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Replicación Introducción Una de las características más notables del ADN es su capa- cidad de replicarse; dicho de otra manera, tiene la ca pa ci- dad de formar copias de sí mismo. La replicación se lleva a cabo en la fase de síntesis (S) del ciclo celular. Esta etapa es un paso obligado para realizar la división celular. Por ello, se determina que la información genética se transfi ere de una célula a otra mediante el proceso de replicación del ADN. El objetivo de la replicación es el de conservar la infor- mación genética. La representación estructural del ADN en doble hélice permite comprender cómo dicha molécula puede dar lugar a otras idénticas, sin perder su confor- mación. En principio, las dos hebras deberán separarse y, después, mediante la acción de una enzima, añadir des- oxirribonucleótidos y, según la complementariedad de bases, construir ADN a partir de las dos hebras molde ini- ciales. Características generales La síntesis de las cadenas de ADN durante la replicación se lleva a cabo en dirección 5’ → 3’ tanto en eucariotes como en procariotes. Solamente el carbono de la posición 3’ de la pentosa posee un radical hidroxilo (OH) libre, con el que puede formar un nuevo enlace fosfodiéster con otro des- oxirribonucleótido y formar así la hebra creciente de ADN; por esta razón, la cadena de ADN sólo puede crecer en dirección 3’. A este proceso se le llama polimerización, que consiste en la unión de un dNTP (desoxirribonucleó tido) complementario a la hebra molde según la Ley de Char - gaff (véase el capítulo 1). La replicación del ADN cuenta con tres características que la defi nen y permiten entender el proceso: semiconservadora, bidireccional y antipa- ralela. Semiconservadora Se refi ere a que en cada replicación una molécula de ADN recién sintetizada conserva una de las cadenas originales y la otra es sintetizada de novo. Anteriormente existían tres teorías que trataban de explicar el proceso de la replicación; se decía que podía ser: semiconservadora, conservadora y dispersora o dis- persante. • Semiconservadora (modelo correcto). En cada una de las moléculas hijas se conserva una de las cadenas origi- nales. • Conservadora. Se sintetiza una molécula totalmente nueva, copia de la original, por lo que tras la duplicación quedan, por un lado, las dos hebras antiguas juntas y, por otro, las dos hebras nuevas. • Dispersora o dispersante. Las cadenas hijas constan de fragmentos de la cadena antigua y fragmentos de la nueva. El experimento defi nitivo para dilucidar cuál de estas tres hipótesis era la correcta lo realizaron Meselson y Stahl en 1957, y confi rmó la hipótesis semiconservadora. Este experimento se basaba en dos premisas fundamentales: por una parte, el nitrógeno es uno de los principales elementos del ADN, ya que forma parte de las bases nitrogenadas, y por la otra, existen dos isótopos de este átomo, 14N y 15N, que pueden distinguirse mediante técnicas de laboratorio. Aunque el 14N es el isótopo más abundante en la naturaleza, el 15N también es viable y es más pesado, característica que permite diferenciarlos. Este experimento se realizó utili- zando bacterias cuyo medio de cultivo contenía 15N, por lo que todo su ADN también lo contenía. Después se les cam- bió el medio de cultivo por uno que contenía 14N. Se permi- tió que las bacterias se replicaran sólo una vez y se extrajo el ADN que se analizó por centrifugación en gradiente de clo- ruro de cesio, que permite separar las moléculas por tama- ño o peso. El resultado mostró una sola banda con un peso intermedio 14N y 15N, lo que sugirió que la molécula resul- tante estaba compuesta de 14N y 15N. En la segunda replica- ción en medio con 14N se observaron dos bandas, una correspondiente a 14N (del ADN replicado en esta segunda división celular) y otra intermedia entre 14N y 15N de la mezcla ADN parental: ADN recién sintetizado. De esta for- ma, Meselson y Stahl demostraron el mecanismo correcto de la replicación del ADN (fi gura 4-1 A y B). Bidireccional La replicación del ADN en eucariotes es bidireccional, ya