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REVISIONES Metabolismo de la vitamina E Emilio Herrero Facultad de Ciencias Expelimenfoles y Técnicos. Universidad Son Poblo-CEU. Modlid. Estructura y función Lo vitamina E es uno vitamina liposoluble, descu- bierto por Evons y Oishop en 1922, al demostrar que uno dieto semipurificodo pobre en grosos producía incapacidad reproductora en rotos. Lo sustancio que faltaba en eso dieto ero liposoluble y estaba presente en el germen de trigo y en lo le- chuga fresco, siendo denominado "aceite de la fertilidad" y, posteriormente, en 1925, ellos mis- mos la denominaron vitamina E. La vitamina E corresponde a un grupo de ocho compuestos naturales: d-a, d-p, d-y y d-ó-tocofero- les y sus respectivos tocotrienoles (fig. 1 ). También hoy vitamina E de síntesis, que corresponde a una mezclo de estereoisómeros, preparados comer- cialmente en el acoplamiento de lo trimetilhidro- quinono con el isofitol. De todos estos compuestos, el d-a-tocoferol es el que tiene lo actividad bioló- gico más alto 1, aunque en lo mayoría de plantos predominan los formas d-p, d-y, y d-ó. De hecho, como se muestro en lo tablo 1, en lo dieto es más abundante el y-tocoferol que el a-tocoferol. Lo actividad biológico se mide en función de lo efi- cacia paro prevenir los síntomas de su deficiencia: reabsorción fetal en la rota preñada; inducción de hemólisis inducida por ácido dialúrico en eritroci- tos; reversión de miopatío en animales de experi- mentación, etc. Lo vitamina E ha despertado re- cientemente uno especial relevancia por su impor- tante acción antioxidante, la cual se mide también por distintos procedimientos: oxidación de tocofe- roles por radical fenoxilo, consumo de oxígeno en la reacción de tocoferoles con radicales peroxilos (Nufrlci6n y Obesidad2000; 3: 1.-16) Correspondencia: Dr. E. Herrero. Facultad de Oenclos Experimentales y Técnicos. Universidad Son Poblo-CEU. Ctro. Boadilla del Monte, km 5,3. Doodillo del Monte. 28668 Madrid. Nombre d-a-tocoferol d-p-tocoferol d-y-tocoferol d-6-tocoferol Estructura Actividad biológica comparada con el d-a-tocoferol (%) HO~ ºº 100 HO~ ºº 25-40 HO~ ºº 10-20 HO~ ºº < 10 d-a-tocotrienolH~ 40-50 HO~ d-p-tocotrienol Q O ,. ,. 5-20 d-y-tocotrienol H~ 5-15 d-6-tocotrienol~ <1 Figura 1. Compuestos naturales con actividad de vitamina E. de polistirilo en clorobenceno y desaparición de tocoferoles en reacciones de oxidación utilizando resonancia electrónico. Es interesante hacer notar que las actividades biológico y antioxidante no coinciden. Así, por ejemplo, el y-tocoferol, que es uno formo abundante de vitamina E en lo dieto del hombre, tiene alrededor de la mitad de actividad ontioxidante2 y solamente un décimo de lo activi- dad biológico del a-tocoferol3• A pesar de estas di- ferencias, el d-a-tocoferol se utilizo como patrón de referencia poro todos los restantes formas. Los concentraciones de vitamina E en los distintos te- jidos varían considerablemente de unos o otros, en- contrándose sus concentre• ,nes más altos en oque- 10 E. Herrero.- Metabolismo de lo vitamina E TABLA 1. Alimentos que contienen compuestos naturales con actividad de vitamina E y su contribución en la dieta t ...... · ........... _. • .....,_ ·· W■D1611•1111111• ....... i· .. . ., .................... d-a·toc:oferol Nueces, semillas, trigo, arroz, centeno aéettn ·vegetales, ·acéttímás, mantequilla 20-25 d-¡3-tocoferol Germen de trigo, cebada, avena, lechuga < 10 d-y-tocoferol vartos aceites vegetales, especialmente de soja, malz y coco 40-50 d-6-tocoferol Aceites de soja, coco y avellanas 20 d-a-tocotrlenol Avena, cebada, anoz Mlnlma d-P-tocotrlenol Acette de palma Trazas d-y-tocotrlenol Aceite de coco Mínima d-6-tocotrlenol Aceite del érbol de caucho o TABLA 2. Concentración de d-a-tocoferol en tejidos del hombre _"!fldO~~~~-~- µglg~pesofrllco ______ - Adiposo 150 Suprarrenales 132 Hip6ftsls 40 Testiculos 40 Plaquetas COrazón Músculo Hígado Ovarios Plasma Otero Rlftón Eritrocitos 30 20 19 13 11 9,5 9 7 2,3 Tomada de "Veris, Research Summary, Nov. 1998". llos con mayor contenido en lípidos4, y muy especial- mente en tejido adiposo y cápsulas suprarrenales (tablo 2). Teniendo en cuento lo mayor maso del teji- do adiposo, con gran diferencio, este tejido constitu- ye lo principal reseivo de vitamina E del organismo. De cualquier formo, y o diferencio de lo que ocurre con los productos de lo lipólisis, el y-tocoferol acumu- lado en tejido adiposo no se movilizo cuando se dis- minuye la ingesta para reducir el peso en sujetos obesos5 o con el ayuno en el coso de sujetos con pe- so normol6 • Esto indico la existencia de un mecanis- mo de control diferente poro la solido del a.-tocoferol del tejido adiposo en relación con la movilización de los triglicéridos acumulados en el mismo. A pesar de encontrarse en boja concentración, los valores de vitamina E se determinan preferente- mente en plasmo, donde sus niveles oscilan entre 0,5 y 1,6 mg/dl en lo población normal7, siendo esta concentración incluso inferior o lo de otros antioxidantes como albúmina, ácido úrico y ácido asc6rblco. Efectos y funciones Aunque una gran parte de las funciones atribui- bles o la vitamina E se fundamentan en sus propie- 11 dades antioxidantes, hay también algunas que son independientes de ellas, como es el coso de lo prevención de lo reabsorción del feto en la roto o sus acciones inhibidoras sobre la A TPaso No+ -K+ en microsomos cerebrales o sobre lo proteincino- so c. Acción antioxidante Poro apreciar el papel que tiene poro el organis- mo lo acción antioxidante de lo vitamina E, es im- portante conocer el concepto de radical libre: es un átomo o molécula que posee un electrón des- apareado, lo que le otorgo una especial reactivi- dod. Los radicales libres se producen normalmen- te en el organismo en los procesos en que inter- viene el oxígeno. Además, los contaminantes ambientales, como los radiaciones, el humo de ci- garrillos, los pesticidas, los herbicidas y muchos fármacos pueden reaccionar dentro del organis- mo y desencadenar la producción de radicales li- bres8. A menos que sean "apagados" o "neutrali- zados" por un antioxidante, los radicales libres son inestables y atacan o los ácidos grasos poliinsatu- rados de los fosfolípidos de las membranas celula- res. Uno vez iniciada su reacción, los radicales li- bres pueden dañar tanto la estructura como la función de lo membrana celular mediante uno ca- dena de reocciones9•1º. De hecho, hoy evidencio de lo implicación de los radicales libres en el de- sarrollo de enfermedades degenerativos 11 , inclu- yendo cáncer, enfermedades cardiovasculores, envejecimiento prematuro, cataratas, etc. A pesar de su baja concentración en los membra- nas celulares (aproximadamente una molécula de vitamina E por cado 1.000 de lípidos), lo vitamina E es considerado el principal antioxidante liposolu- ble del organismo. En la membrana celular rompe lo cadena de peroxidación de los radicales pero- xilos, amortigua los efectos peroxidontes del ion superóxido, modulo lo coscada metabólico del ácido oroquidónico iniciada por la lipoxigenosa y/o la ciclooxigenasa, y controla la fluidez de lo membrana, ordenando su estructura 12·14• s Volumen 3, Número 1, Enero-Febrero 2000 Cadena de peroxidaclón t t PUFA-00' (en fosfolípidos) t 0 2 Gen 1:s~~idosJ RHtR' PUFA-™ (en