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1 UNIVERSIDAD NACIONAL AGRARIA LA MOLINA FACULTAD DE AGRONOMÍA Ácido giberélico y calidad poscosecha en uva de mesa (Vitis vinífera L.) Tesis para optar el título de: INGENIERO AGRÓNOMO MARITZA GIOVANNA HURTADO MENDOZA LIMA – PERÚ 2016 2 UNIVERSIDAD NACIONAL AGRARIA LA MOLINA FACULTAD DE AGRONOMÍA Ácido giberélico y calidad poscosecha en uva de mesa (Vitis vinífera L.) Presentado por: MARITZA GIOVANNA HURTADO MENDOZA TESIS PARA OPTAR EL TÍTULO DE INGENIERO AGRÓNOMO Sustentada y Aprobada ante el siguiente jurado: …………………………………… ……………………………………. Dr. Julio Toledo Hevia Ing. M. S. Andrés Casas Días PRESIDENTE PATROCINADOR ……………………………………. …………………………………… Dr. Jorge Escobedo Álvarez Dr. Oscar Loli Figueroa MIEMBRO MIEMBRO Lima – Perú 2016 4 DEDICATORIA: A mis abuelitas Irmita Falconí y Felicita Balarezo 5 AGRADECIMIENTOS Al Ing. Marvin Perez Cisneros, por su ayuda desinteresada y su apoyo incondicional durante el desarrollo del trabajo de investigación. Un reconocimiento muy especial al Ing. Andrés Casas por su apoyo y disposición en el transcurso del proyecto, el desarrollo de la investigación y la presentación final. Al Ing. Carlos Ferrari por la confianza que puso en mí para desarrollar un trabajo de investigación. A la empresa agroexportadora Agrícola Don Ricardo por el financiamiento del trabajo de investigación. Un agradecimiento especial al personal de planta de procesamiento, por el apoyo en las actividades prácticas así como al personal de riegos del fundo Don Carlos por su contribución en las aplicaciones de campo. Gracias a los jefes de Fundo Ing. Delia Crispin y Josepi Fernandez por el permiso de trabajar en sus respectivos fundos. Mi más sincero agradecimiento a Willian Misajel y a Rafael León por su ayuda durante las aplicaciones de campo. Agradarles a mis padres, María Luisa Mendoza Falconí y Dante Hurtado Balarezo por su aliento durante este proyecto. El mejor de los agradecimientos a Maritza Giovanna Hurtado Mendoza por seguir adelante pese a las adversidades y cumplir sus sueños. El esfuerzo realizado en la culminación de este trabajo es invaluable. Gracias por ayudarme a cumplir mis sueños, pequeña. 6 ÍNDICE DE CONTENIDO INTRODUCCIÓN ............................................................................................................. 15 REVISIÓN LITERARIA ................................................................................................... 17 2.1 Generalidades de la Vid ................................................................................................ 17 2.2 Proceso de Maduración de la Vid ................................................................................. 17 2.3 Cultivares de uva de mesa. ........................................................................................... 18 2.3.1 Cultivar Superior .......................................................................................................... 18 2.3.2 Cultivar Red Globe ....................................................................................................... 18 2.4 La Firmeza de la Uva .................................................................................................... 19 2.5 Ácido Giberélico y su uso comercial para mejorar la calidad de los frutos. ................ 20 MATERIALES Y MÉTODOS .......................................................................................... 25 3.1 Ubicación del experimento ........................................................................... .....25 3.2 Materiales……………………………………………...……………………....25 3.2.1 Material Vegetal ............................................................................................. 25 3.2.2 Material de trabajo ......................................................................................... 27 3.3 Procedimiento Experimental ............................................................................. 28 3.3.1 Tratamientos a evaluarse .................................................................................. 28 3.3.2 Unidad experimental ........................................................................................ 28 3.3.3 Diseño experimental ......................................................................................... 29 3.3.4 Análisis de variancia ......................................................................................... 30 3.4 Metodología ....................................................................................................... 30 3.4.1 Instalación del experimento ............................................................................... 30 3.4.2 Fuente de ácido giberélico ................................................................................ 30 3.4.3 Cosecha de racimos ........................................................................................... 31 3.4.4 Almacenamiento en cámara de producción ....................................................... 34 3.4.5 Evaluaciones ...................................................................................................... 34 a. Desgrane ............................................................................................................ 34 b. Color …………………………………………………………………………..35 c. Diámetro de bayas ............................................................................................. 35 d. Longitud de raquis ............................................................................................. 35 7 e. Firmeza .............................................................................................................. 36 f. Sólidos solubles (%) y Acidez Titulable (%) ................................................... 36 g. Materia seca: ...................................................................................................... 37 RESULTADOS Y DISCUSIÓN ........................................................................................ 38 4.1 Desgrane ........................................................................................................... 38 4.2 Calibre ............................................................................................................... 42 4.3 Longitud del raquis ............................................................................................ 45 4.4 Firmeza .............................................................................................................. 48 4.5 Sólidos Solubles ................................................................................................ 54 4.6 Acidez ................................................................................................................ 58 4.7 Sólidos Solubles/ Acidez (SS/AC) .................................................................... 62 4.8 Materia Seca ...................................................................................................... 66 4.9 Color …………………………………………………………………………..69 CONCLUSIONES ............................................................................................................. 72 RECOMENDACIONES .................................................................................................... 73 LITERATURA CITADA ................................................................................................... 748 ÍNDICE DE TABLAS Tabla N° 1 Características de las plantaciones de uva de mesa donde se realizó el estudio…………………………………………………………..………………………….26 Tablas N° 2 Materiales empleados en la fase de campo…………………………………..27 Tablas N° 3 Materiales empleados en la fase de laboratorio…………...……………….....27 Tabla N°4. Características del racimo al momento de la aplicación…………………….....30 Tabla N°5 Efecto de la aplicación de AG3 en el grado de desgrane en racimos de dos cultivares de uva………………………………………………………………………..…..39 Tabla N° 6 Efecto del GA3 en el diámetro de las bayas de dos cultivares del uva………..43 Tabla N°7 Efecto de la aplicación de AG3 en la longitud del raquis de los racimos de dos cultivares de uva………………………………………………………………………...….46 Tabla N°8. Efecto de la aplicación de AG3 en la Firmeza de las bayas de los racimos en dos cultivares de uva………………...………………………………………………......……...51 Tabla N° 9. Efecto de la aplicación de AG3 en los sólidos solubles de las bayas de los racimos en dos cultivares de uva…………….……………………………………………………...55 Tabla N°10 Efecto de la aplicación de AG3 en el porcentaje de acidez de los racimos en dos cultivares de uva…………………..………………………………………………….……59 Tabla N°11. Efecto de la aplicación de AG3 en la relación de SS/AC en los racimos en dos cultivares de uva…………………………………………………………………...……….63 Tabla N°12. Efecto de la aplicación de AG3 en la relación de SS/AC en los racimos en dos cultivares de uva…………………………………………………………………………....67 Tabla N°13. Patrón de color por tratamiento de todos los racimos evaluados, cv Superior………………………………………………………………………….…………70 Tabla N°14. Patrón de color por tratamiento de todos los racimos evaluados, cv. Red Globe………………………………………………………………………………...……..70 Tabla N° 15 Cálculo de la dosis de AG3 comercial aplicado para el ensayo Superior…....96 9 Tabla N° 16. Cálculo de la dosis de AG3 comercial aplicado para el ensayo Red Globe....96 ÍNDICE DE FIGURAS Figura N° 1. Croquis de las parcelas experimentales en ambos cultivares de uva……..