1 -MANUAL-DE-TOMA-TRANSPORTE-CONSERVACION-Y-REMISION-DE-MUESTRAS

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MANUAL DE TOMA, TRANSPORTE, CONSERVACION Y 
REMISION DE LA MUESTRA 
CODIGO :GMLCMA-120.11 
VERSION : 1 
 
EMPRESA SOCIAL DEL ESTADO HOSPITAL DE LA VEGA 
GESTION DE LA MEJORA CONTINUA 
PAGINA : 1 DE 1 
FECHA : 01/29/2019 
 
Elaborado Por : 
FRANCIA L. 
CONTRERAS 
 
Revisado Por : 
Molchizu Arango G. 
Aprobado Por : 
Hernan Duran 
Castro 
Cargo: LIDER LAB. CLINICO Cargo: Asesora Calidad, 
Planeacion 
 
Cargo: Gerente 
Fecha: 29601/2019 Fecha: 29/01/2019 Fecha: enero 29/2019 
 
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TOMA, TRANSPORTE, CONSERVACION Y REMISION DE MUESTRAS. 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
LABORATORIO CLINICO 
 
 
 
 
MANUAL DE TOMA, TRANSPORTE, CONSERVACION Y 
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Molchizu Arango G. 
Aprobado Por : 
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Cargo: LIDER LAB. CLINICO Cargo: Asesora Calidad, 
Planeacion 
 
Cargo: Gerente 
Fecha: 29601/2019 Fecha: 29/01/2019 Fecha: enero 29/2019 
 
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INTRODUCCION 
 
Muchos de los problemas encontrados en el laboratorio clínico están específicamente 
relacionados con la inadecuada preparación de los pacientes para la toma de la 
muestra, el contacto prolongado entre el suero o plasma con las células, la hemólisis 
inducida en el laboratorio, temperatura de almacenamiento, uso de anticoagulantes, 
sistemas de separación y transporte incorrectos. El reconocimiento y control de estas 
variables puede reducir el error y contribuir a una mayor utilidad clínica de los resultados 
de los análisis de los pacientes. 
 
El resultado de un examen será confiable si la solicitud está bien realizada, si el paciente 
reúne los requisitos necesarios, si el material de toma de muestra es el adecuado, si se 
transporta en forma oportuna y en las condiciones de almacenamiento requeridas, si la 
recepción en el Laboratorio acepta la muestra y la deriva a la sección que corresponde, 
y si posterior al análisis el informe del resultado llega con la oportunidad que el paciente 
lo requiere y el profesional solicitante tiene el conocimiento para interpretarlo. 
 
El personal del laboratorio de la E.S. Hospital De La Vega consciente de su 
responsabilidad profesional y de su compromiso con los pacientes, se esfuerza cada día 
por hacer un trabajo de excelencia y en conjunto dar pasos a la automatización, 
informatización y modernización de los procesos del Laboratorio. 
 
1. OBJETIVO 
 
El objetivo general de este Manual para de toma, transporte, conservación y 
remisión de muestras es estandarizar criterios en torno a la preparación de una 
muestra, describiendo el equipamiento necesario para su obtención, los cuidados y las 
recomendaciones especiales que se deben seguir en una técnica adecuada de 
recolección y proceso de transporte, para garantizar la viabilidad del espécimen y la 
confiabilidad y oportunidad en los resultados. 
 
2. ALCANCE 
Este documento se tomará como referencia en el área de Toma de muestras del 
laboratorio de la E.S.E Hospital De La Vega y el puesto de salud de Nocaima. 
 
 
 
 
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Cargo: Gerente 
Fecha: 29601/2019 Fecha: 29/01/2019 Fecha: enero 29/2019 
 
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Este manual aplica desde el momento en que el usuario se acerca al laboratorio clínico 
para solicitar información sobre los exámenes ordenados, seguido de la verificación de 
la solicitud médica, su adecuada facturación, admisión del paciente al sistema del 
información CITISALUD con la posterior toma de muestra y termina con el transporte 
de las muestras al área de análisis y la remisión de muestras con exámenes de mayor 
complejidad al laboratorio de referencia Andreas Rothstein. 
 
3. RESPONSABLE 
Bacteriólogas y auxiliares de enfermería de consulta externa, urgencias y 
Hospitalización. 
 
4. GENERALIDADES DE LA TOMA DE MUESTRA 
 
4.1 SOLICITUD DE EXAMENES 
 
La solicitud de los exámenes de los servicios de urgencias y consulta externa será 
realizada única y exclusivamente a través del sistema de información CITISALUD, en 
formato: ORDEN DE PROCEDIMIENTOS DIAGNOSTICOS. Serán obligatorios los 
siguientes datos: 
 
- Nombres y apellidos del paciente 
- Tipo de documento de identificación 
- numero de documento de identificación 
- edad, 
- sexo, 
- EPS, 
- fecha y hora, 
- servicio y centro de atención, 
- exámenes solicitados, 
- nombre y sello del 
- y según criterio clínico la impresión diagnostica. 
- Informar el uso de antibióticos, anticoagulantes u otros medicamentos que 
pueden influir y que el personal del laboratorio puede utilizar para orientar el 
análisis 
 
 
 
 
 
 
 
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4.2 INDICACIONES PARA TOMA DE MUESTRAS 
 
Después de tener la Orden de procedimientos el médico o solicitante profesional que 
emite la misma, indicara al usuario acercarse al laboratorio clínico para recibir las 
indicaciones para la toma de muestras. 
En el servicio se debe: 
 
� Brindar las indicaciones necesarias al usuario sobre las condiciones en 
las que se debe presentar al laboratorio clínico para la toma de la 
muestra. 
� Solicitar que realice la debida facturación de la orden médica en la 
recepción de la institución y que presente el consentimiento firmado y 
sellado por el médico tratante en el caso de ser necesario (consentimiento 
informado para la toma de Examen de diagnostico y detención de VIH) 
Ver Anexo 1)) al acercarse al laboratorio, de no tener el consentimiento 
informado se le realizara la asesoría pre test en el momento de la toma de 
la muestra. 
� El personal de laboratorio clínico debe conocer las condiciones para la 
toma de la muestra (técnica de punción, identificación y rotulación de los 
tubos) 
� El equipo de trabajo del Hospital De La Vega que tenga relación con la 
toma de muestras de Laboratorio clínico debe hacer entrega de la 
información para este proceso (ver anexo 2) y explicarlo para garantizar 
información oportuna para la toma de muestras. 
� Indicar el Horario de atención : 
E.S.E Hospital De La Vega: 7:00 am a 8:30 a.m. 
 
5. PRECAUCIONES DE BIOSEGURIDAD: 
 
La manipulación inapropiada puede convertirse en una fuente de riesgo biológico para 
las personas que están en contacto o para el medio ambiente. Utilizar los elementos de 
protección personal necesarios para evitar exposición con riesgo biológico, de acuerdo 
con la fuente de la muestra. 
 
� Guantes. 
� Bata. 
� Cumplir con las recomendaciones de manejo de elementos corto punzantes: 
No re enfundar agujas. 
 
 
 
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� Disponer y utilizar adecuadamente el contenedor para corto punzante. 
� No transportar jeringas con agujas. 
 
En caso de accidente con riesgo biológico, avisar inmediatamente según las 
recomendaciones del protocolo de accidente de trabajo a su jefe inmediato para que se 
realice lo pertinente con la aseguradora de riesgos laborales. 
 
6. PROCEDIMIENTO DE REGISTRO DE PACIENTES DE LABORATORIO CLINICO. 
 
6.1 IDENTIFICACION DE MUESTRAS EN FASE PREANALITICA. 
 
Una vez el paciente ingresa al laboratorio Clínico de la E.S.E. Hospital De la Vega y 
el puesto de Salud de Nocaima se realizara el ingreso del paciente de la siguiente 
manera: 
 
a. Presenta la orden médica y la factura correspondiente a los exámenes 
b. La Bacterióloga encargada de la recepción verifica que los exámenes ordenados 
estén facturados y les entrega el documento consentimiento informado para la 
toma de muestras ( ver anexo 3) el cual el paciente debe leerlo diligenciar y 
firmar entregandolo a la hora de la toma de las muestras. 
 
