Parcial semillas y germinacion - fisiologia vegeta

Vista previa del material en texto

DESARROLLO PARCIAL FISIOLOGIA VEGETAL 
NOMBRE: Laura Sofia Moreno Perez Código: 201824412 
UNIDAD 1 SEMILLAS Y GERMINACIÓN (Total 10 puntos) 
2. Las siguientes fotos corresponden a Cecropia peltata: A. Corte longitudinal. B. Test de 
CTT. Observe detalladamente las imágenes y responda: 
2.1 Detalle con flechas todas las partes identificables en A. 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
2.2 ¿De cuánto es la viabilidad (%)? (explique el cálculo correspondiente) 
R: las semillas verdaderamente viables serán aquellas que tiñan solamente su 
endospermo de color rojo intenso esta coloración se da por la reducción del tetrazolio por 
actividad respiratoria de las células (Salazar et al, 2020); aquellas que se tiñan de color rosa 
pálido o no tengan color indican poca viabilidad o la muerte del embrión. El calculo se 
realizo dividiendo el numero de semillas viables sobre el numero de semillas totales y 
multiplicando por 100 para el porcentaje. 
A 
B 
2.micropilo 
1.embrion 
4.testa 
5.radicula 
3.endospermo 
FISIOLOGIA VEGETAL
Universidad pedagógica y tecnológica de Colombia
Facultad de Ciencias Básicas – Escuela de Biología 
 
2.3 Haga algunas inferencias ecológicas y biológicas, teniendo en cuenta que esta 
especie es barocora y ornitocora (máx. 5 líneas) 
R: una planta barocora dispersa sus semillas dejándolas caer; si es ornitocora la dispersión 
la realizan las aves (Font Quer P., 1982). La testa y el endospermo deben ser de textura 
gruesa y dura, ya que al dejar caer las semillas desde grandes alturas como las que 
presenta esta planta, la semilla debe poder resistir el golpe sin abrirse o dañarse; misma 
situación con las aves quienes las transportan en el tracto digestivo por lo cual la testa 
debe resistir los ácidos. 
 
UNIDAD 2 CRECIMIENTO Y DESARROLLO (Total 10 puntos) 
2. Lea el artículo: “Auxin regulator of cold stress response” (Rahman 2013). 
2.1 Extraiga y desarrolle 5 ideas sólidas del documento. 
- El crecimiento se encuentra regulado por distintos factores, puesto que la planata 
responde a estimulos bióticos y abióticos. 
- Las hormonas tienen poder sobre la mayoría de los procesos fisiológicos y metabólicos 
que se dan en el interior de la planta y tienen a la auxina como principal promotor del 
crecimiento y regulación. 
- dependiendo de la asociación en la que esten las hormonas ya sea hormona-hormona, 
hormona-gen entre otros su respuesta sera distinta. 
2.2 Realice un diagrama o esquema que explique, con suficiencia, las relaciones 
generales que se dan entre las hormonas, el crecimiento y la temperatura (insertar foto 
de diagrama hecho a mano). 
 
UNIDAD 3 FITOHORMONAS Y FOTORRECEPTORES (Total 10 
puntos) 
2. Basada en varias referencias actualizadas, construya una tabla comparativa que 
muestre los diferentes fotorreceptores en plantas, su pico de absorbancia, funciones 
que regulan y estructura química. 
 
Foto 
receptores 
Pico de 
absorbancia 
Funciones que regulan Estructura química 
fitocromo 610 – 1000 nm -Actúan en luz rojo lejano o ultravioleta 
donde Promueven la germinación, la 
foto morfogénesis, la formación de los 
primordios foliares y florales y el 
crecimiento. 
-percibe la calidad de la luz. 
-Experimentos con Arabidopsis 
thaliana demostraron que inhibe la 
elongación del hipocótilo, los 
entrenudos y la floración de la planta. 
-controla la expresión de varias 
proteínas importantes en la 
fotosíntesis. ( Borthwick et al, 1952) 
 
Tiene 2 subunidades iguales, Cada 
subunidad tiene una molécula de 
cromóforo; y una cadena peptídica 
llamada apoproteína. Estructura 
cuaternaria. 
Criptocromos 320 a 500 nm -Actúa en luz azul o UV-A, inhibe la 
elongación del tallo. 
-síntesis y acumulación de clorofila. 
-regulación del crecimiento celular. 
-Fomenta el fototropismo positivo. 
-ayuda a optimizar la fotosíntesis 
porque hace que los cloroplastos se 
muevan y acumulen en zonas donde 
llega mucha luz y hace que se protejan 
del daño de la luz y que capten la mayor 
cantidad de luz posible. 
-están involucrados en la des-
etiolación y foto morfogénesis. 
 
los criptocromos se asocian con 2 
cromóforos que son FAD y MTHF. 
Estructura cuaternaria 
fototropinas 400 – 510 nm -Actúa como fotorreceptor de luz azul 
UV-A. 
-se expresa en hojas y se acumula en 
la membrana de células de la 
epidermis. 
-Estimulación de síntesis de carotenos 
-ritmo circadiano 
-fototropismo 
-Apertura estomática 
-acción fotosintética 
tomado de: Meisel et al (2011). 
Fotorreceptores y respuestas de 
plantas a señales 
lumínicas. 
están asociadas al cromóforo FMN y 
en cada uno de sus dominios LOV 
dominio que responde a estímulos de 
luz. Estructura cuaternaria. 
 