que a partir del sitio de origen (ORI, también llamados ARS en eucariotes), se sintetizan las dos cadenas en ambos sen- tidos, con dos puntos de crecimiento que forman lo que se conoce como horquillas de replicación (fi gura 4-2). En organismos eucariotes, debido al gran tamaño del ADN, existen múltiples orígenes de replicación (sitios ORI), por lo que a la replicación se la considera multifocal (fi gura 4-3). Los sitios ORI son secuencias específi cas ricas A y T y controlan la replicación de una unidad de ADN llamada replicón. La presencia de bases A:T facilita la separación de las hebras y la formación de la burbuja de replicación. En Figura 4-1. Teorías de la manera en que se replicaba el ADN. A, conservadora, semiconservadora y dispersante. B, experi- mento de Meselson y Stahl. Se concluyó en que la replicación del ADN era un proceso semiconservador. Figura . Replicación del ADN. Esta replicación es bidireccional. los cromosomas de bacterias y virus existe un origen único de replicación por molécula de ADN; este sitio ORI permi- te la replicación de todo el ADN circular, por lo que se afi r- ma que la replicación es monofocal (fi gura 4-4). Discontinua La replicación siempre se produce en sentido 5’ → 3’, y el extremo 3’-OH libre es el punto a partir del cual se produce la elongación del ADN. Esto plantea un problema: las cade- nas tienen que crecer de forma simultánea a pesar de que son antiparalelas, es decir, cada cadena tiene el extremo 5’ enfrentado con el extremo 3’ de la otra cadena. Por ello, una de las cadenas debería sintetizarse en dirección 3’ → 5’. Esta incógnita la resolvieron los científi cos japoneses Reiji Oka- zaki y Tsuneko Okazaki en la década de 1960, al descubrir que una de las nuevas cadenas del ADN se sintetizaba en forma de fragmentos cortos que, en su honor, se denomi- nan fragmentos de Okazaki. Su longitud suele variar entre 1000 y 2000 nucleótidos en las bacterias y entre 100 y 400 nucleótidos en eucariotes. La cadena que se sintetiza en el sentido que avanza la horquilla de replicación se denomina hebra adelantada, líder o conductora (leading strand), y se Figura 4-3. Replicación multifocal. La replicación en eucariotes contiene múltiples sitios ORI, que se replican simultáneamen- te, lo que permite acortar el tiempo en el que se replica todo el ADN. Modelo disperso Hebra madre 1a repl. 2a repl. Modelo conservativo Modelo semiconservativo ADN pesado 15N Hebra original 1 a repl. 2 a repl. ADN híbrido 15 N14N ADN ligero 14N ADN híbrido a) b) Cadena retardada Fragmento de Okazaki Cebador “primer” Cadena continua origen 5’ 5’5’ 3’3’ 5’5’5’ 3’3’ 3’ 3’ 5’ 3’ 5’ 3’ ori oriori ori ori ori o en fragmentos, y para disponer de una cierta longitud de ADN molde para continuar hay que esperar a que la hor- quilla de replicación avance (cuadro 4-1). Proteínas que participan en la replicación La maquinaria encargada de la replicación del ADN es muy compleja y está formada por un grupo de proteínas que actúan en conjunto con una secuencia de ADN específi ca ya establecida. A continuación se describen las enzimas que intervienen en el proceso de replicación y enseguida se desa- rrollará el proceso mencionando las enzimas involucradas. Helicasa: enzima encargada de separar las dos hebras del ADN mediante la rotura de los puentes de hidrógeno que se establecen entre las bases nitrogenadas de las dos cadenas del ADN. Ocasiona superenrollamientos positivos a los lados de la burbuja de replicación. Proteínas de unión a cadena sencilla (SSB, single- strand ADN binding proteins en procariotes y RPA en eucariotes): evitan la formación de los puentes de hidróge- no entre las dos cadenas separadas por la helicasa y permi- ten que se copien. Topoisomerasas: son enzimas isomerasas que actúan sobre la topología del ADN, pueden cortar o formar enlaces fosfodiéster ya sea unade las hebras (topoisomerasa I) o en las dos (topoisomerasa II) que forman el ADN. Esta escisión selectiva permite al ADN liberar la tensión contorsional, con lo que se deshace el superenrollamiento, el cual en caso de persistir detendría la replicación. De esta