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- Dar click en la opción 
 
 
 
- Seleccionar el lugar y el servicio por el que ingresa el usuario y dar clik en 
 
 
- Se despliega entonces los pacientes que para la fecha han sido facturados 
con exámenes, en este momento selecciona el usuario correspondiente con 
doble clik sobre el documento de identidad 
 
 
 
 
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- Despliega la ventana donde se encuentran los exámenes facturados, para que 
el sistema guarde el numero de consecutivo único del usuario para el servicio 
de laboratorio clínico, es necesario dar clik en 
 
 
- Una ventana emergente, muestra el la hoja de registro de los exámenes de 
laboratorio, en este momento de debe dar clik en archivo y se selecciona la 
opción guardar 
 
 
 
- De inmediato queda activado en color amarillo el ´paciente con el numero de 
admisión automático asignado 
 
 
 
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- Este consecutivo será entonces impreso en rotulo adhesivo para la adecuada 
identificación de la muestra. 
 
c. La bacterióloga o auxiliar encargada de la toma de las muestras recibe los 
documentos del paciente: consentimiento y orden medica facturada y prepara el 
material para realizar la toma de las muestras. 
 
d. Procede a realizar la marcación de los tubos con el consecutivo asignado 
utilizando los marcadores institucionales nombres apellidos y número de 
documento del paciente, con letra clara. Debe realizar chequeo cruzado con el 
paciente. 
 
e. Para las muestras de orina y muestras Materia fecal también se deben marcar 
con el numero consecutivo, nombres y apellidos del paciente y documento de 
identificación, en el cuerpo del recipiente. 
 
f. Para las muestras de frotis vaginales y leishmania se marcan con el número 
consecutivo y nombre y apellido del paciente aplica los tres identificadores de 
pacientes, para que cuando se realice la coloración no se borren los datos. 
 
 
 
 
 
 
 
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6.2 PROCEDIMIENTO DE IDENTIFICACION DE MUESTRAS DEL SERVICIO DE 
URGENCIAS Y HOSPITALIZACION. 
 
a. Si el paciente tiene orden de canalización se debe realizar la toma de la muestra 
en ese mismo momento, evitando así una doble punción y por ende un incidente 
adverso. 
 
b. Si el medico ordena orina con sonda este procedimiento debe ser realizado por el 
personal de enfermería del servicio o jefe de enfermería. 
 
c. Se realiza el procedimiento descrito anteriormente para el ingreso del usuario al 
sistema y asignación de numero consecutivo en el modulo de laboratorio del 
sistema de información CITISALUD. 
 
d. En el servicio de urgencias y hospitalización antes de tomar la muestra la auxiliar 
o bacterióloga realiza verificación la ubicación del paciente en la central de 
enfermería. 
 
e. Una vez el paciente es ubicado se hace lista de chequeo cruzada con el paciente 
verificando nombres y apellidos completos e identificación, en caso de que no se 
encuentre en capacidad de respuesta verbal, se debe preguntar al acompañante; 
si el paciente se encuentra solo se debe realizar verificación con la manilla de 
identificación y identificador en cabecera de la cama asignada y se procede a 
tomar la muestra. 
 
6.3 PROCEDIMIENTO DE RECEPCION E IDENTIFICACION DE MUESTRAS 
DERIVADAS DE OTROS LABORATORIOS 
 
� Las muestras son tomadas en el Puesto de salud de 7:00 a.m a 8:30 a.m las 
muestras son tomadas por las auxiliares de enfermería y remitidas al laboratorio 
del Hospital de la vega en la ambulancia del centros de Salud. 
� Las muestras son remitidas siguiendo protocolo de triple embalaje y correcta 
identificación de las muestras; una vez llegan a laboratorio se realiza el respectivo 
procedimiento y asignación de consecutivo del laboratorio clínico a través del 
modulo de CITYSALUD. 
Puesto de Salud Días 
Nocaima Martes, miércoles y jueves 
 
 
 
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Fecha: 29601/2019 Fecha: 29/01/2019 Fecha: enero 29/2019 
 
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� Posteriormente se recibe el registro en el FORMATO DE RECEPCION DE 
MUESTRAS DERIVADAS DE OTROS LABORATORIOS (ver anexo 4 ) se debe 
diligenciar la temperatura y hora de salida del puesto de salud y registrar la 
temperatura y hora de llegada y firma de la persona que entrega y recibe las 
muestras. 
� Finalmente las muestras son entregadas a la auxiliar de laboratorio para el 
respectivo marcaje de consecutivo y respectivo montaje. 
� Los resultados validados se encuentran en lahistoria clínica del paciente del 
sistema citisalud o entregados al paciente directamente siguiendo protocolo de 
entrega de resultados. 
 
7. PREPARACIÓN DE LA PIEL: LIMPIEZA Y ANTISEPSIA 
 
� Lavarse las manos (seguir protocolo de lavado de manos clínico) 
� usar los elementos de protección personal necesarios para la actividad: 
guantes, bata, gafas. 
� mojar una mota de algodón estéril con alcohol y con movimientos circulares 
desde el centro a la periferia, hacer fricción mecánica del sitio que se va a 
puncionar. 
� Dejar secar espontáneamente el antiséptico sobre la piel. 
 
 
 
 
8. PREPARACIÓN DE ELEMENTOS 
Una vez conocida la solicitud del tipo de examen, se debe preparar el equipo 
necesario para la obtención. 
 
SELECCIÓN DE ELEMENTOS. 
 
� Con base a los exámenes a realizar se definen los tubos a utilizar: 
 
Tubo rojo: suero. 
Uso en química clínica, hormonas, drogas, 
marcadores. La pared interna está cubierta con 
partículas microscópicas de Silica (SiO2) que activan el 
proceso de coagulación. En los tubos, que contienen 
gel, tapa amarilla, se forma una barrera que separa el 
coágulo del suero durante la centrifugación y permite 
su almacenamiento por más de 48 horas sin afectar los 
 
 
 
 
 
 
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resultados. 
Tubo verde: plasma. 
Uso en pruebas de química clínica en plasma. La 
heparina (de Sodio, Litio o Amonio) es el 
anticoagulante predilecto para todos los ensayos 
químicos del plasma y recubre el interior de los tubos 
en forma seca. La barrera de gel permite su 
almacenamiento por más de 48 horas sin afectar los 
resultados 
Tubo lila: plasma. 
Uso en hematología, sangre total. El EDTA, que cubre 
el interior de los tubos en forma seca, evita que la 
sangre se coagule mediante la absorción de los iones 
de calcio. No tiene ningún efecto sobre los parámetros 
hematológicos. Los tubos EDTA se usan en 
analizadores de muestreo automático de manera 
directa, puesto que la aguja del analizador penetra 
fácilmente la tapa del tubo. Las células sanguíneas son 
estables hasta por 24 horas. VIH y VHC en sangre total 
se mantienen estables hasta 72 horas. Se recomienda 
centrifugar los tubos dentro de las siguientes seis horas 
a la toma de la muestra. 
Tubo gris. 
Uso en azúcar, lactato, alcohol en plasma. Los tubos 
contienen anticoagulantes y estabilizadores que 
detienen la glicólisis, proporcionando estabilidad aún 
sin centrifugar por 48 horas 
Tubo azul. 
Uso en pruebas de coagulación en plasma. Los tubos 
están revestidos con una solución de Citrato de Sodio 
al 3.8 o al 3.2% en una proporción de 1:9. No produce 
agregación plaquetaria debido a la superficie uniforme. 
No necesita revestimiento siliconado. El vacío es 
controlado por largo tiempo. 
 
� Agujas y jeringas en el tamaño y volumen adecuado. 
 
 
 
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� Frascos, tubos, medios de transporte etc. 
� Mantenga una gradilla para colocar los tubos en forma vertical. 
� Recipiente con alcohol antiséptico y torundas de algodón en cantidad Suficiente. 
� Torniquetes (adulto y pediátrico) 
� curitas redondas. 
� Aplicadores, 
� bajalenguas, 
� laminas porta objeto. 
 
9. EXTRACCION VENOSA 
 
a. El paciente debe estar en posición cómoda y adecuada para la toma de la 
Muestra en el lugar destinado para tal fin 
 
b. Bríndele un saludo y una palabra amable y respetuosa para tranquilizarlo. 
c. Dele la explicación sobre el examen que le va a tomar y pregúntele si está 
tomando algún medicamento o si lleva algún tratamiento; esto es muy importante 
para la realización del examen. 
d. Identifique correctamente los tubos y realice chequeo cruzado. 
e. Asegúrese que el equipo necesario para la extracción de sangre 
f. Lávese las manos y utilice guantes para la toma de la muestra 
g. Identifique el sitio de punción. 
 
 
 
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h. Para facilitar la selección de las venas en sujetos cuyos vasos sean difíciles o 
están lesionados por punciones repetidas, y por administración de antibióticos o 
quimioterapia, se podrán aplicar compresas húmedas calientes quince minutos 
antes de intentar la punción. 
i. De ser posible, se evitará la extracción de sangre en un sitio en que haya una 
venoclisis o transfusión de sangre. Si es necesario obtener sangre cerca de un 
sitio en que se aplica una venoclisis, se escogerá una zona por debajo de la 
misma. 
j. El Torniquete: se realiza para facilitar la localización de una vena apropiada para 
realizar la punción. Normas para la realización del torniquete: 
� Aplicar el compresor en el brazo a una distancia de unos 8–10 cm. de la 
zona de punción. 
 
