UPS-CT002471

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UNIVERSIDAD POLITÉCNICA SALESIANA 
 
SEDE CUENCA 
 
 
CARRERA DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA 
 
 
Tesis previa a la obtención del titulo 
de Médico Veterinario Zootecnista 
 
 
TITULO: 
“INSEMINACIÓN ARTIFICIAL CON CELO NATURAL EN VACAS 
PRODUCTORAS DE LECHE CON SEMEN SIN EL PROCESO DE 
DESCONGELADO EN EL CANTÓN PAUTE” 
 
 
 
AUTOR: 
JUAN PABLO SUMBA L. 
 
 
DIRECTOR: 
DR. PATRICIO GARNICA 
 
 
CUENCA-ECUADOR 
2012 
 
 
 
 
CERTIFICADO DE RESPONSABILIDAD DEL PROFESOR 
 
 
Certifico que el presente trabajo de investigación “INSEMINACIÓN ARTIFICIAL 
CON CELO NATURAL EN VACAS PRODUCTORAS DE LECHE CON SEMEN 
SIN EL PROCESO DE DESCONGELADO EN EL CANTÓN PAUTE” ha sido 
revisado en la fase de campo como también en el documento final con absoluta claridad 
por cuanto doy confiabilidad de los resultados obtenidos. 
 
 
 
 
……………………….. 
Dr. Patricio Garnica 
DIRECTOR DE TESIS 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
DECLARACIÓN DE RESPONSABILIDAD 
 
 
Yo, Juan Pablo Sumba León declaro que los conceptos, análisis y conclusiones 
establecidas en el presenta trabajo de investigación son de exclusiva autoría, 
responsabilizándose de todos los datos obtenidos en dicha investigación y autorizo a la 
Universidad Politécnica Salesiana el uso de la misma para fines académicos 
 
 
 
 
…………………………. 
Juan Pablo Sumba León 
Autor 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
DEDICATORIA 
 
 
Ha sido el Todopoderoso, quien ha permitido que la sabiduría dirija y guíe mis pasos 
por ello, con toda la humildad que de mi corazón puede emanar, dedico primeramente 
mi trabajo a Dios. 
 
 
De igual forma, a mis padres Guillermo y Aida, quienes han sabido formarme con 
buenos sentimientos, hábitos y valores, apoyándome en todo lo que han podido por lo 
cual me ha ayudado a salir adelante buscando siempre el mejor camino. 
 
 
Y a mi esposa por su apoyo moral y comprensión. 
 
 
Juan Pablo 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
AGRADECIMIENTOS 
 
 
Primero doy gracias a Dios, por haberme dado fuerza y valor para terminar los estudios 
universitarios. 
 
 
Agradezco también la confianza y el apoyo de mis padres y hermanos, porque han 
contribuido positivamente para llevar a cabo esta difícil jornada. 
 
 
A todos mis maestros de la Universidad Politécnica Salesiana que me asesoraron, porque 
cada uno, con sus valiosas aportaciones, me ayudaron a crecer como persona y como 
profesional. 
 
 
Al Dr. Patricio Garnica, Ing. Pedro Webster y Dr. Xavier Barrera como tutores y como 
grandes amigos, por toda la ayuda y colaboración prestada para la realización de esta 
investigación. 
 
 
 
 
 
 Juan Pablo 
 
 
 
 1 
ÍNDICE GENERAL 
 
RESUMEN .............................................................................................................................. 7 
ABSTRACT ............................................................................................................................. 9 
CAPITULO I ......................................................................................................................... 11 
A. PLANTEAMIENTO DEL PROBLEMA ...................................................................... 11 
B. JUSTIFICACIÓN .......................................................................................................... 12 
C. OBJETIVOS .................................................................................................................. 13 
OBJETIVO GENERAL ..................................................................................................... 13 
OBJETIVO ESPECÍFICOS ............................................................................................... 13 
CAPITULO II ........................................................................................................................ 14 
2. MARCO TEÓRICO ....................................................................................................... 14 
2.1. ANTECEDENTES HISTÓRICOS. ....................................................................... 14 
2.2. DEFINICIÓN DE INSEMINACIÓN ARTIFICIAL. ............................................ 15 
2.3. VENTAJAS Y DESVENTAJAS DE LA INSEMINACIÓN ARTIFICIAL. ........ 16 
2.3.1. VENTAJAS: .................................................................................................. 16 
2.3.2. DESVENTAJAS ............................................................................................ 16 
2.4. ANATOMÍA Y FISIOLOGÍA DE LA VACA ...................................................... 17 
2.4.1. ANATOMÍA DE LA HEMBRA ....................................................................... 17 
2.4.2. DINÁMICA FOLICULAR ............................................................................ 18 
2.4.3. ONDA FOLICULAR ..................................................................................... 20 
2.5. EJE HIPOTÁLAMO HIPÓFISIS ................................................................................... 21 
2.5.1. HIPOTÁLAMO ....................................................................................................... 23 
2.5.2. HIPÓFISIS ............................................................................................................... 23 
2.5.4. ÚTERO .................................................................................................................... 24 
2.6. CICLO ESTRAL................................................................................................ 24 
2.6.1. FASES DEL CICLO ESTRAL .............................................................................. 25 
2.6.2. COMPORTAMIENTO SEXUAL ................................................................. 27 
2.6.3. FASES DEL COMPORTAMIENTO SEXUAL. .......................................... 27 
2.6.4. CONTROL REPRODUCTIVO EN BOVINOS: ........................................... 27 
2.6.5. DETECCIÓN DEL ESTRO ........................................................................... 29 
2.6.6. TÉCNICAS PARA LA DETECCIÓN DEL ESTRO. ................................... 29 
2.6.7. CAUSAS DE BAJO ÍNDICE DE CONCEPCIÓN. ...................................... 29 
 
 2 
2.6.8. MOMENTO DE LA INSEMINACIÓN ........................................................ 30 
2.6.9. MANEJO ADECUADO DEL SEMEN. ........................................................ 30 
2.6.10. PROCEDIMIENTO DE DESCONGELACIÓN: .......................................... 31 
2.6.11. EQUIPO PARA LA INSEMINACIÓN ARTIFICIAL .................................. 32 
2.6.12. PROCEDIMIENTO: ...................................................................................... 33 
2.6.13. ERRORES AL INSERTAR LA PIPETA DE INSEMINACIÓN. ................ 34 
2.7. FALLAS EN LA CONCEPCIÓN EN VACAS ................................................. 34 
2.8. LA ECOGRAFÍA .............................................................................................. 35 
CAPITULO III ....................................................................................................................... 36 
HIPÓTESIS............................................................................................................................ 36 
3. HIPÓTESIS NULA ................................................................................................... 36 
3.6. HIPÓTESIS ALTERNATIVA .............................................................................. 36 
3.7. OPERACIONALIZACIÓN DE VARIABLES ..................................................... 37 
CAPITULO IV....................................................................................................................... 38 
4. POBLACIÓN YMUESTRA ...................................................................................... 38 
4.1. POBLACIÓN .....................................................................................................38 
4.2. . MUESTRA ...................................................................................................... 38 
4.3. DISEÑO ESTADÍSTICO .................................................................................. 38 
4.4. LOTE EXPERIMENTAL .................................................................................. 39 
CAPITULO V ........................................................................................................................ 40 
5. MARCO METODOLÓGICO .................................................................................... 40 
5.1. DELIMITACIÓN .................................................................................................. 40 
5.1.1. TEMPORAL. ..................................................................................................... 40 
5.1.2. ESPACIAL. ....................................................................................................... 40 
CAPITULO VI....................................................................................................................... 42 
6. MATERIALES Y MÉTODOS ...................................................................................... 42 
6.1. MÉTODOS ................................................................................................................ 42 
6.2. MÉTODO EXPERIMENTAL ................................................................................... 42 
6.2.1. PROCESO .......................................................................................................... 42 
6.2.2. TÉCNICA. ......................................................................................................... 42 
6.3. PROCEDIMIENTO DEL ENSAYO. .................................................................... 43 
6.3.2. DIVISIÓN POR GRUPOS Y LOTES .............................................................. 43 
6.8.3. RECURSOS INSTITUCIONALES. .................................................................. 46 
CAPITULO VII ..................................................................................................................... 47 
 
 3 
RESULTADOS Y DISCUSIONES. ...................................................................................... 47 
7. RESULTADOS. ............................................................................................................. 47 
CAPITULO VIII .................................................................................................................... 52 
CONCLUSIONES ................................................................................................................. 52 
CAPITULO IX....................................................................................................................... 53 
RECOMENDACIONES ........................................................................................................ 53 
8. ANEXOS ....................................................................................................................... 54 
9. BIBLIOGRAFÍA: .......................................................................................................... 72 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 4 
ÍNDICE DE FIGURAS 
 
 
Figura Nº 1. Disposición anatómica del aparato reproductivo de la hembra bovino.17 
Figura Nº2. Dinâmica folicular……………………………………………………...20 
Figura N°3. Ondas foliculares en la vaca……………………………………….......21 
Figura Nº4. Esquema simplificado de las interacciones hormonales del eje 
hipotálamo – hipófisis – ovario……………………………………………………...22 
Figura Nº5. Interrelaciones en el control de la función reproductora de la hembra..22 
FiguraNº6. Esquema de las hormonas del ciclo estral…………………………........25 
Figura Nº7. Método de la fijación cervical transrectal para la I. A. de la vaca……..32 
Figura Nº 8.Lugar correcto para la deposición del semen es el cuerpo uterino……..33 
Figura Nº9. Número de vacas preñadas y no preñadas, en el grupo “a”……………48 
Figura Nº10.Número de vacas preñadas y no preñadas en el grupo “b”……….…...48 
Figura Nº11.Número de vacas preñadas y no preñadas…………………………….49 
Figura N°12.Comparación de los resultados de la investigación……………...…....49 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 5 
ÍNDICE DE CUADROS 
 
 
Cuadro 1.Fases del ciclo estral……………………………………………………..26 
Cuadro 2.Variable dependiente……………………………………………………37 
Cuadro 3.Variable independiente……….………………………………………….37 
Cuadro 4.Esquema del experimento tratamientos “a” y “b”……………………….39 
Cuadro 5.División por lotes y grupos………………………………………………43 
Cuadro 6.Número de vacas preñadas de grupo “a” y “b”………………………….47 
Cuadro 7.Porcentajes de preñez por tratamiento en vacas…………………………47 
Cuadro 8.Porcentajes de preñez por tratamiento en vacas, para un dca, de 2 
tratamientos con 4 repeticiones…………………………………………………….50 
Cuadro 9.Datos transformados a valores arco-seno………………………………..50 
Cuadro 10.Adeva para el factor preñez con valores transformados a arco seno…...51 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 6 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
“INSEMINACIÓN ARTIFICIAL CON CELO NATURAL EN VACAS 
PRODUCTORAS DE LECHE CON SEMEN SIN EL PROCESO DE 
DESCONGELADO EN EL CANTÓN PAUTE” 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 7 
RESUMEN 
 
 
El presente estudio se realizó en hatos ganaderos de la zona del cantón Paute, el 
ensayo tuvo una duración de seis meses, en el que se utilizaron 40 vacas Holstein 
mestizas productoras de leche, en edades comprendidas entre los tres y cinco años, 
elegidas bajo los parámetros reproductivos y sanitarios respectivos, animales vacíos 
y en óptimas condiciones del tracto reproductivo y aparentemente sanos, previo a 
chequeos ginecológicos y técnicas de diagnostico, con una condición corporal entre 
2.5 y 3, en escala de 1 – 5determinando un estado reproductivo optimo para el 
desarrollo de la investigación. 
 