fosfollpidos) Membrana Citosol n PUFA-OOH ( en fosfolípidos) Fosfolipasa ~ TocOH TocO" lisofosfolípidos GSH Vitamina e"" GS-SG Vitamina Crec1 GSH Glutatión Se peroxidasa Catalasa GS=SG Figura 2. Papel de la vita- mina E (TocOH) como an- tioxidante en la membrana celular, rompiendo la cade- íla de. peroxidación de los ácidos grasos poliinsatura- d os (PUFA-H), e interac- tuando con los sistemas antioxidantes del citosol. Otros detalles en el texto. Radical superóxido La principal acción de la vitamina E como antioxi-dante se ejerce rompiendo la cadena de reacción de radicales libres del organismo. Reacciono más rápidamente con los radicales peroxilos que los ácidos grasos poliinsaturodos2,15• Uno cadena de reacción de radicales libres se inicio cuando un ácido groso poliinsoturodo (PUFA-H; Po/y Unsatu- rated Fatty AcidJ presente en los fosfolípidos de los membranas pierde un hidrógeno al reaccionar con un radical libre (R·), transformándose el propio ácido groso en radical libre (PUFA"), que reacciono rápidamente con el oxígeno molecular, formándo- se un radical libre peroxilo (PUFA-00-) (fig. 2): PUFA-H + R" ➔ PUFA. + RH PUFA· + 02 ➔ PUFA-oo· Este radical libre, a su vez, puede quitar un hidró- geno a otro ácido groso poliinsaturodo, que inicio su transformación en radical peroxilo, y lo repeti- ción de este proceso constituye lo cadena de re- acción de radicales libres (también denominado 6 cadena de peroxidoción), lo cual puede distorsio- nar la propia estructura molecular de lo membra- na celular. Lo cadena de reacción de radicales libres se rompe como se muestra en la figura 2, gracias precisa- mente a lo presencia en la membrana celular de un antioxidante fenólico, como es la vitamina E. Pa- ro ello, un radical libre peroxilo (PUFA-00") reac- ciona con la vitamina E (a-tocoferol, TocOH), que le transfiere un hidrógeno fenólico transformándose en hidroperóxido (PUFA-OOH), que yo no es radi- cal libre, formándose a su vez el radical fenoxilo del tocoferol (TocO-), que tiene muy poca reoctivi- dad y no propago la cadena de peroxidoción: PUFA-oo· + TocOH ➔ PUFA-OOH + Toco· Como también se muestra en la figuro 2, el radi- cal fenoxilo del tocoferol puede reaccionar con la vitamina C o con el glutatión reducido (GSH) para regenerar tocoferol (fig. 2) 16· 19 • A su vez, por ac- ción de la fosfoliposa A2, el hidroperóxido del áci- 12 do graso es liberado del fosfolípido, que puede di- fundir al citosol, donde, por acción de los sistemas enzimáticos de la superóxido dismutasa, catalasa o glutatión peroxidasa, llega a transformarse en hidroxiácido (PUFA-OH). De esta forma se produ- ce una interacción sinérgica entre los distintos sis- temas antioxidantes presentes en la fase lipídica de las membranas celulares y la fase acuosa del citosol. El radical fenoxilo del tocoferol puede también re- accionar con otro radical peroxilo de ácido graso poliinsaturado, formándose otro hidroperóxido de ácido graso más un producto oxidado no radical del tocoferol: ROO"+ Toco· ➔ ROOH + producto de oxidación del tocoferol en el que el anillo cromano y la ca- dena lateral del tocoferol son transformados a productos no radicales. Los productos no radicales libres de oxidación del tocoferol pueden-ser muy variables, e incluso dos radicales o:-tocoferoxilos pueden reaccionar juntos formando un dímero o ser completamente oxida- dos a quinona de tocoferol. Estos productos son conjugados con el ácido glucurónico y excretados por la bilis, de forma que una vez realizada su función, el o:-tocoferol no se recicla, sino que debe ser reemplazado totalmente para continuar pre- sente en la membrana celular. De cualquier for- ma, se cree que una gran proporción de la vitami- na E no llega a transformarse en esos productos, sino que es reemplazada intacta20. Así pues, la acción antioxidante del o:-tocoferol se realiza en la primero línea de defensa contra lo peroxidación lipídica, protegiendo las membranas celulares precisamente en la etapa Inicial del ata- que de radicales libres, a través de su capacidad amortiguadora de dichos radicales. De hecho, la acción antioxidante de la vitamina E es efectiva o altas concentraciones de oxígeno, por lo que no sorprende que tienda a concentrarse en las es- tructuras lipídicas que están expuestas a las más altas presiones de oxígeno, como las membranas de los eritrocitos, las del árbol respiratorio y las de la retina. Además de su papel protector de los ácidos gra- sos poliinsaturados de la membrana, a través de su acción antioxidante, la vitamina E incrementa la respuesta inmune, regula la agregación plaque- torio al inhibir la actividad de la ciclooxigenasa, y en consecuencia la producción de prostaglandi- nas (tromboxanos) facilita el ahorro de selenio (un componente de la glutatión peroxidasa) y protege a la vitamina A de su destrucción por el organis- mo4,21. 13 E. Herrero.- Metoboli~mo de lo vitamina E Accl6n moduladora del crecimiento y prollferac16n celular La vitamina E modula el crecimiento y prolifera- ción celular a través de la transducción de señales22. Aunque en cultivos celulares se ha de- mostrado que cuando se inhibe el crecimiento ce- lular por la peroxidoción lipídica, el o:-tocof e rol puede reestimular el crecimiento y proliferación celular al eliminar el inhibidor, de forma indepen- diente a su acción antioxidante, y por un mecanis- mo que no se conoce completamente, puede inhi- bir el crecimiento y proliferación celular. Este efec- to es específico del a-tocoferol, y se realiza inhibiendo la actividad proteincinasa C, que mo- dula la proliferación celular23. Estas acciones del a-tocoferol pueden contribuir también a su acción anticancerosa. Aunque expe- rimental mente se ha demostrado que inhibe la mutagénesis, principalmente por su acción antioxi- dante, eliminando los radicales libres de oxígeno y disminuyendo el daño al ADN, los estudios epide- miológicos, sin embargo, no son tan claros. Mien- tras que en algunos se muestra que el suplemento con vitamina E y otros antioxidantes (~-caroteno y selenio) durante más de 5 años disminuye la mor- ta I id ad por cáncer de estómago o de esó- fago24,25, en otros, en los que se realizó el suple- mento de vitamina E sola o en combinación con ~-caroteno durante 5-8 años a más de 29.000 fu- madores, no se observó cambio en la mortalidad por cáncer de pulmón ni en la mortalidad totaI26. Estos datos son compatibles con el hecho de que la vitamina E puede prolongar la aparición de cáncer, pero no revertir un proceso carcinogéni- co ya iniciado. De hecho, se ha demostrado tam- bién que la vitamina E protege contra la aparición de cáncer de pulmón en los no fumadores, pero no en los fumadores, que ya pueden encontrarse en fases tempranas de carcinogénesis27. Efecto protector de la enfermedad cardiovascular Uno de los efectos más notables de la vitamina E es su acción protectora sobre el desarrollo de en- fermedad cardiovascular28. Hace más de 50 años que se observó la eficacia de la vitamina E en el tratamiento de la enfermedad coronaria29. El primer paso en el desarrollo de la placa de ate- roma es el transporte de las lipoproteínas de baja densidad (LDL) a la pared vascular, que es depen- diente de la concentración y no requiere receptor30. Como se muestra en la figura 3, la en- trada de las LDL al espacio subendotelial es segui- do de su oxidación. Los macrófagos, las