…29 Figura N°2. cv. Superior al momento de la aplicación………………………………….....32 Figura N°3. cv. Red Globe al momento de la aplicación………………………………..…32 Figura N°4. cv. Superior al momento de cosecha….…………………………………..…..33 Figura N°5. cv. Red Globe al momento de cosecha…………………………………….…33 Figura N° 6. Efecto de la aplicación de AG3 en el grado de desgrane en racimos del cv. Superior………………………………………………………………………………….…40 Figura N° 7. Efecto de la aplicación de AG3 en el grado de desgrane en racimos del cv. Red Globe……………………………………………………………………………….……..40 Figura N° 8. Variación del porcentaje de desgrane, por tratamiento, en racimos de uva de mesa del cv Superior…………………………………………………………………….41 Figura N° 9. Variación del porcentaje de desgrane, por tratamiento, en racimos de uva de mesa del cv. Red Globe…………………………………………………………………..41 Figura N°10 Efecto del AG3 en el diámetro de las bayas del cv. Superior………………44 Figura N°11 Efecto del AG3 en el diámetro de las bayas del cv. Red Globe………….…44 Figura N°12. Efecto de la aplicación de AG3 en la longitud del raquis de los racimos del cv Superior……………………………..…………………………………………………..….47 Figura N°13 Efecto de la aplicación de AG3 en la longitud del raquis de los racimos del cv Red Globe. ………………………………………………………………………………....47 Figura N°14. Efecto de la aplicación de AG3 en la Firmeza de las bayas de los racimos en el cv. Superior.………….……………………………………………………………….…52 Figura N°15. Efecto de la aplicación de AG3 en la Firmeza de las bayas de los racimos en el cv. Red Globe. …………………………………………………………………………..52 10 Figura N°16. Variación de la firmeza por tratamientos durante las semanas de evaluación, cv Superior. ……………………………………………………………………………..…53 Figura N°17. Variación de la firmeza por tratamientos durante las semanas de evaluación, cv. Red Globe. ………………………………………………………………………..……53 Figura N° 18 Efecto de la aplicación de AG3 en los sólidos solubles de los racimos en el cv. Superior. ………………………………………………………………………….……56 Figura N° 19. Efecto de la aplicación de AG3 en los sólidos solubles de los racimos en el cv. Red Globe. ………………………………………………………………………..……56 Figura N° 20. Variación del porcentaje de sólidos solubles por tratamientos durante las semanas de evaluación del cv. Superior. ………………………………………..…………57 Figura N° 21. Variación del porcentaje de sólidos solubles por tratamientos durante las semanas de evaluación del cv. Red Globe. …………………………………………….….57 Figura N° 22. Efecto de la aplicación de AG3 en el porcentaje de acidez de los racimos del cv. Superior. ………………………………………………………………………….……60 Figura N° 23. Efecto de la aplicación de AG3 en el porcentaje de acidez de los racimos del cv. Red Globe. ………………………………………………………………………..……60 Figura N° 24. Tendencia del % de acidez por tratamientos durante las semanas de evaluación, cv. Superior. …………………………………………………………………..61 Figura N° 25. Tendencia del % de acidez por tratamientos durante las semanas de evaluación, cv. Red Globe. …………………………………………………………..……61 Figura N° 26. Efecto de la aplicación de AG3 en la relación de SS/AC en racimos del cv. Superior. …………………………………………………………………………………...64 Figura N°27 Efecto de la aplicación de GA3 en la relación de SS/AC en racimos del cv Red Globe…………………………………..…………………………………………………..64 Figura N° 28. Variación relación de Sólidos solubles/acidez por tratamientos durante las semanas de evaluación, cv Superior. …………………………………………………..…..65 Figura N° 29. Variación relación de Sólidos solubles/acidez por tratamientos durante las semanas de evaluación en el cv. Red Globe….……………………………………………65 Figura N° 30. Efecto de la aplicación de AG3 en la Materia seca en los racimos del cv. Superior………………………………………………………………………………….…68 11 Figura N° 31. Efecto de la aplicación de AG3 en la Materia seca en los racimos del cv. Red Globe…….…………………………………………………………………………………68 Figura N° 32. Variación del color por tratamiento para todas las semanas de evaluación en racimos del cv. Superior. …………………………………………………………………..71 Figura N° 33. Variación del color por tratamiento para todas las semanas de evaluación en racimos del cv Red Globe. ………………………………………………………………...71 Figura N° 34 Instrumento de medición de firmeza………………………………………...99 ÍNDICE DE ANEXOS ANEXO N°1 Manejo Agronómico del cultivar Superior……..………..…………………81 ANEXO N°2 Manejo Agronómico del cultivar Red Globe…………………….…………83 ANEXO N°3 Análisis Fisicoquímico del agua de riego- cv. Superior……………….……85 ANEXO N°4 Análisis Fisicoquímico del agua de riego- cv. Red Globe…………...……..86 ANEXO N°5 Análisis Fisicoquímico de suelo a 30 cm – cv. Superior………..………….87 ANEXO N°6 Análisis Fisicoquímico de suelo a 30 cm – cv. Red Globe………….……..89 ANEXO N°7 Análisis Foliar en Floración – cv. Superior…………………………..…….91 ANEXO N°8 Análisis Foliar en Pinta – cv. Superior…………………………………..…92 ANEXO N°9 Análisis Foliar en Floración – cv. Red Globe……………...……………….93 ANEXO N°10 Análisis Foliar en Pinta – cv. Red Globe…………………….……………94 ANEXO N°11 Consideraciones durante la aplicación de los tratamientos……………….95 ANEXO N°12 Cálculos realizados para las dosis de los tratamientos……………...…….96 ANEXO N°13 Cartilla de evaluación………………………………………………..……97 ANEXO N°14 Cartilla de color de ORIGIN FRUIT DIRECT………………………...….98 ANEXO N°15 Instrumento utilizado para determinar la firmeza…………………………99 12 ANEXO N° 16 Análisis de variancia al 0.05 de probabilidad de firmeza (g/mm) de bayas de los racimos de cada tratamiento evaluado del cv. Superior……………..…...………..100 ANEXO N° 17 Análisis de variancia al 0.05 de probabilidad, de la materia seca de los racimos de cada tratamiento evaluado del cv. Superior. Los porcentajes obtenidos fueron transformados por arcsen (√x/100)………………………………………………….……102 ANEXO N°18 Análisis de variancia al 0.05 de probabilidad de longitud de racimo (cm) de racimos decada tratamiento evaluados del cv. Superior. ……………………………….104 ANEXO N°19 Análisis de variancia al 0.05 de probabilidad de calibre (mm) de las bayas de los racimos de cada tratamiento evaluado del cv. Superior………………………………106 ANEXO N°20 Análisis de variancia al 0.05 de probabilidad, del grado de BRIX del jugo de uva de cada tratamiento evaluado del cv. Superior. Los porcentajes obtenidos fueron transformados por arcsen(√x/100)…………………………………………………..……108 ANEXO N°21 Análisis de variancia al 0.05 de probabilidad, del grado de acidez del jugo de uva de cada tratamiento evaluado del cv. Superior. Los porcentajes obtenidos fueron transformados por arcsen(√x/100)…………………………………………………..……110 ANEXO N°22 Análisis de variancia al 0.05 de probabilidad de la relación sólidos solubles / acidez del jugo de las bayas de los racimos de cada tratamiento evaluado del cv. Superior…………………………………………………………………………...………112 ANEXO N°23 Análisis de variancia al 0.05 de probabilidad, del grado de acidez del jugo de uva de cada tratamiento evaluados del cv. Red Globe. Los porcentajes obtenidos fueron transformados por arcsen(√x/100)…………………………………………………..……114 ANEXO N°24 Análisis de variancia al 0.05 de probabilidad de firmeza (g/mm) de las bayas de los racimos de cada tratamiento evaluado del cv. Red Globe…………….……..……116 ANEXO N°25 Análisis de variancia al 0.05 de probabilidad, de la materia seca de los racimos de cada tratamiento evaluado del cv. Red Globe. Los porcentajes obtenidos fueron transformados por arcsen (√x/100)…………………………………………………...…. 118 ANEXO N°26 Análisis de variancia al 0.05 de probabilidad, del desgrane de los racimos de cada tratamiento evaluado del cv. Red Globe. Los porcentajes obtenidos fueron transformados por arcsen(√x/100)…………………………………………………..……120 13 ANEXO N°27 Análisis de variancia al 0.05 de probabilidad de longitud de racimo (cm) de racimos de cada tratamiento evaluado del cv. Red Globe……………………...…………121 ANEXO N°28 Análisis de variancia al 0.05 de probabilidad del calibre (mm) de las bayas de los racimos de cada tratamiento, evaluadas el día de cosecha del cv. Red Globe……..123 ANEXO N°29 Análisis de variancia al 0.05 de probabilidad, del grado de BRIX del jugo de uva de cada tratamiento evaluados del cv. Red Globe. Los porcentajes obtenidos fueron transformados por arcsen (√x/100)……………………………………….………………125 ANEXO N°30 Análisis de variancia al 0.05 de probabilidad de la relación sólidos solubles / acidez del jugo de las bayas de los racimos de cada tratamiento evaluado del cv. Red Globe…………………………………………………………………...