 
Para realizar el estudio se aplicó previamente desparasitantes, y sales minerales a los 
animales con el fin de mantener estable la condición corporal de los animales y por 
ende un estado fisiológico reproductivo normal. Se utilizó semen proveniente de 
toros de raza Holstein Friesian, en la selección de grupos se separó al azar dos grupos 
de veinte vacas, al grupo “A”se aplicó la inseminación artificial con celo natural sin 
el proceso de descongelamiento del semen y al grupo “B” se aplicó la inseminación 
artificial con celo natural mediante el proceso de descongelamiento del semen. 
 
 
La inseminación artificial fue aplicada según el sistema universal AM-PM; es decir, 
que las vacas que son detectadas en estro por la mañana se inseminan en la tarde del 
mismo día y las que son detectadas en celo por la tarde son inseminadas por la 
mañana del día siguiente. 
 
 
La preñez se confirmó desde los treinta y ocho a los sesenta días después de la 
inseminación artificial, a través de chequeo ginecológico mediante la utilización de 
un ecógrafo. 
 
 
 
 8 
En el ADEVA realizado no se encontraron diferencias significativas entre los 
tratamientos, por lo tanto no ameritó realizar la prueba de significancia, cuya 
interpretación llevó a la aceptación de la hipótesis nula donde se menciona que la 
aplicación de la inseminación artificial sin el proceso de descongelación no influye 
en la preñez. 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 9 
ABSTRACT 
 
 
The present study was performed on cattle ranches in the area of Canton Paute, the 
trial lasted six months, which used 40 crossbred Holstein cows producing milk, aged 
between three and five years, elected under the reproductive health parameters and 
respective gaps and animals in optimal conditions of the reproductive tract and 
apparently healthy before gynecological checkups and diagnostic techniques, with a 
BCS between 2.5and 3, on a scale of 1 to 5 determining an optimal reproductive 
status for research development. 
 
 
To conduct the study was previously applied wormers, and minerals to animals in 
order to maintain stable body condition of the animals and therefore a normal 
reproductive physiological state. We used semen from Holstein Friesian bulls in 
group selection randomly separated two groups of twenty cows, the group "A" was 
applied artificial insemination with natural zeal without semen thawing process and 
the group "B "applied artificial insemination with natural zeal through the process of 
thawing semen. 
 
 
Artificial insemination was applied according to the AM-PM universal system, ie 
that cows are detected in estrus in the morning are inseminated in the afternoon of 
the same day and are detected in heat in the afternoon are inseminated in the morning 
the next day. 
 
 
Pregnancy was confirmed from thirty-eight to sixty days after artificial insemination, 
through gynecological checkup using an ultrasound. 
 
 
 
 
 10 
In ADEVA made no significant difference between treatments, therefore merited no 
significance testing, the interpretation of which led to the acceptance of the null 
hypothesis which states that the application of artificial insemination without the 
thawing process not pregnancy influences. 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 11 
CAPITULO I 
 
 
A. PLANTEAMIENTO DEL PROBLEMA 
 
 
La investigación que se pretende ejecutar es con el fin de agilizar la técnica de 
inseminación artificial sin el proceso de descongelamiento del semen ya que 
ciertas veces Médicos Veterinarios en el campo no tienen al alcance formas de 
descongelar las pajuelas por varias razones imprevistas. 
 
 
Por lo que se hace necesario investigar otra técnica de inseminar reduciendo los 
tiempos utilizados por animal evitando el proceso de descongelamiento, también 
se quiere verificar si los porcentajes de preñez son altos pues el semen sufre 
choques térmicos cuando se descongela y si la inseminación es demorada los 
espermatozoides pueden morir o reducir su viabilidad al mantenerse a una 
temperatura ambiente por mucho tiempo de exposición. 
 
 
Del mismo modo se pretenderá valorar el tracto reproductivo de los animales 
utilizados para verificar si el uso de una inseminación artificial con semen 
congelado puede causar alguna lesión a nivel de la mucosa vaginal que ponga en 
riesgo una preñez. 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 12 
B. JUSTIFICACIÓN 
 
 
La inseminación artificial tiene un valor económico significativo en la producción de 
leche y de carne, en los cuales la productividad de los sistemas es favorecida por la 
progenie de uno de los dos sexos. 
 
 
El mejoramiento genético animal se incrementa en un programa de selección con la 
aplicación de la inseminación artificial y la transferencia de embriones, sin embargo, 
son biotecnologías muy costosas para el uso de medianos y pequeños ganaderos, 
como el caso de Ecuador. 
 
 
Esta propuesta se formula con el objeto de aprovechar de mejor manera las ventajas 
que ofrece la inseminación artificial aplicando nuevas técnicas para realizarla como 
es el caso de esta investigación en la que se pretende reducir el tiempo de 
inseminación por animal. 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 13 
C. OBJETIVOS 
 
 
OBJETIVO GENERAL 
 
 
• Determinar el porcentaje de preñez obtenidas mediante inseminación 
artificial con semen sin el proceso de descongelado en vacas productoras de 
leche con celo natural. 
 
 
OBJETIVO ESPECÍFICOS 
 
 
• Determinar la efectividad de la inseminación artificial con esta técnica en 
función de los porcentajes de preñez obtenidas. 
 
 
• Determinar el efecto que puede tener la pajuela sin descongelar en la mucosa 
vaginal. 
 
 
• Medir los costos y tiempo con la inseminación artificial con semen congelado 
en comparación al método de inseminación artificial con semen descongelado 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 14 
CAPITULO II 
 
 
2. MARCO TEÓRICO 
 
 
2.1. ANTECEDENTES HISTÓRICOS. 
 
 
SHEARER, J.K. (2003) manifiesta que: “La inseminación artificial (IA) ha 
sido una herramienta fundamental en el mejoramiento de los niveles 
productivos del ganado bovino productor de leche, constituyéndose en 
una biotécnica de uso común en la mayoría de los planteles lecheros. Sin 
embargo, aún existen problemas asociados a la aplicación de la IA que 
afectan la eficiencia reproductiva y que precisan ser solucionados. Estos 
problemas según se asocian principalmente al lapso parto primer servicio 
y al índice de concepción al primer servicio [...]. Es conocida la 
influencia que tienen los días abiertos sobre la rentabilidad económica de 
la actividad lechera. Los días abiertos son consecuencia de los días 
transcurridos entre el parto y el primer servicio de IA y la tasa de 
concepción, los que se ven incrementados por el balance energético 
negativo que se produce en los primeros meses de lactación en las vacas 
lecheras”.17 
 
 
BEN, G. et al (2002) indica que: “La historia de la Inseminación Artificial, 
existedocumentaciones anteriores de experimentos científicos que datan de 1780 en 
Italia cuando Spallanzani inseminó a una perra con éxito. Constan reportes no 
documentados de los árabes utilizando la I.A. en caballos desde principios de 1900 y 
en ganado desde 1920”.4 
 
 
 
 
 
17SHEARER, J.K. 2003.Reproductive Anatomy and Physiology of Dairy Cattle.Animal Science 
Department, Florida Cooperative Extension Service.University of Florida.Original publication date 
September 1992.Reviewed June 2003. Publication #DS 57 
4Ben, G. y colaboradores.2002. Hereford, Bs.As., Manual Syntex de reproducción, 65(628): 66-71. 
 
 15 
2.2.DEFINICIÓN DE INSEMINACIÓN ARTIFICIAL. 
 
 
SHEARER, J.K. (2003), define a la inseminación artificial como:“La técnica que nos 
permite realizar el depósito del material seminal en el tracto genital de la hembra en 
el momento adecuado. Se deben considerar aspectos que hacen al conocimiento de 
anatomía y fisiología de los aparatos reproductores del macho y de la hembra para 
alcanzar el éxito en el trabajo a realizar”17 
 
 
ARTHUR et al. (1996) señala que: “Uno de los objetivos de un programa 
de manejo reproductivo en un establecimiento ganadero está orientado a 
obtener óptimos parámetros reproductivos, entre ellos una reducción del 
intervalo entre partos, buscando obtener una máxima eficiencia para 
garantizar el retorno económico. 
 
 
La búsqueda de elevados índices de producción asociados con una alta 
eficiencia reproductiva, deben ser las metas fijadas por los productores 
para mejorar su productividad y un satisfactorio retorno económico. Sin 
embargo, existen factores que dificultan la posibilidad de alcanzar las 
metas fijadas, entre los que podemos considerar las deficiencias del nivel 
nutricional y las diferencias de manejo de los animales en cada uno de los 
establecimientos. 
 
 
La Inseminación Artificial (IA) ha demostrado ampliamente su gran 
aporte para el mejoramiento genético en la ganadería lechera y nadie 
puede negar el gran impacto de esta técnica en la mejora de los índices de 
producción lechera en diferentes partes del mundo. Sin embargo, aún 
subsisten algunos factores que atentan contra una mejor eficiencia de la 
técnica y entre las que se pueden mencionar las dificultades y 
deficiencias en la detección de celos[...]”.2 
 
 
 
 
 
 
17SHEARER, J.K. 2003.Reproductive Anatomy and Physiology of Dairy Cattle.Animal Science 
Department, Florida Cooperative Extension Service.University of Florida.Original publication date 
September 1992.Reviewed June 2003. Publication #DS 57 
2ARTHUR, G. y colaboradores T. 1996.Veterinary Reproduction and Obstetrics.Seventh Edition 
Saunders. 
 
 16STERNER, (1995), en su articulo “Trabajos sobre la eficiencia y 
comportamiento reproductivo de vacas lecheras” señala que: “El valor 
promedio deseable para el número de servicios por concepción es de 1.7 
y que cuando este valor es de 2.5 o más debe analizarse como un 
problema de infertilidad, considera además como óptimo para días de 
vacía post parto 85 días y hasta un máximo de 100 días y para intervalo 
entre partos 13 meses[...]. 
 
 
2.3.VENTAJAS Y DESVENTAJAS DE LA INSEMINACIÓN 
ARTIFICIAL. 
 
 
2.3.1. VENTAJAS: 
 
 
• Uso de sementales sobresalientes para mejorar genéticamente 
• Potencial reproductivo de un semental se incrementa […]. 
• Se puede probar rápidamente el potencial productivo y 
reproductivo de un semental. 
• Se reducen los riesgos de transmitir enfermedades 
• No se utiliza semen de animales enfermos. 
• Se pueden utilizar sementales que no pueden copular. 
• Pueden ser servidas hembras jóvenes o de talla pequeña por otros 
grandes o pesados sin temor de lastimarlas 
• Se puede mejorar el control de registros, cubriciones y 
nacimientos. 
• A través de la IA se puede cubrir un gran número de vacas (15,20 
o más) en un mismo día, cosa que sería muy difícil en 
condiciones naturales para un solo toro. 
• La inseminación artificial permite la prueba de toros en forma 
más confiable y segura. 
 