células endoteliales y las células musculares lisas pueden oxidar las LDL por un proceso que es dependiente 7 Volumen 3, Número 1, Enero-Febrero 2000 Figura 3. Diagrama que muestra el papel de la oxi- dación de las lipoproteínas de baja densidad (LOL) en el proceso aterogénico, si- guiendo la secuencia ·que se describe en el texto. (Toma- da de Chan AC. J Nutr 1998; 128: 1.593-1.596.) Monocito LDL Células endoteliales o o Moléculas de adhesión ------ Plaquetas NO o--------... ~. ~lvaso NO PGl2 V • o LDL oxidadas ~JTª= Factores de crecimiento y citocinas producidas por Células endoteliales Monocitos Macrófagos Estimulación de proliferación y trans!lligración de las células musculares lisas TABLA 3. Efectos protectores de la vitamina E sobre el proceso aterogénico, actuando en el endotelio vascular Inhibe lá oxlciaéión de· LDL Inhibe la fonnaclón de trombina Activa la síntesis de prostaciclinas a partir del ácido araquidónico Facilita la expresión de fosfolipasa A¿ y ciclooxigenasa Inhibe la adhesión de monocltos Inducida por agonistasen células endoteliales;?n .bn. ::,¡, :; •. ·· de los radicales superóxido generados en esas cé- lulas durante la respiración mitocondrial31 • Las LDL oxidadas, los procesos inflamatorios y otros estímulos facilitan a las células endoteliales la ex- presión y secreción de factores de crecimiento, ci- tocinas y moléculas de adhesión, que son capaces de captar monocitos y linfocitos T e introducirlos en la íntima. Las LDL oxidadas activan la transfor- mación de monocitos en macrófagos, en las que tiene lugar la rápida captación de las LDL oxida- das a través del receptor •basurero" (scavengerj. Las LDL oxidadas inhiben la producción de óxido nítrico (NO) y de prostaciclina (PG2), que son dos moléculas antitrombóticas y vasodilatadoras se- gregados por el endotelio. La rápida captación de los LDL oxidados por los receptores "basurero" de los mocrófagos transforma a éstos en células es- pumosos (fig. 3). . Inhibe la 8lqJ!1ISl_6n de R)Oléciulas de adhesión Inducida por LDl :-.~~~-=~\~1\;~t:. ·.//:, ~-~-: Lo vitamina E protege de todos estos aconteci- mientos intracelulares ejerciendo los funciones protectoras que se relacionan en lo tablo 328• De todos estos funciones, vamos o analizar dos de los más relevantes: sus efectos protectores sobre lo oxidación de las LDL y sobre el metabolismo del ácido oroquidónico endotelio!. El papel del a-tocoferol como protector de lo outooxidoción de las LDL es bien conocido. En es- tudios epidemiológicos se ha demostrado que en sujetos con valores similores de colesterol y pre- sión arterial, los niveles de a-tocoferol en plasma 8 Inhibe la adhesión y agregación plaquetarias ; · ., :;: Inhibe la síntesis de leucotrlenos LDL: lipoproteínas de baja densidad. TABLA 4. Contenido de antioxidantes en las LDL* nmoUmg protelna en LDL moUmol de LDL a-tocoferol 11,6 6,37 y-tocoferol 0,93 0,51 ¡J-caroteno 0,53 0,29 a-caroteno 0,22 0,12 Ucopeno 0,29 0,16 Crtptoxantlna 0,25 0,14 cantaxantfna 0,04 0,02 Lutelna + zeaxantlna 0,07 0,04 Ublqulnol-10 0,18 0,10 "valores medios. (Tomada de Esterbauer H et al. Free Radical Biol Med 1992; 13: 341-390.) 14 se correlacionan negativamente con la incidencia de enfermedad cordiovoscular32. Los LDL oxida- dos constituyen un factor iniciador del proceso oterosclerótico (fig. 3), y precisamente antioxidan- tes como lo vitamina E pueden evitar su forma- ción, como se ha demostrado tonto in vitra33 co- mo in viva34• De hecho, como se muestro en la ta- blo 4, lo vitamina E es con gran diferencia el principal factor antioxidante presente en los LDL, y existen incluso estudios clínicos en los que se ha demostrado la eficacia del suplemento dietético con vitamina E en lo prevención de lo oterosclero- sis35. Lo cantidad de vitamina E en los LDL someti- dos o oxidación in vitro disminuye con el tiempo, pero hemos demostrado que este efecto es inhibi- do o retrasado en presencio de otros agentes an- tioxidantes como el ácido oscórbico o los flovonoi- des, poniendo así de manifiesto lo existencia de uno respuesto sinérgico entre estos foctores36. En cuanto al metabolismo del ácido oroquidónico cabe recordar que este ácido es el más abundan- te ácido groso pQliinsoturodo de lo serie C20 (20:4, co-6) y el precursor de varios familias de compues- tos que ejercen diversos efectos biológicos. Cuan- do los fosfoliposos liberan al ácido oroquidónico de los fosfolípidos, éste es metobolizodo bien por lo vía de lo ciclooxigenoso sintetizándose prosto- glondinos, tromboxonos y prostociclinas, mientras que por la vía de los lipoxigenasas se sintetizan leucotrienos y lipoxinos. Lo acción de las lipoxige- nosos conllevo lo formación de radicales libres, y lo vitamina E interfiere en lo formación de dichos radicales o través de un mecanismo similor al co- mentado anteriormente. En consecuencia, lo vita- mina E inhibe lo síntesis de leucotrienos así como lo oxidación no enzimática del ácido aroquidóni- co, mientras que facilita la acción de la ciclooxige- nasa y la síntesis de prostaclclinos (en particular lo PGI?) a partir del ácido araquidónico37. Lo síntesis de la PGl2 comienzo con lo liberación del ácido oroquidónico de los fosfolípidos de la membrana por acción de lo fosfoliposa A (esto enzima tiene selectividad ocílica poro el áciao oraquidónico SO· bre los fosfolípidos que lo contienen). Una vez libe- rado, el ácido aroquidónico se transformo secuen- cialmente por lo ciclooxigenoso y prostociclina sintetasa en la PGl2, y el proceso es activado por la vitamina E, que incremento lo expresión de la fosfoliposo A y de lo ciclooxigenosa38,39. El efecto de fa vitamina E inhibiendo lo síntesis de leucotrienos se ejerce de una forma dependiente de lo dosis4º•41 . Estos compuestos son factores qui- miotácticos y mediadores de procesos inflamato- rios, por lo que la acción de la vitamina E inhibien- do su formación contribuye también a reducir el desarrollo del proceso oterosclerótico. 15 E. Herrero.- M<'fobolbmo de lo vltnmlno E Otros efectos de lo vltomlno E En lo roto diabética por tratamiento con estrepto- zotocina, la suplementoción con vitamina E dismi- nuye los valores plasmáticos de triglicéridos, y es- te efecto se ha asociado o un incremento de la actividad lipoproteinlipasa (LPL) hepático42, o pe- sar de que normalmente esto enzima está ausente del hígado. Un efecto similar, disminuyendo los ni- veles circulantes de triglicéridos, se ha observado en sujetos con diabetes tipo 143. También se ha observado que lo vitamina E mejoro el control metabólico de los pacientes con diabetes tipo 244, proponiéndose incluso que puede mejorar la ac- ción de la insulina en sujetos de edad ovonzodo"5. Absorción intestinal y transporte Debido o su hidrofobicidod, lo vitamina E necesito de un sistema especial de transporte en medios acuosos, como es el plasmo, los fluidos corporales e incluso el medio intracelular. A diferencio de otras vitaminas liposolubles, como lo vitamina A, la vitamina E es transportado en las lipoproteínos plasmáticas, y su distribución en ellas se realiza de formo paralela a la de otros lípidos46·48. Las primeras determinaciones de tocoferol en lipo- proteínas se realizaron en 195449. Sin embargo, desde eso fecha hasta ahora, gracias o la utiliza- ción de tocoferoles marcados con deuterio, se ha avanzado mucho en el conocimiento de su absor- ción