…………………127 14 RESUMEN En el valle de Ica se realizaron dos ensayos paralelos en dos cultivares de uva de mesa, cv. Superior y cv. Red Globe para evaluar si una aplicación adicional de ácido giberélico (AG3) podría mejorar la firmeza de las bayas sin alterar negativamente otros parámetros de calidad, que también contribuyen a una buena comercialización. Se aplicaron tres dosis de AG3: 3ppm, 5ppm, 6ppm y ,0pmm como testigo, todas las aplicaciones se realización en la etapa de envero o pinta. A la cosecha se evaluaron los parámetros de calidad: firmeza, diámetro de bayas, longitud de raquis, color, sólidos solubles, acidez titulable y porcentaje de materia seca. Dichas evaluaciones se realizaron el día de cosecha y durante cuatro semanas posteriores. Los datos obtenidos se sometieron a un análisis de varianza y a la prueba de comparación de medias de Duncan con un nivel de significancia del 5%. En ninguno de los ensayos se encontró evidencias estadísticas suficientes para afirmar efecto alguno de la aplicación de ácido giberélico en envero para aumentar la firmeza de las bayas de uva o alterar otros parámetros de calidad. No se justifica la aplicación de ácido giberélico adicional en la etapa mencionada. Palabras clave: Ácido giberélico, firmeza, desgrane, color, uva de mesa. 15 INTRODUCCIÓN La uva de mesa es uno de los productos con mayor crecimiento en la agroexportación peruana. Bardales (2015) menciona que el Perú tuvo un crecimiento de 3909 ha/ año entre los años 2012 y 2014 posicionando a la vid como el segundo cultivo de mayor crecimiento. El Perú exporta a cerca de 55 países, teniendo como principales mercados a EE.UU., y China, además del Reino Unido, Canada, Thailandia, Korea, entre otros. (PROVID, 2015). Se exporta los meses de Agosto a Abril y los picos de exportación son en los meses de Diciembre y Enero. Se ha llegado a exportar más de 269 935 808 Kg netos, el equivalente a 645US$ FOB MILLONES en el año 2015. Entre los principales cultivares exportados de uva de mesa se encuentran: Red Globe, Superior, Flame, Crimson, Thompson, Magenta, Sweet Celebration, etc., (PROVID, 2015). La mayoría es exportación vía marítima, con tiempos de viaje y de comercialización, que, en muchos casos, superan los 30 días, lo que constituye un desafío para disponer de un producto de calidad que satisfaga las exigencias de los consumidores de los mercados desarrollados a los que se exporta. La firmeza es una condición de la fruta que no es considerada como un índice de cosecha para la uva, probablemente, se debe a que existen características más representativas de la madurez (Brayovic, 2010). Sin embargo, es un indicador de frescura importante en la aceptación del consumidor (Pérez et al., 1998). Actualmente, un racimo que no presenta bayas firmes o crocantes, pierde valor en los mercados de destino (Zoffoli y Rodríguez, 2000). 16 A pesar de que existen antecedentes acerca de la firmeza de bayas, es, en general, un aspecto poco estudiado, subjetivo, y que no cuenta con escalas comparativas objetivas Brayovic (2010). Se hace necesaria la búsqueda de herramientas que favorezcan esta condición de la baya. En los frutos de vid se han encontrado pocas investigaciones que relacionan la firmeza de la fruta y el ácido giberélico (GA3). Posiblemente se deba a que, a diferencia de otros frutales, en la vid se realizan aplicaciones comerciales ya estipuladas, para el raleo, crecimiento de bayas y elongación del raquis en diferentes etapas fenológicas. Aun así diversos autores continúan enfatizando el problema de la firmeza de las bayas de los racimos de vid (Pérez et al., 1998; Zoffoli y Rodríguez, 2000; Retamales y Defilippi, 2000 Brayovic, 2010). Existen investigaciones que apoyan el uso de las aplicaciones de GA3 para la firmeza de los frutos (Campos 2014; Amezquita, 2008; Aburto, 2012; Podestá et al., 2001). Aburto et al., (2012) mencionan que diversos autores confirman que las aplicaciones de ácido giberélico aumentan la firmeza de los frutos de cerezo (Horvitz et al., 2003; Choi et al., 2002; Cline y Trought, 2007; Kappel y MacDonald, 2007; Unesik et al., 2005; Özkaya et al., 2006). Para Andrews y Shulin (1995), el aumento de la firmeza por aplicaciones de giberelinas podría deberse a algún efecto del regulador de crecimiento sobre la estructura de la pared celular. Pero, como es una hormona influye en otras modificaciones (Campos, 2014* Basado en investigaciones de cerezo y uchuva, donde las aplicaciones de AG3 cercanas a la cosecha tuvo buenos resultados en la firmeza (Podesta et al, 2001; Amezquita et al., 2008) y en un reciente trabajo en el cultivo de vid, de Reinaldo Campos (2014) que realizó aplicaciones, en el cv. Thomson, en etapas habituales en vid, la presente investigación evalúa aplicaciones tardías pre cosecha de ácido giberélico y determina si tienen efecto en la calidad de las bayas de uva. Se tiene como objetivo principal evaluar el efecto de la aplicación de ácido giberélico en la calidad de los racimos de dos cultivares de uva de mesa para exportación. * Comunicación personal 17REVISIÓN LITERARIA 2.1 Generalidades de la Vid La vid, Vitis vinífera L., perteneciente a la familia Vitaceae, tiene su origen como uva cultivada en Europa, en la región asiática del Mar Caspio, desde donde las semillas se dispersaron hacia el oeste por toda la cuenca mediterránea (Escobedo, 2013*). 2.2 Proceso de Maduración de la Vid Las bayas de vid exhiben una curva de crecimiento doble sigmoidea (Coombe, 1976). Primero, en la fase I ocurre la división celular y posteriormente la elongación celular, luego, durante la fase II las bayas pasan por poco o ningún crecimiento; finalmente en la tercera fase vienen la expansión celular y el aumento del volumen; la baya de la uva es algo inusual, porque, se ablanda al mismo tiempo en que se expande (Nunan et al., 1998). La tercera fase o fase de segundo crecimiento se conoce como pinta o envero e indica cambios durante el desarrollo de la baya como la acumulación de azucares, disminución de ácidos orgánicos, desarrollo de color, expansión, ablandamiento y deformidad de la baya (Combe, 1973). El contenido final de ácidos orgánicos dependen de la cantidad de ácido sintetizado y almacenado en la vacuola¸ el ácido málico se acumula rápidamente en las primeras etapas y disminuye al inicio de la maduración, por otra parte el ácido tartárico mantiene constante su concentración y disminuye debido al aumento del volumen de la baya (Fontes, 2011). Las bayas de uva corresponden a frutos del tipo no climatérico, por lo que sus parámetros de madurez no varían una vez cosechado el racimo (Zoffoli y Rodríguez 2000). Además, su * Comunicación personal 18 tasa respiratoria es baja en comparación a otros frutos, lo que le permite conservarse por períodos prolongados (Retamales y Defilippi, 2000). La condición o resultado final del estado de la uva de mesa en los mercados de destino es una consecuencia de la calidad de la fruta obtenida al momento de la cosecha, aunque también dependerá de las tecnologías de post-cosecha utilizadas para mantener su potencial (Zoffoli y Rodríguez, 2000). 2.3 Cultivares de uva de mesa. 2.3.1 Cultivar Superior Cultivar originado en los EE.UU., proveniente del cruce Cardinal x brote desconocido (sin semilla). Es un cultivar con alto vigor, pero, baja fertilidad, brotación temprana, en condiciones templadas y rendimiento medio; tiene gran sensibilidad al oidio y a las deficiencias de Zn y Fe. El racimo es cónico, medio compacto y grande (RICHTER COMPANY, 2015). Sus bayas son grandes (17.5-24 mm) sin semillas, de color verde- amarillo (blancas), de forma oval, piel gruesa, pulpa turgente y con un ligero sabor a moscatel al alcanzar la completa madurez. (UC, 2015; NOR FRUT, 2015). Según PROVID (2015) el Perú exporta en promedio 25703459 Kilogramos de este cultivar, ocupando el segundo lugar entre los cultivares más exportados con un 10% de participación en el 2015; los principales destinos de exportación son EE.UU., Holanda, Canadá, Inglaterra y Corea del Sur. Presenta buena aptitud para el almacenaje y transporte en barcos (RICHTER COMPANY, 2015). 2.3.2 Cultivar Red Globe Es un cultivar de brotación media, alta fertilidad y altos rendimientos, en zonas templadas se comporta como un cultivar tardío. Sus racimos son muy grandes con la forma de un cono extendido, además de tener buena aptitud de almacenaje y transporte. Las bayas son 19 rojas, muy grandes (25-30mm), esféricas, de piel gruesa y sabor neutro (RICHTER COMPANY, 2015). El Perú exporta 194954551 Kilogramos del cv. Red Globe y ocupa el primer lugar en la exportación de uva de mesa peruana con el 72.22% de todos los cultivares exportados (PROVID, 2015); los principales países a los que se exporta se encuentran China, Corea del Sur, EE.UU. y Holanda. 2.4 La Firmeza de la Uva Nunan, et al., (1998), encontró cambios importantes en los polisacáridos de la pared celular durante el proceso de maduración de la uva. Dichos cambios, en pectinas y hemicelulosas, de la pared primaria se han propuesto como las principales causas en la disminución de la firmeza durante la maduración de fruta (Balic et al.; 2014). La formación de bayas blandas puede deberse a problemas fisiológicos complejos y aparentemente aleatorios que ocurren durante su crecimiento, vinculados principalmente a desórdenes del metabolismo nitrogenado, insuficiencia de calcio en los tejidos estratégicos, competencia por nutrientes y asimilados y situaciones de estrés a nivel radical (Redgwell et al., 1997). Los índices de cosecha considerados para uva de mesa son: la concentración de sólidos solubles (SS), la acidez titulable (AT) y el color, (Brayovic, 2010). No se considera la firmeza, probablemente, porque existen características más representativas de la madurez (Brayovic, 2010). Para Pérez et al. (1998) y Campos (2014) la firmeza de bayas es un atributo fundamental para una buena comercialización, ya que, al ser un indicador de frescura, es importante en la aceptación del consumidor. Al considerar la firmeza, se podría aprovechar mejor el potencial de una variedad y llegar al mercado con una fruta en óptimas condiciones (Larraín y Peppi, 1995). La característica de baya firme o crocante está relacionada con el cultivar, el manejo productivo, su manipuleo en la cosecha y su conservación en post-cosecha (Winkler et al., 20 1974). Por lo tanto, la condición de baya blanda es modificable cuando se aplican tecnologías agronómicas durante el desarrollo de la fruta en el campo, durante la cosecha, así como en los procesos de post-cosecha y transporte a los mercados de destino (Zoffoli y Rodríguez, 2000). En los frutos de vid, la firmeza es un aspecto poco estudiado, subjetivo, y que no cuenta con escalas comparativas objetivas (Brayovic, 2010). Pese a ello se ha hecho uso de diversos instrumentos de medición para cuantificar valores de firmeza. Aburto (2012) utilizó un penetrómetro digital PCE-PTR200, para medir la firmeza del fruto. Brayovic (2010) empleo el Firmtech 2, este medidor de firmeza automatizado está especialmente diseñado para realizar tal determinación en frutos pequeños (Mitcham et al., 1997). La unidad de medida es g mm-1 y corresponde a la fuerza necesaria para deformar la baya un milímetro, la prueba se realiza sobre una placa giratoria Brayovic (2010). Jowitt (1974) define la firmeza como la resistencia a la deformación mediante la aplicación de una fuerza. Para Mitcham et al., (1997) las mediciones de firmeza en bayas deben estar basadas en diversos principios, dentro de los cuales está la medida de la deformación que resulta de la aplicación de una fuerza constante. Con el equipo Firmtech 2®, Brayovic (2010) categorizo tres tipos de bayas en función a su firmeza, según los cultivares. 