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Rev. Med. Univ. Navarra, XVII: 223, 1973 UNIVERSIDAD DE NAVARRA. FACULTAD DE MEDICINA DEPARTAMENTO DE BIOQUIMICA La replicación del DNA en bacterias ']. Eugui La replicación del DNA es un tema de difícil acceso. Aunque ha sido objeto de amplias revisiones (1, 2, 3, 4), el trata- miento que recibe este proceso consiste frecuentemente en una recopilación de experiencias, hipótesis y modelos, sin una crítica ponderada de los mismos, faltando un ejercicio de síntesis y una visión cohe- rente de los numerosísimos -y a veces contradictorios- datos experimentales En líneas generales, puede decirse que es abundante la información existente sobre la síntesis de DNA en procariotes in vitro. Sin embargo, quedan oscuros al- gunos puntos muy importantes, como son la relevancia de los datos encontrados in vitro con respecto a la situación in vivo, y los mecanismos de control de la repli- cación del DNA. ASPECTOS BÁSICOS El cromosoma bacteriano está constituido por una sola molécula de DNA circular, formada por dos cadenas antiparalelas arrolladas alrededor del mismo eje, ori- ginando una doble hélice. La estructura del DNA, tal como fue pro- puesta por Watson y Crick 5, proveía el mecanismo para explicar la exactitud del proceso de replicación. Se romperían los puentes de hidrógeno entre las bases de las dos cadenas, separándose éstas y cada una serviría de modelo para el alineamien- to de bases complementarias que forma- rían las cadenas hijas. Este mecanismo hipotético predecía una síntesis semicon- servativa, por la que las moléculas hijas tendrían una cadena de origen paterno y otra recién sintetizada. Este primer aspecto, fundamental para acometer posteriores investigaciones sobre la síntesis del DNA, fue demostrado por Meselson y Stahl,6 quienes partiendo de DNA paterno marcado con 15N estudia- ron la distribución isotópica en las molé- culas hijas de la primera generación, mos- trando que poseen una cadena marcada con 15N y otra desprovista del isótopo. Los datos obtenidos en la segunda gene- ración estaban también de acuerdo con el mecanismo semiconservativo. 224 J. EUGUI Vol. XVII SISTEMA ENZIMÁTICO IMPLICADO EN LA SÍNTESIS DEL DNA Son muchos los enzimas -DNA polime- rasas, ligasa, nucleasas, proteínas desen- rollantes, factores de iniciación, etc.- que probablemente participan en este proce- so, y ello nos da una idea de su comple- jidad. La función in vivo de la mayoría de dichos enzimas no es bien conocida. ndATP + ndGTP DNA polimerasas.-La DNA polimerasa I. de E. coli, fue el primer enzima des- cubierto capaz de realizar síntesis de DNA in vitro. Requiere DNA modelo y DNA cebador, deoxinucleósidos trifosfato como precursores, y una adecuada concen- tración de iones Mg+ +. La reacción que cataliza puede ser repre sentada esquemáticamente: + ndCTP + DNA preformado ---l>- DNA- dAMP dGMr dCMP dTMP + 4(n) PP; -<--- + ndTTP Añade nucleótidos al extremo del ceba- dor que tiene un hidróxilo libre en el carbono 3'. La dirección de polimeriza- ción es, por tanto, 5'-+ 3'. El mecanismo de la reacción consiste en un ataque nu- cleofílico del oxígen del grupo 3' - OH terminal del cebador al fosfato del nu- cleósido trifosfato adecuado. La DNA polimerasa I tiene otras activi- dades enzimáticas, las cuales están esque- matizadas en el modelo del enzima que presentamos en la figura 1. No se conoce el significado de la actividad exonucleasa, aunque probablemente no tiene mucha relevancia, puesto que su pH óptimo es de 9,2 -frente a un pH óptimo de 7,4 para la actividad polimerasa- y no in- terfiere con la reacción de polimerización. Aunque se ha demostrado que es capaz de sintetizar DNA funcional in vitro con la ayuda de nucleasa y ligasa,8 