Manual de Toma de muestra de Laboratorio Clinico_3

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Código: DOC – LAB 5 
APL 1.2. 
Edición: 2 
Fecha: Junio 2010 
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Laboratorio 
Clínico 
 
SERVICIO DE SALUD METROPOLITANO 
OCCIDENTE 
HOSPITAL SAN JUAN DE DIOS-CDT 
 
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4. Responsabilidades: 
 
 Responsable 
 
Actividad 
Médico Oficial Administrativo 
Tecnólogo 
Médico 
Personal de 
salud 
encargado 
Auxiliar 
de 
Servicio 
Recepción 
Lab. Clínico 
Indicación de 
la muestra E I I I I I 
Elaboración 
orden de 
examen 
E I I I I I 
Ingreso orden 
al SIL I E – C I – C I – E I I 
Preparación 
toma de 
muestra 
I I – E I – C I – E I I 
Toma de 
muestras I I I – C E I I 
Transporte de 
muestras I I I – C I E I 
Recepción de 
muestras I I I – C I I E – C 
Aceptación o 
rechazo I I I - C I I E - C 
C: Controla E: Ejecuta I: Informado 
 
 
 
5. Definiciones: 
 
5.1 Bioseguridad: Conjunto de medidas para proteger la salud humana y el ambiente 
frente a diferentes riesgos. 
 
5.2 Hemólisis: Liberación de la hemoglobina contenida en el glóbulo rojo o hematíe a 
consecuencia de una alteración de la pared del glóbulo o cuando el glóbulo esta 
distendido por la acción de una solución hipotónica. 
 
5.3 Flebotomía: Insición de un vaso sanguíneo para la obtención de sangre. 
 
5.4 Flebotomista: Personal de salud capacitado para la obtención de muestras 
sanguíneas. 
 
 
 
 
 
 
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6. Desarrollo: 
 
6.1 Flujo de procesos: 
 
6.1.1 Diagrama del procedimiento en la Unidad de Toma de Muestras (Ver Flujograma 1): 
 
• La atención de los pacientes se realiza a través de la ventanilla de la Unidad de Toma 
de Muestras, tanto como para dar hora como para recibir a los pacientes citados. 
• El paciente citado debe entregar su orden de examen en ventanilla y esperar su 
llamado que se realizara desde la puerta de ingreso. 
• La orden debe ser ingresada al sistema informático del Laboratorio (SIL) donde se 
generan etiquetas con la identificación del paciente, (Código de barras) las que se 
colocan en los tubos o envases de las muestras. 
• Una vez llamado el paciente, se procede a explicarle el procedimiento. 
• Realizar toma la muestra, quedando registrado el nombre del operador que lo atendió. 
• Finalmente informar al usuario donde retirar el resultado del examen, se despide y se 
le indica la ruta. 
• Las muestras obtenidas se clasifican según tipo de examen y se colocan en el carro 
de transporte. 
• Estas muestras son transportadas según requisitos. 
• Se entregan en la recepción del Laboratorio donde queda registrada su aceptación en 
una planilla de trabajo diaria. 
 
 
6.1.2 Escala de preferencia en la atención a los pacientes ambulatorios: 
 
Para poder optimizar los recursos y dar una respuesta oportuna se atienden los 
pacientes de acuerdo a una prioridad, la cual se establece a continuación: 
 
• Pacientes Transplantados: que están en control post trasplante y que son atendidos el 
mismo día. 
• Pacientes en TAC: con tratamiento anticoagulante y que serán atendidos el mismo día. 
• Pacientes pediátricos con exámenes de niveles plasmáticos de drogas. 
• Pacientes de Hemato-oncologia 
• Pacientes Insulinodependientes 
• Exámenes de cortisol y PTGO: Exámenes que deben tomarse la primera muestra a las 
08:00 hrs. 
 
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6.2 Bioseguridad: 
 
• Disponer de los materiales necesarios en un área de trabajo limpia y adecuada 
• Lavado de las manos. 
• Usar mascarillas para toma de muestras de alto riesgo (Ej. Virus respiratorios) o en 
caso de que el paciente tosa constantemente. 
• El personal debe estar vacunado contra virus Hepatitis B e Influenza. 
• Usar precauciones estándar mínimas con todo paciente. Toda muestra es 
potencialmente patógenas 
• Si el paciente tose con frecuencia, el personal debe colocarse mascarilla 
• Tomar precauciones al manipular las agujas y lancetas. Después de su uso descartar 
inmediatamente en contenedor para material cortopunzante. No recapsular agujas. 
• Si hay derrame de sangre en el mesón de toma de muestra, limpiar con Hipoclorito de 
sodio al 0,1% 
 
 
6.3 Factores pre-analíticos que afectan las pruebas: 
 
Es importante tener presente que existen muchos factores que pueden afectar el 
resultado de las pruebas de laboratorio, algunos de los cuales pueden ser evitados con 
una adecuada orientación al paciente y una correcta técnica de extracción sanguínea. A 
continuación enumeraremos algunos de estos factores y las recomendaciones al respecto. 
 