 
 
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� El objetivo es suprimir completamente el flujo venoso sin interrumpir el 
flujo arterial: el pulso debe ser palpable en la arteria radial y, desde 
luego, no se debe observar cianosis distal. 
� En lo posible no utilice torniquete, si este es necesario, colóquelo 5 cms 
arriba del codo, después de haber realizado la asepsia y no antes 
porque produce hemoconcentración y molestias al paciente, déjelo por 
un tiempo no mayor de 15 segundos y retírelo inmediatamente,tan 
pronto se verifica flujo sanguíneo 
 
 
k. Realice una asepsia muy cuidadosa con un algodón impregnado de alcohol al 
70% en forma circular de adentro hacia fuera (no al contrario). 
 
 
l. No toque el brazo con su dedo después de la asepsia para palpar la vena, si lo 
hace, repita nuevamente la asepsia. 
 
m. El operador tendrá la seguridad de introducir la aguja con el ángulo exacto y con 
el bisel hacia arriba, para aminorar el riesgo de perforar la pared contraria de la 
vena y ocasionar un hematoma. 
 
 
 
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n. Después de retirar la aguja coloque un algodón limpio y seco (no con alcohol 
porque esto aumenta el sangrado). A continuación se colocara una bandita yu 
que haga ligera presión para que coagule. 
o. No se le debe decir al paciente que doble el brazo, esto produce hematomas. El 
antebrazo debe permanecer en posición horizontal (estirado, no doblado). Si el 
paciente sangra mucho colóquele la mano hacia arriba. Los hematomas o 
morados que le quedan al paciente son producto de mala toma de la muestra la 
mayoría de las veces. 
p. Retire la aguja de la jeringa o el camisón (en caso que sea con venojet) utilizando 
el recurso de la tapa del guardián y descártela directamente; por ningún motivo 
intente reinsertar nuevamente la aguja en el capuchón, pues esta maniobra es un 
riesgo de accidentes en el laboratorio clínico. 
 
q. despedir al paciente sólo si está en condiciones de irse caminando, 
especialmente si es un paciente que acude a la toma de muestra sin 
acompañante. 
 
10. PROBLEMAS DURNTE L EXTRACCION VENOSA: 
 
Diverso problemas pueden surgir durante la colección de sangre venos esto pudiera 
conllevar a no obtenerse sangre o su colección sea incompleta. 
 
 
 
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FECHA : 01/29/2019 
 
Elaborado Por : 
FRANCIA L. 
CONTRERAS 
 
Revisado Por : 
Molchizu Arango G. 
Aprobado Por : 
Hernan Duran 
Castro 
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16 
 
 
 
 
11. MEDIDAS DE PREVENCION DE FORMACION DE HEMATOMAS Y HEMOLISIS 
 
11.1 Como prevenir los hematomas 
 
• Puncionar solamente la pared superior de la vena 
• Retirar el torniquete antes de remover la aguja 
• Escoger las venas superficiales mayores 
• Aplicar presión sobre el sitio de la punción 
 
11.2 Como prevenir la hemolisis 
 
La hemólisis de una muestra sanguínea puede ocurrir por diversas razones entre las 
que se encuentran: 
• Trauma con una aguja de calibre muy pequeño. 
• Contaminación con agentes antisépticos. 
• Agitación violenta o excesiva de los tubos. 
 
 
 
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• Tiempo de demora en ser analizadas las muestras o en ser separado el 
coágulo de sangre. 
• Presión excesiva para mejorar el flujo sanguíneo. 
• En tubos no llenados al vacío, puede ocurrir hemólisis al llenarlos 
haciendo una fuerte presión sobre el émbolo. 
 
Los componentes más afectados son aquellos cuya concentración es más alta 
intracelularmente que en el plasma, por ejemplo, ión potasio, fosfato, 
deshidrogenasa láctica, aspartato aminotransferasa, hierro sérico, etc. Además, la 
hemólisis afecta la medición instrumental de diferentes componentes sanguíneos. 
 
La hemólisis puede ser prevenida tomando en cuenta los siguientes elementos: 
 
• Mezcle los tubos con aditivos anticoagulantes lentamente por 5 a 10 
veces, inmediatamente después de ser llenado el tubo. 
• Acerque el bisel de la aguja a la pared interna del tubo, para evitar el 
choque fuerte de la sangre contra el fondo del tubo. 
• Esté seguro que el sitio de la punción esté seco del antiséptico. 
• Evite una punción traumática. 
• Evite la agitación vigorosa de los tubos. 
• Evite el calentamiento de los tubos. 
 
11.3 Causas de la Hemoconcentración: 
• Aplicación prolongada de la ligadura. La presión hidrostática causa que 
algo de agua y elementos filtrables escapen al espacio extracelular. Esto 
tiene efectos también sobre el empaque celular. 
• Masaje vigoroso del sitio a puncionar. 
• Esclerosis u obstrucción venosa. 
 
12. ELIMINACION DE RESIDUOS 
 
� La aguja se depositará en una unidad de recolección de residuos corto punzante 
o guardián. este debe cumplir con lo establecido en el manual de desechos 
biológicos y el PGIRH de la institución 
� Las motas de algodón utilizadas para la desinfección y control para no salida de 
sangre después de la punción y capuchones de las agujas , deben desecharse en 
caneca roja 
 
 
 
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18 
 
13. INDICACIONES PARA LA TOMA DE MUESTRAS. 
 
MUESTRAS DE SANGRE ANTICOAGULADA CON E.D.T.A (TUBOS LILA): 
MUESTRA EXAMEN TOMA CONSERVACION Y 
TRANSPORTE 
 
 
 
 
 
 
 
 
SANGRE 
 
 
 
 
 
Hemograma 
Hemoclasificacion 
V.S.G. 
Holoparásitos 
(Gota Gruesa) 
Meticulositos 
Hemoglobina-
Hematocrito 
Recuento De 
Plaquetas 
Frotis De 
Sangre 
Periférica. 
Condiciones del paciente: No requiere ninguna 
condición especial. En caso que sea recuento de 
leucocitos se requiere que el paciente no haya hecho 
ejercicio previo, ya que el esfuerzo muscular produce 
leucocitosis. Los tubos utilizados son de 5 y 3 ml. 
Recipiente: se utiliza tubos con EDTA como 
anticoagulante (tubo tapa lila). 
Cantidad de muestra: 
Adultos: 4.5 ml de sangre 
Pediatría: 2.5 ml de sangre 
 
Toma de muestra 
La punción debe ser limpia, sin trauma, no debe abrir ni 
cerrar el puño, utilizar el torniquete solo en caso 
necesario. 
Mezclado: Asegurarse de que el sistema de vacío ha 
recogido el volumen de sangre adecuado: una exacta 
proporción de sangre y anticoagulante es fundamental en 
el proceso analítico. Mezclar los tubos recién extraídos 
varias veces por inversión para asegurar una perfecta 
mezcla de la sangre con el anticoagulante o los 
activadores de la coagulación. 
 
Nota: el orden de la toma de muestra cuando se realiza 
una recolección múltiple es la siguiente: 
Tubo Azul: con citrato para pruebas de coagulación 
Tubo lila: Con anticoagulante EDTA pruebas 
hematológicas 
Tubo Rojo: sin aditivos pruebas químicas e 
inmunológicas 
Conservación: 
Las muestras pueden ser 
conservadas temperatura 
ambiente máximo 2 horas, 
en caso de requerir más 
tiempo se pueden guardar 
en nevera de 2°C a 8°C. 
 
Transporte: 
La muestra debe ser 
transportada en posición 
vertical en el menor tiempo 
posible y en nevera para 
conservar la integridad de la 
muestra, así como para 
evitar accidentes a la 
persona que la transporta y a 
la auxiliar que la recibe. 
MUESTRAS DE SANGRE COAGULADA, TUBO SECO, (TUBOS TAPA ROJA/ AMARILLA 
CON GEL SEPARADOR): 
MUESTRA EXAMEN TOMA CONSERVACION Y 
TRANSPORTE 
 
 
 
 
 
 
SUERO 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
Condiciones del paciente: ayuno estricto de 10 a 12 
horas, no haber ingerido alcohol, ni haber fumado 
mínimo durante las 24 horas anteriores. Todo 
paciente remitido para estas pruebas debe ser 
interrogado sobre prescripciones médicas: Dieta, 
medicamentos, Antecedentes personales o familiares 
sugestivos de diabetes. 
Recipiente: tubo seco sin aditivo. Se prefiere el tubo 
con gel separador. 
 
Conservación Después 
de la centrifugación y 
separación: 
Pueden permanecer a 
temperatura ambiente de 
22°C a 25°C por8 horas. 
Refrigerar de 2°C a 8°C 
por 7 días. Congelar a – 
20°C de 3 a 6 meses, 
según el analito 
 
 
 
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MUESTRA EXAMEN TOMA CONSERVACION 
Y TRANSPORTE 
 
 
Glucosa pre y 
posprandial 
 
Cantidad de muestra: 
Adultos: 4.5 ml de sangre 
Pediatría: 2.5 ml de sangre 
 
Toma de muestra 
La punción debe ser realizada en condiciones de 
asepsia y por punción venosa, agotando todo el vacío 
del tubo, no se debe sangrar del mismo brazo donde 
se le está aplicando líquidos al paciente. 
 