y transporte. Absorción lntestlnol y secreción de qullomlcrones Según estudios con a-tocoferol radiactivo, se ha estimado que la absorción froccional de vitamina E en el hombre llega al 70%5º•51 y en la roto al 65%52. Sin embargo, estos porcentajes parecen disminuir cuando aumenta lo dosis de vitamina E suministrado. Los ácidos biliares procedentes del hígado y se- g regados al intestino delgado participan activa- mente en la absorción intestinal de las grasas, al facilitar lo formación de micelas capaces de atra- vesar lo copa de aguo inmóvil que cubre o los cé- lulas de la mucosa intestinal y permitiendo lo ac- ción de las lipasos pancreáticos sobre los lípidos hidrofóbicos para su posterior absorcións3. De igual formo, lo absorción intestinal de vitamina E necesita de ácidos biliares para la formación de micelos, como se ha demostrado en ratos con el conducto biliar ligodo5t. y en niños con colestosis hepática55. Aunque se ha propuesto la participa- ción de enzimas pancreáticos en la absorción in- testinal de vitamina E56, ésta parece ser indirecta, al facilitar la hidrólisis de los lípidos y secundaria- 9 Volumen 3, Número 1, Enero-Febrero 2000 Hígado ' Intestino VLDL ----- ,/ ... ---------. / . 8-100 ' ( TG a-TOC ,_ C-11 ~ IDL 18-100'·, ~ . TG . l ... ,oc .. \::9:11. / Quilomicrones Tejidos extrahepáticos Figura 4. Papel de la lipo- proteína lipasa (LPL) que se encuentra anclada en el endotelio capilar de los te- jidos extrahepáticos en el metabolismo de las lipo- proteinas ricas en triglicéri- dos, lipoproteinas de muy baja densidad (VLDL) yqui- lomicrones. Además de hi- drolizar los triglicéridos de estas lipoproteinas, facilita la captación en el tejido subyacente tanto de los productos de esa hidrólisis, ácidos grasos libres (FFA) y glicerol, como de parte del a.-tocoferol presente en las VLDL y del a. y y presentes en los quilomicrones. B- 100 y B-48 corresponden a las apoproteínas B caracte- rísticas de estas lipoproteí- nas, y C-11 es la apoproteína presente en ambas lipopro-· teínas, utilizada precisa- mente para su reconoci- miento por la LPL y como cofactor de activación de esta enzima. (s-48-. ---------~, TG mente la formación de micelas y su interacción con la membrana de los enterocitos. De cualquier forma, la absorción del tocoferol dentro del ente- rocito es un proceso pasivo, en el que su paso se realiza conjuntamente al de los lípidos intestinales. Tras su absorción intestinal, la vitamina E se aco- pla a los quilomicrones para su secreción a los ca- pilares linfáticos57. De hecho, cuando la síntesis de quilomicrones es inhibida por la administración de puromicina a las ratas, se inhibe también la salida de vitamina E a la linfa. A su vez, se ha demostra- do que la secuencia temporal de aparición del pi- co y la permanencia del tocoferol administrado oralmente en los quilomicrones se aproxima al tiempo de residencia de éstos en el plasma (entre 5 y 6 h)S0,59_ En el catabolismo de los quilomicrones, al igual que ocurre con las otras lipoproteínas ricas en tri- glicéridos, pero procedentes del hígado, se produ- ce una cierta transferencia de la vitamina E a los tejidos, Por acción de la LPL, que se encuentra an- clada en el endotelio capilar por acción de molé- culas de heparan sulfato53, los triglicéridos de es- tas lipoproteínas son hidrolizados, y los ácidos grasos libres y el glicerol que se producen son captados por el tejido subyacente (fig. 4). La LPL también facilita la transferencia de los tocoferoles de las lipoproteínas ricas en triglicicéridos (quilo- micrones y lipoproteínas de muy baja densidad 10 Remanentes ~-( -TG- \ \ a-,y-TOC, \ C-11 , ~, .... ---~,,,.., «-:r-tocoferol : C-11 -: / "/ / \ LPI FFA Glicerol a-,y-tocoferol [VLDL]) o ios tejidos, de forma simultánea a los ácidos grasos60• De acuerdo con este mecanismo de captación tisular, se ha demostrado que rato- nes transgénicos que sobreexpresan la LPL en músculo esquelético tienen un alto contenido de cx.-tocoferol en este tejido61 • De forma opuesta, pa- cientes con deficiencia en LPL, que presentan un reducido catabolismo de quilomicrones y VLDL, y en los que alrededor del 80% de todo su tocoferol circulante se transporta en estas lipoproteínas ri- cas en triglicéridos62, tienen unos valores circulan- tes de cx.-tocoferol del orden de 1 O veces más altos de lo normal, mientras que su concentración en tejido adiposo es baja60. Como también se muestra en la figura 4, en la ac- ción de la LPL sobre los quilomicrones se forman sus remanentes, que son de menor tamaño. En es- te proceso se liberan componentes de la superfi- cie que son transferidos a las lipoproteínas de alta densidad (HDL)63, entre los que se encuentran mo- léculas de tocofer-oles. Las HDL pueden transferir el tocoferol que han adquirido a las otras lipopro- teínas circulantes64·66, por lo que durante las 6-9 h de la administración oral de tocoferoles deutera- dos, todas las lipoproteínas circulantes lo contie- nen de forma casi equimolecular y proporcional a la cantidad odministrada58. En el proceso de intercambio de componentes con las HDL, los remanentes de quilomicrones ad- 16 Bilis a-tocoferol ')"locoferol Otras vitaminas E -- ------------~ IDL Remanentes de LDL quilomicrones HDL { a-tocoferol tocoferol btras vitaminas E a-TTP Figura 5. Papel de la proteína transferidora de tocoferol (a-TIP) en el destino de las distintas formas de vitamina E en el hígado. Las lipoproteínas que son captadas por el hígado depositan en él distintas formas de vitamina E (a y y-tocoferol, y otros); sin em- bargo, gracias a la especificidad de la a-TTP por el a-tocoferol, es esta forma de vitamina E la única que se acopla a las VLDL nacientes, para ser segregada a la circulación, mientras que el a-tocoferol restante y las otras formas de vitamina E son elimi- nadas por vía biliar. quieren apoproteína E, lo que les permite ser re- conocidos por receptores hepáticos y ser capta- dos por el hígado para su posterior catabolismo53. De esta forma, moléculas de vitamina E proceden- tes de la dieta terminan siendo descargadas en el hígado. Proteína transferidora de tocoferol en el hígado Cotignani y Oieri demostraron en 1977 la existencia de una proteína hepática que unía al a.-tocoferol67• Posteriormente, se demostró que esto proteína faci- lita la transferencia del tocoferol citosólico a lisoso- mas, microsomas y mitocondrias68, y que en este proceso discrimina entre los tocoferoles a., 13, o, y y, reconociendo preferentemente al a.-tocoferoI69. Ini- cialmente fue denominada "proteína que une al a.- tocof erol" (o a-TOP, por las iniciales de su nombre inglés), y posteriormente "proteína tronsf eridora de a.-tocoferol, o a-TTP". Su secuencia de ADNc fue clonada primero en la rata70 y posteriormente en el hombre71 , y recientemente se ha demostrado que su expresión de ARNm no es modulada por cambios en la disponibilidad de vitamina E72. Tras su captación hepática, los remanentes de qui- lomicrones son hidrolizados en el interior de los li- sosomas. Precisamente la a.-TTP reconoce y trans- porta el d-a-tocof e rol de los lisosomas al retículo 17 E. Herl'f'ro.