manera se per- mite el acceso a la cadena de ADN a todas las enzimas invo- lucradas en la replicación. Primasa: es una enzima que sintetiza pequeños frag- mentos de ARN de entre 8 y 10 nucleótidos de longitud, conocidos como cebadores o primers, complementarios a un fragmento del ADN. La unión de los cebadores al ADN proporciona un extremo 3´ necesario para que la ADN polimerasa (enzima que sintetiza ADN y que no puede aña- dir nucleótidos si no existe un extremo 3´libre) lleve a cabo su acción. Los cebadores, al ser ARN, luego son degradados por las nucleasas Rnasa H1 y sustituidos por ADN por acción de otra ADN polimerasa. Rnasa H1: enzima encargada de retirar los cebadores de ARN durante la síntesis de los fragmentos de Okazaki y en los procesos de reparación del ADN. FEN1/RTH1: también llamada endonucleasa fl ap 1 (fl ap endonuclease 1), se encarga de remover el ribonucleo- tido 5’ del fragmento de Okazaki. El Nick (falta de enlace fosfodiéster entre dos nucleótidos adyacentes) resultante es sellado por la ADN ligasa. Ligasa: enzima que cataliza la formación del enlace fos- fodiéster entre nucleótidos contiguos. Telomerasa: es una ribonucleoproteína con actividad de ADN polimerasa dirigida por ARN (transcriptasa inver- sa) capaz de sintetizar una secuencia determinada de ADN que permite el alargamiento de los telómeros (extremos de los cromosomas eucariotes). Antígeno nuclear de células en proliferación (PCNA): es un homotrímero que forma una estructura de toroide, la cual es abierta transitoriamente por acción del factor de replicación C (RFC, replication factor C), lo que permite su Figura Replicación monofocal. En eucariotes, el único cromosoma existente contiene un solo sitio de replicación ORI. A este tipo de replicación se le llama monofocal. sintetiza de forma continua por la ADN polimerasa, mien- tras que la que se sintetiza en sentido contrario al avance de la horquilla se denomina hebra rezagada o retrasada (lag- ging strand), cuya síntesis se realiza de forma discontinua ORI ADN viejo ADN nuevo Cuadro 4-1. Diferencias en la replicación entre procariotes y eucariotes. Lugar Procariotes Eucariotes Citoplasma Núcleo y mitocondria Número de orígenes de replicación 1 Núcleo 103 a 104 Mitocondria 2 Tiempo de replicación del genoma (h) ~0.67 8 Proteínas implicadas ~30 Cientos ADN polimerasas 3 5 Inicio Origen único Origen múltiple Otros materiales Cebador, dNTPs Cebador, dNTPs Formato Semiconservadora Semiconservadora Tasa de replicación 1 000 nucleótidos/s 100 nucleótidos/s recircularización alrededor de la doble hélice del ADN a la altura del extremo del primer en la cadena líder. La estructu- ra toroide del PCNA alrededor de la cadena de ADN per- mite su libre desplazamiento por la misma. PCNA interactúa con la ADN polimerasa, sirviendo como una pinza que sostiene a la polimerasa en el extremo del primer y le permite sintetizar la cadena de ADN. ADN polimerasa: son las principales enzimas en este proceso. Son capaces de sintetizar nuevas cadenas de ADN a partir de una hebra patrón o molde y las unidades estructu- rales correspondientes (desoxirribonucleótidos). Una carac- terística importante de esta enzima es que añade los nucleótidos en la dirección 5’ → 3’ siempre y cuando haya un extremo 3’ disponible. Como consecuencia de esto, la direc- ción en la cual leerá la cadena molde de ADN será de 3’ → 5’. En eucariotes se han descrito por lo menos cinco ADN polimerasas involucradas en la replicación del ADN, cada una con una actividad específi ca: α, β, γ, δ y ε. La polimerasa α (ADNpol α), también llamada primasa, inicia la síntesis del ADN mediante la formación de un cebador ARN. Las polimerasas δ y ε (ADNpol δ y ADNpol ε) son responsables de la mayor parte de la elongación de ambas hebras del ADN. La polimerasa β (ADNpol β) no interviene en la repli- cación y está involucrada en la reparación de errores o daños en el ADN. Es importante mencionar que las polimerasas α, β, δ y ε están involucradas en la replicación del ADN nuclear. La polimerasa γ (ADN pol γ) lleva a cabo la replicación del ADN mitocondrial. Existen otras