 
2.3.2. DESVENTAJAS 
 
 
• Se necesita personal y una adecuada detección de celo. 
• Al iniciar un programa de IA en una explotación la inversión 
monetaria es alta (compra de equipo, instalaciones, etc.). 
• Las enfermedades pueden propagarse con gran rapidez de toros 
que no se les lleva un control sanitario estricto. 
• Si no se tiene un buen manejo del termino (nivel de nitrógeno o 
de las de semen (descongelación) se puede reducir (e incluso 
llegar a cero) el porcentaje de concepción del hato”.19 
 
 
19STENER, M. (1995).¿Cuál Es La Eficiencia Reproductiva de Sus Vacas? Círculo Ganadero. (25): 
pp 16 –20. 
 
 17 
2.4.ANATOMÍA Y FISIOLOGÍA DE LA VACA 
 
 
FERNÁNDEZ, M (2006), nos dice que: “El funcionamiento del aparato 
reproductivo de la vaca, es muy complejo, ya que no solamente aporta el 
óvulo, sino que también facilita la nutrición y desarrollo del feto y al 
momento del parto lo expulsa completamente desarrollado. Todo este 
proceso, es controlado por un complicado mecanismo neuroendocrino el 
cual regula el funcionamiento adecuado de cada una de las partes que 
conforman dicho tracto para lograr un buen ritmo reproductivo [...]”.6 
 
 
2.4.1. ANATOMÍA DE LA HEMBRA 
 
 
“El sistema reproductor de la hembra bovina está constituido por los órganos 
internos y extremos. Los primeros incluyen el ovario (conocido como la glándula 
sexual femenina) y al sistema de conductos formados por el oviducto, útero, cerviz y 
vagina y los segundos están representados por el vestíbulo vaginal y la vulva”. Ídem6 
 
 
Figura Nº 1. Disposición anatómica del aparato reproductivo de la hembra bovino. 
 
 
Fuente: FERNÁNDEZ M (2006)6 
 
 
6FERNANDEZ M (2006). “El ciclo estral de la vaca” Editorial Servet. Zaragoza España 
6FERNANDEZ M, Art. Cit pág. 16 
 
 18 
2.4.2. DINÁMICA FOLICULAR 
 
 
SINTEX, (2005), manifiesta que:“Se conoce como dinámica folicular al 
proceso decrecimiento y regresión de folículos primordiales que 
conllevan al desarrollo de un folículo preovulatorio” […]. 
 
 
En rumiantes, el crecimiento folicular ocurre de forma continua en forma 
de olas de crecimiento, proceso conocido como dinámica folicular. 
Una ola de crecimiento folicular se caracteriza por: 
 
 
• El reclutamiento inicial de un grupo de folículos en crecimiento. 
• De ellos uno es seleccionado y continua su crecimiento, mientras 
que los otros sufren atresia. 
• Dependiendo de si el cuerpo lúteo regresa o no, el folículo 
ovulará o regresará (folículo dominante anovulatorio). 
• El desarrollo del cuerpo lúteo en tamaño y consistencia va a 
acompañar al de los folículos a lo largo de la oleada. […]. 
 
 
Nuestra habilidad para valorar su consistencia va a ser crucial para juzgar 
laparte central del ciclo, que es la más complicada ya que en ella pueden 
convivirfolículos dominantes, reclutados, seleccionados y cuerpos lúteos 
en el mismo ovario o en ovarios diferentes. 
 
 
En general, en la vaca lechera se exhiben ciclos con dos oleadas de 
crecimiento folicular, sin embargo puede haberlos de tres (animales 
jóvenes...) o de más oleadas por ciclo, lo que complica aún más la 
valoración […].”19 
 
 
FERNÁNDEZ, M (2006) “El ciclo estral de la vaca”. En rumiantes, el crecimiento 
folicular ocurre de forma continua en forma de olas de crecimiento, proceso 
conocido como dinámica folicular”.6 
 
 
 
19SINTEX, 2005 “Fisiología reproductiva del bovino”. Disponible desde 
http://www.produccionbovina.com/informacion_tecnica/inseminacion_artificial/71-
fisiologia_reproductiva_del_bovino.pdf 
6FERNANDEZ M, Art. Cit pág. 16 
 
 19 
ACUÑA, V. (2007) “Se pueden distinguir tres fases distintas en el desarrollo 
folicular: reclutamiento, selección y desviación o dominancia”. (Figura N° 2). 1 
 
 
El proceso de reclutamiento inicia con un grupo de tres o seis folículos en 
crecimiento que se desarrollan hasta llegar a un diámetro mayor de 4–5 mm. Este 
proceso según GONZÁLES G (2008) “Se da en base a estímulos pulsátiles de 
Hormona Folículo Estimulante (FSH) secretada por la Hipófisis” 7 
 
 
El proceso de selección consiste en el cual un folículo es elegido y evita la atresia 
con la posibilidad de llegar a la ovulación. “se produce Inhibina y factores locales 
que inhiben el crecimiento de los demás provocándoles atresia resultando de este 
proceso un folículo dominante”.Ídem 
 
 
ACUÑA, V. (2007) “El folículo dominante seleccionado se convierte en el 
folículo ovulatorio que produce estradiol e inhibina, aun cuando la concentración 
de FSH disminuye el folículo sigue creciendo hasta la ovulación”1 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
1ACUÑA, V. Compendium de reproducción animal Intervet.Sinervia Uruguay/Paraguay Diciembre, 
2007.Disponible desdewww.sinervia.com/library_files/503416277_Compendio%20Reproduccion 
%20Animal%20Intervet.pdf. 
7GONZÁLES, G. (2008). Artículo “Observación de la conducta homosexual en un rebaño de vacas 
mestizas de doble propósito” Disponible desde: 
http://www.webveterinaria.com/virbac/news12/bovinos.pdf 
1ACUÑA, V, Op Cit. Pág. 19 
 
 20 
Figura Nº2. Dinámica Folicular 
 
 
Fuente: FERNÁNDEZ M (2006)6 
 
2.4.3. ONDA FOLICULAR 
 
 
ACUÑA V.(2007) “El crecimiento y desarrollo folicular se caracterizanen los 
rumiantes, por dos o tres olas foliculares consecutivas por ciclo estral [...] Cada ola 
implica el reclutamiento de una nuevo grupo de folículos presentes en la reserva 
ovárica total, en este proceso se da la selección de un folículo dominante, que sigue 
creciendo y madurando hasta alcanzar la fase pre-ovulatoria, mientras que los otros 
sufren atresia.”1 
 
 
FERNÁNDEZ, M (2006) “En general, en la vaca lechera se exhiben ciclos con dos 
oleadas de crecimiento folicular, sin embargo puede haberlos de tres (animales 
jóvenes...) o de más oleadas por ciclo”.6 
 
 
 
 
 
 
6FERNANDEZ M, Art. Cit pág. 17 
1ACUÑA, V, Op Cit. Pág. 19 
6FERNANDEZM, Art. Cit Pág. 5 
 
 21 
FIGURA N°3. ONDAS FOLICULARES EN LA VACA 
 
 
 
Fuente: FERNÁNDEZ M (2006)6 
 
 
2.5.EJE HIPOTÁLAMO HIPÓFISIS 
 
 
GONZÁLES, G (2008) “La interrelación entre estos componentes se realiza a través 
de la vía neuro-hormonal”.7 
 
 
RIPPE, Christian. (2009) “El ciclo estral está regulado por la interacción de varios 
órganos: entre ellos están el eje hipotálamo-hipófisis, el ovario y el útero. Las 
hormonassirven como mensajeros químicos que viajan por la sangre hacia órganos y 
tejidos específicos que contienen receptores para hormonas específicas y que regulan 
las fases del ciclo estral”.16 
 
 
 
 
6FERNANDEZM, Art. Citpág. 4 
7GONZÁLES, G, Art. Cit. pág 18 
16RIPPE, Christian. El ciclo estral. DairyCattleReproductionConference 2009. Disponible desde: 
http://es.scribd.com/doc/56294422/estro. 
 
 22 
ACUÑA, (2007) manifiesta que: “Las hormonas no se secretan constantemente, sino 
mediante una serie de pulsos. La FSH estimula el desarrollo de los folículos ováricos, 
en la teca interna del folículo, la LH estimula la maduración, la producción de 
estradiol y la ovulación. La LH también apoya la formación y la función temprana 
del cuerpo lúteo”.1 
 
 
Figura Nº4.Esquema Interacciones hormonales del eje Hipotálamo – Hipófisis – 
Ovario 
 
Fuente: RIPPE, Christian (2009)16 
Figura Nº5. Interrelaciones en el control de la función reproductora de la hembra. 
 
Fuente: ACUÑA, Victoriano. (2007)1 
 
1ACUÑA, V, Op Cit. Pág. 18 
16 RIPPE, Christian. El ciclo estral. DairyCattleReproductionConference 2009. 
Disponible desde: http://es.scribd.com/doc/56294422/estro. 
1ACUÑA, V. Art. Cit. Pág. 6, 7. 
 
 23 
2.5.1. HIPOTÁLAMO 
 
 
ACUÑA, (2007) Indica que: “Forma parte de la base del cerebro y sus 
neuronas producen la Hormona Liberadora de las Gonadotropinas 
(GnRH)[…]se difunde a través de los capilares al sistema hipofisiario y 
de allí a las células de la hipófisis anterior, en donde su función es 
estimular la producción y secreción de las hormonas hipofisiarias, 
Hormona Folículo Estimulante (FSH) y Hormona Luteinizante (LH)”.1 
 
 
ASPRÓN. (2004) manifiesta que: “La glándula pineal capta información del mundo 
que rodea al animal y mediante la secreción de hormonas (melatonina y 
arginínvasotocina) controla el funcionamiento del hipotálamo”.3 
 
 
2.5.2. HIPÓFISIS 
 
 
RIPPE, (2009) dice que: “La hipófisis anterior o adenohipófisis produce varios tipos 
de hormonas de las cuales la Hormona Folículo-estimulante (FSH) y la Hormona 
Luteinizante (LH), mismas que cumplen un papel relevante en el ciclo estral”.16 
 
 
2.5.3. OVARIOS 
 
 
 “Son glándulas que tienen básicamente dos funciones: una exocrina, que es la 
liberación de óvulos, y otra endocrina, que es la producción y secreción de hormonas 
[…]. Entre las hormonas que producen están los estrógenos, la progesterona y la 
inhibina”. Ídem 
 
 
1ACUÑA, V, Op Cit. Pág. 19 
3ASPRÓN, M. A. (2004) “Curso de Actualización - Manejo Reproductivo del Ganado Bovino”. 
www.ivis.org/continuing_education/short_courses/reprowduction_bovine/aspron_es/IVIS.pdf 
16RIPPE, Christian. El ciclo estral. DairyCattleReproductionConference 2009. Disponible desde: 
http://es.scribd.com/doc/56294422/estro. 
 
 24 
2.5.4. ÚTERO 
 
 
Es el órgano encargado de la Producción de Prostaglandina F2α (PGF2α) la que 
actúa como regulador del ciclo estral por su efecto de luteólisis o regresión del 
cuerpo lúteo. También interviene en los procesos de ovulación y parto. 
 