- Ml'tuhollsmo ele lo vltomlno E endoplósmico, para su incorporación o los VLDL 73, actuando como uno lanzadera. Así pues, la a-TTP, que se encuentra únicamente en hígado, discrimino entre los distintos formas de vitamina E procedentes de lo dieto (fig. 5), es necesaria poro la inserción del a-tocoferol en las VLDL y su consecuente secre- ción al plasma, mientras que al no reconocer los otras formas del tocoferol, facilito su eliminación por vía biliar. De esto forma, la a.-TTP regula los va- lores de a-tocoferol en plasma, manteniéndolos dentro de un estrecho rango. De hecho, en pacien- tes con ausencia de esta proteína, los valores plas- máticos de a-tocoferol son muy bajos73• A su vez, en sujetos sanos a los que se les administran por vía oral cantidades de hasta 100 veces los requeri- mientos normales de vitamina E, la concentración plasmática de a-tocoferol aumento solamente de dos o cuatro veces de los valores normoles74-76• Además de controlar el destino del tocoferol de los remanentes de los quilomicrones, la a.-TTP participo también en el destino del tocoferol que también lle- ga al hígado asociado a otras lipoproteínas plas- máticas, como las lipoproteínas de densidad inter- medio {IDL), HDL y LDL (fig. 5). A través de este me- canismo, el a-tocoferol "viejo", el exceso de tocoferol que se haya ingerido y las otras formas de tocoferol que lleguen al hígado (por ejemplo, el y-tocoferol) son excretados por vía biliar73. Real- mente el sistema funciona como si la a-TTP sirviera para "salvar" una determinada cantidad del a-to- coferol de su eliminación por vía biliar, facilitando su incorporación o las VLDL. Secrecl6n y catobollsmo de los VLDL En el hígado, los componentes lipídicos (incluida la vitamina E) que han llegado derivados de lo dieta en formo de remanentes de los quilomicrones se unen a los glicéridos formados de lo esterificación de los productos de la lipólisis del tejido adiposo (ácidos grasos libres y glicerol) y a los de síntesis endógeno (triglicéridos, fosfolípidos y colesterol). Como se muestra en la figura 6, estos lípidos se ensamblan a las apoproteínas (en particular la apoproteína 0-100), dando lugar a la formación de los partículas nacientes de las VLDL dentro de unos vesículas, que terminan descargando su con- tenido a través del espacio de Disse a la circula- ción.En este proceso, la a.-TTP facilito la incorpo- ración preferente y específica del a-tocoferol a las VLDL nacientes, que son segregadas a la circula- ción 77, compensando así la escosa capacidad que tiene el hígado para almacenar lo vitamina E. En su metabolismo, las VLDL, una vez han madura- do por el intercambio de componentes con los HDL 63, son parcialmente delipidodas por lo LPL que como en el coso de los quilomicrones (fig. 1.-), 11 Volumen 3, Número 1, Enero-Febrero 2000 Figura 6. Esquema de los procesos que participan en la formación de VLDL en hí- gado. Los lípidos (triglicéri- dos, colesterol y fosfolípidos) sintetizados en el propio ór- gano o derivados de los que son captados de la circula- ción, junto al a-tocoferol procedente de las lipoproteí- nas captadas y la participa- ción de la a-TTP, son canali- zados a través del retículo endoplásmico liso (REL). En el retículo endoplásmico ru- goso (RER) se sintetizan las apoproteínas (en particular la apo B-100), que se fusio- nan con dichos componentes lipídicos (incluido el ci-toco- ferol) formando las partícu- las lipoproteicas. Estas son canalizadas a través del apa- rato de Golgi a vesículas de secreción, para ser descar- gadas a los sinusoides hepá- ticos en forma de VLDL na- cientes. • • ~ ~ ~Espacio de Disse -. . ... •• -•·•••• VLDL Sinus~ide t : ": 1 • ; : • nacientes hepático • hidroliza los triglicérídos que transporta, y mientras que los productos de esa hidrólisis y una parte de la vitamina E son captados por los tejidos subya- centes, las partículas remanentes (en este caso, de- nominadas IDL) pueden seguir dos alternativas: aproximadamente la mitad pueden ser captadas por el hígado, mientras que la otra mitad es con- vertida en LDL. A su vez, tras la acción de la LPL, una parte sustancial de los componentes de super- ficie de las VLDL es transferida a las HDL, igual que ocurría en el metabolismo de los quilomicrones. Consecuentemente, el cx-tocoferol que es segrega- do del hígado en forma de VLDL puede seguir va- rias vías alternativas: una determinada proporción puede continuar en el centro de la partícula de las VLDL cuando éstas son transformadas en LDL, otra vuelve al hígado en forma de las IDL, y finalmente otra parte es transferida a las HDL en el proceso de hidrólisis de las VLDL por la LPL. De esta forma, el cx-tocoferol segregado a la circulación en forma de VLDL puede dar lugar a su enriquecimiento en todas las lipoproteínas circulantes 73. Transporte de la vitamina E en las LDL Las LDL son las prin~ipales lipoproteínas transpor- tadoras de éstere~ el colesterol en plasma, y son 12 captadas por las células a través de un proceso dependiente de receptor78. De esta forma, el toco- ferol presente en las LDL puede ser captado por los distintos tejidos a través de los receptores de LDL 79. De hecho, este mecanismo resulta ser cuantitativamente importante para la adquisición del tocoferol por determinados tejidos tales como las glándulas suprarrenales, los ovarios y el tejido adiposo. Cabe también indicar que entre los teji- dos que presentan una mayor proporción de re- ceptores de LDL se encuentran el hígado y el in- testino80. Aunque la captación de las LDL mediada por el receptor de estas lipoproteínas a los tejidos es un mecanismo importante para la llegada a ellos del cx-tocoferol, se sabe que los conejos Watanabe, que tienen deficiencia en la actividad de dicho re- ceptor, presentan unos valores tisulares de cx-toco- ferol dentro de la normalidad81 • Esto significa que existen mecanismos alternativos para la llegada del cx-tocoferol a los tejidos. Intercambio del a-tocoferol entre las llpoproteínas y transporte en las HDL El transporte de vitamina E en plasma implica su rápida transferencia entre las distintas lipoproteí- 18 Qullomicrones Intestino Bilis i VLDL (--~) · t ~FFX-<!uc I \ ' -----------·~ 1 ~ Reman~:.~~ J ti ,,,--~ E"' HDL ~a-,y- \ 8 a- / ./ +t () LPL ®·•Y-_._. a- / ~ . / LDL .a-FFA,GLIC Fi9ura 7. Esquema del transporte de la vitamina E en las lipopro- teinas. Los quilomicrones procedentes del intestino contienen o: y -y-tocoferol. La lipoproteína lipasa (LPL) facilita tanto la transfe- rencia a los tejidos extrahepáticos de los productos de la lipólisis de los triglicéridos, ácidos grasos libres (FFA) y glicerol, y parte de esos tocoferoles, como la transferencia de los componentes de superficie Oncluyendo los tocoferoles) a las HDL De esta forma, los quilo:nicrones son transformados en remanentes, que son captados por el hígado, donde el o:-tocoferol se incorpora a las VLDL, mientras que el -y-tocoferol es eliminado por vía biliar. El catabolismo de las VLDL está también mediado por la LPL, que facilita la transferencia de FFA, glicerol y o:-tocoferol a los tejidos extrahepáticos. De esta forma, pasando por las IDL, las VI.DL son finalmente transformadas en LDL, facilitando también el aporte de o:-tocoferol a las HDL a través de la liberación de componen- tes de superficie o mediante el intercambio de compuestos lipídi- cos entre LDL y HDL Oncluidos los tocoferoles). nas, y en este proceso desempeñan un papel rele- vante las HDL, dado que el tocoferol que les llega es intercambiado rápidamente con otras lipopro- teínas, como se muestra de forma esquemática en la figura 7. De hecho, las únicas moléculas de to- coferoles que no se intercambian directamente entre las distintas lipoproteínas son las transporta- das en las lipoproteínas ricas en triglicéridos (qui- lomicrones y VLDL). Sin embargo, la hidrólisis de estas lipoproteínas por acción de la LPL y lo con- secuente liberación de su material de superficie permite lo transferencia de tocoferol a las HDL, y de ahí a las otras lipoproteínas (fig. 7). No se sabe si los HDL nacientes producidas por el hígado contienen cantidades apreciables de vita- mina E. Cabe pensar que éste no sea un mecanis- mo importante de salida del tocoferol del hígado, 19 -- -------------------- E. Herrero.