Glucosa pre y postprandial: Se realiza la toma de 
muestra para glicemia basal, una vez termine se 
registrará la hora en el formato de registro de 
glucómetria (ver anexo 4 Evidencia), y a partir de 
este momento se contaran 2 horas exactas para la 
segunda toma de muestra que se identificará como 
muestra postprandial. Durante las 2 horas de espera 
se advertirá al paciente que no podrá ingerir o beber 
ningún tipo de alimento ni fumar y permanecer en 
reposo sin realizar ningún tipo de actividad física. 
 
Transporte: 
La muestra debe ser 
transportada en posición 
vertical en el menor tiempo 
posible y en nevera para 
conservar la integridad de 
la muestra, asi como para 
evitar accidentes a la 
persona que la transporta y 
a la auxiliar que la recibe. 
MUESTRA EXAMEN TOMA CONSERVACION Y 
TRANSPORTE 
 
 
 
 
 
 
 
 
SUERO 
 
 
 
 
 
 
 
 
Test de 
sullivan 
 
 
Condiciones del paciente: ayuno estricto de 10 a 12 
horas, no haber ingerido alcohol, ni haber fumado 
mínimo durante las 24 horas anteriores. Todo 
paciente remitido para estas pruebas debe ser 
interrogado sobre prescripciones médicas: Dieta, 
medicamentos, Antecedentes personales o familiares 
sugestivos de diabetes. 
Recipiente: tubo seco sin aditivo. Se prefiere el tubo 
con gel separador. 
Cantidad de muestra: 
Adultos: 4.5 ml de sangre 
Toma de muestra 
La punción debe ser realizada en condiciones de 
asepsia y por punción venosa, agotando todo el vacío 
del tubo, no se debe sangrar del mismo brazo donde 
se le está aplicando líquidos al paciente. 
 
Test de O Sullivan: Se realiza la toma de muestra 
para glicemia basal y posteriormente se debe realizar 
una glucometria. El valor de la glucometria debe 
quedar consignado en el formato de registro de 
glucometrias (ver anexo 4 Evidencia), si el valor es 
menor a 126 mg/dl se da a tomar la carga de glucosa 
de 50 gramos, (DISOLVER EN 300 ml de agua 
cristal) en un lapso de diez minutos verificar que la 
paciente consuma el contenido completo de la 
solución bajo supervisión de un bacteriólogo y 
contabilizar el tiempo. Luego de una hora exacta una 
vez termine de tomar la carga se tomara la segunda 
muestra. Este examen se realiza durante las 
semanas 24 - 28 de gestación. 
Conservación Después de 
la centrifugación y 
separación: 
Pueden permanecer a 
temperatura ambiente de 
22°C a 25°C por 8 horas. 
Refrigerar de 2°C a 8°C 
por 7 días. Congelar a – 
20°C de 3 a 6 meses, 
según el analito 
 
Transporte: 
La muestra debe ser 
transportada en posición 
vertical en el menor tiempo 
posible y en nevera para 
conservar la integridad de 
la muestra, así como para 
evitar accidentes a la 
persona que la transporta y 
a la auxiliar que la recibe. 
 
 
 
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20 
 
 
 
 
 
 
 
SUERO 
 
 
 
 
 
 
 
 
Curva de 
Glicemia 
 
Condiciones del paciente: ayuno estricto de 10 a 12 
horas, no haber ingerido alcohol, ni haber fumado 
mínimo durante las 24 horas anteriores. Todo paciente 
remitido para estas pruebas debe ser interrogado 
sobre prescripciones médicas: Dieta, medicamentos, 
Antecedentes personales o familiares sugestivos de 
diabetes. 
El paciente debe disponer de tres horas de su tiempo 
como mínimo para la realización y permanecer en las 
instalaciones del Hospital de la vega 
Recipiente: tubo seco sin aditivo. Se prefiere el tubo 
con gel separador. 
 
Cantidad de muestra: 
Adultos: 4.5 ml de sangre 
 
Toma de muestra 
La punción debe ser realizada en condiciones de 
asepsia y por punción venosa, agotando todo el vacío 
del tubo, no se debe sangrar del mismo brazo donde 
se le está aplicando líquidos al paciente. 
Como se realiza la toma de las cinco muestras: 
Realizar primero glucometria si el valor es mayor a 126 
mg /dl no se debe administrar la carga de glucosa 
dextrosa y solo se realizará la toma de glicemia basal. 
Si la glicemia es menor a 126 mg/dl se realizara lo 
siguiente: 
1. Registrar valor de glucometría en el formato de 
registro de glucometría (ver anexo 5 
Evidencia) 
2. Tomar muestra para Glicemia basal 
Conservación 
Después de la 
centrifugación y 
separación: 
Pueden permanecer a 
temperatura ambiente 
de 22°C a 25°C por 8 
horas. Refrigerar de 
2°C a 8°C por 7 dias. 
Congelar a – 20°C de 
3 a 6 meses, según el 
analito 
 
Transporte: 
La muestra debe ser 
transportada en 
posicion vertical en el 
menor tiempo posible y 
en nevera para 
conservar la integridad 
de la muestra, asi 
como para evitar 
accidentes a la 
persona que la 
transporta y a la 
auxiliar que la recibe. 
 
MUESTRA EXAMEN TOMA CONSERVACION 
Y TRANSPORTE 
 
 
 
 
 
 
 
SUERO 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
Curva de 
Glicemia 
 
3. Administrar carga de acuerdo al paciente en 
estudio, es decir si es un adulto, una mujer 
embarazada o es niños menores de 12 años. A 
continuación se relacionan la cantidad de carga que 
se debe administrar según inserto de casa 
comercial utilizada. 
 
EN ADULTOS: Suministrar en ayunas 3 sobres de 
RODELG CURDEX® (75g Dextrosa) disueltos en 
300 ml de AGUA. 
EN MUJERES EMBARAZADAS: Suministrar en 
ayunas 4 sobres de RODELG CURDEX® (100g 
Dextrosa) disueltos en 300 ml de AGUA. 
Nota: Si se sospecha una DIABETES 
GESTACIONAL, se puede realizar una prueba de 
TAMIZAJE entre las semanas No. 24 y 26 de 
Gestación, EL TEST consiste en administrar: Dos 
(2) sobres de RODELG CURDEX® (50 g. Dextrosa) 
disueltos en 300 ml de AGUA, Exactamente una 
hora después (60 minutos) realizar el test de 
glicemia. Nota: Si el resultado de la prueba es 
Conservación 
Después de la 
centrifugación y 
separación: 
Pueden permanecer a 
temperatura ambiente 
de 22°C a 25°C por 8 
horas. Refrigerar de 
2°C a 8°C por 7 dias. 
Congelar a – 20°C de 
3 a 6 meses, según el 
analito 
 
Transporte: 
La muestra debe ser 
transportada en 
posición vertical en el 
menor tiempo posible y 
en nevera para 
conservar la integridad 
de la muestra, asi 
 
 
 
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mayor a 145 mg/dl se considera que el test es 
positivo y no se debe realizar la prueba Curva de 
glicemia.EN NIÑOS MENORES DE 12 AÑOS O 
PERSONAS CON MENOS DE 30 Kg. DE PESO 
(por INSTRUCCIÓN MÉDICA): Suministrar 1,772g 
de RODELG CURDEX (1,75 g. Dextrosa) por cada 
Kg. de peso 
 
como para evitar 
accidentes a la persona 
que la transporta y a la 
auxiliar que la recibe. 
 
MUESTRA EXAMEN TOMA CONSERVACION 
Y TRANSPORTE 
 
 
 
 
 
SUERO 
 
LIPIDOS 
Colesterol Total 
Colesterol HDL 
Colesterol LDL 
Triglicéridos 
Condiciones del paciente: ayuno estricto de 12 a 
14 horas, no haber ingerido alcohol, ni haber 
fumado. 
Recipiente: tubo seco sin aditivo. Se prefiere el 
tubo con gel separador. 
 
Cantidad de muestra: 
Adultos: 4.5 ml de sangre 
Pediatría: 2.5 ml de sangre 
 
Toma de muestra 
La punción debe ser realizada en condiciones de 
asepsia y por punción venosa, agotando todo el 
vacío del tubo, no se debe sangrar del mismo brazo 
donde se le está aplicando líquidos al paciente. 
 
 
Conservación 
Después de la 
centrifugación y 
separación: 
Pueden permanecer a 
temperatura ambiente 
de 22°C a 25°C por 8 
horas. Refrigerar de 
2°C a 8°C por 7 dias. 
Congelar a – 20°C de 
3 a 6 meses, según el 
analito 
Solo para el colesterol 
HDL no se recomienda 
mantener la muestra a 
temperatura ambiente. 
Transporte: 
La muestra debe ser 
transportada en 
posición vertical en el 
menor tiempo posible y 
en nevera para 
conservar la integridad 
de la muestra, así 
como para evitar 
accidentes a la persona 
que la transporta y a la 
auxiliar que la recibe. 
 
MUESTRA EXAMEN TOMA CONSERVACION 
Y TRANSPORTE 
 
 
 
 
 
 
SUERO 
 
ENZIMAS 
SERICAS 
Amilasa 
Fosfatasa 
Alcalina 
Transaminasa 
Bilirrubinas 
 
Condiciones del paciente: No requiere Ayuno. 
Hay que tener en cuenta que el ejercicio aumenta 
las enzimas cardiacas y la LDH. El alcohol afecta 
las enzimas hepáticas. 
Recipiente: tubo seco sin aditivo. Se prefiere el 
tubo con gel separador. 
 