 
2.6.CICLO ESTRAL 
 
 
GONZÁLES, G (2008) En su artículo “Observación de la conducta homosexual en 
un rebaño de vacas mestizas de doble propósito” manifiesta. “El término ciclo estral 
se refiere al fenómeno rítmico que se observa en todos los mamíferos excepto 
algunos primates, en el cual existen periodos regulares pero limitados de receptividad 
sexual o celo que se presenta a intervalos que son característicos de cada especie”.7 
 
 
Las manifestaciones de ciclo estral se desarrollan durante la pubertad donde surgen 
en las hembras varios tipos de conducta sexual. La receptividad sexual es llamado 
estro o celo (del latín oistrosque significa deseo imperioso) mismo que se considera 
como el inicio del ciclo, en las hembras bovinas tiene una duración de 21 días en 
promedio; lo que es corroborado por MÉRIDA. (2007) “La duración del ciclo estral 
es de 16 a 24 días: de 20 a 21 en la vaca”.12 
 
 
 
 
 
 
 
7GONZÁLES, G, Art. Cit. pág 19 
12MÉRIDA, Carlos. Comparación de la actividad ovárica en vacas f1 (brahman – holstein) durante la 
época seca y la época lluviosa en un hato de la costa sur de Guatemala”Tesis Universidad San Carlos 
de Guatemala, Facultad de de Medicina Veterinaria y Zootecnia. Noviembre del 2007, Disponible 
desde: http://biblioteca.usac.edu.gt/tesis/10/10_1075.pdf. Consulta Noviembre 30 del 2011. Pág. 4 
 
 25 
2.6.1. FASES DEL CICLO ESTRAL 
 
 
El ciclo estral se puede dividir en cuatro fases: estro, metaestro, diestro, proestro; 
donde el estro es el período de receptividad sexual. 
 
 
RIPPE, Christian. (2009) nos dice que: “Los eventos principales que 
ocurren durante el ciclo estral: 
 
 
1. Fase Folicular o de regresión del cuerpo lúteo (Proestro) 
2. Fase Periovulatoria (Estro y Metaestro) 
3. Fase Luteal (Diestro) 
 
 
En síntesis el día cero del ciclo estral es el día del celo o calor aparente 
con signos manifiestos, dura relativamente poco, 18 horas de promedio, 
con un rango de 4-24 horas. La ovulación se da unas 30 horas después 
del inicio del estro y se considera el día del comienzo del nuevo ciclo; a 
partir de la destrucción del cuerpo lúteo del ciclo estral anterior y 
finalizara con el día de celo del siguiente ciclo”. 16 
 
 
FiguraNº 6. Esquema de las hormonas del ciclo estral 
 
Fuente: Traducido de: SHEARER, (2003)17 
 
 
 
16RIPPE, Christian. El ciclo estral. DairyCattleReproductionConference 2009. Disponible desde: 
http://es.scribd.com/doc/56294422/estro. Consulta Noviembre 30 de 2011. Pág. 112 
17SHEARER, J.K. 2003.Reproductive Anatomy and Physiology of Dairy Cattle.Animal Science 
Department, Florida Cooperative Extension Service.University of Florida.Original publication date 
September 1992.Reviewed June 2003.Publication #DS 57. 
 
 26 
Cuadro 1: Fases Del Ciclo Estral 
 
Fase Día Duración Evento 
Estro 0 10-12hrs. Maduración folicular, altos niveles de Estrógeno 
y pico de LH. 
Metaestro 1-3 5-7 días Ovulación (dentro de las 12-18hrs) Formación 
de cuerpo hemorrágico que no responde a la 
PGF2α. 
Diestro 5-18 10-15 días Maduración de Cuerpo lúteo. Altos niveles de 
Progesterona. 
Proestro 19-21 3 días Regresión de cuerpo lúteo, maduración del 
folículo e incremento de estrógenos. 
 
 
Fuente: Traducido de: SHEARER, (2003), Ídem 
 
 
Lucy, (2006), indica que “La duración de celo es muy variable entre 
grupos de animales variando entre 30 minutos a más de 30 horas, pero se 
considera que 16± 4 horas es el tiempo promedio […]. 
 
 
En caso de que exista la fecundación el CL se mantiene activo y se 
transforma en CL de la gestación; en el caso de los bovinos se mantiene 
durante toda la gestación. En el caso contrario, es decir que no exista 
gestación, el útero produce prostaglandinas (PGF2a), siendo esta la 
hormona encargada de provocar la lisis (destrucción) del cuerpo lúteo. La 
destrucción del CL tiene lugar entre el día 15 o 18 del ciclo lo que da 
lugar a la presentación de un nuevo estro tres o cuatro días más tarde. 
 
 
La posibilidad de incrementar el porcentaje de animales detectados en 
estro se puede lograr mediante una tercera observación al medio día, 
dicho incremento puede ser de aproximadamente 10%. Una observación 
más por la noche puede dar un incremento del orden de casi 20%; con 
cuatro observaciones el porcentaje de vacas detectadas es alrededor del 
95-99%”.11 
 
 
 
 
 
11LUCY, M.C. 2006. Estrus: Basic Biology and Improving Estrous Detection. Proc. 
DairyCattleReproductiveConference. pp 29-37. 
 
 27 
2.6.2. COMPORTAMIENTO SEXUAL 
 
 
Wiltbank et al.,2002, nos dice que: “El comportamiento sexual está 
controlado por procesos fisiológicos y conductuales que incluyen al 
sistema endocrino neural ambos tipos de sistemas están mutuamente 
relacionados a través de una cadena compleja de mecanismos. Estos 
mecanismos detectan estímulos internos y externos y los integran para 
que se expresen en el comportamiento sexual […]. 
 
 
2.6.3. FASES DEL COMPORTAMIENTO SEXUAL. 
 
 
Fase prereceptiva: Esta fase se caracteriza por la búsqueda de una pareja 
sexual para que tenga lugar el cortejo, esto sucede generalmente uno o 
dos días antes de la receptividad. 
Fase receptiva: muy corta ya que dura de 12-18 horas y se caracteriza 
por presentar una postura de aceptación cuando es montada por su 
compañero sexual. 
Fase pos-receptiva: se rehúsa a permanecer quieta cuando es 
montada”.21 
 
 
2.6.4. CONTROL REPRODUCTIVO EN BOVINOS: 
 
 
Según Hafez (2002) manifiesta que: “Para lograr con éxito la 
reproducción es necesario que la cópula coincida con el momento de la 
ovulación. Este momento en la vaca ocurre 10 a11 horas después del 
final del estro, el que dura 20 horas en promedio en vacas de carne 15 
horas en promedio en vacas de leche, con un ciclo estrual que dura21 a 
22 días en total”.[…]. “Este ciclo es regulado por mecanismos 
endocrinos y neuroendocrinos; a saber, hormonas hipotalámicas, 
gonadotropinas y esteroides secretados por ovarios”9 
 
 
 
 
 
21Wiltbank, M. 2002. Synchronization of ovulation in dairy cows using PGF2 and GnRH. 
9HAFEZ, B (2002) “Reproducción e inseminación artificial en animales”. Séptima Edición. editorial. 
MCGranw- Hill. ISBN 0-683-30577-8 
 
 28 
Illera, (1994), indica que, “El ciclo puede dividirse en dos grandes fases, 
relacionadas con los acontecimientos que tienen lugar en el ovario y con la 
endocrinología del mismo: Fase folicular, días 18-1 y fase luteína: días 2-17”.10 
 
 
SANZANA, M (2001) describe que:“El patrón hormonal dividiéndolo en dos grupos 
de hormonas, que en su interacción determinarán la regulación del ciclo, a) factores 
hipotalámicos, hormonas hipofisiarias y b) Hormonas esteroides ováricas”.17 
 
 
Illera, (1994) manifiesta que: “El factor hipotalámico implicado en la liberación de 
las gonadotropinas hipofisiarias es la GnRH (gonadotrophinreleasing hormone), y las 
principales gonadotropinas hipofisiarias del ciclo estral bovino son LH (luteinizing 
hormone) y FSH (folliclestimulating hormone)”.10 
 
 
Perry (1991): indica que: “La FSH, actúa sobre las células de la granulosa 
estimulando el crecimiento folicular y la formación del antro. Además provoca un 
aumento de los receptores de LH en estas mismas células. También actúa en la 
transformación de la testosterona en 17 ß- estradiol”.13 
 
 
Cole,H.; Cupps, P., 1990: “La idea sostenida anteriormente de que tanto la FSH 
como la LH eran necesarias para la transformación del folículo en crecimiento en un 
folículo preovulatorio y subsiguiente secreción de estrógenos por la teca no parece 
probable. De acuerdo con estudios, basta con la acción de la FSH para completar 
eldesarrollo del folículo”.5 
 
 
10ILLERA, M..; 1994, En Reproducción de los animales domésticos.Editorial Aedos. España 
17SANZANA, M; RATTO, M; MATAMOROS, R. 2001. Sincronización de ovulación e inseminación 
artificial a tiempo fijo en vacas de cría con ternero al pie y en vaquillas de primer encaste. Facultad de 
acuicultura y ciencias veterinarias. Temuco 
10ILLERA, M..; 1994, Op. Cit. pág. 2 
13PERRY T. 1991. Reproduction in domestic animals.4º Ed. Academic Press, Inc. USA. 
5COLE, H. H.; CUPPS, (1990)P. T. Reproducción de los animales domésticos. Editorial 
Acribia.España 
 
 29 
2.6.5. DETECCIÓN DEL ESTRO 
 
 
Wiltbank et al., 2002, nos dice que: “El celo es un período de aceptación 
para el apareamiento (receptividad sexual) que normalmente se presenta 
en novillas pubescentes y vacas no preñadas. Este período de 
receptividad puede durar de seis a 30 horas y ocurre cada 21 días en 
promedio. De todas formas, el intervalo entre dos celos puede variar 
normalmente de 18 a 24 días […]. 
 
 
2.6.6. TÉCNICAS PARA LA DETECCIÓN DEL ESTRO. 
 
 
La meta de un buen programa de detección de calores es identificar el 
estro acertadamente en todos los animales. Uno de los principales 
problemas que presentan las explotaciones bovinas es la inadecuada 
detección de calores, lo que representa un aspecto limitante para el uso de 
la IA […]. 
 
 
Tratando de resolver o minimizar este problema, en la especie bovina se 
han utilizado diferentes ayudas en la detección del celo, comenzando con 
la preparación de machos celadores […]. 
 
 
• Toros con desviación de pene 
• Toros con fijación de pene a la pared abdominal. 
• Toros vasectomizados. 
• Toros con estrechamiento de la desembocadura prepucial. 
• Entre las técnicas presentadas, las más utilizadas son los toros con 
desviación y fijación de pene. 
• Vacas androgenizadas. […] 
 
 
2.6.7. CAUSAS DE BAJO ÍNDICE DE CONCEPCIÓN. 
 
 
Más del 90% de las vacas en el hato deben requerir menos de tres 
servicios para concebir. Las posibles causas de un bajo índice de 
concepción (menos de 50%) pueden caer en las siguientes categorías: 
a) Problemas relacionados con la detección de celo: 
* No inseminar una vaca que está en celo; 
* Inseminar una vaca que no está en celo; 
* Momento inadecuado de inseminación; 
* Errores en la identificación de los animales lo que conduce a errores en 
el registro de datos. 
 