- Metabolismo de lo vttomlno E yo que dichas HDL nacientes son segregados sin un centro hidrof6bico63,82. De cualquier formo, anteriormente se ha descrito cómo los HDL son importantes en el catabolismo de los lipoproteínos ricos en triglicéridos, recogiendo de ellos uno par- te del tocoferol que transportan. De hecho, las HDL son esenciales en el transporte de tocoferol en pacientes con obetolipoproteinemia, que care- cen de otros lipoproteínos. En estos pacientes los HDL son el mecanismo de llegado del tocoferol a los tejidos, probablemente a través de un mecanis- mo de intercambio, llegándose o alcanzar con- centraciones normales de tocoferol en sus teji- dos03. El transporte del exceso de vitamina E de los teji- dos periféricos al hígado parece reolizcrse o tra- vés de los HDL, de formo similar o como tiene lu- gar el transporte reverso del colestero163,02. Lo so- lida de tocoferol del tejido adiposo, uno de los principales depósitos de vitamina E del organismo, puede ser importante poro mantener los valores tisulares de vitamina E en situaciones de deficien- cia. De hecho, el contenido de a.-tocoferol en ner- vios periféricos se ha correlacionado con sus con- centraciones en tejido odiposo84. A su vez, ·se ha demostrado también que la concentración de a.- tocoferol en tejido adiposo de pacientes con defi- ciencia en esto vitamina es inferior o la nor- ma184,05, lo cual muestro lo capacidad de su movi- lización del tejido adiposo. Vitamina E en lo gestante, el feto y el recién nacido Aunque la vitamina E es esencial para mantener lo gestación en la rata, este papel no se ha de- mostrado en la mujer, posiblemente porque en és- ta no se produce de forma espontánea una defi- ciencia ton intensa como en animales de experi- mentación sometidos o dietas especiales. Al igual que ocurre en el adulto, el feto también necesita disponer de una adecuada reserva de antioxidan- tes para combatir el daño que pueda producirle la formaciónde radicales libres por procesos oxi- dativos. Aunque el feto es sustancialmente hipóxi- co, durante la vida fetal, la gestación, el parto y la etapa posnatal se producen episodios de hipoxia e isquemia/reperfusión, que deben ser combatidos por el aporte de suficientes reservas de antioxi- dantes86. Los lípidos en plasma aumentan progresivamente en la circulación materna a medida que avanza el embarazo, y este cambio corresponde a los va- lores de triglicéridos, y en menor medido o los del colesterol, en todas las lipoproteínas circulantes87. A su vez, este incremento de los lípidos circulantes 13 Volumen 3, Número 1, Enero-Febrero 2000 se realiza en paralelo a un Incremento de vitami- na E en plasma, de forma que el cociente cx-toco- ferol/lípidos totales se mantiene por encima de 0,886• A pesar de ello, en la gestante se produce una tendencia a disminuir el contenido de vitami- na E en los eritrocitos, alcanzando al final del em- barazo valores de franca deficiencia88, lo que in- dica que los valores plasmáticos de tocoferol au- mentan al final de la gestación a expensas de su contenido en eritrocitos. El paso de vitamina E a través de la placenta, al igual que el de otros componentes lipídicos, se reali- za por difusión simple, a favor de gradiente de con- centración. Este paso se realiza de forma que dismi- nuye con el tamaño molecular y con la hidrosolubi- lidad del compuesto89• Una dependencia del paso de vitamina E de la madre al feto se evidencia por la relación directa que existe entre los valores de cx- tocoferol en eritrocitos de la madre y del feto, con valores siempre inferiores en el segundo86• Esta si- tuación de deficiencia de vitamina E se mantiene en el recién nacido, en el que se ha demostrado una disminuida resistencia a la hemólisis inducida por peróxido de hidrógeno90,91 • Esto se debe no sólo a la menor proporción de vitamina E, sino también al incremento de las necesidades de antioxidantes en el recién nacido, y especialmente ante el incremen- to en la presión de oxígeno y el complemento de ácidos poliinsaturados a que se encuentra normal- mente sometido. La llegada de vitamina E al lactan- te se produce a través de la leche materna, y preci- samente la inducción de LPL que se produce nor- malmente en glándula mamaria alrededor del parto92,93 puede constituir un mecanismo esencial para garantizar la transferencia a la leche de la vi- tamina E que circula en la sangre materna asociada a las lipoproteínas ricos en trlglicéridos. Agrodeclmlento Agradezco a Milagros Moronte su valiosa colabo- ración técnica en la preparación del manuscrito, así como a la Universidad San Pablo-CEU por la ayuda recibida (98/21 y 99/9). 13ibliografía 1. [ljorneboe A, [ljorneboe G, Drevon C. Absorption, tronsport and dis- tribution ol vitomin E. J Nutr t 990; 120: 233-242. 2. [lurton GW, ln9old KU. Vitomin E: opplicotions al the principies of physicol orgonic chemistry to the exploration of its structure ond function. Acc Chem Res 1986; 19: 194-201. 3. [lunyon J. McHole D, Green J, Marcinkiewicz S. [liological potencies of r- and y-tocopherol ond 5-methyltocol. [lr J Nutr 1961 ; 1 5: 253- 2S7. 4. Machlin IJ. Vitamin E. En: Hondbook of vitamins. Nueva York. [losi- leo: Dekker Marce!. 1984; 99. 5. Schaeler EJ. Woo R, Kiboto M, [ljornsen L. Schreibmon PH. Mobiliza- tion ol trigiyceride but not cholesterol or locopherol from human odlpocytes durlng wel9ht reduction. Am J Clin Nutr 1983; 37: 749- 754. 6. 0rouwer DA, Molin F. Van 8eusekom CM, Van Doormool JI, Musklet FA. lnfluence of fostin9 on circulotin9 levels al olpho-tocopherol ond beto-corotene. Effect ol short-term supplementotion. Clin Chim Acto 1998 277: 127-139. 7. Corpenter D. Vitomin E deliciency. Sem Neurol 1985; 5: 283-287. 8. locobson HN. Dietory stondords ond luture developments. free Rod Oiol Med 1987; 3: 209-213. 9. Fritsmo CA. Vitomin E ond outoxidotion. Am J Med Tech 1983; 49: 453-456. 10. Oski FA. Vitomin E. A radical delense. N En9I J Med 1980; 303: 454- 455. 11. Cross CE. Oxy9en rodicols ond human diseose. Ann lntern Med 1987; 107: 526-545. 12. 0urton GW, Joyce A. lngol KU. Is vitomin E the only lipid-soluble, choin-breakin9 ontioxidont in human blood plasmo ond erythrocyte membrones7 Arch Oiochem mophys 1983; 221: 281-290. 13. 0urton GW, Joyce A. lngol KU. first proof thot vitomin E is mojor li- pid-soluble, choin-breokin9 ontioxidont in human blood plasmo. lan- ce! 1982; 7: 327. 14. Packer l, londvik S. Vitomin E: lntroduction to biochemistry ond he- olth benefits. En: Diplock AT. Mochlin U, Pocker l, Pryor WA. edito- res. Vitomin E. 0iochemistry ond heolth implicotions. Nuevo York: The New York Acodemy of Sciences, 1989; 1. 