2.5 Ácido Giberélico y su uso comercial para mejorar la calidad de los frutos. Las giberelinas están asociadas, con la división y elongación celular (Taiz y Zeiger 2006); con la iniciación floral, desarrollo de los órganos florales, desarrollo de la fructificación e inducción de algunas enzimas hidrolíticas (Matsuoka, 2003). La forma de giberelinas que es producida comercialmente para la producción de uva es GA3, comúnmente llamado ácido giberélico. Los efectos del ácido giberélico, sobre la calidad de los frutos, han sido estudiados por diversos autores. Favorece la caída de frutos pequeños y el desarrollo de las bayas. Retraso de la maduración (Proebsting et al., 1973; Looney y Lidster, 1980; Facteau et al., 1985, 21 1992), aumento de firmeza de la pulpa (Proebsting et al., 1973; Looney y Lidster, 1980; Facteau et al., 1985; Looney y Mc Kellar, 1987; Facteau et al., 1992), y disminución o aumento del contenido de sólidos solubles(Proebsting et al., 1973; Facteau et al., 1985, 1992). Aumento del tamaño de los frutos (Proebsting et al., 1973; Facteau et al., 1992). Se ha relacionado que las aplicaciones de ácido giberélico determinan una pérdida de flexibilidad de los pedicelos y el consiguiente desprendimiento de las bayas, en función del manipuleo de ellas a partir de la cosecha (Retamales, et al. 1994). Ben-Airie et al. (1986), afirman que la aplicación de giberelinas reduce el metabolismo respiratorio y la producción de etileno, lo que disminuye la síntesis de enzimas hidrolíticas. Durante la respiración del fruto son utilizados los ácidos orgánicos y convertidos a azucares, y varios de estos ácidos son componentes esenciales en el ciclo respiratorio de los ácidos tricarboxílicos (Kays, 2004). Esto indica que un mayor contenido de ácidos en la cosecha garantizan una mayor vida útil de los frutos en anaquel, por tanto, la aplicación de calcio y giberelinas favorecerían la duración poscosecha (Amezquita et al., 2008). La pared celular está compuesta por microfibrillas de celulosa, las que están embebidas en una matriz de polisacáridos, como hemicelulosas y pectinas, Taiz y Zeiger (2006) mencionan que dicha hormona aumenta la entrada de agua a las células e incrementan la hidrólisis de almidón, fructosa y sacarosa, con lo que se originan moléculas de fructosa y glucosa, que contribuyen a la formación de la pared celular. Dichos procesos se traducen en aumento del tamaño final del fruto (Grange, 1996). Las pectinas también están presentes en la lámina media y tienen la función de regular la adhesión celular (Rose y Bennett, 1999) y rigidez de los tejidos (Cabanne y Doneche, 2001; Poovaiah, 1979). Según Facteau (1982) el ácido giberélico puede incrementar los niveles de pectina en la pared celular, mientras que para Campos (2014*) el ácido giberélico tiene un aparentemente efecto en la remodelación de las hemicelulosas que favorece la firmeza y el turgor de las células. Salisbury y Ross (1992) mencionan que la turgencia de los frutos depende de la entrada de agua por fenómenos osmóticos. Ésta, a su vez, depende de la presencia de solutos osmóticamente activos al interior de las bayas, dentro de los cuales se encuentran nutrientes * Comunicación personal 22 minerales y metabolitos orgánicos, como los azúcares, tales como glucosa y fructosa. Aquellas bayas con mayor contenido de azúcares tienen una mayor presión osmótica, por ende, una mayor capacidad de atracción por agua y una mayor firmeza. Amezquita et al. (2008) encontró que aplicaciones de ácido giberélico aumentaban el tamaño y disminuyen el rajado en los frutos de uchuva (Physalis peruviana L.) y Aburto (2012) obtuvo el mismo resultado en frutos de cerezo. Facteau (1982) y Andrews y Shulin (1995) señalan que una mayor firmeza producida por las aplicaciones de GA3 podría deberse, también, a un retraso en la maduración de los frutos, que permitiría mantener la integridad de las membranas y paredes celulares por más tiempo. Podestá et al. (2001) y Aburto (2012) confirmaron que una pulverización pre-cosecha de ácido giberélico aumenta la firmeza y resistencia al agrietado de los frutos de cerezo. Incluso Aburto (2012) obtuvo una mayor firmeza en frutos tratados con ácido giberélico luego de 30 días de almacenamiento refrigerado. Amezquita et al., (2008) encontraron que tratamientos con 10 y 15 ppm de ácido giberélico generan alta firmeza en los frutos de uchuva (Physalis peruviana L.). Campos (2014*) realizo ensayos en el cultivo de vid con aplicaciones de Ácido giberélico en tres momentos en el cultivar Thomson que hicieron un total de 200 ppm de GA3, una dosis alta, con efectos favorables para la firmeza de las bayas. Diversos autores reconocen el rol del calcio asociado con el ácido giberélico para favorecer la firmeza de los frutos (Podestá et al. 2001; Amezquita et al. 2008; Campos, 2014). Se ha propuesto que las giberelinas pueden por algún mecanismo bajar la concentración de calcio de la pared celular, posiblemente al estimular la entrada de calcio al interior de las células (Taiz y Zeiger, 1991). Por su parte; Facteau et al. (1987) y Brown et al. (1996) mencionan la capacidad del calcio de disminuir la permeabilidad hidraúlica de las membranas celulares, reducir la absorción de agua y aumentar la turgencia de la pulpa en algunas especies. De acuerdo con Marschner (2002), el calcio permitiría una menor disgregación de * Comunicación personal 23 los tejidos debido a que inhibe la síntesis de poligalacturonasa, responsable de la degradación de los pectatos de calcio. Andrews y Shulin (1995) sostienen que las giberelinas disminuyen la actividad de la poligalacturonasa y pectinmetilesterasa, enzimas hidrolíticas que se encuentran en la pared celular y que aumentan el rajado del fruto. No todos los cultivares de uva responden de igual manera al tratamiento con giberelinas, incluso algunos no lo toleran. Los efectos dependen del momento en que se aplican y las dosis suministradas En general, los cultivares sin semilla sufren en mayor medida del problema, como el cultivar Thompson siendo probablemente el más afectado (Hueso, 2012). Proebsting et al. (1973), ha estudiado las aplicaciones de GA3 en distintos cultivares de cerezo, viéndose reflejado en una menor coloración de los frutos al ser comparados con aquellos sin aplicación. Kondo y Danjo (2001) concluyen que los tratamientos con ácido giberélico retrasan la maduración de los frutos al bloquear el inicio de la actividad del ABA, fitohormona relacionada con la acumulación de antocianos en la epidermis de los frutos (Kondo y Danjo, 2001). Podestá et al. (2001), encuentra entre sus resultados un retraso en el desarrollo de color en la piel. Este retraso alcanzo hasta una semana en investigaciones realizadas por Aburto (2012). Según Facteau et al. (1985) existe un aumento en el contenido de SS en cerezas tratadas con giberelinas, este aumento es proporcional a la dosis aplicada. Podestá et al. (2001) encontraron que en cerezas hubo mayor contenido de SS con aplicaciones de giberelinas y en este caso se debió a que los frutos tratados estuvieron más tiempo en el árbol y además el regulador de crecimiento pudo aumentar la tasa de acumulación de azúcares hacia los frutos. En contraste, Amezquita et al. (2008) obtuvo valores más bajos de sólidos solubles totales y la relación de madurez en sus tratamientos con ácido giberélico y valores de acidez titulable superiores al testigo. 