 30 
 b) Problemas relacionados con el servicio natural o inseminación 
artificial: 
* Un toro con baja fertilidad; 
* Técnicas de inseminación inadecuadas. 
c) Factores de la vaca: 
* Infecciones del tracto reproductivo; 
* Desórdenes hormonales; 
* Oviductos obstruidos; 
* Defectos anatómicos; 
* Muerte embrionaria precoz (la vaca se preña pero la preñez no se 
mantiene). 
 
 
2.6.8. MOMENTO DE LA INSEMINACIÓN 
 
 
Es preciso mencionan que para obtener buenos resultados en la l.A. , es 
necesario considerar el inicio del celo ya que generalmente esta se realiza 
entre las 8 y las 24 horas después de iniciado el celo, pero el mejor 
momento se encuentra entre las 12 y las 16 horas. El sistema que se 
emplea universalmente es la regla AM-PM, es decir, que las vacas que 
son detectadas en estro por la mañana se Inseminan en la tarde del mismo 
día y las que son detectadas en celo por la tarde son inseminadas por la 
mañana del día siguiente. 
 
 
2.6.9. MANEJO ADECUADO DEL SEMEN. 
 
 
La regularización de la temperatura es el factor más importante a 
considerar cuando maneje el semen. Las fluctuaciones en la temperatura 
van a ocasionar que la calidad del semen se deteriore rápidamente […]. 
 
 
Control de Temperatura: El semen almacenado en una unidad o termo de 
nitrógeno líquido de manera adecuada mantendrá su calidad original. 
[…]. 
 
 
• Cuando levante la canastilla correcta hasta el cuello del termo 
para poder sacar el bastón deseado 
• Para remover una pajilla doble la parte superior del bastón un 
poco. Utilice unas pinzas para remover la pajilla del gobelete. 
Una pajilla congelada se puede romper así que no trate de 
doblarla. 
• Rápidamente devuelva el bastón a la canastilla y bájelo 
colocándolo en la posición adecuada en el termo. Nunca se debe 
tener la canastilla o el bastón en el cuello del termo por más de 10 
segundos. Después de este tiempo vuelva a sumergir la canastilla 
para que se enfríe de nuevo. 
 
 31 
2.6.10. PROCEDIMIENTO DE DESCONGELACIÓN: 
 
 
El semen debe ser descongelado en agua tibia dándole atención 
cuidadosa al tiempo en que la pajilla permanece dentro del agua y la 
temperatura de la pistola. 
 
 
• Agite la pajilla una o dos veces antes de ponerla en el baño de agua 
caliente. 
• Descongele las pajillas en agua a (36ºC) en el termo de 
descongelación con termómetro que se encuentra a su disposición.• La pajilla debe ser descongelada un mínimo de 45 segundos en el 
agua a 36ºC. Esta puede mantenerse en perfectas condiciones en el 
agua mientras que usted llega al área en donde va a colocarla en la 
pistola y a realizar la inseminación. Utilice el semen inmediatamente 
después de sacarlo del agua. 
• Bajo ninguna circunstancia se debe utilizar semen que ha sido 
descongelado por más de 15 minutos fuera del agua tibia. 
• Preparación para La Inseminación. Si la temperatura exterior es 
menor a 21ºC (70ºF) la preparación de la pistola se debe de hacer en 
un sitio protegido, puede ser en la sala de ordeño, en un almacén o en 
el carro. 
• Remueva la pajilla descongelada del agua. Agítela una o dos veces 
para que la burbuja suba a la punta que está sellada. Con una toalla de 
papel séquela muy bien. 
• Precaliente la pistola frotándola vigorosamente con una toalla de 
papel. 
• Saque un poco el aplicador de la pistola y coloque la pajilla dentro de 
la cámara 
• Utilice unas tijeras para cortar el extremo que está sellado, sin que 
este corte se haga más abajo del nivel del semen y que el ángulo no 
sea mayor de 45 grados o use un corta pajillas. 
• Coloque la funda sobre la pajilla y jale ligeramente hacia abajo el 
aplicador hasta que el semen llegue a la punta de la pistola y se pueda 
asegurar con el aro de plástico. Luego empuje la funda con suavidad 
pasándola a lo largo del cilindro de la pistola. Empuje el émbolo con 
suavidad hasta que el semen llegue a la punta de la funda. La pistola 
está lista para la inseminación. 
• Envuelva en una toalla de papel o dentro de la camisa o chamarra 
para mantenerla a temperatura constante. Todo semen descongelado 
debe ser protegido contra un choque térmico […]. 
 
 
 
 
 
 
 
 32 
2.6.11. EQUIPO PARA LA INSEMINACIÓN ARTIFICIAL 
 
 
Para poder realizar la IA, es necesario contar con el siguiente material: 
Termo de nitrógeno. El termo de nitrógeno funciona como refrigerador (-
196°C), y gracias al nitrógeno líquido, en él se guardan las dosis de 
semen. 
 
 
• Dosis de semen. Estas se encuentran almacenadas en el termo, y 
vienen en diferente presentación, las más comunes son las pajillas 
de 5 ml y la ampolleta de 1 ml. 
• Caja para el instrumental. 
• Pinzas. De preferencia las pinzas deberían ser un poco más 
largas, para poder manejar el semen los más abajo posible del 
cuello del termo. 
• Caja de descongelación. es de "nieve seca" (poliestireno) aunque 
también se pueden emplear recipientes de plástico o bien termos 
de los que se usan para guardar café o refresco 
• Termómetro. Al utilizar la descongelación en agua a 37°C es 
necesario medir la temperatura y para esto se utiliza el 
termómetro. 
• Cortador de pajillas o ampolletas. se pueden cortar con tijera o 
navaja, siempre y cuando se realice de la forma adecuada. 
• Guantes de plástico: los guantes para palpaciones se pueden 
encontrar en diferentes modelos y tienen la finalidad de proteger 
la mano del operador al momento de realizar la palpación para la 
inseminación. 
• Pipeta para la inseminación artificial: la pipeta rígida y la 
pistola de inseminación la cual puede ser de tipo universal o fija. 
• Fundas: estas se utilizan para la pistola de inseminación (o 
pipeta) fija o universal. 
• Libro de registro: la libreta de registro forma parte importante 
del proceso de IA. 
 
 
 
Figura Nº7: Método de la Fijación cervical transrectal para la I.A. de la 
vaca. 
 
 
 
 33 
2.6.12. PROCEDIMIENTO: 
 
 
1. Identificar correctamente al animal y sujetar al mismo. 
2. Limpiar la vulva y partes adyacentes con agua y posteriormente secar con 
toallas de papel. 
3. Preparar el semen y acondicionarlo en el instrumental de inseminación. 
4. Ubicar el pistolete de inseminación en el vestíbulo de la vagina, 
separando previamente los labios vulvares y orientando el instrumento 
hacia el techo de la vagina. 
5. Colocar la mano enguantada (izquierda) con los dedos en forma de cuña 
e introducirla suavemente en el recto, venciendo la resistencia del esfínter 
anal, eliminando el estiércol de la ampolla rectal. 
6. Insertar el catéter o pistolete de inseminación con la mano libre (derecha) 
hacia el fondo de la vagina y guiarlo hasta el cuello uterino. 
7. Sujetar firmemente éste y enfrentar la punta del instrumento con la 
entrada del cuello. 
8. Manipular el instrumental de manera que pase a través de los pliegues 
cervicales hasta la porción posterior del canal. 
9. El pistolete o catéter no debe penetrar profundamente en el útero, ya que 
algunas veces puede producir infección o bien el semen ser depositado en 
el cuerno contra-lateral al ovario ovulante. 
10. La deposición del semen se realiza en el cuerpo del útero. Una vez 
encontrado el sitio de deposición, expeler el semen lentamente y retirar el 
instrumento. 
11. Descartar el equipo usado, lavarse las manos y limpiar y desinfectar las 
botas y guantes si son de látex. 
 
 
Figura Nº 8 El lugar correcto para la deposición del semen 
 
 
 
 
 
Fuente: FERNÁNDEZ M (2006)6 
 
 
 
 
6FERNANDEZ M, Art. Cit pág. 4 
 
 34 
2.6.13. ERRORES AL INSERTAR LA PIPETA DE INSEMINACIÓN. 
 
 
La pipeta de inseminación debe ingresar a la vulva en un ángulo de 45º, 
con el extremo libre hacia arriba. Luego de sobrepasar el divertículo 
uretral, el instrumento de inseminación debe colocarse horizontalmente, 
para seguir avanzando en busca del cuello uterino[…]. 
 
 
Con cierta frecuencia, el avance del instrumento de inseminación (pipeta 
o pistolete) se ve impedido por un pliegue de la vagina. La punta del 
instrumento choca contra éste, frustrando todo intento de introducirlo 
más profundamente. Para desarmar el pliegue, debe traccionarse el cuello 
uterino hacia craneal del animal, para luego intentar avanzar el 
instrumento […]. ”.21 
 
 
2.7.FALLAS EN LA CONCEPCIÓN EN VACAS 
 
 
HERNANDEZ, (2001) manifiesta que: “La sobrevivencia embrionaria depende de 
una correcta sincronía entre el embrión y la madre [...] Para que la gestación se lleve 
a cabo, se debe establecer un lazo estrecho entre el embrión en desarrollo y el 
ambiente materno, de esta forma el embrión establecerá los mecanismos necesarios 
para evitar la regresión del cuerpo lúteo durante los días 15 a 17 post-inseminación”.8 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
21Wiltbank, M. 2002. Synchronization of ovulation in dairy cows using PGF2 and GnRH. 
Theriogenology 44: 915 – 923. 
8HERNANDEZ, J (2001) “Fallas en la concepción de ganado lechero, terapias hormonales”, Unam - 
México ISSN: 0301-5092. Pág. 282 – 283. Disponible desde: 
http://www.ejournal.unam.mx/rvm/vol32-04/RVM32406.pdf 
 
 35 
2.8. LA ECOGRAFÍA 
 
 
QUINTELA, L y colaboradores. (2006) en su obra “Ecografía y 
reproducción en las vacas” manifiesta que: “Las principales aplicaciones 
de esta técnica es en el área de reproducción, se destaca como uno 
método más revolucionario y esclarecedor para comprender los aspectos 
reproductivos en las diferentes especies, y en particular en el ganado 
bovino.”15 
 
 
LA ECOGRAFÍA AYUDA A COMPRENDER Y EVALUAR: 
 
 
• Estudio de ovarios y útero durante el ciclo estral y gestación. 
• Diagnóstico de patologías del aparato reproductor 
• Diagnóstico precoz de gestación 
• Determinación precoz del sexo fetal 
• Estudio de la dinámica folicular - ondas foliculares 
• Guía para punción y aspiración folicular y colecta de ovocitos. 
• Estudio de la viabilidad embrionaria 
• Determinación de la edad de gestación. 
• Evaluación ginecológica de donantes y receptoras de embriones 
• Determinación de momento de inicio de superovulación de donantes 
• Estimación de la respuesta superovulatoria 
• Estudio del momento la aplicación de agentes luteolíticos para 
sincronizar celos 
• Evaluación de respuesta del ovario a otros sistemas de sincronización 
de celo 
• Determinación del momento y / o tasa de ovulaciónpara servicio 
(yeguas - cerdas) 
• Determinación de preñeces múltiples (ovejas, cabras, cerdas, perras) 
• Determinación precoz de mellizos para dejar uno ( yeguas ) 
• Aplicación en los machos, para estudio de glándulas accesorias, 
testículos y Epidídimo”. Ídem 
 
 
 
15QUINTELA, L y colaboradores. “Ecografía y reproducción en las vacas” Universidad de Santiago 
de Compostela, 2006 ISBN 84-9750-775-4. 
 