15. ln9old KU, Weeb AC, Witter D, [lurton GW, Metcolfe TA, Muller DPR. Vitomin E remoins the mojar lipid-soluble, choin-breokin9 on- tioxidont in human plasmo even in individuols sufferin9 severe vito- min E cfeficiency. Arch Oiochem Oiophys 1987; 259: 224-225. 16. Pocker JE, 5Ioter TF, Willson Rl. Direct observotion of o free radical interoction between vitomin E ond vitomin C. Noture 1979; 278: 737-738. 17. Oisby RH, Porker AW. Reoctions ol the cx-tocopheroxyl radical in mi- cellor solutions studied by nonosecond loser flash photolysis. FEOS lett 1991; 290: 205-208. 18. Niki E. Action of oscorbic ocid os o scovenger of active ond stoble oxy9en rodicols. Am J Clin Nutr 1991; 54: 51.119-51.124. 19. Ko9on VE, 5erbinovo EA, Forte T, 5cito G, Pocker l. Recycling of vi1o- min E in human low density lipoproteins. J lipid Res 1992; 33: 397. 20. Koyden HJ, Trober MG. Absorption, lipoprotein tron.;port, ond regu- lotion of plasmo concentrotions of vitornin E in humons. J Upid Res 1993; 34: 343-358. 21. Wotson RR, leonard TK. Selenium ond vitomins A, E ond C: nutrients with concer prevention properties. J Am Die! Assoc 1986; 86: 505- 510. 22. Azzi A. lloscobonik D, Hensey C. The protein Kinose C fomily. Eur J Oiochem 1992; 208: 547-557. 23. Meydoni M. Vilamin E. lance! 1995; 345: 170-175. 24. lllot W, Li J-Y, Toylor PR. Nutritian intervention triols in linxion, Chi- no: supplementotion with specific, vitamin/minerol combinotions, cancer incidence ond diseose-specific mortolity in the general popu- lotion. J Notl Cancer lnst 1993; 85: 1.483-1.492. 25. Toytar PR, Li ll, Dowsey 5M. Preventian of eosopho9eol concer. the nutrition intervention trtols in linxian, Chino. linxion nutrition inter- vention triols study 9roup. Cancer Res 1994; 54 (Supl 71: 52.029· S2.031. 26. The alpha-tocopherol beta corotene concer prevention study 9roup. The effect of vitamin E ond beta corotene on the incidence ol lun9 concer and other concers in mole smokes. N En9I J Med 1994; 330: 1 .029- t .035. 27. Moyne ST, Janerich DT, Greenwold P. Dietary beta corotene ond lun9 concer risk in US nonsmokers. J Natl Cancer lnst 1994; 86: 33-38. 28. Chain AC. Vitamin E and atherosclerosis. J Nutr t 998; 128: 1.593- 1.596. 29. Vo9elson9 A, Shute EV. Effect of vitomin E in coronory heort diseose. Nature 1946; 157: 772. 30. Novab M, 0erliner JA, Wotson AD, Horno SY. Territo MC. Lusis AJ et al. The Yin ond Yang ol oxidotion in the development of the fotty streok. Arterioscler Thromb Vosc mol 1996; 16: 831-042. 31. Mobile l, Meilhac O, Escor9ueil-[llanc 1, Troly M, Piero99i MT, Sol- vayre R et al. Mitochondriol function is involved in lDl oxidotion medioted by human cultured endotheliol cells. Arterioscler Thromb Vasc Oiol 1997; 17: 1.575-t.582. 32. Gey KF. Cardiovoscular diseose ond vitomins - Concurren! con-ec- tion of 'suboptimol' plasma ontioxidonl levels moy, os importan! port of 'optimar nutrition, help to preven! eorly sto9es of cordiovosculor diseose ond concer. respectively. Oibl Nutr Dieto 1995; 52: 75-91. 33. Esterbouer H. Gieseg SP, Giessoul A, Zlouzenkovo O, Romos P. free rodicols ond oxidativc modilicotion of lDL. Role of natural ontio><i- donts. Atherosclerosis 1995; 10: 203-208. 20 34. Jiolol1, Grundy SM. Effect of dietory supplementotlon wlth olpho-to- copherol on the O><idotlve modlflcotlon of low denslty llpoproteln. J llpld Res 1992; 33: 899-906. 35. Jho P, Flother M, lonn E, Forkouh M, Yusuf S. Antlo><ldont vltomlns and cordiovosculor dlseose - A critico! review of epidemiologic ond clinicol triol doto. Ann lntern Med 1995; 123: 860-872. 36. Otero P. Viano M, Herrero E, 0onet O. Antio><idont and proo><idont effects ol ascorbic ocid, dehydrooscorbic ocid ond flovonoids on LDL submitted to different degrees of o><idotion. Free Radie Res 1997; 27: 619-626. 37. Reddonno P, Whelon J, 0urgess m, Eskew ML, Hildenbrondt G, Zar• kower A et al. The role of vitomin E ond selenium on orochidonic acid O><idotion by woy of the 5-lipo><ygenose pothway. En: Diplock AT, Mocglin U, Pocker l, Pryor WA, editores. Vitamin E. Oioche- mistry and health implications. Nuevo York: The New York Aco- demy ol Sciences, 1989; 136. 38. Chon AC, Wogner M, Kennedy C. Mroske C, Proul>< P, Loneuville O et al. Vitomin E up-regulotes phospholipase A~, orochidonic ocid re- leose ond cycloo><ygenose in endotheliol cells. Aktuel Ernohr-Med 1998; 23: 1-8. 39. Tron K, Wong KT, Lee E, Chon AC, Choy PC. Vitomin E potentiotes orachidonic ocid releose ond phospholipose A2 octivity in rol heort myoblostic cells. Oiochem J 1996; 319: 385-391. 40. Chon AC. Tron K, Pyke DO, Powell WS. Effects of dietory vitomin E on the biosynthesis of 5-lipo><ygenose products by rol polymorpho- nucleor leukocytes. Oiochim Oiophys Acto 1989; 1.005: 265-269. 41. Kohlschutter A, Moyotepek E, Finckh O, Hubner C. Effect of plasmo olpho-tocopherol on leuktriene E4 e><cretion in genetic vitomin E defi- ciency. J lnherit Metob Dis 1997; 20: 581-586. 42. Pritchord KA Jr, Pote( ST, Korpen CW, Newmon HAI, Ponganamolo RV. Trigly1:eridc-lowering effect of dietary vitomin E in streptozoto- cin-induced diobetic rots. lncreosed lipoprotein lipase activity in li· vers of diobetic rots fed high dietory vitomin E. Diabetes 1986; 35: 278-281. 43. Join SK, McVie R, Joromillo J, Polmer M, Smith T. Effect of modest vi- tomin E supplementotion on blood glycoted hemoglobin ond trigly- ceride levels ond red cell indices in type I diobetic potients. J Am Coll Nutr 1996; 15: 458-461. 44. Poolisso G, D'Amore A, Golzerono D, Vinicio 13, Giugliono D, Vorric- chio M et al. Doily vitomin E supplements improve metobolic control but not insulin secretion in elderly type II diobetic potients. Diabetes Core 1993; 16: 1.433-1.437. 45. Poolisso G, Di Moro G, Golzerono D, Cocciopuoti F, Vorricchio G, Vorricchio M, D'Onofrio F. Phormocologicol doses of vitomin E ond insulin oction in elderly subjects. Am J Clin Nutr 1994; 59: 1.291· 1.296. 46. Djornson LK, Koyden HJ, Miller E, Moshell AN. The tronsport ol a-to- copherol and ~-corotene in human blood. J Upid Res 1976; 17: 343- 352. 47. 0ehrens WA, Thompson JN, Modere R. Distrlbution of olpho tocop- herol in human plasma lipoproteins. Am J Clln Nutr 1982; 35: 691· 696. 48. 0ehrens WA, Modere R. Tronsport of a- and y-tocopherol in human plasma lipoproteins. Nutr Res 1985; S: 167-174. 49. Lewis LA. Oualfe ML, Poge IH. Upoproteins of serum, carriers of to- copherol. Am J Physiol 1954; 178: 221-222. SO. Kelleher J, Losowsky MS. The obsorption of a-tocopherol in man. Dr J Nutr 1970; 24: 1.033-1.047. S 1. MocMohon MT, Neole C. The obsorption of a-tocopherol in control subjects ond in potients with intestinal molobsorption. Clin Sel 1970; 38: 197-210. 52. Trober MC, Koyden HJ, Green JD, Green MH. Absorption ol water- miscible forms ol vitomin E in o potient with cholestosis ond in rots. Am J Clin Nutr 1986; 44: 914-923. 53. Losunci6n MA, G6mez-Coronodo D. Herrero E. Metabolismo de qui- lomicrones y VLDL. En: Rubíes-Pral J, editor. Temas actuales en hi- perlipidemios y arteriosclerosis. Darcelono: Espaxs, Publicaciones Médicos, 1992; 39. 54. Gallo-Torres H. Obligatory role ol bile for the intestinal obsorption of vitomin E. E Lipids 1970; 5: 379-384. 55. Sokol RJ, Heubi JE, lonnoccone S, Dove KE, Horris RE, Dolistreri WF. The mechonism cousing vitomin E deficiency during chronic childho- od cholestosis. Gostroenterology 1983; 85: 1.172-1.182. 