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Revista Siembra CBA / No. 2 - 2019 81 Resumen En el Centro de Biotecnología Agropecuaria del SENA, en Mosquera Cundinamarca, se desarrolló durante el año 2018 el proyecto titulado “Implementación y evaluación de un sistema de cultivo de microalgas en el tratamiento de aguas residuales del Centro de Biotecnología Agropecuaria”. Dentro de las actividades en este proyecto, se estableció la adaptación de cepas microalgales provenientes del banco de microalgas del Centro Internacional Náutico y Portuario SENA, en Cartagena Bolívar, a las condiciones ambientales en el municipio de Mosquera. Para el caso de las cepas de Chlorella sp., Chlamydomona sp. y Scenedesmus sp. utilizadas en este proyecto, la adaptación de éstas fue exitosa, siendo Scenedesmus sp. la especie con la mayor velocidad de crecimiento poblacional. Palabras clave: Chlorella, Chlamydomona, Scenedesmus, microalgas, adaptación. Adaptación de cepas microalgales (Scenedesmus sp., Chlorella sp. Y Chlamydomona sp.) a las condiciones ambientales en el municipio de Mosquera, Cundinamarca. Adaptation of microalgal strains microalgales (Scenedesmus sp., Chlorella sp. y Chlamydomona sp.) to the environmental conditions in Mosquera, Cundinamarca. Mario Andrés Colorado Gómez*, Alejandra León Fonseca** y Oscar Daniel Merchancano Benavides*** Reporte de Caso *Biólogo Marino de la Universidad Jorge Tadeo Lozano / MBA, University of Phoenix / Instructor SENNOVA en el Centro de Biotecnología Agropecuaria - SENA **Licenciada en Biología de la Universidad Distrital Francisco José de Caldas/ Instructora en el Centro de Biotecnología Agropecuaria - SENA ***Ingeniero Ambiental de la Universidad Nacional de Colombia / Instructor en el Centro de Biotecnología Agropecuaria - SENA Fecha de recepción: 15 de marzo de 2019 Fecha de aceptación: 25 de abril de 2019 82 Revista Siembra CBA / No. 2 - 2019 Artículo de Investigación Abstract At the Centro de Biotecnología Agropecuaria del SENA, in Mosquera Cundinamarca, the project "Implementation and evaluation of a microalgae cultivation system for wastewater treatment at the Centro de Biotecnología Agropecuaria" was developed in 2018. Among the activities in this project, the adaptation of microalgal strains from the microalgae bank of the Centro Internacional Nautico y Portuario del SENA, in Cartagena Bolívar, to the environmental conditions in the municipality of Mosquera was established. In the case of the strains of Chlorella sp., Chlamydomona sp. and Scenedesmus sp., used in this project, the adaptation of these was successful, being Scenedesmus sp. the species with the highest population growth rate. Key words: Chlorella, Chlamydomona, Scenedesmus, microalgae, adaptation. Cultivo de microalgas en el CBA Los ensayos biológicos son herramientas de diagnóstico adecuadas para determinar el efecto de agentes físicos y químicos sobre organismos de prueba, bajo condiciones experimentales específicas y controladas. Estos efectos pueden ser tanto de inhibición como de magnificación, evaluados por la reacción de los organismos tales como muerte, crecimiento, proliferación, multiplicación, cambios morfológicos, fisiológicos o histológicos (FAO, 2018). La adaptación de microorganismos a las condiciones medioambientales propias de la zona donde se espera iniciar los cultivos, se ha de realizar teniendo en cuenta los efectos que pueden manifestarse a diferentes niveles, desde estructuras subcelulares o sistemas de enzimas, hasta organismos completos, poblaciones o comunidades. En el Centro de Biotecnología Agropecuaria del SENA, en Mosquera Cundinamarca, se desarrolló durante el año 2018, el proyecto titulado “Implementación y evaluación de un sistema de cultivo de microalgas en el tratamiento de aguas residuales del Centro de Biotecnología Agropecuaria”. Dentro de las actividades en este proyecto, se estableció la adaptación de cepas microalgales a las condiciones ambientales en el municipio de Mosquera. 