 
 36 
CAPITULO III 
 
 
HIPÓTESIS 
 
 
3. HIPÓTESIS NULA 
 
 
Ho: La aplicación de la inseminación artificial sin el proceso de descongelación no 
influye en la preñez. 
 
 
3.6.HIPÓTESIS ALTERNATIVA 
 
 
H1: La aplicación de la inseminación artificial sin el proceso de descongelación 
influye en la preñez. 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 37 
3.7.OPERACIONALIZACIÓN DE VARIABLES 
 
 
3.7.1. VARIABLESDEPENDIENTES(Preñez) 
 
 
4. Cuadro N° 2: Variable dependiente 
 
CONCEPTO CATEGORÍA INDICADORES ÍNDICE 
Comportamiento 
reproductivo de las 
vacas en estudio. 
Preñez 
No preñez 
Número de vacas 
preñadas 
Número de vacas 
no preñadas 
 
Número 
 
 
 
4.6.1. VARIABLESINDEPENDIENTES (Semen congelado) 
 
 
Cuadro N° 3: Variable independiente 
 
 
CONCEPTO CATEGORÍAS INDICADORES ÍNDICE 
Comportamiento 
reproductivo de 
las vacas en 
estudio 
Preñez 
No preñez 
Semen congelado 
Semen descongelado 
Número 
 
 
 
 
 
 38 
CAPITULO IV 
 
 
4. POBLACIÓN YMUESTRA 
 
 
4.1.POBLACIÓN 
 
 
El estudio se desarrolló con cuarenta vacas raza holstein mestiza productoras de 
leche divididas en dos grupos Ay B de veinte animales cada uno. 
 
 
4.2.. MUESTRA 
 
 
100% de la población 
 
 
4.3.DISEÑO ESTADÍSTICO 
 
 
• Diseño Completamente Al Azar (DCA) con un solo factor (semen congelado) 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 39 
4.4.LOTE EXPERIMENTAL 
 
 
Cuadro 4: ESQUEMA DEL EXPERIMENTO TRATAMIENTOS “A” Y “B” 
 
 
FACTOR 
SEMEN 
CONGELADO 
TRATAMIENTO A TRATAMIENTO B 
Experimento 5 animales 5 animales 
Replica 1 5 animales 5 animales 
Replica 2 5 animales 5 animales 
Replica 3 5 animales 5 animales 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 40 
CAPITULO V 
 
 
5. MARCO METODOLÓGICO 
 
 
5.1. DELIMITACIÓN 
 
 
5.1.1. TEMPORAL. 
 
La investigación tuvo una duración de 6 meses. 
 
 
5.1.2. ESPACIAL. 
 
 
El presente estudio de investigación se realizóen el cantón Paute y lugares aledaños 
al mismo. 
 
 
DATOS GENERALES 
 
 
Ubicación: El cantón se encuentra en el corredor Nor-Oriental de la provincia del 
Azuay. 
Altitud: 2.300 m.s.n.m. 
Extensión: 261,43 Km2. 
Latitud: -2° 46 min 59.99 sec 
Temperatura: Variable entre 15° C a 26° C 
Humedad Relativa del 60 a 70% 
Horas luz: 12 horas 
 
 
 41 
CROQUIS 
 
 
 
 
Fuente: Google Maps - ©2012 Google 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
CANTÓN PAUTE 
 
 42 
CAPITULO VI 
 
 
6. MATERIALES Y MÉTODOS 
 
 
6.1.MÉTODOS 
 
 
6.2.MÉTODO EXPERIMENTAL 
 
 
El método experimental usado en la investigación es el método inductivo el cual me 
permitió estudiar los hechos o fenómenos bajo condiciones especiales. 
 
 
6.2.1. PROCESO 
 
 
• Planteamiento del problema 
• Formulación de las hipótesis 
• Comprobación de las hipótesis 
• Presentación de los resultados 
 
 
6.2.2. TÉCNICA. 
 
 
• Técnica de registro. 
• Técnica de campo. 
• Determinación de preñez (Chequeo Ecográfico). 
• Análisis estadístico. 
 
 
 43 
6.3.PROCEDIMIENTO DEL ENSAYO. 
 
 
6.3.1. SELECCIÓN DE LA MUESTRA. 
 
 
Se utilizaron 40 vacas de raza holstein mestizas productoras de leche en edades 
comprendidas entre los tres y cinco años, elegidas bajo los parámetros reproductivos 
y sanitarios respectivos, revisión ginecológica por medio de tacto rectal (animales 
vacíos y en óptimas condiciones del tracto reproductivo y posible negativos a 
enfermedades infectocontagiosas, con una condición corporal entre 2 y 3, en escala 
del (1 - 5). Los animales se identificaron por medio del número de arete. 
 
 
6.3.2. DIVISIÓN POR GRUPOS Y LOTES 
 
 
Se dividió en dos grupos “A” (I A con semen congelado) y “B” (Testigo) cada uno 
formado por veinte animales distribuidos de la siguiente manera. 
 
 
Cuadro 5: División por lotes y grupos 
 
GRUPO “A” GRUPO “B” 
Experimento A Experimento B 
Repetición 1 Repetición 1 
Repetición 2 Repetición 2 
Repetición 3 Repetición 3 
 
 
 
 
 
 
 44 
6.4.PREPARACIÓN DE LOS ANIMALES 
 
 
Se aplicó: 
• Desparasitantes: 
o Albendazol. 
 Dosis: 5-10 mg/kg por VO. 
• Sales minerales: 
o Ganasal. 
 Dosis: Vacas 150-200g/día. 
 
 
6.5.INSEMINACIÓN ARTIFICIAL CON CELO NATURAL 
 
 
La inseminación se realizó 12 horas después de que los animales presentaron el celo 
de manera natural según la regla am-pm, pm-am. 
 
 
6.6.TOMA DE DATOS 
 
 
6.6.1. DIAGNOSTICO DE PREÑEZ 
 
 
Cumplidos los treinta y ocho días desde la IA, con el apoyo de un ecógrafo y 
personal capacitado se efectuó el chequeo ginecológico a los cuarenta animales para 
determinar preñez, resultados necesarios para la presente investigación. 
 
 
 
 
 
 
 45 
6.7.MATERIALES 
 
 
Cantidad Descripción 
40 Vacas de raza holstein mestizas productoras de leche mestizas 
40 Pajuelas de semen de raza Holstein Friesian 
1 Kit de Inseminación Artificial 
1 Termo 
1 Termómetro 
1 Caja de Fósforos 
1 Ecógrafo marca “LANDWIND” 
1 Caja de guantes ginecológicos 
1 Amonio cuaternario 
1 Litro de gel Lubricante 
1 Balde de 10 Lts. 
1 Extensión eléctrica de treinta metros 
1 Sombrilla 
2 Tableros de campo 
4 Bolígrafos 
1 Cuaderno de campo 
1 Cámara de fotos 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 46 
6.8.MARCO LOGÍSTICO 
 
 
6.8.1. RECURSOS FINANCIEROS 
 
 
El análisis económico total se describe en el Anexo 1. 
 
 
6.8.2. RECURSOS HUMANOS 
 
 
• Director de tesis. 
 
• Investigador. 
 
 
6.8.3. RECURSOS INSTITUCIONALES. 
 
 
Universidad Politécnica Salesiana. (Equipo de inseminación) 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 47 
CAPITULO VII 
 
 
RESULTADOS Y DISCUSIONES. 
 
 
7. RESULTADOS. 
 
 
El presente trabajo de investigación “Inseminación artificial con celo natural en 
vacas de raza holstein mestizas productoras de leche con semen sin el proceso de 
descongelado en el cantón Paute”, ha dado los siguientes resultados los cuales 
planteo de la siguiente manera. 
 
 
Cuadro 6: Número de vacas preñadas de grupo “A” y “B” 
 
 
VACAS 
 
GRUPO A GRUPO B 
IA SEMEN 
CONGELADO 
TESTIGO 
IA SEMEN 
DESCONGELADO 
PREÑADAS 4 
 
15 
NO 
PREÑADAS 16 
 
5 
 
 
Cuadro7: Porcentajes de preñez por tratamiento en vacas 
 
REPETICIONES 
TRATAMIENTOS 
SEMEN 
CONGELADO TESTIGO 
I 20% 60% 
II 0% 60% 
III 20% 100% 
IV 40% 80% 
 
 48 
 
FIGURA Nº9: NÚMERO DE VACAS PREÑADAS Y NO PREÑADAS, EN EL 
GRUPO “A” 
 
 
 
 
En la figura 10 observamos que de veinte animales sometidos al tratamiento con 
inseminación artificial con semen congelado, cuatro animales se preñaron y quince 
animales no respondieron al tratamiento. 
 
 
FIGURA Nº10: NÚMERO DE VACAS PREÑADAS Y NO PREÑADAS EN EL 
GRUPO “B” 
 
 
 
 
En la figura N° 11 observamos que de los veinte animales del testigo, quince 
animales se preñaron y cinco animales no se preñaron 
4 
16 
0
5
10
15
20
PREÑADAS NO PREÑADAS
GRUPO "A" 
SEMEN CONGELADO
15 
5 
PREÑADAS NO PREÑADAS
TESTIGO 
TESTIGO
 
 49 
 
FIGURA Nº11: NÚMERO DE VACAS PREÑADAS Y NO PREÑADAS 
 
 
 
Diferencia existente entre el tratamiento “A” y el testigo con respecto a la preñez. 
 
 
FIGURA N°12: COMPARACIÓN DE LOS RESULTADOS DE LA 
INVESTIGACIÓN 
 
 
 
Las vacas del grupo “A” (IA con semen congelado) tuvieron un número de preñez 
promedio del 20%; y las del grupo “B” (Testigo) fue del 75%. 
 
 
 
TRATAMIENTO A
TRATAMIENTO B
4 
15 
16 
5 
COMPARACIONENTRE TRATAMIENTOS 
PREÑADAS NO PREÑADAS
SEMEN CONGELADO
(TRAT. A)
SEMEN DESCONGELADO
(TESTIGO. B)
 PREÑEZ 20% 75%
0%
20%
40%
60%
80%
 PREÑEZ 
 
 50 
 
ANÁLISIS: PREÑEZ EN VACAS HOLSTEIN MESTIZAS 
 
Cuadro8: Porcentajes de preñez por tratamiento en vacas, para un DCA, de dos 
tratamientoscon cuatro repeticiones. 
 