el papel de este enzima in vivo no es bien cono- cido. Posiblemente actúa en mecanismos de reparación del DNA, según se deduce de datos procedentes del campo genético. Los mutantes en el gen estructural del enzima (pol A), deficientes en DNA poli- merasa I, suelen ser más sensibles a la irradiación por rayos X 9 y presentan una reparación más lenta de las roturas del DNA que las cepas silvestres 10 lo que indica que la polimerasa actúa en este proceso. Fig. l. Actividades enzimáticas de la DNA polimerasa I de E. coli. Adaptado de Korn- berg (7). (1) Polimerización; (2) Hidrólisis exonucleolítica 3' -+ 5'; (3) Pirofosforólisis exonucleolítica 3' -+ 5'; (4) Hidrólisis exonu- cleolítica 5' -+ 3'; (5) Recambio de nucleósi- dos trifosfato que parece ser una combinación de polimerización y pirofosforólisis; (a) Lo- cus del modelo; (b) Locus del cebador; (c) Locus del nucleósido trifosfato. Septiembre 197 3 REPLICAC!ON DEL DNA 225 Sin embargo, no se puede excluir que participe en la síntesis del DNA in vivo. Si ésta fuera el resultado de la formación de pequeños fragmentos de DNA por la acción de otra DNA polimerasa, la DNA polimerasa I podría alargar estos frag- mentos, y finalmente serían unidos por una ligasa. Efectivamente, en células de- ficientes en DNA polimerasa I el DNA recién sintetizado tiene un peso molecu- lar menor que en las células normales n. La DNA polimerasa II es la única po- limerasa que resulta estimulada por una proteína desenrollante. Su función es des- conocida, en mutantes deficientes en este enzima no se encuentran alteraciones de la síntesis o reparación del DNA (12, 13). Sin embargo, algunas experiencias recien- tes indican que posiblemente participe en la reparación del DNA al menos sus- tituyendo a las otras polimerasas en mu- tantes deficientes en DNA polimerasas I y III 11 • La DNA polimerasa III es el producto del gen dnaE, y los datos genéticos in- clinan a pensar que es el enzima que efec- túa la síntesis del DNA in vivo, puesto que al cultivar mutantes termosensibles dnaE a temperatura restrictiva cesa la síntesis de DNA.15 Proteínas desenrol/antes.-Desestabilizan la estructura doble helicoidal del DNA de dos cadenas por su gran afinidad por el DNA de una sola cadena. La proteína aislada de E. coli tiene un peso molecu- lar de 22.000, y se encuentran unas 800 copias por célula en la fase logarítmica de crecimiento.16 Otro tipo distinto de proteínas que posi- blemente tengan una función en la repli- cación del DNA es la proteína w, que relaja el DNA superenrollado. Endo y exonucleasas.-Aunque no se co- noce su función in vivo en la síntesis del DNA, podrían actuar efectuando los cor- tes necesarios para la iniciación, repara- ción, o para eliminar nucleótidos mal colocados durante la polimerización. Ligasas.-Parecen jugar un papel impor- tantísimo en la replicación. 17 Restauran roturas producidas en una cadena del DNA, si los nucleótidos vecinos presen- tan un grupo 3' - OH y 5' -fosfato li- bres. También son esenciales para la cé- lula, ya que mutantes termosensibles de- ficientes en esta actividad enzimática mueren al elevar la temperatura 18 • SISTEMAS DE ESTUDIO IN VITRO DE LA SÍNTESIS DEL DNA Se emplean dos tipos principales de sis- temas. En los sistemas de células permea- bles se intenta perturbar las células lo menos posible, permitiendo la síntesis in vitro, es decir, la incorporación de pre- cursores. No se purifican los componen- tes macromoleculares. Los sistemas de cé- lulas lisadas tratan de conseguir un apa- rato enzimático con menos componentes, más purificado. Entre estos últimos me- rece destacarse el de Schaller y col.,19 en el que se realiza una lisis suave de las células bacterianas sobre un disco de ce- lofán de 12 mm de