83 Adaptación De Cepas Microalgales (Scenedesmus Sp, Chlorella Sp Y Chlamydomona Sp.) A Las Condiciones Ambientales En El Municipio De Mosquera. Consideraciones generales de los cultivos de microalgas Muchos factores contribuyen para el desarrollo óptimo de los cultivos de microalgas, algunos de los cuales afectan las características de su crecimiento. Los recipientes de cultivo más comúnmente usados son de materiales no tóxicos como las cajas de Petri, matraces Erlenmeyer, matraces Ferenback, carboys o garrafas, adecuados para cultivos de laboratorio. El crecimiento y la división celular son afectados por la intensidad de la luz y el fotoperíodo (horas de iluminación y oscuridad) en relación también a la temperatura. Metodología Medios de cultivo Los medios artificiales que se usan principalmente para fines experimentales, brindan resultados constantes, aunque existen algunas especies que no crecen en medios artificiales por factores desconocidos que afectan su crecimiento. El fitoplancton se desarrolla y multiplica en relación de las condiciones fisicoquímicas del medio. En términos generales son los macronutrientes o factores limitantes del crecimiento el Carbono, Nitrógeno, Fósforo, Silicio, Magnesio, Potasio y Calcio, que se requieren en cantidades relativamente grandes, mientras que los llamados micronutrientes como el Hierro, Manganeso, Cobre, Zinc, Sodio, Molibdeno, Cloro y Cobalto, se necesitan en menores cantidades. Para la adaptación de las cepas en este proyecto se utilizó el medio Bristol según fórmula de UTEX (2018) (Tabla 1). Tabla 1. Composición del medio Bristol (Utex, 2018) utilizado en la adaptación de las especies Chlamydomona sp., Chlorella sp. y Scenedesmus sp., en el Centro de Biotecnología Agropecuaria SENA, en Mosquera Cundinamarca. Componente Cantidad Solución Stock Concentración final 1 NaNO3 10 mL/L 10 g/400mL dH2O 2.94 mM 2 CaCl2·2H2O 10 mL/L 1 g/400mL dH2O 0.17 mM 3 MgSO4·7H2O 10 mL/L 3 g/400mL dH2O 0.3 mM 4 K2HPO4 10 mL/L 3 g/400mL dH2O 0.43 mM 5 KH2PO4 10 mL/L 7 g/400mL dH2O 1.29 mM 6 NaCl 10 mL/L 1 g/400mL dH2O 0.43 mM Obtención de cepas y escalamiento Las cepas de Chlorella sp., Chlamydomona sp. y Scenedesmus sp., fueron obtenidas del banco de microalgas del Centro Internacional Náutico y Portuario SENA, en Cartagena Bolívar. El mantenimiento de las cepas se llevó a cabo en el laboratorio de microalgas del Centro de Biotecnología Agropecuaria del SENA, en Mosquera Cundinamarca, 84 Revista Siembra CBA / No. 2 - 2019 Artículo de Investigación donde se suministraron las siguientes condiciones: medio de cultivo Bristol; temperatura de 18°C; intensidad lumínica de 730 (Lux), suministrada por lámparas fluorescentes y fotoperiodo 14:10 establecido con un temporizador (Figura 1). El escalamiento de las cepas, se realizó sembrando respectivamente 20ml de inóculo de cada cepa en un Erlenmeyer de 250ml con 20ml de medio, bajo las condiciones mencionadas anteriormente. Figura 1. Escalamiento de las cepas de Chlorella sp., Chlamydomona sp. y Scenedesmus sp., en el Centro de Biotecnología Agropecuaria SENA, en Mosquera Cundinamarca. Crecimiento poblacional Los conteos de Chlorella sp., Chlamydomona sp. y Scenedesmus sp. se realizaron con hematocitometro Neubauer, cada 24 horas en microscopio con el objetivo 40 X, teniendo en cuenta la siguiente fórmula (UNAM, 1986): C = N •104 • dil En donde: C = cél/mL N =promedio de células presentes en 1mm2 (0.1 μL) Dil = factor de dilución, cuando se consideró necesario diluir la muestra. Se tomó el valor de la dilución como 1 debido a que no se realizaron diluciones para los conteos. Se evaluó el crecimiento de las tres cepas en cultivos en concentración 1:10 y 5:10 sembrados en tubos de ensayo de 20ml y un volumen final de 10ml. Se realizaron 10 repeticiones de cada uno. Los datos obtenidosde densidad celular para cada tubo fueron registrados en una matriz de Excel para su posterior graficación y cálculo de velocidad de crecimiento mediante la siguiente fórmula: μe = (ln X2 – ln X1) / (t2 –t1) 85 Adaptación De Cepas Microalgales (Scenedesmus Sp, Chlorella Sp Y Chlamydomona Sp.) A Las Condiciones Ambientales En El Municipio De Mosquera. Equipo e instalaciones Sala o Laboratorio de Cultivo: Sala o Laboratorio de Cultivo: Se adecuó el Laboratorio de Biotecnología Industrial con el fin de mantener las cepas, hacer transferencias sucesivas de cultivos, crecimiento de cultivos en pequeños y medianos volúmenes. En el laboratorio la temperatura estuvo en un rango de 14– 18°C. Las instalaciones para el cepario y el cultivo intermedios se adecuaron con lámparas de luz blanca fría fluorescente (20W–37W) (Figura 2). Figura 2. Instalaciones para el cepario y cultivo intermedios de cepas de Chlorella sp., Chlamydomona sp. y Scenedesmus sp., en el Centro de Biotecnología Agropecuaria SENA, en Mosquera Cundinamarca. Cuarto de Siembra: Se instaló dentro del laboratorio una cabina con campana de flujo laminar y mesa de laboratorio para la inoculación en condiciones asépticas (Figura 3). Figura 3. Instalaciones del Laboratorio de Biotecnología Industrial en el Centro de Biotecnología Agropecuaria SENA, en Mosquera Cundinamarca. 86 Revista Siembra CBA / No. 2 - 2019 Artículo de Investigación Sala de Producción: Para volúmenes de 200lt o más, se utilizaron recipientes de materiales plásticos no tóxicos y transparentes para el desarrollo a nivel masivo de las diferentes especies. En este tipo de instalación se implementó luz artificial y la temperatura ambiental entre los 14 y los 18°C. En la Figura 4 se muestra las instalaciones para el cultivo. Figura 4. Instalaciones para el escalamiento de cepas de Chlorella sp., Chlamydomona sp. y Scenedesmus sp., en el Centro de Biotecnología Agropecuaria SENA, en Mosquera Cundinamarca. Resultados y discusión Escalamiento y crecimiento poblacional En la concentración 1:10 se observó decrecimiento de la población durante los 2 primeros días del cultivo, lo que corresponde a la etapa de adaptación de las células en todas las cepas; durante esta fase algunas enzimas metabólicas pueden ser inactivas y las concentraciones de materiales celulares caen a niveles que afectan la división celular (Guillard, 1975). El crecimiento exponencial se observó para todas las cepas entre los días 3 y 7 del cultivo; sin embargo, la velocidad de crecimiento y el tiempo de esta fase fue mayor en Scenedesmus sp. como muestra la Figura 5. Concentración 1:10 600000 500000 400000 Días Chlamydomona Chlorella Scenedesmus 300000 200000 100000 0 1 3 4 5 6 7 8 9 102 C o n c e n tr a c ió n ( C e lu la s / m L ) Figura 5. Curvas de crecimiento de las especies Chlamydomona sp., Chlorella sp. y Scenedesmus sp., en el Centro de Biotecnología Agropecuaria SENA, en Mosquera Cundinamarca. En cuanto la velocidad de crecimiento poblacional, la mayor velocidad de crecimiento fue presentada por Scenedesmus sp., seguida por Chlorella sp. (Tabla 2). Estas dos especies son de las más utilizadas en procesos de biorremediación a nivel mundial. Chlamydomona sp., es una microalga utilizada principalmente en la biorremediación de compuestos provenientes de los hidrocarburos; a pesar de haber presentado la menor 87 Adaptación De Cepas Microalgales (Scenedesmus Sp, Chlorella Sp Y Chlamydomona Sp.) A Las Condiciones Ambientales En El Municipio De Mosquera. velocidad de crecimiento poblacional, ésta velocidad de crecimiento es interesante para generar procesos de biorremediación. Tabla 2. Velocidades de crecimiento en la concentración 1:10, de las especies Chlamydomona sp., Chlorella sp. y Scenedesmus sp., en el Centro de Biotecnología Agropecuaria SENA, en Mosquera Cundinamarca. Tabla 2. Velocidades de crecimiento en la concentración 1:10, de las especies Chlamydomona sp, Chlorella sp y Scenedesmus sp, en el Centro de Biotecnología Agropecuaria SENA Regional Cundinamarca, 2018. μe Microalga 1.3520 Scenedesmus sp 0.6040 Chlorella sp 0.4037 Chlamydomona sp 88 Revista Siembra CBA / No. 2 - 2019 Artículo de Investigación Conclusiones La adaptación de microorganismos a condiciones artificiales sugiere un proceso de desarrollo de investigación que establezca las condiciones óptimas para el desarrollo de una población microalgal. Ahora bien, incluso en los bancos microalgales mejor gestionados, los cultivos pueden dejar de crecer, pueden contaminarse con microorganismos competidores o no conseguir prosperar. Dentro de este proyecto, se tomaron en cuenta los factores que posibilitan el surgimiento de problemas en la adaptación de las microalgas a un nuevo entorno, en este caso a las condiciones medioambientales que ofrece la Sabana de Occidente. 