polimerasas, como las polimerasas ζ (theta), η (eta) y ι (iota), cuya función no es muy conocida, pero se cree que están involucradas sobre todo en mecanismos de reparación y recombinación. De las 5 polimerasas, sólo tres tienen la actividad de exonucleasa-3’ (pol δ, γ y ε), esto es, son capaces de corregir los errores cometidos al incorporar los nucleótidos a la hebra que se está sintetizando, eliminan el nucleótido equi- vocado y añaden el correcto. Ninguna ADN polimerasa en eucariotes presenta actividad de exonucleasa-5’. En proca- riotes la ADN pol I presenta este tipo de actividad. A diferencia de lo observado en eucariotes, en la maqui- naria para la replicación de los procariotes, sólo tres enzi- mas participan en la síntesis del ADN. La polimerasa I es la única que tiene actividad de exonucleasa de 5’ a 3’. En el cuadro 4-2 se resumen las propiedades de la ADN polimerasa en eucariotes y en el 4-3, las de procariotes. Fases de la replicación Para su estudio y mejor comprensión, como la mayoría de los procesos celulares la replicación se ha dividido en tres fases: inicio, elongación y terminación. Cuadro 4-2. Propiedades de la ADN polimerasa de eucariotes. α β γ δ ε Compartimiento celular Núcleo Núcleo Mitocondria Núcleo Núcleo Primasa asociada Sí No No No No Función biológica Replicación hebra retardada Reparación del ADN Replicación del ADN mitocondrial Replicación hebra conductora Replicación adicional Núm. de subunidades 4 1 4 isoformas 2 ¿? Peso molecular Subunidad catalítica 165 a 185 40 125 125 210 a 230 Cuadro 4-3. Características de la polimerasa de procariotes. ADN Pol I ADN Pol II ADN Pol III Peso molecular (daltons) 109 000 90 000 900 000 Constitución Monómero Monómero Multímero asimétrico Polimerasas /célula 400 Desconocido 10 a 20 Actividad / función Polimerasa 5’ a 3’/elongación Sí Sí Sí Exonucleasa 3’ a 5’/correctora Sí Sí Sí Exonucleasa 5’ a 3’/reparación Sí No No Inicio Las zonas en el ADN donde se producen las burbujas de replicación no son aleatorias, se sabe que existen secuencias de aproximadamente 300 pb que indican los lugares preci- sos donde ha de comenzar la replicación. Estos sitios son ricos en A y T y son reconocidos por una serie de proteínas llamadas, en conjunto, proteínas de reconocimiento del sitio de origen. En eucariotes, los orígenes de replicación se lla- man secuencias de replicación autónoma (SRA). Cada burbuja de replicación posee dos horquillas de replicación, una de las cuales se desplaza hacia la derecha y otra hacia la izquierda. El proceso de replicación necesita, en primera instancia, que las dos cadenas del ADN se sepa- ren. Para esto, la helicasa se unirá a la cadena de ADN e hidrolizará los puentes de hidrógeno. La apertura de la doble hélice hace que las cadenas simples adquieran inesta- bilidad, que se compensa por la unión de proteínas estabili- zadoras RPA. La ADN polimerasa no puede iniciar la síntesis a partir de los desoxirribonucleótidos libres; por lo tanto, necesita que la primasa sintetice un cebador, a par- tir del cual la ADN polimerasa incorporará los nucleótidos en forma complementaria a las bases de la cadena patrón (fi gura 4-5). Elongación Es el proceso por el cual la ADN polimerasa añade nucleó- tidos uno por uno complementarios a la cadena molde, a medida que avanza la horquilla, ayudada por PCNA. La función del PCNA es mantener la ADN polimerasa en con- tacto con la cadena molde, con la fi nalidad de que la lea y sintetice la cadena complementaria. Una vez presente la maquinaria de inicio de la replica-ción, la horquilla avanza, aumentando la tensión por delan- te de la cadena. Para evitar que esta tensión impida el avance de la horquilla, las topoisomerasas (I y II) cortarán los enlaces fosfodiéster de la doble hélice y volverán a unir- la, lo que permitirá que se desenrolle una vuelta si actúa la topoisomerasa I y dos si lo hace la topoisomerasa II. Como ya se ha mencionado, la síntesis es diferente en cada una de las hebras de la horquilla de replicación; en la cadena líder, la síntesis se realizará en forma continua, y por el contrario, en la cadena retrasada, la