diámetro. El medio de incubación para la rotura de la pared bacteriana contiene Brij 58, lisozima y una elevada concentración de células ; se añade sobre el disco de celofán que está colocado en una placa de agar con saca- rosa 0,33 M y actúa durante 20 minutos a 0° C. Se traslada el disco a otra placa de agar que no contiene sacarosa y que resulta hipotónica para las células bac- terianas desprovistas de pared, ocurriendolisis por choque osmótico. Se deja secar para que se concentre el material sobre el disco, y se deposita éste sobre 50 p. 1 de la solución que contiene los nucleósidos trifosfato precursores difusibles. Este sis- tema, aunque no purifica los componen- tes, tiene las ventajas de ocasionar una lisis suave y de conseguir una concentra- ción alta de macromoléculas en el li- sado. REPLICACIÓN DEL DNA IN VIVO. MODELOS Los intentos de descifrar cómo se realiza este proceso in vivo tropezaban con una 226 J. EUGUI Vol. XVll 11111111111111111111 3 Fig. 2. Representación esquemática del modelo de cuchillo y horquilla. dificultad. Todos los datos sugerían que la replicación tiene lugar en las dos ca- denas del DNA simultáneamente y en la misma dirección. Esto planteaba -dado que las cadenas son antiparalelas- el si- guiente dilema: o bien la síntesis de una de las cadenas es discontinua, o existe una polimerasa que funciona en la direc- ción 3'-+ 5'. Esta última no se ha des- cubierto, pero muchos de los resultados in vivo y prácticamente todos los in vitro prueban, al aislarse el DNA recién sinte- tizado en forma de pequeños fragmentos, que la síntesis del DNA es discontinua en una de las cadenas por lo menos. Se han propuesto un gran número de modelos que intentan explicar la replica- ción del DNA in vivo tratando de con- ciliar los abundantes datos experimenta- les, pero ninguno es totalmente satisfac- torio. Nos limitaremos a describir algunos de ellos. El modelo de cuchillo y horquilla fue pro- puesto por Mitra y Kornberg.20 Al sepa- rarse en el punto de iniciación las dos cadenas, la DNA polimerasa comienza la síntesis en la dirección 5'-+ 3' utilizando como modelo la cadena adecuada y con- tinuando después sobre la otra cadena (figura 2). Una endonucleasa realiza un corte en el centro de la horquilla de re- plicación, y permite el sucesivo desplega- miento de las cadenas paternas, conti- nuando la polimerización a partir del ex- tremo 3' - OH libre y prolongándose también sobre la otra cadena. La endo- nucleasa produce un corte en el vértice de la horquilla y el proceso se va repi- tiendo. La ligasa une los fragmentos re- sultantes de la polimerización que ha uti- lizado como modelo la cadena paterna terminada en 5'. Existen otros tipos de modelos disconti- nuos, como el de Okazaki 21 que predice crecimiento discontinuo a lo largo de las dos cadenas. Algunos autores incluyen discontinuidades en las cadenas paternas (figura 3). 1 Fig. 3. Modelos de síntesis discontinua de DNA. 1.-Síntesis discontinua en ambas ca- denas hijas. 2.-Síntesis discontinuas en am- bas cadenas hijas, con roturas en las cadenas paternas. Septiembre 197 3 REPLICACION DEL DNA 227 ~--~~;;;;;;;;;;;;:;... ..... ~€:../ --~·--··-+ 1 = + + 1 ! 1 . Fig. 4. Representación esquemática del modelo de síntesis pre- horquilla. • Sitio del cebador. _,.. Dirección de crecimiento de la cadena. n Lugar de unión por acción de la ligasa. --+ Lugar de corte endonucleolítico. Líneas gruesas: material paterno. Líneas delgadas: material nuevo. Un modelo particularmente interesante en el de síntesis pre-horquilla,22 según el cual la elongación de la cadena tiene lugar por delante de la horquilla de replicación (fi- gura 4). Van ocurriendo roturas en las cadenas paternas, originadas por endonu- cleasas, y la DNA