1. Suministro de aire. Aunque en algunos casos el suministro de aire propende en la resuspensión de las células y el input de CO2, en este caso se evitó el ingreso de aireación con el fin de evitar el descenso de la temperatura del cultivo en las horas de la madrugada. 2. Temperatura. La mayoría de las especies de algas cultivadas habitualmente no pueden tolerar temperaturas por encima de los 26ºC durante períodos prolongados o temperaturas por debajo de los 12ºC. Las temperaturas idóneas se encuentran en el rango de 18 a 22ºC. En el proceso de adaptación de las diferentes cepas, la temperatura del agua estuvo por el orden de los 17°C + 1°C. 3. pH. Se verificó el pH de los cultivos de algas en pH neutro (7,0). 4. Nutrientes. El suministro de medio de cultivo Bristol fue el adecuado para las tres especies de microalgas. No todas las especies pueden cultivarse con éxito en diferentes ambientes. Algunas tienen sus propias «ventanas de oportunidad» para un cultivo fiable. Por lo tanto, se tiene que aprender por experiencia in situ y guardar registros exhaustivos. Para el caso de las cepas que se trabajaron en este proyecto, la adaptación de éstas fue exitosa, siendo Scenedesmus sp. la especie con la mayor velocidad de crecimiento poblacional. 89 Referencias biblioFiguras FAO, 2018. Consultado el 18 de Diciembre de 2018. Disponible en: http://www.fao.org/3/y5720s/ y5720s07.htm Guillard, R.L. 1975. Culture of phytoplankton for feeding marine invertebrates, p. 29-60. In: P.B. Smith (ed) Culture of Marine Invertebrates. Plenum Press, New York. Harrison, P.J., Waters, R.E. & Taylor, F.J.R. 1980. A broad-spectrum artificial seawater medium for coastal and open ocean phytoplankton. J. Phycol. 16: 28-35 Laing, I. 1990. Nutritional value of dried algae diets for larvae of Manila clam, Tapes philippinarum. J. Mar. Biol. Assoc., UK, 70: 1-12 Laing, I. & Ayala, F. 1987. Commercial mass culture techniques for producing microalgae. p 447-477. In: Akatsuka (ed) Introduction to Applied Phycology. Academic Publishing, The Hague, The Netherlands Langdon, C.J. & Waldock, M.J. 1981. The effect of algal and artificial diets on the growth and fatty acid composition of Crassostrea gigas spat. J. Mar. Biol. Assoc. UK, 61: 431-448 Spencer, B.E. 1988. Growth and filtration of juvenile oysters in experimental outdoor pumped upwelling systems. Aquaculture, 75: 139-158 Trotta, P. 1981. A simple and inexpensive system for continuous monoxenic mass culture of marine microalgae. Aquaculture, 22: 383-387 UNAM, 1986, "Biología celular", Manual de prácticas. Departamento de Biología, Facultad de Ciencias, Universidad Nacional Autónoma de México, pp. 20-28. UTEX, 2018. Culture médium. Consultado el 18 de Diciembre de 2018. Disponible en: https://utex.org/ products/bristol-medium Webb, K.L. & Chu, F.-L.E. 1983. Phytoplankton as a source of food for bivalve larvae. In: (eds: Pruder, G.D., Langdon, C. & Conklin, D.) Proceedings of the 2nd International Conferenceon Aquaculture Nutrition: Biochemical and Physiological Approaches to Shellfish Nutrition, October 1981, Rehoboth Beach, Delaware. Louisiana State University Press, Baton Rouge: 272-291 Whyte, J.N.C. 1987. Biochemical composition and energy content of six species of phytoplankton used in mariculture of bivalves. Aquaculture, 60: 231-241 Adaptación De Cepas Microalgales (Scenedesmus Sp, Chlorella Sp Y Chlamydomona Sp.) A Las Condiciones Ambientales En El Municipio De Mosquera.
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