56. Mothlos P, Horrles J, Peters T, Muller DPR. Studies on the in vivo ob- sorption of micellor solutions of tocopherol ond tocopheryl ocelote in the rot: demonstrotion ond portiol choracterizotion ol o mucoso! esterase locolized to the endoplosmic reticulum of the enterocyte. J Lipid Res 1981; 22: 829-837. 57. 0jorneboe A, Djorneboe G-E, Drevon CA. Serum holf-life, distribution. hepotic uptoke ond biliory e><cretion of a-tocopherol in rots. Oiochim Oiophys Acto 1987; 921: 175-181. 21 E. Herrero.- Metabolismo de lo vltomlno E 58. Trober MC, lngold KU, 0urton GW, Koyden HJ. Absorption ond tronsport of deuterlum-substltuted 2R, 4' R, O' R-a·tocopherol In hu- man lipoproteins. Uplds 1908; 23: 791-797. 59. Llchtenstein AH, Hochey DL, Millar JS, Jenner Jl, 0ooth L, Ordovos J et al. Measurement of human opollpoprotein 0-48 ond 0-100 kine- tics In trlglyceride-rlch lipoproteins uslng (5, 5, 5·2H1]Ieucine. J lipid Res 1992; 33: 907-914. 60. Trober MC, Olivecrono T, Koyden HJ. Oovine milk lipoprotein lipose tronsfers tocopherol to human fibroblosts during triglyceride hy- drolysis in vitro. J Clin lnvest 1985; 75: 1.729-1.734. 61. Sottler W, levok-Frank S, Rodner H, Kostner CM, Zechner R. Muscle- specific overe><pression of lipoprotein lipose in transgenic mice re- sults in increosed olpho-tocopherol levels in skeletol muscle. Dio- chem J 1996; 318: 15-19. 62. Traber MC, 0urton GW, Hughes l, lngol KU, Hidako H, Molloy M et al. Discriminotion between forms of vitomin E by humons with ond without genetic abnormalities of lipoprotein metobolism. J lipid Res 1992; 33: 1.171-1.182. 63. Herrero E, losunción MA Metabolismo de los lipoproteínos. En: He- rrero E, editor. Oioquímico. Aspectos estructurales y vías metabóli- cos (2.0 ed.). Madrid: Interamericano, McGrow-Hill, 1991 ; 667. 64. Massey J. Kinetics of tronsfer of a-tocopherol between model ond no- tive plasmo lipoproteins. Oiochim 13iophys Acto 1984; 793: 387-392. 65. Gronot E, Tomir 1, Deckelboum ru. Neutral lipid transfer protein does not regulote a-tocopherol tronsfer between human pk,smo lipopro- teins. lipids 1988; 23: 17-21. 66. Trober MC, Lane JC, Logmoy N, Koyden HJ. Studies on the tronsfer of tocopherol between lipoproteins. Lipids 1992; 27: 65i-663. 67. Cotignoni CL, Oieri JG. Rol river a-tocopherol binding protein. Dio- chim Oiophys Acto 1977; 497: 349-357. 68. Murphy DJ, Mavis RD. Membrone tronsler of a-tocopherol. J Oiol Chem 1981; 256: 10.464-10.468. 69. Soto Y, Hogiworo K, Aroi H, lnoue K. Purificotion ond chorocterizo- tion of the a-tocopherol protein from rot liver. FEDS Lett 1991; 288: 41-45. 70. Soto Y, Aroi H, Miyoto A, Tokito S, Yomomoto K, Tonobe T et al. Pri- mory structure of a a-tocopherol tronsfer protein from rol liver, ho- mology with cellulor retinoldehyde-binding protein. J Oiol Chem 1993; 268: 17.705-17.710. 71. Arito M, Soto Y, Miyota A, Tonabe T, Tokohoshi E, Ko\•den HJ et al. Human olpha-tocopherol tronsfer protein: cDNA cloning, e1<pression and chromosomol locc,lizofior.. Oiochem J 1995; 306: 437-443. 72. Show H-M, Huong C-J. Liver a-tocopherol tronsfer protein ond its mRNA are differentially oltered by dietory vitomin E deficiency ond protein insufficiency in rots. J Nutr 1998; 128: 2.348-2.354. 73. Kayden HJ, Trober MC. Absorption, lipoprotein tronsport, ond regu- lation ol plasma concentrotions of vitomin E in humons. J lipid Res 1993; 34: 343-358. 74. Hotom U, Koyden HJ. The foHure of a-tocopherol supplementotion to alter the distribution of lipoprotein cholesterol in normal and hyperli- poproteinemic persans. Am J Upid Oin Pathol 1981 ; 76: 122-124. 75. Dimitrov MV, Meyer C. Gillllqnd D, Ruppenthal M. Plasmo toc.ophe- rol concentrotions in response to supplernental vitomln E. J ClinNutr 1991; 53: 723-729. 76. Jiolal 1, Grundy SM. Effect of dietory supplementation with olpho-to- copherol on the o><idofive modificotion ol low density lipoprotein. J Lipid Res 1992; 33: 899-906. 77. Traber MC, Rudel ll, 0urton GW, Hughes l, lngol KU, Koyden HJ. Noscent VLDL from liver perfusions of cynomolgus monk-eys are preferentiolly enriched in RRR- compored with SRR-a-tocopherol: studies using deuterated tocopherols. J Lipid Res 1990; 31: 687-694. 78. Drown MS, Herz J, Goldstein JL LDL-receptor structure - Calcium co- ges, ocid boths ond recycling receptors. Noture 1997; 388: 629-630. 79. Trober MC, Koyden HJ. Vitomin E is delivered fo cells vio fhe high of- finity receptor lor low denslty lipoprofein. Am J Clin Nutr 1984; 40: 747-751. 80. Dietschy JM, Spody DK, Stonge EF. Ouantitative importance of dille- renl orgons for cholesterol synthesis ond low density lipoprolein de- grodation. Oiochem Soc Trons 1983; 11: 639-641. 81. Cohn W, Kuhn H. The role of the low density lipoprotein receptor for a-tocopherol delivery lo tissues. Ann NY Acod Sci 1989; 570: 61-71. 82. Herrero E, lasunción MA. Estructuro de los lipoproleínas y opopro- teínos. En: Fernóndez Curz A, editor. Monografías clínicos en cardio- logía, n. 6: Lípidos y corazón. 0orcelona: Editorial Doymo, 1993; 9. 83. Oieri JG, Hoeg JM, Schaefer EJ. Zech LA. Vitomin A ond vilomin E re- plocement in abetolipoproteinemio. Ann lntern Med 1984; 100: 238-239. 84. Koyden HJ. Hatom U, Traber MC. The meosurement ol nanogroms ol tocopherol from needle ospiration biopsies of odipose tissue: nor- mal ond abetolipoproteinemic subjects. J Lipid Res 19fl3; 21,.: 652- 656. 15 Volumen 3, Número 1, Enero-Febrero 2000 05. l<oyden HJ. Tocopherol content of odlpose tlssue from vttomln E-defi- clent humons. En: Porter n, Whelon J, editores. 0lology of vltomln E. Londres: Plttmon 0ooks, Ud., 1903; 70. 06. Johnson L. Vltomln E nutrltlon In the fetus ond newbom. En: Polln RA. Fo11 'WW, editores. Fetal ond neonatal physlology (2.ª ed.). FIia- deifio: W.0. Sounders Co., 1990; 425. 07. Álvorez JJ, Montelongo A, Iglesias A, Losunclón MA, Herrero E. Lon- gitudinal study on lipoproteln proflle, hlgh density lipoproteln sub- class, and postheparln llposes durlng gestation In women. J Lipid Res 1996; 37: 299-300. 88. l<asparek S. Chemlstry of tocopherols and tacotrienals. En: Macglin U, editor. Vitamln E: a comprehenslve treotise. Nueva York: Morcel Deker, 1980; O. 89. Herrero E, 0onet O, Lasunci6n MA. Maternal-fetal transfer of lipid metabolites. En: Polin AA, Fox 'WW, editores. Fetal and neonatal phy- siology. (2.ª ed.). Filadelfia: W.0. Saunders Co., 1990; 447. 16 90. Mino M, l<ltagowa M, Nakagawa -S. Red blood cell tocopherol con- centrotlons In o normal populotlon of Joponese chlldren ond premo- ture lnfonts In relotlon to the ossessment of vltomln E status. Am J Clln Nutr 1905; 41: 631-630. 91. Mlyake M, Mikl M, Vosudo H, Oglharo T, Mino M. Vltomln E and the peroxldlzobllity of erythrocyte membrones In neonotes. Free nadie Res Commun 1991; 15: 41-50. 92. Herrero E, Losunci6n MA, Gomez Coronado O, Arando P, Lopez lu- na P, Moler l. Role of lipoproteln lipase actlvity on llpoprofein meta- bolism and the late of clrculating triglycerides in pregnancy. Am J Obste! Gynecol 1900; 1 SO: 1.575-1.503. 93. Herrera E, nomos P, L6pez-Luna P, lasunci6n MA. Mefabolic inte- ractions during pregnancy In preparafion for lactafion. En: Serrano Ríos M, Sastre A, Pérez Juez MA, Entrala A, De Sabesti, editores. Dairy products un human health and nutrition. Rotterdam: AA 0al- kema, 1994; 109. 22
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