polimerasa, tomando como cebador el extremo 3' - OH, co- mienza la síntesis del DNA, que se rea- liza en sentido opuesto en ambas cade- nas. Existen intermediarios en los que se encuentra el DNA recién sintetizado uni- do covalentemente a las cadenas pater- nas. Más tarde son separados y la ligasa une las mellas de las cadenas paternas. Los cortes en dichas cadenas van ocu- rriendo sucesivamente, y son, como he- mos señalado, transitorios. Esto elimina la necesidad de un desenrrollamiento rá- pido de las cadenas. La ligasa une los fragmentos recién sintetizados. Según el modelo del círculo sin fin de Gil- bert y Dressler 23 una endonucleasa pro- duce una rotura en la cadena +. El ex- tremo que presenta el grupo 5' - OH li- bre comienza a desenrollarse y se une a la membrana celular. La síntesis se inicia actuando como cebador el extremo 3' - OH de la cadena + y utilizándose como modelo la cadena - (figura 5). Se- gún la versión de "cuchillo y horquilla" la síntesis continúa a lo largo de la ca- dena + con extremo 5' - OH libre. La endonucleasa origina un corte en el vérti- ce de la horquilla, el círculo "rueda" exponiendo otra zona de la cadena - y la síntesis prosigue como se ha descrito. Ningún modelo satisface plenamente los numerosos requerimientos del complejo proceso de replicación ni está apoyado por todos los hechos experimentales, por lo que en el momento actual se desco- noce como ocurre la síntesis del DNA in vivo. CONTROL DE LA REPLICACIÓN DEL DNA Este es uno de los aspectos de mayor interés, y muy poco conocido. Más que la regulación del movimiento de la hor- quilla de crecimiento, el punto central es la regulación de la iniciación. la teoría del replicón 24 -un elemento genético que contiene toda la información necesaria para su replicación- indica que existe 228 J. EUGUI Vol. XVII 3' 5' 3°-0H o 5' Fig. 5. Modelo del círculo sin fin. un gen estructural cuyo producto es el iniciador, el cual, al reconocer a otro gen del cromosoma, el replicador, inicia la síntesis del DNA. El replicón está unido a una estructura intracelular, posiblemen- te la membrana. Hay datos genéticos que apoyan esta teo- ría. Si ocurriera una mutación en cual- quiera de los dos genes controladores del replicón se perdería la capacidad de re- plicación. Se han aislado mutantes termo- sensibles de E. coli que no inician la re- plicación, creyéndose que es por altera- ción de la proteína iniciadora. Sería posi- ble integrar un nuevo replicón en el cromosoma de estos mutantes que induci- ría la síntesis de todo el cromosoma, lla- mándose a ese fenómeno "supresión inte- grativa". Su existencia se ha demostrado insertando un episoma en el cromosma de este mutante de E. coli y comprobando que tiene lugar la replicación.25 Pero ésta no ocurre si el episoma no se integra, ya que la proteína iniciadora no reconoce el gen replicador del cromosoma de E. coli. Se ha localizado el origen de la replica- ción en B. subtilis y en varios fagos. En E. coli algunos autores lo sitúan en las cercanías de los minutos 65 ó 71,26• 27 pero no hay acuerdo general sobre este punto. Otro apoyo de la teoría del replicón es la demostración de la existencia de proteí- nas necesarias para la iniciación, La sín- tesis de algunas de ellas es sensible al cloranfenicol a concentraciones bajas, y hay otras cuya síntesis es resistente al cloranfenicol a estas concentraciones. También se ha implicado al RNA en la iniciación de la síntesis del DNA.28 • 29 La iniciación ocurre cuando se alcanza una determinada relación DNA/masa ce- lular, por lo que se propone un control positivo de la replicación, que tendría lu- gar cuando se produce una acumulación suficiente de iniciadores (proteínas o RNA). En organismos superiores hay datos so- bre