REPETICIONES 
TRATAMIENTOS 
SEMEN 
CONGELADO 
TESTIGO 
I 20% 60% 
II 0 % 60% 
III 20% 100% 
IV 40% 80% 
 
 
Cuadro 9: Datos transformados a valores arco-seno 
 
 
REPETICIONES 
TRATAMIENTOS 
SEMEN 
CONGELADO 
TESTIGO 
I 26.56 50.77 
II 0 50.77 
III 26.56 90 
IV 29.23 63.43 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 51 
 
Cuadro 10: ADEVA PARA EL FACTOR PREÑEZ CON VALORES 
TRANSFORMADOS A ARCO SENO 
F de V GL. SC CM F Cal. 
 
F. 
Tabular 
 
0,05 0,01 
TOTAL 13 10062.45 
Tratamiento 3 2483.42 827.80 0.65
NS 
 
4.8 9.8 
Error 
Experimental 10 7579.02 1263.17 
 
 CV = 65.29% 
 
 
 
Según con el tipo de diseño utilizado, el Coeficiente de variación de 65.29%, indica 
la variabilidad dentro de los tratamientos; mismo que se encuentra dentro de los 
márgenes de aceptación. 
 
 
El ADEVA calculado, dio como resultado un valor f calculado menor que no supera 
al valor tabular del 5% y 1%, por lo tanto no hay diferencias estadísticamente 
significativas, como se puede observar en el cuadro N° 10 del ADEVA. 
 
 
Por consiguiente, existe la evidencia suficiente para aceptar la hipótesis nula de que 
la aplicación de la inseminación artificial con semen congelado no influye en la 
preñez de vacas mestizas con condición corporal entre 2,5-3,5. 
 
 
 
 
 
 
 52 
CAPITULO VIII 
 
CONCLUSIONES 
 
 
Se determinó que la aplicación de la inseminación artificial con semen sin el proceso 
de descongelado con celo natural tiene un efectoligeramente positivo en los índices 
de preñez en vacas de raza holstein mestizas productoras de leche. 
 
 
La aplicación de la inseminación artificial con semen congelado no tuvo un efecto 
negativo visual en la mucosa del tracto reproductivo de los animales ya que en los 
chequeos ginecológicos realizados no se determino presencia de catarros vaginales o 
algún otro tipo de inflamación. 
 
 
El costo del tratamiento es económicamente elevado según el análisis costo por 
animal/tratamiento realizado (Anexo 2), lo cual no justifica su aplicación en el 
campo. 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 53 
CAPITULO IX 
 
 
RECOMENDACIONES 
 
 
No se recomienda aplicar la inseminación artificial con semen sin el proceso de 
descongelamiento ya que los resultados obtenidos son bajos. 
 
 
El manejo del semen en la inseminación artificial debe seguir todo el procedimiento 
de descongelamiento para mejorar la capacitación de los espermatozoides y mejorar 
el porcentaje de preñez de los animales. 
 
 
La confirmación de preñez temprana con la ayuda de un ecógrafo facilita el 
diagnóstico y disminuye los días abiertos en los animales. 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 54 
8. ANEXOS 
 
 
ANEXO 1. COSTO TOTAL DE LOS TRATAMIENTOS 
 
DESCRIPCIÓN UNIDAD CANTIDAD 
 
COSTO 
UNITARIO 
COSTO 
TOTAL 
MATERIALES DIRECTOS 
Semen pajuelas 40 16.00 640.00 
Termo 500ml 1 16.00 16.00 
Botiquín 1 180.00 180.00 
Jeringas 10-20ml 40 0,25 10.00 
Agujas 40 0,15 6.00 
Fósforos caja 1 0.10 0.10 
Desparasitantes 50ml 2 25.00 50.00 
Sales Minerales lb 80 2.00 160.00 
Nitrógeno kg 4 20.00 80.00 
Gel lubricante Litro 1 10 10,00 
Catéteres funda 50 1 8 8.00 
Ecógrafo Examen 40 5 200.00 
Guantes caja (100) 1 15 30,00 
MANO DE OBRA 
Transporte 20 3.00 60.00 
Estudiante 20 5.00 100.00 
Director Visitas 10 20.00 200.00 
 Subtotal materiales directos 1710.10 
MATERIALES 
INDIRECTOS 
 
 
Registro de campo Hojas 84 0.10 8,40 
Impresiones Hojas 600 0.10 60.00 
Empastado Unidad 4 16.00 64.00 
 Subtotal materiales indirectos 132.4 
 Sub Total $ 1842.5 
IMPREVISTOS % 10 $ 184.25 
TOTAL $2028.55 
 
 
 
 
 
 
 
 
 55 
ANEXO 2. COSTO POR ANIMAL/TRATAMIENTO 
 
 
Descripción Tratamientos 
Grupo “A” Grupo “B” 
MATERIALES DIRECTOS 
Semen 16.00 16.00 
Termo 0.00 16.00 
Botiquín 4.5 4.5 
Jeringas 0,25 0,25 
Agujas 0,15 0,15 
Fósforos 0.00 0.10 
Desparasitantes 0.65 0.65 
Sales Minerales 2.00 2.00 
Nitrógeno 2.00 2.00 
Gel lubricante 0.25 0.25 
Catéteres 0.16 0.16 
Ecógrafo 5 5 
Guantes 0.15 0.15 
MANO DE OBRA 
Transporte 3.00 3.00 
Estudiante 2.50 2.50 
Director 5.00 5.00 
Sub total 41.21 57.31 
MATERIALES 
INDIRECTOS 
Registro de campo 0.10 0.10 
Impresiones 0.10 0.10 
Empastado 1.60 1.60 
Sub total 1.80 1.80 
SUBTOTAL 43.01 59.11 
IMPREVISTOS 
10% 
4.30 5.91 
TOTAL 47.31 65.02 
 
Costo total unitario, de $47.31 para el grupo “A” y para el grupo “B” es de $65.02. 
 
Costo beneficio= (Beneficio Bruto xnúmero de animales)/número de animales 
preñados 
Grupo A= (47.31x 20)/4= $236.55 
Grupo B= (65.02 x 20)/15= 86.69 
El valor de una cría lograda por preñez del grupo “A” es de $236.55 y de $86.69 
para el caso del grupo “B” 
 
 56 
ANEXO 3. TIEMPO IA POR TRATAMIENTO 
 
 
 
 
ACTIVIDAD 
Tratamientos 
Grupo “A” Grupo “B” 
TIEMPO TIEMPO 
Extracción de pajuela 10 segundos 10 segundos 
Descongelamiento 0 segundos 40 segundos 
Corte de pajuela 5 segundos 5 segundos 
Preparación de 
pistola/pajuela/catéter 
15 segundos 15 segundos 
Inseminación 
Artificial/animal 
120 segundos 120 segundos 
TOTAL 120 segundos 160 segundos 
 
Tiempo total unitario, es de 120 segundos para el grupo “A” y 160 segundos para el 
grupo “B”. 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 57 
ANEXO 4.CRONOGRAMA DE ACTIVIDADES 
 
ACTIVIDADES MESES 
MES 1 MES 2 MES 3 MES 4 MES 5 MES 6 MES 7 MES 8 
PERIODO DE 
EJECUCIÓN 
 
 
COMPRA DE 
INSUMOS X X 
 
 
SELECCIÓN DE 
ANIMALES X X X X 
 
 
PREPARACIÓN DE 
LOS ANIMALES X X 
 
INSEMINACIONES 
 
X X 
 
X X X 
 
 
 
REVISIONES 
GINECOLÓGICAS 
 
 
 
X 
 
X 
 
VISTAS TÉCNICAS X X X X 
 
 
X 
 
X 
 
X 
 
X 
 
X X 
 
PERIODO DE 
CONCLUSIÓN 
 
 
 
 
 
 
ANÁLISIS E 
INTERPRETACIÓN 
DE RESULTADOS 
 
 
 
 
X 
 
X 
 
CONCLUSIONES Y 
RESULTADOS 
 
 
 
 
X 
 
REVISIÓN DEL 
DOCUMENTO 
 
 
X 
 
DEFENSA 
DE LA 
INVESTIGACIÓN 
 
 
X 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 58 
ANEXO 5.REGISTROS DE CAMPO 
 
# de Vaca:912 Hacienda: Chorro Blanco 
Nombre: Titita Edad: 3 años 
I.A. semen congelado # de Partos: 1 
Fecha de I.A: 5/03/2012 Condición Corporal: 2.5 
Fecha de Chequeo: 8/06/2012 Preñez: No 
 
# de Vaca:923 Hacienda: Chorro Blanco 
Nombre: Rosita Edad: 4 años 
I.A. semen descongelado # de Partos: 2 
Fecha de I.A: 7/03/2012 Condición Corporal: 2.6 
Fecha de Chequeo: 8/06/2012 Preñez: Si 
 
# de Vaca:902 Hacienda: Chorro Blanco 
Nombre: Lucrecia Edad: 5 
I.A. semen congelado # de Partos : 3 
Fecha de I.A: 21/03/2012 Condición Corporal: 3 
Fecha de Chequeo: 8/06/2012 Preñez: Si 
 
# de Vaca:935 Hacienda: Chorro Blanco 
Nombre: Lupita Edad: 3 
I.A. semen descongelado # de Partos: 1 
Fecha de I.A: 26/03/2012 Condición Corporal: 2.8 
Fecha de Chequeo: 8/06/2012 Preñez: No 
 
# de Vaca: 928 Hacienda: Chorro Blanco 
Nombre: Blanquita Edad: 5 
I.A. semen congelado # de Partos: 3 
Fecha de I.A: 6/04/2012 Condición Corporal: 2.6 
Fecha de Chequeo: 8/06/2012 Preñez: No 
 
 
 
 59 
# de Vaca: 1130 Hacienda: Chorro Blanco 
Nombre: Monga Edad: 3 
I.A. semen descongelado # de Partos: 1 
Fecha de I.A: 30/03/2012 Condición Corporal: 2.5 
Fecha de Chequeo: 8/06/2012 Preñez: Si 
 
# de Vaca: 1123 Hacienda: Chorro Blanco 
Nombre: Negra Edad: 5 
I.A. semen congelado # de Partos: 1 
Fecha de I.A: 4/04/2012 Condición Corporal: 2.7 
Fecha de Chequeo: 8/06/2012Preñez: No 
 
# de Vaca: 1200 Hacienda: Chorro Blanco 
Nombre: Chiquita Edad: 3 
I.A. semen descongelado # de Partos: 1 
Fecha de I.A: 26/03/2012 Condición Corporal: 2.5 
Fecha de Chequeo: 8/06/2012 Preñez: no 
 
# de Vaca: 1203 Hacienda: Chorro Blanco 
Nombre: Suca Edad: 4 
I.A. semen congelado # de Partos: 1 
Fecha de I.A: 2/03/2012 Condición Corporal: 3 
Fecha de Chequeo: 8/06/2012 Preñez: No 
 
# de Vaca: 1200 Hacienda: Chorro Blanco 
Nombre: Roja Edad: 4 
I.A. semen descongelado # de Partos: 2 
Fecha de I.A: 21/03/2012 Condición Corporal: 2.6 
Fecha de Chequeo: 8/06/2012 Preñez: Si 
 