6.3.1 Interferencias: 
 
• La ansiedad y la tensión mental o física puede afectar los niveles de muchos 
componentes sanguíneos. Tal es el caso de las concentraciones de Prolactina, 
Cortisol, Catecolamina, Aldosterona y Renina. También puede elevar el recuento de 
leucocitos. 
• Los ejercicios físicos vigorosos 3 días previos a la toma de la muestra pueden alterar 
los niveles de CK, LDH, AST, potasio, glucosa, lactato, prolactina y cortisol. 
• El ritmo diurno de algunos fluidos corporales muestran fluctuaciones durante el día, 
por ejemplo, los niveles de cortisol son altos en la mañana, pero decrecen en la tarde. 
Los niveles de hierro tienden a caer durante el día. 
• La situación dietética del paciente puede ser importante para ciertas pruebas. Tal es el 
caso de las variaciones en la concentración de lípidos después de una comida 
grasosa. El suero sanguíneo muestra una apariencia lechosa debido a la presencia de 
triglicéridos y quilomicrones. Estos sueros hiperlipidémicos influyen en las mediciones, 
por lo que se recomienda tomar la muestra después de un periodo de ayuno, 
usualmente de toda la noche. 
• La ingestión de etanol induce cambios en la composición de los lípidos corporales. De 
particular interés son las enzimas hepáticas, como la fosfatasa alcalina, 
transaminasas, gama glutamil transferasa y otros componentes como la glucosa, 
triglicéridos, uratos y lactato. 
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• El fumar puede producir variaciones en los resultados de algunos componentes como 
la lipasa, amilasa, colesterol, glucosa e igualmente afecta la absorción gástrica en la 
prueba de tolerancia a la glucosa. 
• La cirugía y la inyección intramuscular provoca un aumento en la concentración de 
creatinquinasa. 
• La exploración rectal o la manipulación prostática, puede causar un aumento en la 
concentración del antígeno prostático específico. 
• Los anticonceptivos orales afectan la actividad estrogénica y conducen al aumento de 
muchas proteínas como la tiroxina, cortisol y las hormonas sexuales. 
• Medicamentos como barbitúrico y fenitoína, inducen enzimas hepáticas con valores 
elevados. 
• Evitar extraer sangre de una zona previamente puncionada para administrar un 
tratamiento intravenoso, ya que las concentraciones de muchos compuestos pueden 
resultar erróneamente altos o bajos. 
• Evitar provocar hemólisis durante el proceso de extracción o llenado de los tubos, lo 
cual afectará algunas pruebas relevantes. La hemólisis puede ocurrir también por 
exceso de residuos del alcohol utilizado durante la desinfección del sitio a puncionar. 
• Evitar puncionar en un área con hematoma, fístulas, quemaduras, escoriaciones de la 
piel, cicatrices. 
• Verificar las condiciones de ayuno para las pruebas que lo requieran. 
• Las pruebas seriadas como curvas de tolerancia, post-prandial, post-ejercicios, etc. 
deben monitorearse en el tiempo adecuado. 
• Rotular los tubos con la hora de toma de la muestra en el caso de pruebas seriadas. 
• Es recomendable preguntar al paciente si existen restricciones para la flebotomía 
(Mastectomía, etc.). 
• Los tubos con anticoagulante deben invertirse suavemente y colocarlos en posición 
vertical, para evitar el contacto prolongado con la tapa del tubo. 
• Los separadores de suero se utilizan para separar el suero libre del coágulo de 
sangre. Estos pueden ser de gel de silicón, poliéster o perlas de vidrio. En algunos 
casos debido a problemas en la centrifugación y a altas temperaturas, pueden quedar 
gotas de gel dentro del suero. Se ha demostrado que estas gotas de gel pueden 
interferir con algunas mediciones. Es conocido que la progesterona se reduce 
apreciablemente cuando se almacena sobre gel por varios días. 
• Igualmente ocurre con la lidocaína, fenobarbital, fenitoína y carbamazepina. 
• Algunas hormonas polipeptídicas de bajo peso molecular, como la ACTH, glucagón, 
gastrina y otras hormonas intestinales, se destruyen rápidamente por enzimas 
presentes en la sangre. Por lo que es necesario centrifugar la muestra a baja 
temperatura, 10 minutos después de la toma y almacenar el suero o plasma 
inmediatamente a –20 C. 
• Aquellos tubos con anticoagulantes deben ser llenados exactamente hasta la marca, 
cualquiera sea el método que se utilice para extraer la sangre, para evitar que la 
concentración del anticoagulante sea demasiada alta, tal que afecte el sistema de 
medición. 
 