UNIDAD 4 RELACIONES HÍDRICAS EN PLANTAS (Total 20 puntos) 
4. Haga una síntesis sobre cómo funcionan los siguientes equipos y por qué su uso 
es importante para el estudio de la fisiología vegetal de plantas: 
3.1. Tensiómetro: un tensiómetro es una máquina que estima una parte del potencial 
total debido a las fuerzas de atracción de agua con la superficie del suelo y fuerzas 
intramoleculares agua-agua esto se llama potencial matrico. Estos valores los da en 
bares porque mide la presión interna del tensiómetro; esta se genera cuando el agua 
adentro del tensiómetro sale de este hacia el suelo hasta que llegue al equilibrio. Así, el 
vacío generado representa el potencial matrico del suelo. Los tensiómetros son 
importantes en la fisiología vegetal ya que se usan para medir el potencial hídrico y la 
humedad del suelo. 
3.2. Porómetro: un porometro es un aparato que sirve y es importante en la fisiología 
vegetal porque mide la conductancia estomática; esta es una variable usada para medir 
la transpiración de las hojas, en donde para mover el vapor de agua desde el interior de 
la hoja al exterior se debe mover el agua por los estomas. El porometro mide la 
conductancia estomática, esta se mide junto con dos sensores de humedad y la 
diferencia de humedad en los sensores será el flujo de vapor de agua de la 
hoja/conductancia estomática. 
3.3. Bomba Schölander: la bomba scholander es importante en fisiología vegetal ya 
que cumple la función de medir el potencial o estrés hídrico en una planta. Funciona 
poniendo una hoja aun con tallo dentro de la cámara de la bomba scholander sellada, y 
luego aplicándole un gas a presión a la hoja hasta el punto en el que del tallo empiece 
a salir savia; este valor de presión, pero con signo negativo aplicado a la hoja será el 
valor del potencial hídrico de la planta. El valor de potencial hídrico es negativo debido 
a la perdida constante de agua por los estomas por el bajo potencial hídrico de la 
atmosfera. 
 
5. En un experimento de sistema cerrado en matera para medir transpiración se 
encontró lo siguiente: 
 DIA 
Peso sistema 
 (g) 
Pérdida de 
agua 
Transpiración 
 (gH2O cm-2 dia-1) 
CC 0 241 0 0 
 2 240 1 0,01152074 
 4 236.9 3,1 0,03571429 
 6 227.5 9,4 0,10829493 
 8 215.6 11,9 0,13709677 
 10 208.1 7,5 0,08640553 
 13 200.2 7,9 0,06067588 
PM 16 189.7 10,5 0,08064516 
PMP 19 183.5 6,2 
Area foliar total de la planta: 43,4cm2 CC: Capacidad de campo 
Peso seco del sistema: 176,6g PM: Punto de marchitez 
Peso de papel y matera: 66g PMP: Punto de marchitez permanente 
Peso de la planta: No significativo 
 
5.1. Complete la tabla. En el caso de la transpiración calcúlela tiempo a tiempo 
(cada intervalo), hasta el día 16. Inserte fotografía de sus cálculos a mano. 
 
5.2 Realice la gráfica de transpiración con los datos de la 4ta columna (inserte 
fotografía a mano) 
 
 
5.3. ¿En qué % de capacidad de campo se dan el PM y el PMP? (Inserte fotografía 
de sus cálculos a mano.) 
 
 
5.4. Si la matera es cilíndrica de diámetro de 5 cm y 6.5 cm de altura, calcule la 
CRA en sus dos magnitudes. 
 
BIBLIOGRAFIA 
- Bonner, F. T. (1985). Glasario de Terminos sobre Germinacion deSemillas 
para Especialistas en Arboles Semilleros. Gen. Tech. Rep. SO-55. New 
Orleans, LA: US Dept of Agriculture, Forest Service, Southern Forest 
Experiment Station. 5 p., 55. 
- Salazar Mercado, S. A., Quintero Caleño, J. D., & Bustos Urbano, V. J. (2020). 
Implementación de la prueba de tetrazolio en las semillas de Raphanus 
sativus L. Revista Facultad De Ciencias Básicas, 15(2 (2019)), 7-15. 
- Font Quer, P. (1982). Diccionario de Botánica. 8ª reimpresión. Barcelona: 
Editorial Labor, S. A. 84-335-5804-8. 
- Meisel, L., Urbina, D., & Pinto, M. (2011). Fotorreceptores y respuestas de 
plantas a señales lumínicas. Fisiología vegetal. Ediciones Universidad de 
La Serena, La Serena, Chile, 18, 1-10. 
- Borthwick, H. A., Hendricks, S. B., Parker, M. W., Toole, E. H., & Toole, V. K. 
(1952). A reversible photoreaction controlling seed 
germination. Proceedings of the National Academy of Sciences, 38(8), 662-
666. 
- Fernández, M., & Gyenge, J. (2010). Técnicas de medición en ecofisiología 
vegetal. Conceptos y procedimientos. Ediciones Instituto Nacional de 
Tecnología Agropecuaria (INTA), Buenos Aires. 
- Scholander, P.; Bradstreet, E.; Hemmingsen, E.; Hammel, H. (1965). "Sap 
Pressure in Vascular Plants: Negative hydrostatic pressure can be 
measured in plants". Science 148 (3668): 339–346