la importancia de factores positivos en la iniciación de la síntesis del DNA, como son los experimentos con heteroca- Septiembre 1973 REPLICACION DEL DNA 229 riones. Citaremos como ejemplo los obte- nidos por fusión de neuronas de ratón y fibroblastos de riñón de mono 30 • Una de las células es inactiva, y la otra no lo es, no se replica -en el caso mencionado, la neurona-. Las células activas inducen o replicarse a las inactivas. Y estos fac- tores inductores son citoplásmicos como se comprobó en experiencias en que nú- cleos de neuronas, células que no se di- viden, son transplantados a huevos enu- cleados, produciéndose una estimulación de la replicación 31 • Terminación de la síntesis del DNA.-Es poco conocida. Ocurriría al llegar la hor- quilla de replicación al origen, o quizás aun sitio de terminación, que en E. coli es situado por algunos cerca del his ope- rón.27 No está confirmada la existencia de factores de determinación. Otros investigadores proponen que el sitio de origen y el de terminación esta- rían unidos a la membrana plasmática, y que el crecimiento de la membrana en esta zona facilitaría la segregación de los cromosomas hijos una vez que se ha completado la síntesis del DNA. REPLICACIÓN BIDIRECCIONAL La mayoría de los datos actuales están a favor de una replicación del DNA en las dos direcciones a partir del origen. Además de las experiencias en el campo 152µm ---"'---.. ~ - - genético 32 y bioquímico 33 existen datos morfológicos, de microscopia electróni- ca.31 Estos autores sincronizan el cultivo por deprivación de aminoácidos, e inician la síntesis del DNA añadiendo precurso- res, entre ellos timina marcada de baja actividad específica, durante un tiempo corto. A continuación adicionan timina de gran actividad específica. Se interrumpe la síntesis del DNA y se aislan los cromo- somas, obteniéndose posteriormente una autorradiografía de los mismos, que sólo revelará el DNA recién sintetizado con- teniendo timina marcada. Los resultados obtenidos indican que la síntesis es bi- direccional, ya que los granos más grue- sos, correspondientes a la timina de gran actividad específica, aparecen en ambos extremos (figura 6), mientras que si la síntesis fuera unidireccional los granos gruesos aparecerían en uno solo de los extremos. Todos los modelos de la replicación del DNA son adaptables a una síntesis bidi- reccional, inclusive el del círculo sin fin para el que se ha propuesto la modifica- ción denominada de los círculos sin fin opuestos. CONSIDERACIONES FINALES A nivel molecular, en procariotes es mu- cho menos lo que se sabe sobre la re- plicación del DNA que sobre la síntesis ·_.re¡.·-.. -~ ~- _ 1 _81 µ m _ - - Fig. 6. Representación esquemática de los resultados obteni- dos marcando cromosomas de E. coli con [3H] timina durante 16 minutos, seguido de marcaje con PHJ timina y [3H] timi- dina durante 2,5 minutos. Modificado de Prescott y Kuem- pel (31). l. 230 J. EUGUI Vol. XVII de proteínas. Se ha progresado notable- mente en lo que se refiere a los estudios in vitro -se conocen la mayoría de los enzimas implicados aunque no su función real in vivo, con excepción de la DNA polimerasa III y la ligasa-; sin embar- go, la síntesis del DNA in vivo es un tema oscuro y no existe un modelo totalmente aceptable. Menos conocido es el control de la síntesis del DNA, proceso cuya comprensión facilitaría el entendimiento de la disfunción del control de la replica- ción y de la división celular que tiene Jugar en los fenómenos neoplásicos. BIBLIOGRAFÍA l. GüULIAN, M. Ann. Rev. Biochem., 40: 855, 1971. 2. KIT, S. En Metabolic Pat/nvays. 3.ª edi- ción. Vol. IV. Editado por D. M. Greenberg Academic Press. New York. 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