Cantidad de muestra: 
Adultos: 4.5 ml de sangre 
Pediatría: 2.5 ml de sangre 
 
Toma de muestra 
La punción debe ser realizada en condiciones de 
Conservación 
Después de la 
centrifugación y 
separación: 
Pueden permanecer a 
temperatura ambiente 
de 22°C a 25°C por 8 
horas. Refrigerar de 
2°C a 8°C por 7 días. 
Congelar a – 20°C de 3 
a 6 meses, según el 
analito. 
En cuanto a la 
 
 
 
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asepsia y por punción venosa, agotando todo el 
vacío del tubo, no se debe sangrar del mismo brazo 
donde se le está aplicando líquidos al paciente. 
 
 
fosfatasa alcalina se 
debe procesar antes de 
las 24 horas y no se 
debe refrigerar. 
Transporte: 
La muestra debe ser 
transportada en 
posición vertical en el 
menor tiempo posible y 
en nevera para 
conservar la integridad 
de la muestra, así 
como para evitar 
accidentes a la persona 
que la transporta y a la 
auxiliar que la recibe. 
 
MUESTRA EXAMEN TOMA CONSERVACION 
Y TRANSPORTE 
 
 
 
 
 
 
SUERO 
PRUEBAS 
IMMUNO-
LOGICAS 
PCR 
Prueba de 
embarazo 
RA test 
ASTOS 
VDRL 
Toxoplasma IgG -
IgM 
Troponina 
Condiciones del paciente: Preferiblemente en 
ayunas. 
Recipiente: tubo seco sin aditivo. Se prefiere el 
tubo con gel separador. 
 
Cantidad de muestra: 
Adultos: 4.5 ml de sangre 
Pediatría: 2.5 ml de sangre 
 
Toma de muestra 
La punción debe ser realizada en condiciones de 
asepsia y por punción venosa, agotando todo el 
vacío del tubo, no se debe sangrar del mismo 
brazo donde se le está aplicando líquidos al 
paciente. 
 
 
Conservación 
Después de la 
centrifugación y 
separación: 
Pueden permanecer a 
temperatura ambiente 
de 22°C a 25°C por 8 
horas. Refrigerar de 
2°C a 8°C por 7 dias. 
Congelar a – 20°C de 
3 a 6 meses, segun el 
analito. 
Transporte: 
La muestra debe ser 
transportada en 
posición vertical en el 
menor tiempo posible y 
en nevera para 
conservar la integridad 
de la muestra, así 
como para evitar 
accidentes a la persona 
que la transporta y a la 
auxiliar que la recibe. 
 
 
MUESTRA EXAMEN TOMA CONSERVACION 
Y TRANSPORTE 
 
 
 
 
 
 
SUERO 
 
Pruebas 
Infecciosas 
VIH 
Hepatitis B 
 Toxoplasma 
Condiciones del paciente: Requiere ayuno 
mínimo de 4 horas. 
Recipiente: tubo seco sin aditivo. Se prefiere el 
tubo con gel separador. 
 
Cantidad de muestra: 
Adultos: 4.5 ml de sangre 
Pediatria: 2.5 ml de sangre 
 
Conservación 
Después de la 
centrifugación y 
separación: 
Pueden permanecer a 
temperatura ambiente 
de 22°C a 25°C por 8 
horas. Refrigerar de 
2°C a 8°C por 7 dias. 
 
 
 
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IgM Toma de muestra 
La punción debe ser realizada en condiciones de 
asepsia y por punción venosa, agotando todo el 
vacío del tubo, no se debe sangrar del mismo brazo 
donde se le está aplicando líquidos al paciente. 
 
Nota: Se debe solicitar consentimiento informado 
en el momento de realizar registro de paciente. 
Congelar a – 20°C de 
3 a 6 meses, segun el 
analito. 
Transporte: 
La muestra debe ser 
transportada en 
posición vertical en el 
menor tiempo posible y 
en nevera para 
conservar la integridad 
de la muestra, asi 
como para evitar 
accidentes a la persona 
que la transporta y a la 
auxiliar que la recibe. 
 
MUESTRA EXAMEN TOMA CONSERVACION 
Y TRANSPORTE 
 
 
SUERO 
 
Pruebas de 
Funcion 
Tiroidea 
TSH 
T3 
T4 L 
Condiciones del paciente: No requiere Ayuno. 
Indagar paciente sobre ingesta de medicamentos. 
Recipiente: tubo seco sin aditivo. Se prefiere el 
tubo con gel separador. 
 
Cantidad de muestra: 
Adultos: 4.5 ml de sangre 
Pediatria: 2.5 ml de sangre 
 
Toma de muestra 
La punción debe ser realizada en condiciones de 
asepsia y por punción venosa, agotando todo el 
vacío del tubo, no se debe sangrar del mismo brazo 
donde se le esta aplicando liquidos al paciente. 
 
 
Conservación 
después de la 
centrifugación y 
separación: 
Pueden permanecer a 
temperatura ambiente 
de 22°C a 25°C por 8 
horas. Refrigerar de 
2°C a 8°C por 7 dias. 
Congelar a – 20°C de 3 
a 6 meses, segun el 
analito. 
Transporte: 
La muestra debe ser 
transportada en 
posición vertical en el 
menor tiempo posible y 
en nevera para 
conservar la integridad 
de la muestra, así 
como para evitar 
accidentes a la persona 
que la transporta y a la 
auxiliar que la recibe. 
 
MUESTRAS PARA PRUEBA DE COAGULACION 
 
MUESTRA EXAMEN TOMA CONSERVACION 
Y TRANSPORTE 
 
 
 
 
 
 
SUERO 
 
 
 
 
 
 
 
Condiciones del paciente: Se requiere de algunas 
condiciones especiales, como no tomar 
medicamentos el día anterior o antes del examen 
como salicilatos. El uso de anticoagulantes como 
heparina o warfarina y sus derivados producen un 
aumento en los productos de degradación. 
Indagar paciente sobre ingesta de medicamentos. 
Recipiente: tubo con citrato de sodio. 
conservación 
La muestra debe ser 
centrifugada 
inmediatamente. 
Si no se va a procesar 
inmediatamente 
después de la 
centrifugación se 
 
 
 
MANUAL DE TOMA, TRANSPORTE, CONSERVACION Y 
REMISION DE LA MUESTRA 
CODIGO :GMLCMA-120.11 
VERSION : 1 
 
EMPRESA SOCIAL DEL ESTADO HOSPITAL DE LA VEGA 
GESTION DE LA MEJORA CONTINUA 
PAGINA : 1 DE 1 
FECHA : 01/29/2019 
 
ElaboradoPor : 
FRANCIA L. 
CONTRERAS 
 
Revisado Por : 
Molchizu Arango G. 
Aprobado Por : 
Hernan Duran 
Castro 
Cargo: LIDER LAB. CLINICO Cargo: Asesora Calidad, 
Planeacion 
 
Cargo: Gerente 
Fecha: 29601/2019 Fecha: 29/01/2019 Fecha: enero 29/2019 
 
24 
Pruebas de 
Coagulacion 
 
PT 
PTT 
 
 
Cantidad de muestra: 
Adultos: tubo que contiene 0,5 ml de citrato de 
sodio para 4.5 ml de sangre. 
 
Toma de muestra 
La punción debe ser realizada en condiciones de 
asepsia y por punción venosa, agotando todo el 
vacío del tubo, no se debe sangrar del mismo brazo 
donde se le está aplicando líquidos al paciente. 
 
Tener en cuenta las siguientes 
recomendaciones: 
 
Utilizar el torniquete solo si es necesario, y en ese 
caso mientras se canalice la vena y luego soltarlo. 
No cerrar el puño, no hacer masajes, no dar 
golpecitos. 
Mezclar suavemente por inversión o en forma de 
ocho de 10 a 12 veces. 
 
guarda en tubo plástico 
en las siguientes 
temperaturas: 
2°C a 8° C: por 4 
horas 
- 20 °C : por 2 
semanas 
- 70°C: por 6 semanas 
 
 Transporte: 
La muestra debe ser 
transportada en 
posición vertical en el 
menor tiempo posible y 
en nevera para 
conservar la integridad 
de la muestra, así 
como para evitar 
accidentes a la persona 
que la transporta y a la 
auxiliar que la recibe. 
 