síntesis se reali- zará en forma discontinua. Una de las consecuencias de la síntesis discontinua es que para la síntesis de cada fragmen- to de Okazaki se requiere de un cebador intercalado entre estos fragmentos, mientras que en el caso de la cadena con- tinua es necesaria la presencia de un solo cebador. El proce- so de elongación es similar en eucariotes que en procariotes (fi gura 4-6). Terminación El fi nal de la replicación se produce cuando la ADN polime- rasa δ llega al extremo del fragmento de ADN. Se produce entonces el desacoplamiento de todo el replisoma y la fi na- lización de la replicación. Uno de los pasos cruciales en el proceso de terminación es completar la síntesis de la cade- na retardada y unir los fragmentos de Okazaki. A este pro- Figura 4-5. Inicio de la replicación del ADN. Se observan las cadenas continua y discontinua; ambas se replican en dirección de 5’ a 3’. hebra molde ADN polimerasa helicasa primosoma primasa proteínas SSB ARN cebador Hebra discontinua (fragmentos de Okazaki) 3´ 3´ 3´ 3´5´ 5´ 5´ repli caci ón ceso se lo denomina maduración, y requiere la eliminación de los cebadores, la elongación del fragmento de ADN adyacente para rellenar el espacio que quedó por la elimina- ción del cebador y la unión de los extremos resultantes para formar una cadena continua. Para que esta maduración suceda, existe un sistema de nucleasas (FEN1/RTH1 + RNasa H1) encargado de eliminar el cebador de ARN. En consecuencia la ADNpol δ, o ADNpol ε, elonga el extremo Figura 4-6. Elongación de la replicación del ADN. La cadena continua va en sentido de la horquilla, y la discontinua, al lado contrario y siempre sintetizando en dirección 5’ a 3’. Figura 4-7. Función de la telomerasa en sus tres fases: elongación, translocación y elongación. 3’ del fragmento adyacente y rellena el lugar que antes ocu- paba el cebador hasta alcanzar el extremo 5’ del fragmento contiguo. Por último, la ADN ligasa I sella la mella resultan- te uniendo el 3’-P del primer fragmento con el 5’-P del segundo. Replicación de los telómeros. La fase fi nal de la ter- minación de la replicación del ADN consiste en la replica- ción de los telómeros de las cadenas de ADN. Los telómeros son secuencias repetidas de 1-5 unidades T y G en una de las cadenas, y por lo tanto, C y A en la complementaria situadas en los extremos de los cromosomas eucariotes (los procariotes no poseen telómeros porque su ADN es circular). La dinámica de replicación que requiere de un primer para polimerizar no permite completar la copia de los extremos de la hebra de síntesis retrasada de ADN, al no poderse situar un cebador más allá del fi nal de la secuen- cia. De esta manera, al retirar todos los cebadores de las cadenas de ADN de síntesis retrasada recién sintetizadas; en cada una de las dos moléculas de ADN uno de los extre- mos queda más corto. La telomerasa es una transcriptasa inversa formada por ARN (9 a 28 nucleótidos) y proteína que contiene un fragmento de la secuencia de su ARN complementario a la secuencia de los telómeros. Por lo tanto, en la replicación de los telómeros actúan las telome- rasas, que se unen por complementariedad de bases a los C Cadena continua Cadena discontinua A A A G C A A A A G CT 3´ 3´3´ 3´ 5´ 5´5´ 5´ ADN pol ADN pol 5’ 3’ 5’ 3’ 5’ Disquerina Disquerina TERC TERC TERC TP1 TP1TERT TERT TERT TP1 3’ TTAGGGTTAGGGTTAGGGTTAG Disquerina TTAGGGTTAGGGTTAGGGTTAGGGTTAG CAAUCCCAAUC 1. Elongación 2. Translocación 3. Elongación TTAGGGTTAGGGTTAGGGTTAG AATCCCAA AATCCCAA AATCCCAA CAAUCCCAAUC CAAUCCCAAUC CAAUCCCAAUC telómeros y sintetizan los extremos de los cromosomas más allá de su tamaño, tomando como molde el ARN de la transcriptasa inversa. La telomerasa sólo está presente en células somáticas, tejidos fetales y en ciertas células madre. En eucariotes la presencia de la telomerasa en las células germinales garan- tiza la preservación de las largas secuencias teloméricas. La desaparición de la enzima en las células somáticas condi- ciona la longitud de estas secuencias y puede alterar la divi- sión celular correcta, el tiempo de vida de una célula y, por extensión, del organismo. El acortamiento de los telómeros se ha vinculado con el envejecimiento (fi gura 4-7). El mecanismo de acción de la telomerasa se detalla a continuación (fi gura 4-7): 1) La telomerasa se une a su respectiva secuencia comple- mentaria y alarga el extremo saliente 3’, una vez que éste se encuentra alargado. Se produce un apareamiento de bases entre el ADN telomérico y el ARN de la telome- rasa. 2) Con este apareamiento empieza la primera elongación. La telomerasa cataliza la elongación del extremo 3’ alar- gado, añadiendo dNTPs y empleando como molde la hebra de ARN de la propia telomerasa. 