24 Con respecto al momento de aplicación, Facteau et al. (1992) señala que la respuesta al ácido giberélico disminuye en la medida que las aplicaciones son próximas al momento de cosecha y que pulverizaciones 12 días antes de la recolección ya no son efectivas. Por otro lado Zoffoli (2015*) menciona que aplicaciones tardías de AG3 en bayas de vid no generan efecto alguno. En contraste Podestá et al. (2001) logro retrasar el desarrollo de color y la cosecha con aplicaciones de ácido giberélico 12 días antes de la cosecha. * Comunicación personal 25 MATERIALES Y MÉTODOS 3.1 Ubicación del experimento La parte experimental de campo se realizó en una plantación comercial de vid en los fundos El Alto y Don Carlos, ambos pertenecientes a la Agroexportadora Agrícola Don Ricardo. Los mismos se encuentran ubicados en el Anexo Cordero Bajo, distrito de La Tinguiña, - ciudad de Ica. La ubicación geográfica referencial es Latitud: 12º05’7.66”; Longitud: 76º56’42.33”W, Altitud: 238 msnm. Todas las evaluaciones poscosecha se llevaron acabo en el laboratorio de la Planta de procesamiento de la Agroexportadora Agrícola Don Ricardo S.A.C. (ubicada en el Fundo Don Carlos). Con excepción de la materia seca, la cual se realizó en el laboratorio poscosecha de la Universidad Nacional Agraria la Molina. 3.2 Materiales 3.2.1 Material Vegetal Los tratamientos evaluados fueron aplicados en racimos de dos plantas comerciales de uva de mesa para exportación una de ellas de cinco y la otra de seis años de edad, ambo conducidos bajo el sistema de parrón español. La Tabla N° 1 resume las características de las plantaciones donde se llevó acabo el estudio. Los ANEXOS del 1 al 10 muestran el manejo agronómico, los análisis fisicoquímicos de las fuentes de agua utilizada para el riego de los parrones los análisis fisicoquímicos de los suelos (a 30 cm) y análisis foliares (en flor y en envero o pinta) para ambos cultivares. 26 Tabla N° 1 Características de las plantaciones de uva de mesa donde se realizó el estudio. Condiciones 1er ensayo 2do ensayo Ubicación de la parcela EL ALTO - LOTE AU3 DON CARLOS - LOTE CU9 C ul ti va r Cultivar Superior Red Globe Hábito precoz tardía Color de Baya blanca roja Patrón MGT 101-14 Harmony Sistema de conducción parrón español parrón español D is ta nc ia m ie nt o Entre líneas (m) 3 3.5 Entre plantas (m) 1.5 1.75 Plantas/Hectárea 2222 1633 Edad de la plantación 6 5 Sistema de riego goteo goteo Agua de riego Pozo- pH 7.8 Pozo-pH 8.2 Tipo de suelo Arenoso Arenoso Aplicación de cianamida 2014 15-jul 22-jun Fecha de Cosecha 13-dic 04-ene 27 3.2.2 Material de trabajo En las Tablas N° 2 y 3 se mencionan los materiales utilizados en las aplicaciones en campo y evaluaciones en laboratorio. Tablas N° 2 Materiales empleados en la fase de campo Tablas N° 3 Materiales empleados en la fase de laboratorio. FASE DE LABORATORIO CANTIDAD UNIDADES Hidróxido de Sodio 1 l Fenolftaleína 180 ml Vasos de ensayo 4 und. Pipetas 1 und. Soporte universal 1 und. Probetas 2 und. Refractómetro 1 und. Exprimidor de jugo 1 und. Colador 1 und. Papel toalla 3 paquetes UTILES DE MESA Cinta maskin tape 1 und. Cinta de agua 1 rollo Tiras de plástico 0.5 m Plumón indeleble 1 und. Fichas de evaluación 12 hojas FASE DE CAMPO CANTIDAD UNIDADES Ácido giberélico 2312.51 cm3 Acidificante Liqfol 1332.8 cm3 Máquina electrostática pulverizadora 1 und. Jabas cosecheras 24 und. Esponjas 24 und Tijeras de raleo 10 und. Cloro al 10 % 200 ml Elementos de empaque 24 und. Bolsas para los racimo 120 und. Pallet 1 und. 28 3.3 Procedimiento Experimental 3.3.1 Tratamientos a evaluarse Factores en estudio: 3 ppm, 5ppm y 6 ppm. Momento de aplicación: Etapa de envero o pinta. N° de bloques: tres bloques o repeticiones. N° de tratamientos: cuatro. Testigo: Racimos sin aplicación de ácido giberélico. Tratamientos: Se realizaron dos ensayos paralelos. Un ensayo se realizó en plantas del cv. Superior y el otro en plantas del cv. Red Globe. Los tratamientos de ácido giberélico (ppm) aplicados en envero a los racimos de los cultivares de uva de mesa fueron: 0 ppm, 3 ppm, 5 ppm y 6 ppm; dosis correspondientes a los tratamiento testigo, tratamiento 1, tratamiento 2 y tratamiento 3 respectivamente. 3.3.2 Unidad experimental: Las unidades experimentales fueron racimos con similar tamaño de bayas y longitud de racimo. Cada unidad experimental consistió de sesenta racimos, los cuales fueron marcados en campo. Dichas unidades experimentales fueron distribuidas en parcelas dentro de cada campo comercial, las cuales se muestran en la Figura N°1. Cada parcela del cv. Superior tuvo 0.1 Ha, mientras que las parcelas del cv. Red Globe abarcaban un área de 0.15 Ha. 29 . Figura N° 1. Croquis de las parcelas experimentales en ambos cultivares de uva. 3.3.3 Diseño experimental El diseño estadístico fue de bloques completo al azar (DBCA), con 4 tratamientos y 3 repeticiones en cada uno de los cultivares (un ensayo por cultivar). El diseño se ajusta al ensayo, debido a que se inició en campo, donde los factores como el suelo, luminosidad y pendiente son fuentes de variación que no constituyen objetivos de la investigación. Dichas fuentes de variabilidad fueron controladas mediante la formación de bloques. El diseño de bloques fue completo y balanceado. Los tratamientos fueron distribuidos aleatoriamente dentro cada unidad experimental. El modelo aditivo lineal fue: τ i = número de tratamiento j = número de bloques Dónde: Yij = Es el valor del parámetro de calidad del i-ésimo tratamiento, j-ésimo bloque. μ = es el efecto de la media general τ i = es el efecto del i-ésimo tratamiento εij = es el efecto del error experimental de la j-ésimo bloque con el i-ésimo tratamiento. 30 3.3.4 Análisis de variancia Para realizar el análisis estadístico y la significación de los tratamientos, mediante la prueba de análisis de medias de Duncan, se hizo uso de la versión 8 del paquete estadístico S.A.S. para los resultados de porcentaje se hizo uso de la transformación arcsen (√(x/100)), siendo x el promedio de los datos con porcentaje. 3.4 Metodología 3.4.1 Instalación del experimento Luego de randomizar los tratamientos, los racimos se marcaron con cinta de agua. Para marcar los racimos a evaluar en laboratorio se usó cinta masking tape. Se eligieron racimos similares en tamaño, color y diámetro de bayas; así como posición en la planta. La Tabla N°4 muestra las características de las unidades experimentales al momento de la aplicación y las Figuras N° 2 y 3 muestran el estado de los racimos al momento de la aplicación. Tabla N°4. Características del racimo al momento de la aplicación. Características de los racimos 1er ensayo 2do ensayo Cultivar Superior Red Globe Ablandamiento de las bayas SI SI Color Verde traslucido Inicio de cambio color al rojo característico en las bayas Tamaño aproximado 20 cm 20 cm 3.4.2 Fuente de ácido giberélico En la aplicación se utilizó el producto comercial “Ryz UP” con 4% de AG3, el cual fue pulverizado de acuerdo a cada dosis empleando una maquina pulverizadora electrostática 31 marca VMA 1201 modelo ‹‹Tendone›› representada por la firma FULLTEC con un volumen de agua de 150 l /ha y un producto acidificante, Liqfol, con una dosis de 150 ml/Ha. La aplicación de AG3 en el cv. Superior se realizó el 19 de noviembre del 2014, mientras que para el cv. Red Globe el 26 de noviembre del mismo año. Las consideraciones para la aplicación de tratamientos y dosis calculadas se aprecian en los ANEXOS N° 11 y 12. 3.4.3 Cosecha de racimos La cosecha coincidió con la fecha determinada para la cosecha general del lote. Los racimos a evaluar se cosecharon: el 13 de diciembre del 2014 en el cv. Superior y el 04 de febrero del 2016 para el cv. Red Globe. Los parámetros usados para el inicio de cosecha fueron el porcentaje de sólidos solubles y el calibre de las bayas. Las Figuras 4 y 5 muestran el estado de los racimos al momento de la cosecha. Se cosecharon cinco racimos por tratamiento y repetición debidamente identificados. Se usaron tijeras de poda debidamente desinfectadas durante 3 minutos con cloro al 10%. Las cosechas de ambos ensayos se realizaron con una temperatura promedio de 18°C y una humedad relativa de 80%. Los racimos fueron limpiados retirándoles las bayas muy pequeñas (uvillas), bayas descompuestas, dañadas y con presencia o daño por oídium. Cada racimo debidamente marcado fue colocado en cajas cosecheras y transportado a planta de procesamiento. Primero recibió un tratamiento de SO2 por 20 minutos para la desinfección de cualquier patógeno presente y luego ingresarona proceso de limpieza, empaque y almacenamiento. Todos los racimos fueron tratados como racimos comerciales. A excepción de 12 racimos, los cuales constituyeron la primera evaluación de calidad en laboratorio. Dichos racimos fueron llevados al laboratorio de Planta de procesamiento donde se realizaron todas las mediciones de calidad. 32 Figura N°2. cv. Superior al momento de la aplicación 33 Figura N°3. cv. Red Globe al momento de la aplicación Figura N°4. cv. Superior al momento de cosecha 34 Figura N°5. cv. Red Globe al momento de cosecha 3.4.4 Almacenamiento en cámara de producción Los 48 racimos restantes fueron limpiados, embolsados, empacados y colocados en un pallet, como cualquier racimo comercial. Para entrar a cámara de producción los racimos ingresan a un túnel de frio, en el cual se usa como refrigerante el amoniaco. El enfriamiento fue gradual hasta -1.5°C, se colocaron unos sensores en la pulpa de la fruta, de modo que cuando esta se encontró entre 0.3-0.5°C los pallets fueron retirados del túnel. El tiempo de enfriado fue de 8 horas. El refrigerante de la cámara producción es el glicol y las condiciones de enfriamiento fueron de -0.7°C, que permitió mantener la pulpa de la fruta en -0.5°C, según los parámetros establecidos y manejados por la empresa Agrícola Don Ricardo S.A.C. La humedad relativa estuvo entre 90-95%, para ello se mantenía el piso húmedo mojándolo constantemente. Para verificar la temperatura adecuada de la pulpa de las bayas se colocaron 6 sensores de pulpa en diferentes pallets. Las puertas permanecían cerradas el mayor tiempo posible para mantener la circulación del aire frio y evitar la fluctuación de la temperatura dentro de la cámara. 