 
MUESTRAS DE ORINA 
 
MUESTRA EXAMEN TOMA CONSERVACION Y 
TRANSPORTE 
 
 
 
 
 
ORINA 
 
 
 
 
 
 
Parcial 
de orina 
Cuidados Y Recomendaciones 
 
Realizar higiene de genitales: En mujeres, es 
necesario lavar el vestíbulo vaginal y la entrada de la 
uretra con agua jabonosa, enjuagar con abundante 
agua. Secar y separar los labios e iniciar la micción. 
En el hombre se debe hacer retracción del prepucio y 
lavar el meato Urinario con agua jabonosa, enjuagar 
con abundante agua y secar. Con el prepucio retraído 
iniciar la recolección de la orina. En pacientes 
ambulatorios es ideal recoger la muestra de la 
primera micción del día. 
Técnica De Recolección 
Instruir al paciente para que inicie la micción, 
desechar la primera parte de la orina, introducir el 
frasco colector, recoger la parte media de la orina sin 
detener el flujo urinario (20-30 cc) y terminar de 
eliminar en el sanitario o pato. Tapar el frasco sin 
contaminar la muestra. 
Equipo 
� Frasco recolector estéril de boca ancha 
de tapa rosca. 
 
conservación: 
Se debe procesar antes de 
una hora o guardarla en 
refrigeración de 2 °C a 8°C. 
 
Transporte: 
La muestra debe ser 
transportada en posición 
vertical en el menor tiempo 
posible y en nevera para 
conservar la integridad de la 
muestra, así como para 
evitar accidentes a la 
persona que la transporta y 
a la auxiliar que la recibe. 
 
MUESTRAS DE UROCULTIVO 
 
 
 
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REMISION DE LA MUESTRA 
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Cargo: Gerente 
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25 
MUEST
RA 
EXAMEN TOMA CONSERVACION Y 
TRANSPORTE 
 
 
 
 
 
ORINA 
 
 
 
 
 
 
Urocultivo 
Condiciones del paciente: 
El tiempo de recolección de la muestra y entrega a 
Laboratorio clínico no puede exceder más de 30 
minutos, Lo anterior con el fin de evitar posibles 
contaminaciones. 
Cuidados Y Recomendaciones 
Realizar higiene de genitales: En mujeres, es 
necesario lavar el vestíbulo vaginal y la entrada de la 
uretra con agua jabonosa, enjuagar con abundante 
agua. Secar y separar los labios e iniciar la micción. 
En el hombre se debe hacer retracción del prepucio y 
lavar el meato Urinario con agua jabonosa, enjuagar con 
abundante agua y secar. Con el prepucio retraído iniciar 
la recolección de la orina. En pacientes ambulatorios es 
ideal recoger la muestra de la primera micción del día. 
Técnica De Recolección 
Instruir al paciente para que inicie la micción, desechar 
la primera parte de la orina, introducir el frasco colector, 
recoger la parte media de la orina sin detener el flujo 
urinario (20-30 cc) y terminar de eliminar en el sanitario 
o pato. Tapar el frasco sin contaminar la muestra. 
Recipiente Frasco recolector estéril de boca ancha de 
tapa rosca. 
 
conservación: 
Llevarla de inmediato a 
Laboratorio (no exceder 
más de 30 minutos de 
recogida) para que en 
laboratorio se refrigere 
inmediatamente de 2 °C a 
8°C, para su posterior envió 
a Laboratorio Colcan. Para 
transporte de Urocultivos 
ver: Manual de transporte 
de muestras. 
Transporte: 
La muestra debe ser 
transportada en posición 
vertical en el menor tiempo 
posible y en nevera para 
conservar la integridad de 
la muestra, asi como para 
evitar accidentes a la 
persona que la transporta y 
a la auxiliar que la recibe. 
 
MUESTRAS DE MATERIA FECAL 
 
MUESTRA EXAMEN TOMA CONSERVACION Y 
TRANSPORTE 
 
 
 
 
 
MATERIA 
FECAL 
 
 
 
Materiafecal 
Coprologico 
Coproscopico 
Sangre oculta 
Condiciones del paciente: 
 
� No tomar laxantes antes de recogerlo 
� Si ha ingerido medio de contraste para 
radiografías esperar mínimo 4 días 
� La recolección para muestras diarreicas de 
Urgencia y Hospitalizado deben ser reciente. 
 
En caso de examen de sangre oculta NO 
CONSUMIR ALIMENTOS ROJOS.(remolacha, 
carnes, etc) 
Recipiente 
� Frasco recolector estéril de boca 
ancha de tapa rosca. 
 
Cantidad de muestra: 
 
Solida: 1 gramo 
Liquida: 5 ml 
 
Toma de la muestra: 
Debe recogerse espontamente con un aplicador o 
con un palo de paleta limpio, cogiendo la parte 
más blanda de la muestra o que contenga sangre 
o moco. 
 
conservación: 
Llevarla de inmediato a 
laboratorio para ser 
procesada rápidamente o en 
su defecto guardar en 
refrigeración de 4°C a 8°C. 
Transporte: 
La muestra debe ser 
transportada en posición 
vertical en el menor tiempo 
posible y en nevera para 
conservar la integridad de la 
muestra, asi como para 
evitar accidentes a la 
persona que la transporta y 
a la auxiliar que la recibe. 
 
 
 
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26 
 
 
MUESTRAS DE FROTIS VAGINAL Y SECRECION URETRAL 
 
MUESTRA EXAMEN TOMA CONSERVACION Y 
TRANSPORTE 
 
FROTIS 
VAGINAL Y 
SECRECION 
URETRAL 
 
Frotis 
vaginal y 
Secrecion 
Uretral 
Condiciones del paciente: 
La paciente debe haber realizado baño en sus genitales 
externos, no realizar ducha vaginal, no aplicarse 
medicamentos, preferiblemente no haber tenido 
relaciones sexuales 3 días previos al examen, no 
realizar la toma si hay sangrado menstrual. 
Recipiente: Tubo estéril tapa rosca con 1.5 ml de 
solución salina al 0.85 % y aplicador estéril. 
 
Cantidad de la muestra: 
Se sugiere una cantidad adecuada, extendidos muy 
gruesos afectan la calidad del resultado, pues se hace 
muy difícil la identificación de las células que se requiera 
observar. Lo ideal es una Buena muestra que no sea 
demasiado abundante, ni muy escasa. 
 
Toma de muestra: Mujer 
Acostar la paciente en posición ginecológica 
Con la mano izquierda y con los dedos índice y Corazón 
separar los labios mayores. 
Introducir suavemente el aplicador para tomar una 
muestra de endocervix y paredes 
Hacer dos extendidos en la lámina en forma circular 
para Gram. 
Colocar los aplicadores en tubo de ensayo con .5 ml de 
solución salina. 
Colocar el tubo en baño serológico a 37 para posterior 
análisis.Hombre 
Indicarle al paciente realizar masaje prostático para 
tomar la muestra; si se observa la salida de material por 
la uretra, recoléctelo en un tubo seco estéril 
En caso de no obtener drenaje con el masaje uretral 
inserte un escobillón estéril pequeño 2 a 4 cm dentro de 
la uretra, rótelo y déjelo introducido al menos por 2 
segundos para facilitar la absorción. El escobillón será 
utilizado para realizar la técnica de extendido en lámina 
 
conservación: 
Tubo con 1.5 ml de solución 
salina incubar en baño maría 
37 °C hasta posterior lectura. 
 
Transporte: 
La muestra debe ser 
transportada en posición 
vertical en el menor tiempo 
posible y en nevera para 
conservar la integridad de la 
muestra, así como para 
evitar accidentes a la 
persona que la transporta y 
a la auxiliar que la recibe. 
 
MUESTRAS DEL TRACTO RESPIRATORIO: 
 
MUESTR
A 
EXAMEN TOMA CONSERVACION Y 
TRANSPORTE 
 
 
 
 
 
FLEMA 
 
 
 
Baciloscopia 
Cultivo BK 
Condiciones del paciente: 
Recolectar la muestra en la mañana, en ayunas 
preferiblemente. 
Instruir al paciente para realizar cepillado de 
dientes y lavado de la lengua sólo con agua para 
remover el exceso de flora oral y retirar prótesis 
dental en pacientes de edad. 
Para pacientes pediátricos incapaces de producir 
un esputo, se solicitara apoyo a la terapeuta 
respiratoria debe obtener la muestra a través de 
succión. 
 
conservación: 
Llevar a laboratorio dentro 
de las dos horas siguientes a 
la recolección de la muestra. 
En caso de no ser procesada 
inmediatamente (BK/ Cultivo) 
puede conservarse a 4°C no 
más de 24 horas. Ver 
manual de Baciloscopias. 
Transporte: 
 
 
 
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REMISION DE LA MUESTRA 
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Cargo: Gerente 
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27 
Para el estudio de Mycobacterias se deben 
recolectar tres muestras seriadas en días 
consecutivos. 
Nota: Para pacientes con orden de baciloscopias 
no hay barreras de acceso en laboratorio ya que 
las muestras se puede recibir las tres el mismo día 
con una interrupción de una hora y a cualquier 
hora del día. 
Recipiente: 
Frasco estéril de boca ancha, de 5 cm de 
diámetro, de tapa rosca, con capacidad de 30 a 50 
ml, de material fácil de rotular. 
Técnica De Recolección 
Instruir al paciente para que tosa con fuerza y 
profundamente, con el fi n de obtener una muestra 
que provenga del tracto respiratorio inferior, libre 
de saliva contenida en la cavidad oral, la cual 
debe expectorar directamente en un recipiente 
estéril de boca ancha de tapa rosca. 
 