3) Una vez que se están añadiendo los dNTPs, la telomera- sa se desliza sobre el extremo 3’ previamente elongado, conservando la complementariedad gracias a la repeti- ción de secuencias, lo que se conoce como transloca- ción. 4) La telomerasa elonga nuevamente el extremo 3’ saliente. 5) Se vuelven a repetir los pasos de translocación y elonga- ción. 6) En la segunda fase la ADN polimerasa α rellena la otra hebra, y la ligasa sella la mella que queda en la elongación. Replicación mitocondrial La replicación del ADN mitocondrial en mamíferos se ajus- ta al modelo del lazo de desplazamiento o lazo D. Las dos hebras del ADN mitocondrial se pueden diferenciar según su densidad, y existe una hebra ligera (L) y otra pesada (H). En primer lugar, se inicia la replicación o síntesis de la nue- va hebra L, sin que se comience la replicación de la nueva hebra H. El origen de replicación de la hebra L es diferente al de la hebra H, de forma que existen dos orígenes de repli- cación diferentes, uno para cada una. Además, una vez ini- ciada la replicación de la nueva hebra L, la síntesis es unidireccional y avanza desplazando a la otra hebra. Cuan- do se han sintetizado aproximadamente dos tercios de la nueva hebra L, comienza la síntesis de la nueva hebra H, en una sola dirección, opuesta a la de síntesis de la hebra ligera L. Por consiguiente, la síntesis de la nueva hebra L termina antes que la de la nueva hebra H (fi gura 4-8). Figura 4-8. Replicación del ADN mitocondrial. (L) hebra ligera; (H) hebra pesada; (OH) origen de hebra pesada; (OL) origen de hebra ligera. Hebra ligera Hebra pesada (H) Hebra pesada (H) OH (L) (H) (L) (L) OH OH OL OL OL OH (L) (H) (H) (H) Hebra ligera 3´ 3´ 3´3´ 3´ 3´ 5´ 5´ 5´ 5´ 5´ 5´ Gardner E.J., Simmons M.J., Snustad D.P. Principios de Genética, 7ª ed. Willey Liss, 2002:130-156. Lewin B. Genes IX, 9ª ed. Sudbury: Jones and Bartlett Publishers, 2007:428-456. Luque J., Herráez Á. Texto ilustrado de Biología Molecular e Ingeniería Genética. Madrid: Harcourt, 2001:141-160. Watson J.D., Baker T.A, Bell SP, et al. Biología molecular del gen, 5ª ed. México: Editorial Médica Panamericana, 2005:23-45. Bibliografía 1. ¿En qué se distingue la síntesis de ADN entre eucariotes y procariotes? a) Los procariotes no requieren primasas. b) Los eucariotes poseen múltiples orígenes de replica- ción. c) Los procariotes poseen extremos teloméricos. d) Las ADN polimerasas eucariotes sintetizan ADN de 3’ → 5’. 2. Las ADN polimerasas I y III de E. coli se distinguen entre sí gracias a: a) Su distinta actividad deexonucleasa 3’ → 5’. b) Su procesividad y la actividad de exonucleasa 5’ → 3’. c) Que una posee actividad de exonucleasa y la otra no. d) Que una posee actividad de primasa y la otra no. 3. La secuencia en la que las diferentes enzimas actúan du- rante la replicación del ADN en procariotes en la hebra retrasada es: a) ADN ligasa, primasa, ADN polimerasa III, ADN poli- merasa I, helicasa. b) Helicasa, primasa, ADN polimerasa I, ADN polimera- sa III, ADN ligasa. c) Helicasa, primasa, ADN polimerasa III, ADN polimera- sa I, ADN ligasa. d) Helicasa, ADN polimerasa I, primasa, ADN polimera- sa III, ADN. 4. La telomerasa es un complejo formado por: a) ARN y proteína. b) ADN y proteína. c) Doble cadena de ADN y proteína. d) Doble cadena de ARN y proteína. 5. Este tipo de ADN polimerasa está involucrada en la repli- cación de la mitocondria: a) α b) β c) ζ d) γ e) η Preguntas de repaso
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