3.4.5 Evaluaciones Se realizaron cinco evaluaciones, una cada semana para cada cultivar. La primera evaluación se realizó el mismo día de cosecha y, los siguientes cada siete días. Los parámetros de calidad fueron evaluados bajo el protocolo de la norma técnica peruana para uva de mesa (2005) y el empleado por la empresa Agrícola Don Ricardo S.A.C. El ANEXO N° 13 muestra la cartilla de registro usada en cada evaluación. a. Desgrane 35 Para determinar el desgrane se cogió firmemente el racimo del pedúnculo y se movió en forma pendular tres veces. Las bayas caídas durante este procedimiento fueron expresadas en % respecto al peso fresco total. b. Color Se utilizó una cartilla de color para uva de mesa rojas y verdes distribuida por Origin fruit direct B.V. Adicionalmente se registró el código de la catilla de color y el código utilizado en la planta de procesamiento. Durante la evaluación de color fueron usados los racimos de todas las evaluaciones, ya que, al ser un fruto no climatérico no cambia este parámetro una vez cosechado. Se analizó la predominancia de cada color en los racimos evaluados. Los patrones de color registrados se muestran en la cartilla de ORIGIN FRUIT DIRECT ubicada en el ANEXO N° 14. c. Diámetro de bayas La medición se realizó con un calibrador de bayas (un conjunto de aros estandarizados con medidas de 5 mm a 32 mm). El racimo era suspendido en el aire para colocar el calibrador en las bayas de la parte superior, media e inferior. Se rotó el racimo en su eje principal para el procedimiento descrito. La argolla debía ingresar al diámetro ecuatorial de la baya para definir el diámetro. Se midieron 30 bayas para definir el diámetro de cada racimo. d. Longitud de raquis La medición consistió en la previa separación de veinte bayas necesarias para posteriores evaluaciones. Una vez extraídas las bayas, se calculó la longitud del racimo. Se acomodó el racimo en la mesa de evaluación de tal forma de dejar al descubierto el tronco principal del raquis. Se estiro el raquis y con ayuda de una regla milimetrada se calculó la longitud 36 del mismo; desde el extremo final del tronco del raquis hasta su extremo superior donde se ubica el punto de origen de la primera ramificación. e. Firmeza En esta evaluación se usaron 20 bayas de los racimos, con pedicelo, cortadas del racimo. Se evaluó la firmeza de las bayas de manera no destructiva mediante la resistencia a la deformación medida como gramos por milímetro (g.mm-1). Para determinar la firmeza se hizo una modificación al uso del penetrómetro analógico. Dicha modificación surge al tratar de imitar los equipos más sofisticados en cuantificar la firmeza de las bayas, equipos como Firmtech 2 y xt-lge. Para más detalles acerca del instrumento utilizado en las mediciones de firmeza revisar el ANEXO N°15. Terminada la medición de la firmeza las bayas eran devueltas cuidadosamente a la caja para racimo para la medición de los parámetros restantes, sólidos solubles acidez titulable y % de materia seca. f. Sólidos solubles (%) y Acidez Titulable (%) El contenido de sólidos solubles (SS) y la acidez titulable (AT) se determinaron con el jugo homogenizado de una muestra de 20 bayas por unidad experimental. Para ello se desprendió el pedicelo de las bayas, con ayuda de un exprimidor se extrajo el jugo, se presionó muy suavemente. Para el caso de la Red Globe se separaron las semillas antes de exprimir el jugo. El jugo fue depositado en un vaso de ensayo de 250 ml previo filtración con un colador. El porcentaje de sólidos solubles se midió con un refractómetro termocompensado ATAGO ATC1. La Acidez Titulable se calculó en forma volumétrica por titulación con NaOH 0,1 N y viraje de color con fenolftaleína. Con una probeta milimetrada se separó 10 ml de jugo homogenizado de 20 bayas y se colocaron en un vaso precipitado de 50 ml, se adicionaron 37 3 gotas de fenolftaleína y se procedió a titular con hidróxido de sodio 0.1 N hasta neutralizar los ácidos orgánicos reflejados con un cambio de pH a 8.3, el cual coincide con un viraje de color de la solución a un rosado grosella persistente, se registró el consumo de NaOH gastado. En gabinete se calculó la AT y la relación SS/AT. El porcentaje de acidez se calcula mediante la fórmula: % Acidez . , donde 0.075 es el peso en gramos de un miliequivalente de ácido tartárico. La relación sólidos solubles/acidez se determinara como: SS/AT % sólidos solubles % Acidez g. Materia seca: El último procedimiento se realizó secando la muestra, de peso conocido, en una estufa por 72 horas a temperatura constante de 65°C. Este secado se realizó en el laboratorio de pos cosecha de la UNALM. 38 RESULTADOS Y DISCUSIÓN 4.1 Desgrane La Tabla 5 y las figuras 6 y 7, resumen los resultados obtenidos del grado de desgrane a lo largo del ensayo. Se aprecia que no hubo influencia de las dosis aplicadas de AG3 en dicha característica para ambos cultivares. Al momento de la cosecha no se observó desgrane para ninguno de los cultivares evaluados, sin embargo a los 7 días después de cosecha (DDC) los valores de desgrane, expresados en porcentaje, para el cultivar Superior fluctuaron entre 0 y 1.72%, mientras que para el cultivar Red Globe los valores oscilaron de 0 a 1.07%. A los 14 días DDC el valor más bajo de desgrane para el cultivar superior fue 0% y el más alto 0.58%, de forma similar el cultivar Red Globe presento valores entre 0% y 0.51% de desgrane. A los 21 DDC los valores de desgrane del cultivar Superior se encontraban entre 0 y 0.72%, en contraste, el cultivar Red Globe no mostro desgrane alguno en esta evaluación. En la última evaluación los valores en el cultivar Superior variarón entre 0 y 1.66% y para el cultivar Red Globe los valores fluctuaron entre 0 y 1.77%. Como puedeapreciarse en todas las evaluaciones hasta los 28 DDC, el grado de desgrane fue bajo sin mayores diferencias estadísticas según la prueba de Duncan al 5%. Solo se observa que a los 7 DDC el tratamiento sin aplicación de GA3 en el cv. Superior mostro diferencias significativas en relacione a los tratamientos con GA3. Lo anterior puede 39 deberse al peso de los racimos del testigo, cuya media era menor al resto de los tratamientos, si bien puedo haber mayor porcentaje de desgrane, el peso del racimo exagero el valor obtenido. Los racimos del cultivar Superior tratados con 6 ppm de GA3 presentaron los menores valores en porcentaje de desgrane. El cultivar Red Globe muestra bajo porcentaje de desgrane en todas las evaluaciones y a pesar de la falta de significancia en la Figura 7 se aprecia al testigo como el mayor incidente en desgrane, más aun, La Figura 9 muestra que el tratamiento con 6 ppm de GA3 no muestra desgrane en ninguna de las evaluaciones. Uno de los efectos de la aplicación de GA3 en racimos de uva es el desgrane. Sin embargo, en el presente ensayo no se encontraron efectos de incremento en el desgrane. En general, los resultados obtenidos para ambos cultivares no coinciden con lo postulado por Retamales (2014), quien menciona que aplicaciones de ácido giberélico generan perdida de flexibilidad de los pedicelos y como consecuencia el desprendimiento de bayas. Hueso (2012) menciona que las dosis y el momento de aplicación influyen en el efecto de aplicación de AG3. Según los resultados expuestos la aplicación de GA3 no afecta significativamente el grado de desgrane en los cultivares Superior y Red Globe bajo las condiciones del presente ensayo. Tabla N°5 Efecto de la aplicación de AG3 en el grado de desgrane en racimos de dos cultivares de uva. Desgrane % 7DDC 14DDC 21DDC 28DDC Cultivar Superior Red Globe Superior Red Globe Superior Superior Red Globe T0 (0ppm) 1.72 b* 1.07 a 0.00 a 0.51 a 0.00 a 0.72 a 1.77 a T1 (3 ppm) 0.00 a 0.00 a 0.58 a 0.00 a 0.72 a 1.66 a 0.47 a T2 ( 5 ppm) 0.28 a 0.48 a 0.52 a 0.00 a 0.23 a 0.57 a 0.37 a T3 (6 ppm) 0.00 a 0.00 a 0.45 a 0.00 a 0.45 a 0.00 a 0.00 a Promedio 0.50 0.39 0.39 0.13 0.35 0.74 0.65 Coef. Var 2.35 4.34 2.35 2.30 3.11 4.65 5.03 * Medias seguidas con la misma letra no presentan diferencias significativas según la prueba de Duncan al 5%. 40 Figura N° 6. Efecto de la aplicación de AG3 en el grado de desgrane en racimos del cv. Superior 0 0,2 0,4 0,6 0,8 1 1,2 1,4 1,6 1,8 2 Cosecha 7DDC 14DDC 21DDC 28DDC PO R C E N T A JE DÍAS DESPUÉS DE COSECHA Grado de Desgrane- cv. Superior T1 (3ppm) T2 (5ppm) T3 (6ppm) T0 (0ppm) 0 0,2 0,4 0,6 0,8 1 1,2 1,4 1,6 1,8 2 Cosecha 7DDC 14DDC 21DDC 28DDC P O R C E N T A JE DÍAS DESPUÉS DE COSECHA Grado de Desgrane- cv. Red Globe T1 T2 T3 Testigo 41 Figura N° 7. Efecto de la aplicación de AG3 en el grado de desgrane en racimos del cv. Red Globe. Las figuras N° 8 y 9 que el desgrane de los racimos de ambos cultivares no muestran una variación definida, salvo el tratamiento con 3 ppm de GA3 del cv. Superior, cuyo valor asciende en cada semana de evaluación. Figura N° 8. Variación del porcentaje de desgrane, por tratamiento, en racimos de uva de mesa del cv Superior. 