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6.3.2 Datos en la orden de solicitud del examen: 
 
Todas las muestras deben ir acompañadas de una solicitud debidamente formulada. 
La solicitud debe contener la siguiente información: 
• Identificación completa del paciente: 
- Nombre completo (Dos nombre, dos apellidos). 
- Sexo. 
- Número de cédula de Identidad. 
- Edad o fecha de nacimiento. 
- Procedencia. 
- Sala y número de cama en caso de pacientes hospitalizados. 
• Datos del profesional solicitante (Nombre completo y/o código). 
• Pruebas que se solicitan. 
• Consentimiento informado cuando sea necesario (Ej. VIH). 
• Incluir información clínica de utilidad (Diagnóstico, ingestión de fármacos, restricciones 
especiales, etc.). 
• Fecha de orden. 
 
6.3.3 Características del paciente: 
 
• La primera impresión y las observaciones inmediatas pueden ser útiles para el técnico 
o profesional que tome la muestra, permitiéndole establecer el tipo de paciente, el sitio 
de la punción y las precauciones necesarias a considerar durante el procedimiento. 
• La comunicación afectiva es determinante en la relación con el paciente. Hablar con el 
paciente. Explicar el procedimiento a seguir. 
• La identificación correcta del paciente es obligatoria. En caso de pacientes 
hospitalizados verificar la información con brazalete de identificación. En pacientes 
ambulatorios corroborar la identidad solicitando siempre la cedula de identidad. 
• Observar si el paciente está sudoroso, agitado, sedado o es agresivo, arrogante, 
conflictivo. 
• Evitar cualquier discusión con el paciente. De ser así, llamar al Jefe de Toma de 
Muestras o enfermera encargada del sector. Tratar de calmar y comprender al 
paciente, sin embargo, usted siempre tiene la opción de no atender un paciente 
agresivo que pueda causar lesión a usted o a sí mismo. Comunicar de ésta situación a 
la persona encargada de la Toma de Muestras o de la Unidad o Servicio clínico. 
• En todo momento mantener la ética y confidencialidad del paciente y sus exámenes. 
Los Códigos de ética de los trabajadores de la salud, prohíben estrictamente que los 
aspectos de salud del paciente sean divulgados con propósitos no profesionales. 
• En la Unidad de Toma de muestras no se debe dar preferencia a la atención de 
funcionarios, el horario destinado para la atención de funcionarios es de lunes a 
viernes de 07:30 a 08:00 hrs. 
 
 
 
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6.4 Preparación del equipo: 
 
 
 
 
Antes de iniciar el procedimiento debe contar todos 
los implementos necesarios disponebles. 
 
 
 
 
 
 
 
6.4.1 Tubos de colección: 
 
Los tubos están predeterminados para llenarse con un determinado volumen de 
sangre por vacío. La tapa de goma está codificada por color, de acuerdo a su uso y sus 
aditivos: 
 
Tubo tapa roja 
Uso: Química, inmunología, banco de sangre, derivados. 
Aditivo: Ninguno. 
Tubo tapa amarilla 
Uso: Hormonas, niveles plasmáticos, marcadores tumorales. 
Aditivo: Gel – Separador. 
Tubo tapa lila 
Uso: Hematología, biología molecular, líquidos biológicos, hemoglobina glicosilada. 
Aditivo: Anticoagulante EDTA. 
Tubo tapa celeste 
Uso: Pruebas de Coagulación. 
Aditivo: Anticoagulante Citrato de sodio 3.2%. 
Tubo tapa negra 
Uso: VHS. 
Aditivo: Anticoagulante Citrato de sodio 3.8%. 
Tubo tapa gris 
Uso: Glicemia. 
Aditivo: Anticoagulante Fluoruro de sódio. 
Tubos tapa verde 
Uso: Pruebas Bioquímicas, ElectrolitosPlasmáticos, marcadores virales. 
 Aditivo: Heparina de Litio. 
 