 
 
 
 60 
# de Vaca: 4980 Hacienda: Santa Rosa 
Nombre: Lupe Edad: 4 
I.A. semen congelado # de Partos: 1 
Fecha de I.A: 10/04/2012 Condición Corporal: 2.5 
Fecha de Chequeo: 8/06/2012 Preñez: no 
 
# de Vaca: 4981 Hacienda: Santa Rosa 
Nombre: Monga Edad: 5 
I.A. semen descongelado # de Partos: 3 
Fecha de I.A: 3/04/2012 Condición Corporal: 2.5 
Fecha de Chequeo: 8/06/2012 Preñez: No 
 
# de Vaca: 4976 Hacienda: Santa Rosa 
Nombre: Luna Edad: 3 
I.A. semen congelado # de Partos: 1 
Fecha de I.A: 26/04/2012 Condición Corporal: 2.7 
Fecha de Chequeo: 8/06/2012 Preñez: No 
 
# de Vaca: 72 Hacienda: Santa Rosa 
Nombre: Rotacacho Edad: 4 
I.A. semen descongelado # de Partos: 1 
Fecha de I.A: 22/03/2012 Condición Corporal: 2.5 
Fecha de Chequeo: 8/06/2012 Preñez: Si 
 
# de Vaca: 4956 Hacienda: Santa Rosa 
Nombre: Negra Edad: 5 
I.A. semen congelado # de Partos: 1 
Fecha de I.A: 17/04/2012 Condición Corporal: 2.5 
Fecha de Chequeo: 8/06/2012 Preñez: no 
 
 
 61 
# de Vaca: 88 Hacienda: Santa Rosa 
Nombre: Geracha Edad: 4 
I.A. semen descongelado # de Partos: 1 
Fecha de I.A: 2/04/2012 Condición Corporal: 2.5 
Fecha de Chequeo: 8/06/2012 Preñez: Si 
 
# de Vaca: 76 Hacienda: Santa Rosa 
Nombre: Nachita Edad: 5 
I.A. semen congelado # de Partos: 2 
Fecha de I.A: 30/03/2012 Condición Corporal: 2.5 
Fecha de Chequeo: 8/06/2012 Preñez: no 
 
# de Vaca: 4991 Hacienda: Santa Rosa 
Nombre: Monga Edad: 4 
I.A. semen descongelado # de Partos: 1 
Fecha de I.A: 2/04/2012 Condición Corporal: 2.5 
Fecha de Chequeo: 8/06/2012 Preñez: No 
 
# de Vaca: 4890 Hacienda: Santa Rosa 
Nombre: Rogelita Edad: 3 
I.A. semen congelado # de Partos: 1 
Fecha de I.A: 26/03/2012 Condición Corporal: 2.5 
Fecha de Chequeo: 8/06/2012 Preñez: no 
 
# de Vaca: 77 Hacienda: Santa Rosa 
Nombre: Lechera Edad: 5 
I.A. semen descongelado # de Partos: 3 
Fecha de I.A: 18/04/2012 Condición Corporal: 2.5 
Fecha de Chequeo: 8/06/2012 Preñez: Si 
 
 
 
 
 62 
# de Vaca: 717 Hacienda: Don Julo 
Nombre: Romelita Edad: 5 
I.A. semen congelado # de Partos: 1 
Fecha de I.A: 21/04/2012 Condición Corporal: 2.8 
Fecha de Chequeo: 8/06/2012 Preñez: Si 
 
# de Vaca: 728 Hacienda: Don Julo 
Nombre: Rocío Edad: 4 
I.A. semen descongelado # de Partos: 2 
Fecha de I.A: 31/04/2012 Condición Corporal: 2.7 
Fecha de Chequeo: 8/06/2012 Preñez: Si 
 
# de Vaca: 723 Hacienda: Don Julo 
Nombre: Filomena Edad: 4 
I.A. semen congelado # de Partos: 3 
Fecha de I.A: 16/04/2012 Condición Corporal: 2.5 
Fecha de Chequeo: 8/06/2012 Preñez: No 
 
# de Vaca: 718 Hacienda: Don Julo 
Nombre: Germania Edad:5 
I.A. semen descongelado # de Partos: 2 
Fecha de I.A: 20/04/2012 Condición Corporal: 3 
Fecha de Chequeo: 8/06/2012 Preñez: Si 
 
# de Vaca: 711 Hacienda: Don Julo 
Nombre: Regina Edad: 4 
I.A. semen congelado # de Partos: 1 
Fecha de I.A: 26/03/2012 Condición Corporal: 2.5 
Fecha de Chequeo: 8/06/2012 Preñez: No 
 
 
 63 
# de Vaca: 737 Hacienda: Don Julo 
Nombre: Maña Edad: 3 
I.A. semen descongelado # de Partos: 1 
Fecha de I.A: 13/04/2012 Condición Corporal: 3 
Fecha de Chequeo: 8/06/2012 Preñez: Si 
 
# de Vaca: 749 Hacienda: Don Julo 
Nombre: Roja Edad: 5 
I.A. semen congelado # de Partos: 3 
Fecha de I.A: 29/04/2012 Condición Corporal: 3 
Fecha de Chequeo: 8/06/2012 Preñez: No 
 
# de Vaca: 719 Hacienda: Don Julo 
Nombre: Nora Edad: 4 
I.A. semen descongelado # de Partos: 2 
Fecha de I.A: 2/05/2012 Condición Corporal: 2.5 
Fecha de Chequeo: 8/06/2012 Preñez: Si 
 
# de Vaca: 743 Hacienda: Don Julo 
Nombre: Lucita Edad: 3 
I.A. semen congelado # de Partos: 1 
Fecha de I.A: 30/04/2012 Condición Corporal: 2.5 
Fecha de Chequeo: 8/06/2012 Preñez: No 
 
# de Vaca: 714 Hacienda: Don Julo 
Nombre: Nube Edad: 5 
I.A. semen descongelado # de Partos: 1 
Fecha de I.A: 1/05/2012 Condición Corporal: 2.6 
Fecha de Chequeo: 8/06/2012 Preñez: Si 
 
 
 
 
 64 
# de Vaca: 56 Hacienda: Lazul 
Nombre: Marta Edad: 5 
I.A. semen descongelado # de Partos: 2 
Fecha de I.A: 26/04/2012 Condición Corporal: 2.8 
Fecha de Chequeo: 8/06/2012 Preñez: Si 
 
# de Vaca: 44 Hacienda: Lazul 
Nombre: Lula Edad: 4 
I.A. semen congelado # de Partos: 1 
Fecha de I.A: 6/05/2012 Condición Corporal: 2.9 
Fecha de Chequeo: 8/06/2012 Preñez: Si 
 
# de Vaca: 86 Hacienda: Lazul 
Nombre: Brenda Edad: 3 
I.A. semen descongelado # de Partos: 1 
Fecha de I.A: 12/04/2012 Condición Corporal: 2.5 
Fecha de Chequeo: 8/06/2012 Preñez: no 
 
# de Vaca: 35 Hacienda: Lazul 
Nombre: Pepita Edad: 5 
I.A. semen congelado # de Partos: 3 
Fecha de I.A: 19/03/2012 Condición Corporal: 3 
Fecha de Chequeo: 8/06/2012 Preñez: no 
 
# de Vaca: 75 Hacienda: Lazul 
Nombre: Glenda Edad: 5 
I.A. semen descongelado # de Partos: 2 
Fecha de I.A: 31/03/2012 Condición Corporal: 3 
Fecha de Chequeo: 8/06/2012 Preñez: Si 
 
 
 65 
# de Vaca: 66 Hacienda: Lazul 
Nombre: Eva Edad: 4 
I.A. semen congelado # de Partos: 1 
Fecha de I.A: 15/04/2012 Condición Corporal: 2.7 
Fecha de Chequeo: 8/06/2012 Preñez: No 
 
# de Vaca: 4568 Hacienda: Lazul 
Nombre: Trini Edad: 5 
I.A. semen descongelado # de Partos: 1 
Fecha de I.A: 1/05/2012 Condición Corporal: 2.8 
Fecha de Chequeo: 8/06/2012 Preñez: Si 
 
# de Vaca: 4665 Hacienda: Lazul 
Nombre: Luca Edad: 4 
I.A. semen congelado # de Partos: 2 
Fecha de I.A: 30/04/2012 Condición Corporal: 2.5 
Fecha de Chequeo: 8/06/2012 Preñez: No 
 
# de Vaca:4487 Hacienda: Lazul 
Nombre: Trinita Edad: 4 
I.A. semen descongelado # de Partos: 1 
Fecha de I.A: 8/04/2012 Condición Corporal: 3 
Fecha de Chequeo: 8/06/2012 Preñez: Si 
 
# de Vaca: 4550 Hacienda: Lazul 
Nombre: Trina Edad: 5 
I.A. semen congelado # de Partos: 2 
Fecha de I.A: 29/04/2012 Condición Corporal: 3 
Fecha de Chequeo: 8/06/2012 Preñez: Si 
 
 
 
 
 66 
ANEXO 6. FOTOGRAFÍAS 
 
 
FOTO 1. LUGAR DE LA INVESTIGACIÓN 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 67 
FOTO2. DESPARASITANTE. 
 
 
 
 
FOTO 3. SALES MINERALES 
 
 
 
 
 
 68 
FOTO 4.CHEQUEOS GINECOLÓGICOS 
 
 
 
 
 
 
FOTO 5. PREPARACIÓN DE LOS ANIMALES PARA LA I.A 
 
 
 
 
 
 69 
FOTO 6. LAVADO Y DESINFECTADO 
 
 
 
FOTO: 7. DESCONGELACIÓN DE SEMEN PREVIO A LA IA 
 
 
 
FOTO 8. I.A. CON SEMEN CON PROCESO DE DESCONGELADO 
 
 
 
 
 
 70 
FOTO 9.LAVADO Y DESINFECTADO 
 
 
 
 
FOTO 10.I. A. CON SEMEN SIN PROCESO DE DESCONGELADO 
 
 
 
 
 
 
 
 71 
FOTO 11.DETERMINACIÓN DE PREÑEZ MEDIANTE CHEQUEO 
ECOGRÁFICO. 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 72 
9. BIBLIOGRAFÍA: 
 
 
1. ACUÑA, Victoriano. Compendium de reproducción animal Intervet.Sinervia 
Uruguay/Paraguay Diciembre, (2007). (recuperado el 20 de mayo del 2012) 
Disponible desde: 
http://www.sinervia.com/library_files/503416277_Compendio%20Reproducc
ion%20Animal%20Intervet.pdf. Consulta Diciembre 
 
2. ARTHUR, G y colaboradores. (1996). Veterinary Reproduction and 
Obstetrics. Seventh Edition Saunders. 
 
3. ASPRÓN, M. A. (2004) “Curso de Actualización - Manejo Reproductivo del 
Ganado Bovino”. (recuperado el 2 febrero del 2012)Disponible desde: 
http://www.ivis.org/continuing_education/short_courses/reproduction_bovine
/aspron_es/IVIS.pdf 
 
4. BEN, G. y colaboradores. (2002). Hereford,