0 0,5 1 1,5 2 Cosecha 7DDC 14DDC 21DDC 28DDC P O R C EN TA JE DÍAS DESPUÉS DE COSECHA Grado de Desgrane‐ cv. Red Globe T1 T2 T3 Testigo 0 0,5 1 1,5 2 T1 (3ppm) T2 (5ppm) T3 (6ppm) T0 (0ppm) P O R C EN TA JE TRATAMIENTOS Grado de Desgrane‐ cv. Superior Cosecha 7 DDC 14 DDC 21 DDC 28 DDC 42 Figura N° 9. Variación del porcentaje de desgrane, por tratamiento, en racimos de uva de mesa del cv. Red Globe. 4.2 Calibre El resultado del calibre de las bayas de los racimos evaluados se muestran en la Tabla N°6 y en las Figuras 10 y 11. No se observa efecto del AG3, aplicado en envero, sobre diámetro de bayas en ambos cultivares. El diámetro de las bayas en el cultivar Superior estuvo entre 21.67 y 23.33 mm, mientras que el cultivar Red Globe mostro bayas entre 29.67 y 31.33mm. Solo en el cultivar Superior todos los tratamientos mostraron diferencias significativas a los 14 DDC de acuerdo a la prueba de análisis de medias de Duncan. 43 Tabla N° 6 Efecto del GA3 en el diámetro de las bayas de dos cultivares del uva. Calibre (mm) COSECHA 7DDC 14DDC 21DDC 28DDC Cultivar Superior Red Globe Superior Red Globe Superior Red Globe Superior Red Globe Superior Red Globe T0 (0ppm) 22.00 a* 30.67 a 22.00 a 31.33 a 23.33 a 29.33 a 21.67 a 30.67 a 21.67 a 30.00 a T1 (3 ppm) 22.67 a 31.00 a 22.33 a 29.67 a 22.00 c 30.00 a 22.33 a 30.67 a 22.33 a 29.67 a T2 ( 5 ppm) 23.00 a 30.33 a 22.67 a 31.33 a 22.33 bc 30.33 a 22.67 a 29.67 a 22.33 a 30.33 a T3 (6 ppm) 22.67 a 30.33 a 23.00 a 30.67 a 23.00 ba 31.33 a 23.00 a 28.67 a 22.33 a 29.67 a Promedio 22.58 30.58 22.50 30.75 22.67 30.25 22.42 29.92 22.17 29.92 Coef. Var 3.69 1.80 3.31 3.43 1.95 3.31 4.40 3.74 2.26 4.89 * Medias seguidas con la misma letra no presentan diferencias significativas según la prueba de Duncan al 5%. 44 Figura N°10 Efecto del AG3 en el diámetro de las bayas del cv. Superior. Figura N°11 Efecto del AG3 en el diámetro de las bayas del cv. Red Globe. 20,5 21 21,5 22 22,5 23 23,5 Cosecha 7DDC 14DDC 21DDC 28DDC m m DÍAS DESPUÉS DE COSECHA Calibre (mm)‐cv. Superior T1 (3ppm) T2 (5ppm) T3 (6ppm) T0 (0ppm) 27 27,5 28 28,5 29 29,5 30 30,5 31 31,5 32 Cosecha 7DDC 14DDC 21DDC 28DDC m m DÍAS DESPUÉS DE COSECHA Calibre (mm)‐ cv. Red Globe T1 T2 T3 Testigo 45 4.3 Longitud del raquis La Tabla 7 y las figuras N°12 y N°13 muestran la comparación de longitud del raquis entre tratamientos, durante las cinco semanas evaluadas para los cultivares Superior y Red Globe. Se refleja que no hubo efecto de la aplicación en la elongación del raquis de los racimos tratados con GA3. La longitud del raquis varió: para el cultivar Superior, entre 18.73 y 24.77 cm y, para el cultivar Red Globe, entre 17.13 y 23.95 cm. Solo en el cv. Red Globe se observó significancia en los racimos tratados con 5 ppm de GA3 a los 21 DDC. Es muy probable que durante el muestreo de las unidades experimentales los racimos elegidos presentaran raquis con mayor longitud. Los resultados encontrados en ambos cultivares coinciden con lo reportado por Facteau (1992) quien reitera que una aplicación tardía de AG3 va perdiendo el efecto esperado. 46 Tabla N°7 Efecto de la aplicación de AG3 en la longitud del raquis de los racimos de dos cultivares de uva. * Medias seguidas con la misma letra no presentan diferencias significativas según la prueba de Duncan al 5%. Longitud (cm) COSECHA 7DDC 14DDC 21DDC 28DDC Cultivar Superior Red Globe Superior Red Globe Superior Red Globe Superior Red Globe Superior Red Globe T0 (0ppm) 20.33 a* 23.17 a 22.37 a 19.80 a 23.00 a 19.67 a 21.85 a 21.40 b 19.73 a 17.70 a T1 (3 ppm) 20.67 a 22.30 a 23.03 a 18.57 a 22.07 a 19.40 a 21.63 a 23.73 a 18.73 a 19.07 a T2 ( 5 ppm) 21.73 a 24.02 a 24.77 a 19.17 a 21.75 a 18.17 a 22.17 a 20.67 b 19.43 a 20.77 a T3 (6 ppm) 21.37 a 23.97 a 22.50 a 20.63 a 22.77 a 17.13 a 20.53 a 20.77 b 20.58 a 18.77 a Promedio 21.03 23.36 23.17 19.54 22.40 18.59 21.55 21.64 19.62 19.08 Coef. Var 5.37 7.78 6.07 17.70 2.95 10.90 10.74 2.79 8.80 12.26 47 Figura N°12. Efecto de la aplicación de AG3 en la longitud del raquisde los racimos del cv Superior. Figura N°13 Efecto de la aplicación de AG3 en la longitud del raquis de los racimos del cv Red Globe. 0 5 10 15 20 25 30 Cosecha 7DDC 14DDC 21DDC 28DDC cm DÍAS DESPÚES DE COSECHA Longitud del raquis cv. Superior T1 (3ppm) T2 (5ppm) T3 (6ppm) T0 (0ppm) 0 5 10 15 20 25 30 Cosecha 7DDC 14DDC 21DDC 28DDC cm DÍAS DESPUÉS DE COSECHA Longitud del raquis ‐ cv. Red Globe T1 T2 T3 Testigo 48 4.4 Firmeza La firmeza de las bayas se evaluó desde el día de la cosecha hasta los 28 DDC, dichos resultados se resumen en la Tabla N°8 y en las Figuras N°14 y 15. Puede apreciarse una significativa diferencia en dos semanas de evaluación del cultivar Superior. No se observa influencia en la firmeza de las bayas de los racimos tratados del cultivar Red Globe. El día de la cosecha los valores de firmeza, vale decir, la resistencia que ofrece la baya a la deformación, fluctuaron entre 235.65 g/mm y 291.5 g/mm. A los 7 DDC los resultados oscilaron entre 264.18 a 324.19 g/mm. A los 14 DDC los resultados variaron entre 261.92 y 302.42 g/mm. A los 21 DDC los resultados variaron entre 286.83 y 297.67. 28 DDC la firmeza de los racimos estuvo entre 273.38 y 315.08 g/mm. Por otro lado, las bayas del cultivar Red Globe presentaron valores de firmeza entre 309.15 y 351.44 g/mm el día de la cosecha. 7 DDC los valores estuvieron entre 320.67 y 350.17. 14 DDC la firmeza de las bayas fluctuaron entre 324.91 y 342.54 g/mm. A los 21 DDC se calcularon valores entre 325.75 y 354.08. Y a los 28 DDC la firmeza de las bayas oscilo entre 335.33 y 362.67 g/mm. En el cv. Superior, según la prueba de análisis de medias de Duncan se observan diferencias significativas de firmeza en la primera evaluación: el testigo tiene estadísticamente menor firmeza que los racimos tratados con AG3. Dicha diferencia se vuelve a apreciar en la tercera evaluación. Está en la tercera y cuarta evaluación hay una relación inversa entre calibre y firmeza, a mayor calibre, menor fue firmeza. En la cuarta evaluación ocurre con el tratamiento de 6 ppm, el cual, presenta mayor calibre, pero, menor firmeza. Probablemente la aplicación rutinaria de AG3 del cultivar Superior, para división celular, haya sido inadecuada, por tanto, durante la elongación celular, la pared celular, de las pocas células divididas se debilito, explicando el bajo valor de firmeza obtenido. Amezquita et al. (2008) encontró que aplicaciones de ácido giberélico aumentaban el tamaño y disminuyen el rajado en los frutos de uchuva (Physalis peruviana L.) y Aburto (2012) obtuvo el mismo resultado en frutos de cerezo. Queda como cuestionamiento si una aplicación adecuada durante la división celular pueda generar bayas 49 más firmes y diámetros de baya más grandes a la vez. Por otro lado, la elección al azar de cada unidad experimental era diferente pese a que se procuró la uniformidad de las mismas. Pese a que el valor de la firmeza es menor en el testigo que para el resto de tratamientos, los valores no fueron estadísticamente significativos en el resto de las evaluaciones. Probablemente una dosis mayor tenga un impacto significativo en dicho parámetro. Por otro lado para del cultivar superior, el rango de valores de firmeza obtenidos coinciden con la evaluación de Brayovic (2010) realizada con el equipo Firmtech2 para el cultivar mencionado. Respecto a la clasificación realizada por Brayovic (2010), solo el testigo, en la primera semana de evaluación muestra bayas categorizadas como blandas (menos de 250 g/mm); el resto de resultados obtenidos fueron mayores a 250 g/mm, valor considerado como bayas firmes. Este resultado es producto de las aplicaciones rutinarias realizadas para el cultivar durante su desarrollo y coincide con lo mencionado por Campos (2014*) respecto al efecto del GA3 en la remodelación de las hemicelulosas que favorece la firmeza y el turgor de las células. Por su parte Facteau (1982) y Andrews y Shulin (1995) reportan una mayor firmeza con aplicaciones de GA3 al disminuir la actividad de la poligalacturonasa y pectinmetilesterasa. Así mismo aplicaciones foliares de calcio y al suelo pudieron generar bayas categorizadas como firmes. Diversos autores reconocen el rol del calcio asociado con el ácido giberélico para favorecer la firmeza de los frutos (Podestá et al. 2001; Amezquita et al. 2008; Campos, 2014). Para el caso del cv. Red Globe los tratamientos con AG3 no tuvieron efecto en ningún caso. El cv. Red Globe presenta semillas que liberan ácido giberélico interno por lo que las bayas fueron insensibles a las aplicaciones realizadas en pinta. A pesar que no hay evidencia estadística suficiente para afirmar el efecto del AG3 en pinta, el testigo tuvo los valores más bajos de firmeza durante todas las semanas evaluadas (ver figura 15). Respecto a la variación de la firmeza para cada tratamiento en ambos cultivares (ver figura 16 y 17), no se aprecia una tendencia en los mismos, porque, todos eran racimos diferentes y posiblemente por la diferencia de temperatura y humedad relativa durante las mediciones. * Comunicación personal 50 La primera evaluación se realizó inmediatamente después de cosecha, mientras que las siguientes con los racimos sacados de cámara con una temperatura y humedad diferentes. Brayovic (2010), encontró una relación entre la temperatura de la baya y la firmeza calculada. Fue imposible controlar estas condiciones en laboratorio por lo que la diferencia de temperatura y humedad pudo variar alterar el turgor de las bayas por aumento de la humedad relativa y la regulación osmótica en cámara de almacenamiento. Como mencionan Salisbury y Ross (1992) dicho efecto dependerá de la presencia de solutos osmóticamente activos al interior de las bayas, dentro de los cuales se los azúcares, tales como glucosa y fructosa. Aquellas bayas con mayor contenido de azúcares tienen una mayor presión osmótica, por ende, una mayor capacidad de atracción por agua y una mayor firmeza. 