La muestra debe ser 
transportada en posición 
vertical en el menor tiempo 
posible y en nevera para 
conservar la integridad de la 
muestra, asi como para 
evitar accidentes a la 
persona que la transporta y a 
la auxiliar que la recibe. 
MUESTRAS ÓTICAS, OCULARES Y OTRAS SECRECIONES: 
 
MUESTRA EXAMEN TOMA CONSERVACION Y 
TRANSPORTE 
 
 
 
 
 
 
RASPADO DE 
PIEL Y UÑAS 
 
 
 
 
 
 
 
 
KOH 
Condiciones del paciente 
No aplicar ningún tratamiento fúngico oral o tópico 
por lo menos 3 días antes. 
No aplicar cremas, ungüentos o polvos en el sitio 
de la toma de la muestra. 
La toma de la muestra debe ser realizada por 
personal experto. 
 
Técnica De Recolección 
� Limpiar la zona afectada con alcohol al 
70%; dejar secar. 
� En lesiones secas raspar los bordes de 
la lesión y de varios sitios con el bisturí 
estéril; deposítelos directamente en la 
lámina porta objeto, adicionar 1 cc de 
hidróxido de potasio (KOH al 10%). 
� En lesiones húmedas obtenga la muestra 
con un escobillón y colóquelo en un tubo 
estéril. 
� Si son pelos, tome con pinzas estériles 
por lo menos 15 de ellos; deposítelos en 
caja de Petri o caja coprológica. 
� Las muestras recolectadas servirán para 
realizar la prueba de KOH. 
 
 
 
conservación: 
Procesar inmediatamente. 
Transporte: 
La muestra debe ser 
transportada en posición 
vertical en el menor tiempo 
posible y en nevera para 
conservar la integridad de la 
muestra, así como para evitar 
accidentes a la persona que la 
transporta y a la auxiliar que la 
recibe. 
 
MUESTRAS DE LESIHMANIA 
MUESTRA EXAMEN TOMA CONSERVACION Y 
 
 
 
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Cargo: Gerente 
Fecha: 29601/2019 Fecha: 29/01/2019 Fecha: enero 29/2019 
 
28 
TRANSPORTE 
 
 
 
 
 
RASPADO DE 
PIEL 
 
 
 
 
 
 
 
 
FROTIS DE 
LEISHMANIA 
Condiciones del paciente 
No aplicar ningún tratamiento fúngico oral o tópico por 
lo menos 3 días antes. 
No aplicar cremas, ungüentos o polvos en el sitio de la 
toma de la muestra. 
La toma de la muestra debe ser realizada por personal 
experto. 
 
Técnica de Toma de muestra 
1. Realizar la limpieza de la lesión utilizando una 
gasa con solución salina. 
2. Realizar presión en la lesión hasta hacer isquemia 
y con el borde romo de una lanceta realice 
suavemente un raspado sobre los puntos elegidos 
para la toma de la muestra. 
3. La linfa obtenida del raspado se extiende sobre 
una lámina de vidrio previamente desengrasada 
4. En cada lámina debidamente marcada se deben 
realizar 3 extendidos de acuerdo al siguiente 
diagrama 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 Cuando las lesiones no tienen bordes y son lesiones 
cerradas, se debe tomar como si fuera una lepra. 
Procedimiento lesiones cerradas: 
Aplicar las normas de bioseguridad empleadas en el 
laboratorio clínico 
Realizar la limpieza de la lesión utilizando una gasa con 
solución salina 
� Haga presión en la lesión hasta hacer isquemia. 
� Haga una pequeña incisión para obtener la linfa. 
 
conservación: 
Dejar secar las láminas a 
temperatura ambiente y colorear 
inmediatamente. 
Transporte: 
La muestra debe ser transportada 
en posicion vertical en el menor 
tiempo posible y en nevera para 
conservar la integridad de la 
muestra, asi como para evitar 
accidentes a la persona que la 
transporta y a la auxiliar que la 
recibe. 
 
13. INDICACIONES PARA ASDMINISTRACION DE CARGA DE GLUCOSA 
Todo paciente al que se le realice este tipo de exámenes se le toma glucometria y se 
registra en formato: “REGISTRO DE GLUCOMETRIA” 
PRUEBA CARGA 
SUMINISTRADA 
CANTIDAD DE 
AGUA 
SEGUNDA 
TOMA 
CURVA DE 
GLICEMIA EN 
ADULTOS 
3 SOBRES 
(Equivalentes a 75gr 
de Glucosa) 
300ml 30 Minutos, 1 
hora, 2 horas y 
3 horas 
CURVA EN 
MUJERES 
EMBARAZADAS 
4 SOBRES 
(Equivalentes a 
100gr de Glucosa) 
300ml 30 Minutos, 1 
hora, 2 horas y 
3 horas 
 
 
 
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Cargo: Gerente 
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29 
GLUCOSA POS 
CARGA 
3 SOBRES 
(Equivalentes a 75gr 
de Glucosa) 
300ml 2 horas 
GLUCOSA POS 
CARGA EN 
MENORES DE 12 
AÑOS O EN 
PERSONAS CON 
MENOS DE 30KG 
Suministrar 1,75g 
por cada Kg de peso 
250ml 2 horas 
TEST DE 
O’SULLIVAN ( 
Tamizaje antes de 
las 24 semanas) 
2 SOBRES 
(Equivalentes a 75gr 
de Glucosa)300ml 1 hora 
 
14. TRANSPORTE DE MUESTRAS 
 
14.1 TRANSPORTE INTERNO 
 
a. TRANSPORTE DESDE EL SERVICIO DE URGENCIAS Y 
HOSPITALIZACION 
 
� El tiempo de transporte de todos los especímenes obtenidos para estudio debe 
ser corto y de acuerdo con la viabilidad de la muestra y el recipiente donde se 
recolectó. 
 
� La auxiliar del servicio de urgencias u hospitalización, llevara las muestras en 
Nevera designado para tal fin, que cumple con las características para el 
transporte y debidamente marcada y rotulada 
 
 
 
 
 
 
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30 
 
 
� Debe entregar a la Bacterióloga de Turno o Auxiliar de Laboratorio clínico 
y esperar a que ella verifique el estado de las muestras y registre en el libro 
de recepción de muestras. 
 
 
 
14.2 TRANSPORTE EXTERNO 
 
a. TRANSPORTE DE MUESTRAS DESDE PUESTO DE SALUD DE 
NOCAIMA 
 
� El tiempo de transporte de todos los especímenes obtenidos para estudio debe 
ser corto y de acuerdo con la viabilidad de la muestra y el recipiente donde se 
recolectó. 
 
� La auxiliar del Puesto de salud embala las muestras en triple embalaje en 
Nevera designada para tal fin, que cumple con las características para el 
transporte y debidamente marcada y rotulada. 
 
 
 
 
 
 
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31 
� Entrega la Nevera al conductor de la ambulancia junto con el formato de envío 
de muestras generado desde el modulo de laboratorio del sistema de 
información CITISALUD (Anexo 4). 
� El conductor de la ambulancia debe entregar a la Bacterióloga de Turno o 
Auxiliar de Laboratorio clínico y esperar a que ella verifique el estado de las 
muestras. 
� La bacterióloga de turno o auxiliar de enfermería debe diligenciar la fecha, 
hora, temperatura y responsable del recibido de las muestras. 
 
b. TRANSPORTE DE MUESTRAS POR CONTINGENCIA 
 
� En momentos de contingencia como: Daño de equipo, Daño de la Red eléctrica, 
daño en las instalaciones físicas, Control de calidad interno o externo inadecuado 
que impida la realización de las pruebas dentro de las instalaciones del 
laboratorio clínico, las muestras serán remitidas por medio de la Red de 
laboratorios, en este caso se cuenta con contrato para la prestación de servicios 
con el laboratorio clínico de la E.S.E Hospital de Villeta. 
 
� La auxiliar de laboratorio clínico o Bacterióloga de Turno realiza triple embalaje de 
las muestras 
 
� La auxiliar de laboratorio clínico o Bacterióloga de Turno entrega la Nevera al 
conductor de la ambulancia junto con el formato de envío de muestras 
generado desde el módulo de laboratorio del sistema de información 
CITISALUD (Anexo 4). 
 
 
 
� El conductor de la ambulancia debe entregar a la Bacterióloga de Turno o 
Auxiliar de Laboratorio clínico en el Hospital de Villeta y esperar a que ella 
verifique el estado de las muestras. 
 
 
 
 
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32 
 La bacterióloga de turno o auxiliar de enfermería debe 
diligenciar la fecha, hora, temperatura y responsable del 
recibido de las muestras. 
 
� Los resultados serán enviados via correo electrónico al mail : 
lab.esehlavega@gmail.com 
 
� Los resultados recibidos se suben a la historia clínica del paciente en archivo 
original como PDF anexo a la Historia Clínica. 
 
