,5 x 109/L) 
• polimorfonucleares, de los cuales: 
• neutrófilos (50-70 %) 
• eosinófilos (1-4 %) 
• basófilos (<1 %) 
• monomorfonucleares, de los cuales: 
• linfocitos (20-40 %) 
• monocitos (2-8 %) 
Resultados: WDC: recuento de células blancas o Leucocitos = Leucocitosis Absoluta Neutrófil: 
Neutrófilos= Neutrófilia Absoluta Linf: Linfocitos= Linfocitosis Absoluta. Eosinofilos: Eosinofilia relativa 
 
P L A Q U E T A S 
Fundamento: Se mide directamente y se expresa de la siguiente forma: PLAQ = n° x 103 cel/mcL 
Se cuenta y distribuye a las células por tamaño por medio de la detección y medición de los cambios 
en la resistencia eléctrica cuando una partícula (como una célula) en un líquido conductor pasa a 
través de una pequeña apertura 
Método: Impedancia. 
Metodología: 
1. De acuerdo con el volumen de la muestra se escoge entre el modo dilucion o el completo. 
2. Después de agitar la muestra 10 veces manual o con el agitador rotatorio. En modo completo 
se coloca el tubo con la muestra en uno de los segmento de la auja y se posiciona en sobre la 
misma. Se oprime el botón azul “Muestreo” y el equipo de manera automática realiza la 
aspiración de la muestra. 
3. En modo dilución se realiza dilución 1 a 1, se oprime menú/recuento/dilución, se introduce la 
muestra bajo la sonda de aspiración y oprimimos el botón azul “Muestreo”, se retira la copa 
cuando el equipo termine la aspiración de la muestra. 
4. La jeringa del diluyente/reactivo envolvente dispensa 2.79 ml de diluyente en la válvula de 
segmentación, de los cuales se separa un alícuota de 1.67 l en la válvula de segmentación 
para el análisis de WBC/PLT. La muestra y el diluyente son dirigidos a la cámara de mezcla 
de BC/PLT, donde la dilución es mezclada, dando lugar a una dilución de 1:1675. 
5. La bomba de transferencia de muestra conduce la dilución WBC/PLT de la cámara de mezcla 
a la tobera de inyección de muestra de la celda de flujo óptica: La jeringa volumétrica inyecta 
24 L de esa dilución sobre la corriente del reactivo envolvente. A continuación se procede al 
enfoque hidrodinámico de la muestra, con objeto de alinear las células en una sola hilera, a su 
paso por la celda de flujo óptica, que es una cámara de cuarzo. La fuente luminosa es un rayo 
láser de Helio-neón polarizad o verticalmente. 
6. Los parámetros plaquetarios se calculan utilizando los datos de sensor 0ª y 10ª. 
7. Se reporta en células mil/µL 
8. El VPM se deriva del histograma de las plaquetas, después de determinar el recuento de 
plaquetas. Este parámetro se expresa en femtolitros. 
9. Esquema de celda de flujo óptica: 
10. 1.- Tobera de inyección de muestra o 
11. 2.- Corriente de reactivo envolvente. o 
12. 3.- Corriente de la muestra. o 
13. 4.- Ángulos diferentes de luz esparcida 
Valores de referencia: 150 000-400 000/mm³ (en unidades SI: 150-400 x 109/L) 
Resultados: -Un conteo alto de plaquetas es de 400,000 (400 × 109/L) o superior. 
Una cantidad de plaquetas más alta de lo normal se llama trombocitosis. Esto quiere decir que su 
cuerpo está produciendo demasiadas plaquetas. Las causas pueden incluir: 
• Un tipo de anemia en la cual se destruyen glóbulos rojos en la sangre antes de lo normal 
(anemia hemolítica) 
• Deficiencia de hierro 
• Después de ciertas infecciones, cirugía mayor o traumatismo 
• Cáncer 
• Ciertos medicamentos 
• Enfermedad de la médula ósea llamada neoplasia mieloproliferativa (lo que incluye 
la policitemia vera) 
• Extirpación del bazo 
Algunas personas con conteos altos de plaquetas pueden estar en riesgo de formación de coágulos 
sanguíneos o incluso de sangrar demasiado. Los coágulos de sangre pueden llevar a problemas 
serios de salud. 
-Un conteo bajo de plaquetas está por debajo de 150,000 (150 × 109/L). Si su conteo de plaquetas es 
inferior a 50.000 (50 × 109/L), su riesgo de sangrado es mayor. Incluso las actividades cotidianas 
pueden causar hemorragia. 
Un conteo de plaquetas más bajo de lo normal se denomina trombocitopenia. El bajo conteo puede 
dividirse en 3 causas principales: 
• No se están produciendo suficientes plaquetas en la médula ósea 
• Las plaquetas se están destruyendo en el torrente sanguíneo 
• Las plaquetas se están destruyendo en el bazo o el hígado 
Tres de las causas más comunes de este problema son: 
• Tratamientos contra el cáncer, como quimioterapia o radiación 
• Fármacos y medicamentos 
• Trastornos autoinmunitarios, que ocurren cuando el sistema inmunitario ataca y destruye por 
error tejido corporal sano, como plaquetas 
Si su conteo de plaquetas es bajo, hable con su proveedor de atención médica sobre cómo prevenir 
el sangrado y qué hacer si está sangrando. 
https://medlineplus.gov/spanish/ency/article/000589.htm
https://medlineplus.gov/spanish/ency/article/001124.htm
https://medlineplus.gov/spanish/ency/article/001124.htm
https://medlineplus.gov/spanish/ency/article/000586.htm
https://medlineplus.gov/spanish/ency/article/002324.htm
https://medlineplus.gov/spanish/ency/article/001918.htm
https://medlineplus.gov/spanish/ency/article/000556.htm
https://medlineplus.gov/spanish/ency/article/000816.htm