51 Tabla N°8. Efecto de la aplicación de AG3 en la Firmeza de las bayas de los racimos en dos cultivares de uva. Firmeza g/mm COSECHA 7DDC 14DDC 21DDC 28DDC Cultivar Superior Red Globe Superior Red Globe Superior Red Globe Superior Red Globe Superior Red Globe T0 (0ppm) 235.65 b* 309.15 a 264.18 a 320.67 a 261.92 b 324.91 a 286.83 a 325.75 a 273.38 a 335.33 a T1 (3 ppm) 291.50 a 316.58 a 309.83 a 333.42 a 302.42 a 338.42 a 291.75 a 354.08 a 279.47 a 343.30 a T2 ( 5 ppm) 283.66 a 328.06 a 309.92 a 350.17 a 301.42 a 342.54 a 297.67 a 349.24 a 315.08 a 339.90 a T3 (6 ppm) 270.98 a 351.44 a 324.19 a 333.67 a 291.33 ba 334.75 a 271.17 a 340.35 a 309.33 a 362.67 a Promedio 270.45 326.31 302.03 334.48 289.27 335.16 286.86 342.36 294.32 345.30 Coef. Var 5.03 7.71 9.95 7.17 5.79 11.48 7.55 7.86 7.46 13.70 * Medias seguidas con la misma letra no presentan diferencias significativas según la prueba de Duncan al 5% 52 Figura N°14. Efecto de la aplicación de AG3 en la Firmeza de las bayas de los racimos en el cv. Superior. Figura N°15. Efecto de la aplicación de AG3 en la Firmeza de las bayas de los racimos en el cv. Red Globe. 0 50 100 150 200 250 300 350 Cosecha 7DDC 14DDC 21DDC 28DDC g/ m m DÍAS DESPUÉS DE COSECHA Firmeza del cv. Superior T1 (3ppm) T2 (5ppm) T3 (6ppm) T0 (0ppm) 280 290 300 310 320 330 340 350 360 370 Cosecha 7DDC 14DDC 21DDC 28DDC g/ m m DÍAS DESPUÉS DE COSECHA Firmeza‐ cv. Red Globe T1 T2 T3 Testigo 53 Las Figuras N° 16 y 17 muestran la variación de la firmeza de las bayas, por tratamiento, durantelas cinco semanas, para los cultivares Superior y Red Globe respectivamente. No se aprecia una variación marcada en ningún tratamiento. Figura N°16. Variación de la firmeza por tratamientos durante las semanas de evaluación, cv Superior. Figura N°17. Variación de la firmeza por tratamientos durante las semanas de evaluación, cv. Red Globe. 0 50 100 150 200 250 300 350 T1 (3ppm) T2 (5ppm) T3 (6ppm) T0 (0ppm) g/ m m TRATAMIENTOS Firmeza del cv. Superior Cosecha 7DDC 14DDC 21DDC 28DDC 280 290 300 310 320 330 340 350 360 370 Cosecha 7DDC 14DDC 21DDC 28DDC g/ m m DÍAS DESPUÉS DE COSECHA Firmeza‐ cv. Red Globe T1 T2 T3 Testigo 54 4.5 Sólidos Solubles La Tabla N°9 y las figuras N° 18 y 19 resumen los resultados obtenidos durante la evaluación de los sólidos solubles de los racimos para los cultivares Superior y Red Globe. Se aprecia que la aplicación del ácido giberélico en la etapa de envero no tuvo efecto en el porcentaje de sólidos solubles en las bayas de ambos cultivares. El día de la cosecha se obtuvo valores entre 17.90 y 19% de Sólidos solubles. A los 7 DDC el porcentaje de SS fluctuó entre 17.40 y 18.47. Los valores estuvieron entre 17.47 y 18.17% a los 14 DDC. A los 21 DDC se encontraron valores que variaban entre 17.27 y 18.57 y, a los 28 DDC el porcentaje de SS oscilo entre 17.5 y 18.9%. En el caso del cultivar Red Globe al día de la cosecha los SS variaron entre 15.5 y 16.4%. A los 7 DDC los valores fluctuaron entre 15.47 y 17.07%. A los 14 DDC se midieron valores entre 14.53 y 16.60%. A los 21 DDC los valores oscilaban entre los 15.37 y 16.27% y a los 28 DDC el porcentaje de SS estuvo entre 15.37 y 16.20%. Para el cv. Superior, no se observó ningún efecto por la aplicación de AG3 en el porcentaje de los sólidos solubles. Aun así, los valores más bajos los presento el testigo (ver figuras N°18 y 20). En el cv. Red Globe se observó diferencias significancias según la prueba estadística de Duncan al 5%. Solo en la segunda semana de evaluación para los tratamientos de 3 ppm y 6 ppm con los porcentajes más altos de sólidos solubles. Los resultados se asemejan a lo mencionado por Facteau et al. (1985) que obtuvo un aumento en el contenido de SS en cerezas tratadas con giberelinas. Podestá et al. (2001) también menciona que el regulador de crecimiento pudo aumentar la tasa de acumulación de azúcares hacia los frutos de cerezo. 55 Tabla N° 9. Efecto de la aplicación de AG3 en los sólidos solubles de las bayas de los racimos en dos cultivares de uva. SS (%) COSECHA 7DDC 14DDC 21DDC 28DDC Cultivar Superior Red Globe Superior Red Globe Superior Red Globe Superior Red Globe Superior Red Globe T0 (0ppm) 17.90 a* 16.40 a 17.40 a 15.57 a 17.47 a 14.53 a 17.47 a 15.63 a 17.80 a 15.40 a T1 (3 ppm) 19.00 a 15.50 a 18.47 a 17.07 b 18.17 a 16.20 a 18.10 a 16.27 a 17.50 a 15.97 a T2 ( 5 ppm) 18.73 a 15.83 a 18.00 a 15.47 a 17.73 a 16.60 a 18.57 a 15.37 a 18.90 a 15.37 a T3 (6 ppm) 17.97 a 15.93 a 17.77 a 16.73 b 17.80 a 16.07 a 17.27 a 15.77 a 18.53 a 16.20 a Promedio 18.40 15.92 17.91 16.21 17.79 15.85 17.85 15.76 18.18 15.73 Coef. Var 0.70 0.58 1.64 0.57 0.50 1.20 1.78 1.44 1.38 1.40 * Medias seguidas con la misma letra no presentan diferencias significativas según la prueba de Duncan al 5%. 56 Figura N° 18 Efecto de la aplicación de AG3 en los sólidos solubles de los racimos en el cv. Superior. Figura N° 19. Efecto de la aplicación de AG3 en los sólidos solubles de los racimos en el cv. Red Globe. 16 16,5 17 17,5 18 18,5 19 19,5 Cosecha 7DDC 14DDC 21DDC 28DDC P O R C EN TA JE DÍAS DESPUÉS DE COSECHA Contenido de Solidos Solubles‐ cv. Superior T1 (3ppm) T2 (5ppm) T3 (6ppm) T0 (0ppm) 13 13,5 14 14,5 15 15,5 16 16,5 17 17,5 Cosecha 7DDC 14DDC 21DDC 28DDC P O R C EN TA JE DÍAS DESPUÉS DE COSECHA Contenido de Solidos Solubles‐ cv. Red Globe T1 T2 T3 Testigo 57 Los Figuras 20 y 21 muestran la tendencia del porcentaje de sólidos solubles de los racimos, por tratamiento, para los cultivares Superior y Red Globe respectivamente. No se aprecia una tendencia definida en el comportamiento de los sólidos solubles entre tratamientos a lo largo del ensayo. Figura N° 20. Variación del porcentaje de sólidos solubles por tratamientos durante las semanas de evaluación del cv. Superior. Figura N° 21. Variación del porcentaje de sólidos solubles por tratamientos durante las semanas de evaluación del cv. Red Globe. 16 16,5 17 17,5 18 18,5 19 19,5 T1 (3ppm) T2 (5ppm) T3 (6ppm) T0 (0ppm) P O R C EN TA JE TRATAMIENTOS Contenido de Solidos Solubles‐ cv. Superior Cosecha 7 DDC 14 DDC 21 DDC 28 DDC 13 13,5 14 14,5 15 15,5 16 16,5 17 17,5 T1 (3ppm) T2 (5ppm) T3 (6ppm) T0 (0ppm) P O R C EN TA JE TRATAMIENTOS Contenido de Solidos Solubles‐ cv. Red Globe Cosecha 7 DDC 14 DDC 21 DDC 28 DDC 58 4.6 Acidez La Tabla N° 10 y las Figuras N° 22 y 23 muestran la comparación del porcentaje de acidez a lo largo del ensayo. No se aprecia ningún efecto en el porcentaje de Acidez en los racimos tratados. Los valores obtenidos para el cultivar Superior fluctuaron: el día de la cosecha entre 0.60 y 0.68%; 7 DDC entre 0.64 y 0.72%; a los 14 DDC los valores estuvieron entre 0.63 y 0.71%; 21 DDC entre 0.59 y 0.62% y, finalmente a los 28 DDC entre 0.35 y 0.37%. En caso del cultivar Red Globe los valores obtenidos oscilaron: el día de la cosecha entre 0.28 a 0.32, a los 7DDC entre 0.32 y 0.36, a los 14 DDC los valores obtenidos fueron 0.40 y 0.42; 21 DDC entre 0.39 y 0.42 y, a los 28 DDC entre 0.33 y 0.37%. Se observa claramente que para ambos cultivares el AG3 aplicado en la etapa de envero no tuvo efectos estadísticamente significativos para ningún tratamiento. Para el cultivar Superior, durante las primeras cuatro semanas de evaluación, la acidez fue muy similar entre tratamientos, sin embargo en la última semana el valor fue casi a la mitad para todos los tratamientos. Los resultados de la presente investigación no coinciden con lo reportado por Fontes (2011) la disminución de ácido tartárico disminuye debido al volumen de la baya. 59 Tabla N°10 Efecto de la aplicación de AG3 en el porcentaje de acidez de los racimos en dos cultivares de uva. Acidez % COSECHA 7DDC 14DDC 21DDC 28DDC Cultivar Superior Red Globe Superior Red Globe Superior Red Globe Superior Red Globe Superior Red Globe T0 (0ppm) 0.60 a* 0.30 a 0.65 a 0.32 a 0.71 a 0.42 a 0.62 a 0.41 a 0.35 a 0.33 a T1 (3 ppm) 0.62 a 0.34 a 0.64 a 0.36 a 0.63 a 0.40 a 0.62 a 0.39 a 0.37 a 0.37 a T2 ( 5 ppm) 0.66 a 0.28 a 0.66 a 0.37 a 0.65 a 0.40 a 0.59 a 0.41 a 0.35 a 0.34 a T3 (6 ppm) 0.68 a 0.32 a 0.72 a 0.32 a 0.68 a 0.40 a 0.70 a 0.42 a 0.37 a 0.35 a Promedio 0.64 0.31 0.67 0.34 0.67 0.40 0.63 0.41 0.36 0.35 Coef. Var 0.31 0.18 0.20 0.16 0.18 0.26 0.29 0.14 0.19 0.20 * Medias seguidas con la misma letra no presentan diferencias significativas según la prueba de Duncan al 5% 60 Los Figuras 22 y 23 muestran la comparación del porcentaje de acidez de los racimos entre tratamientos, durante las cinco semanas evaluadas, para los cultivares Superior y Red Globe respectivamente. En ningún caso se aprecia una variación marcada a lo largo del ensayo + Figura N° 22. Efecto de la aplicación de AG3 en el porcentaje de acidez de los racimos del cv. Superior. Figura N° 24. Variación del porcentaje de acidez, por tratamientos,
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