 
14. CONDICIONES GENERALES DE ALMACENAMIENTO 
 
c. Las muestras de sangre, orina, esputo, muestras fecales se deben 
procesar lo más pronto posible. Por tanto la a medida que se van tomando 
las muestras se van centrifugando por parte del bacterióloga responsable 
del área de química sanguínea para agilizar el análisis. 
 
d. Las muestras para realizar el examen de Urocultivo no deben superar 90 
minutos de haberla recogido y de entregar a Laboratorio para su posterior 
refrigeración, ya que son muestras que tienen que guardar cadena de frio 
para ser remitidas a Laboratorio en Bogotá. Una vez se reciben las 
muestras en laboratorio se almacenan directamente en la nevera 
refrigeradas hasta el envió con el mensajero. 
 
e. Las muestras de flujo vaginal se mantiene a 37°C en baño serológico, 
hasta su posterior análisis. 
 
f. Las muestras de sangre tomadas en tubo sin anticoagulante, (tubo seco o 
tubo tapa amarilla o roja) deben ser centrifugados para obtener el suero 
para su posterior procesamiento. En caso que las muestras Sean 
guardadas para el procesamiento de exámenes especializados, se 
refrigera (de 2 a 8 ºc). 
 
15. VARIABLES QUE INFLUYEN EN LA ESTABILIDAD DE LAS MUESTRAS DE 
LABORATORIO 
 
• Agitación de la muestra 
 
 
 
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GESTION DE LA MEJORA CONTINUA 
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FECHA : 01/29/2019 
 
Elaborado Por : 
FRANCIA L. 
CONTRERAS 
 
Revisado Por : 
Molchizu Arango G. 
Aprobado Por : 
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Cargo: LIDER LAB. CLINICO Cargo: Asesora Calidad, 
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Tiene que evitarse tanto como sea posible que durante el transporte las muestras 
estén sometidas a movimientos bruscos que las deterioren. Tienen que fijarse en 
los soportes. 
• Exposición a la luz 
Es importante impedir la exposición de las muestras a la luz, ya que hay 
propiedades fotosensibles en la luz artificial y en la del sol. 
• Presión atmosférica 
En caso de transporte aéreo, las muestras tienen que prepararse para que 
resistan posibles cambios de presión. 
• Temperatura 
El transporte tiene que asegurar la temperatura de conservación de las muestras. 
Según su naturaleza, así como la de los constituyentes a analizar, la conservación 
y transporte requerirá que estén congeladas, refrigeradas a temperatura ambiente 
o en otro intervalo de temperatura. 
• Tiempo de transporte 
Las muestras tienen que transportarse al laboratorio lo antes posible, con el fin de 
minimizar el tiempo transcurrido desde la obtención hasta su recepción. Este 
tiempo dependerá del constituyente a examinar. 
• Embalaje y etiquetado 
Para el transporte de las muestras de diagnóstico, el paquete a transportar tiene 
que cumplir una serie de requisitos en relación al etiquetado o su señalización, 
dependiendo de si el transporte se hace por vía terrestre o aérea. 
 
 
 
16. CRITERIOS DE RECHAZO DE MUESTRAS 
 
MUESTRAS DE SANGRE 
� Muestras sin marcar 
� Muestras Hemolizadas 
� Muestras coaguladas 
� Muestras sin relación anticoagulante/sangre. 
� Demora prolongada al enviar las muestras al laboratorio.MUESTRAS DE ORINA 
� Muestras sin marcar 
� Muestras tomadas después de una hora, especialmente urocultivos 
� Muestras en frascos no estériles. 
� Volumen inadecuado 
� Contaminación obvia de la muestra. 
 
 
 
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� Demora prolongada al enviar las muestras al laboratorio clinico. 
 
 
17. IDENTIFICACION DE MUESTRAS EN FASE ANALITICA. 
 
1. En el área analítica el sistema de información CITISALUD realiza un listado de 
datos registrados por la facturadora, la Bacterióloga responsable de cada área 
realiza un listado con el paquete de ordenes médicas que llegaron en la toma de 
muestras del día, inicialmente debe verificar cada orden médica para realizar el 
listado de trabajo, verificando los tres identificadores de las muestras. 
2. En caso de observar algún error en esta fase, informar directamente a la 
coordinadora de laboratorio para tomar acciones correctivas, dependiendo la 
causa. 
3. Para el procesamiento de las muestras de orina es importante verificar el 
consecutivo que la auxiliar de laboratorio ha registrado en el tubo de las orinas y 
verificar con el listado que realiza la auxiliar con los datos del paciente y donde 
también queda registrado el reporte que realiza la bacterióloga. 
4. Las láminas de frotis vaginales deben registrar los tres identificadores y deben 
conservarse después de la coloración. 
 
18. TRANSPORTE DE MUESTRAS DENTRO DEL LABORATORIO EN FASE 
ANALITICA. 
 
En el área de Uroanalisis es necesario transportar de la sección al área de centrifugas, 
para tal fin la auxiliar y/o bacteriólogo/a, introduce los tubos marcados organizados en 
una gradilla. De la misma manera devuelve los sedimentos al área inicial. 
 
19. IDENTIFICACION DE MUESTRAS EN FASE POS ANALITICA. 
 
Los resultados son verificados por la Lider del laboratorio desde el sistema de 
información, lo cual permite conocer la trazabilidad y oportunidad de entrega de los 
resultados. 
20. ACCIONES DE MEJORA EN TOMA DE MUESTRAS: 
Se realiza seguimiento de la toma de muestras por medio de la lista de chequeo en toma 
de muestra, la cual permite evidenciar los errores que puedan conllevar a eventos 
 
 
 
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adversos, minimizando el riesgo de ocurrencia mediante el establecimiento de acciones 
de mejora inmediatas. 
Esta evaluación se realiza una vez a la semana en dia aleatorio y es realizada por la 
líder del laboratorio clínico en el laboratorio clínico y los servicios de la institución. 
El formato se encuentra anexo al presente documento. 
21. REMISION DE MUESTRAS A LABORATORIO DE REFERENCIA. 
 
Con el único propósito de brindar un servicio oportuno y confiable, la E.S.E Hospital De 
La Vega tiene convenio para prestar el servicio de toma, remisión y transporte de muestras con 
el laboratorio clínico ANDREAS ROSTHTEIN laboratorio de referencia Habilitado y certificado, 
el cual ofrece tecnología de punta con un estricto y riguroso control de calidad en las áreas de 
laboratorio clínico de rutina y especializados, toxicología, patología, citología y salud 
ocupacional. 
 
El laboratorio clínico ANDREAS ROSTHTEIN provee un manual de servicios que sirve como 
guía y consulta para la correcta remisión de muestras a través de la página de internet: 
http://www.lcarlab.com, presta servicio de asesoría técnico-científica como apoyo en la 
interpretación clínica y para el servicio al cliente cuenta con un grupo de bacteriólogos que 
atiende las inquietudes y necesidades de forma inmediata. 
 
Para la consulta de resultados asigna un código al laboratorio que remite con el que puede 
ingresar a la página web 
 
 
• Se ingresa usuario y código 
 
 
 
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• La bacterióloga genera a partir del modulo de laboratorio clínico una tabla 
dinámica con los exámenes de remisión, donde se puede diligenciar los datos de 
fecha, y responsable del envío y recibido para el respectivo soporte en la 
institución 
 
• El triple embalaje de las muestras se realiza según las indicaciones del manual de 
toma de muestras del laboratorio de referencia, en nevera rotulada: 
 
 
 
• Se envía las muestras con conductor de ambulancia, quien se encarga de hacer 
entrega y revisar el recibido de las muestras. 
 
 
 
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BIBLIOGRAFÍA 
 
Secretaría Distrital de Salud de Bogotá, D. C. Dirección de Salud Pública, Manual para la 
toma de muestras para análisis microbiológico, Primera edición Bogotá, mayo de 2009. 
 
Norma técnica Colombiana NTC ISO 14001:1996 Sistemas de gestión ambiental. 
 
Ministerio de la Protección Social - Instituto Nacional de Salud. PROTOCOLO PARA LA 
VIGILANCIA EN SALUD PÚBLICA DE LEISHMANIASIS. 
 
Real Decreto 664/1997 de 12 de mayo, sobre Protección de los trabajadores contra los riesgos 
relacionados con la exposición a agentes biológicos durante el trabajo. Modificado por la Orden 
de 25 de marzo de 1998. BOE nº 124 de 24 de mayo de 1997. 
www.fisterra.com. Rubio B, Vázquez F, Pérez J, Malo F, García F, Fluiters E, Carpente 
J. Diabetes Gestacional. Guías Clínicas 2001; 1 (32). www.texasdiabetes.com. Diabetes 
Gestacional. Methodist Health Care System, Houston, Tx. 2003. www.tuotromedico.com. 
Diabetes y Embarazo. Mayo 2003. 
Laboratorios. Manual de Procedimientos. 3ª. Ed. Bogotá, Colombia. Editorial Amado 
Gonzales y Cia. LTDA. 2001. Pág. 251-253. Ángel G. Interpretación clínica y de 
laboratorio. 6ª. Ed. Bogotá. Editorial Panamericana.