 
 
 
 
 
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6.4.2 Insumos necesarios: 
 
• Agujas: Están numeradas dependiendo de su calibre. Para colección de sangre se 
utilizan agujas de diámetro 21G (0.8 mm) x 1”. Para lactantes y punciones de vías 
venosas difíciles se utilizan mariposas de distintos calibres. 
• Jeringas de 3, 5, 10 y 20 cc 
• Adaptador para tubos al vacío. 
• Ligadura: Recomendable de 2 tamaños para adultos y niños. 
• Alcohol al 70%. 
• Algodón. 
• Guantes de procedimientos 
• Curita o venda adhesiva. 
• Frascos para hemocultivos. 
• Tubos de exámenes. 
• Sondas. 
• Frascos tapa rosca para muestras de orina. 
• Cajas para baciloscopías. 
• Frascos para exámenes parasicológicos y laminas para test de Graham. 
• Tórulas con medio de transporte para muestras microbiológicas 
 
 
6.5 Procedimiento de punción venosa: 
 
Las muestras deben tomarse correctamente y bajo las condiciones más favorables 
para evitar errores en sus resultados. Esto incluye la absoluta identificación del paciente, 
elección del sitio de punción y el volumen a colectar. El paciente debe estar en una 
posición cómoda. 
 
6.5.1 Selección del sitio a punción: 
 
• Evitar áreas con presencia de hematoma (s), fístulas, quemaduras, escoriaciones de la 
piel o cicatrices. 
• Evitar tomar muestra del brazo del mismo lado donde se ha realizado una 
mastectomía reciente. 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
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Palpación 
• Antes de proceder a puncionar, escoger la vena mas apropiada. 
• Colocar la ligadura de 6 a 7 cm. por arriba del sitio seleccionado. Tener presente no mantener 
la ligadura por más de 3 minutos, para evitar la hemoconcentración. 
• Las venas más utilizadas para la venopunción, están localizadas en el área antecubital. Entre 
éstas tenemos: 
 
 
 
 
a) Vena Cubital: Es la más larga y gruesa de todas y es la 
preferida por bordear la musculatura del brazo. 
b) Vena Cefálica: Tiene iguales características de la anterior, pero 
es un poco menos gruesa. 
c) Vena Basílica: Es más pequeña que las anteriores. Esta vena 
está cerca de la arteria braquial, por lo que su punción es 
riesgosa y su área es más sensible y dolorosa para el paciente. 
 
 
 
 
 
 
 
Palpar con la punta de los dedos, tratando de seguir el 
rastro de las venas. En ocasiones si no visualiza la 
vena, puede forzar la sangre dentro de la vena a 
través de un suave masaje de abajo hacia arriba. 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
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Asepsia del sitio de punción 
 
 
 
Una vez que se ha decidido por la vena a puncionar, 
realizar asepsia de la zona con alcohol al 70% utilizando 
algodón y con movimientos circulares del interior al 
exterior. Debe tener presente que una vez realizada la 
descontaminación, no debe volver a tocar el área de 
punción una vez realizada la asepsia de la zona a 
puncionar. 
 
 
 
 
 
6.5.2 Procedimiento de punción venosa: 
 
• El brazo del paciente debe estar preferiblemente en posición cómoda horizontalmente. 
• Con la ligadura en posición, haga que el paciente cierre y abra el puño de 3 a 5 veces 
para bombear mejor la sangre, y luego que indicar mantener el puño cerrado. 
• Si se trata de un niño, es recomendable colocar 2 dedos de la mano, debajo del codo 
del paciente, para evitar que doble el brazo durante la extracción. 
 
Extracción con jeringa 
 
 
• Cuando vaya a proceder a realizar la extracción con jeringa, 
tener presente el calibre a utilizar y el tamaño de la jeringa 
según el volumen a extraer. 
• Colocar la punta de la aguja en un ángulo de 15 a 30º sobre 
la superficie de la vena escogida y atravesar la piel con un 
movimiento firme y seguro, hasta el lumen de la vena. 
 
 
• Apretar firmemente la jeringa, tirar el émbolo con un 
movimiento continuo y suave para extraer la sangre hasta el 
volumen requerido. Evite presionar fuertemente la aguja 
durante la extracción. 
• Aflojar la ligadura para que la sangre fluya mejor y remueva 
la aguja del brazo con movimiento suave, cubrir con tórula 
sin apretar el área de la punción mientras se retira la aguja. 
• Presionar el algodón sobre el sitio de punción aplicando una 
presión adecuada y no excesiva para evitar la formación de 
hematoma. 
• Llenar los tubos en su orden. 
• Desechar la aguja en caja para eliminar material 
cortopunzante. 
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• Colocar un parche curita o un algodón con venda adhesiva en 
el sitio de la punción. 
 
 
 
 
 
 
Extracción con sistema de extracción al vacío 
 
 
• Colocar la punta de la aguja en un ángulo de 15 a 30º 
sobre la superficie de la vena escogida y atravesar la piel 
con un movimiento firme y seguro, hasta el lumen de la 
vena. 
• Llenar los tubos en el orden correspondiente. 
• Aflojar la ligadura y presione el algodón sobre el sitio de la 
punción aplicando una presión adecuada y no excesiva 
para evitar la formación de hematoma. 
 
 
 
 
 
6.6 Problemas durante la extracción venosa: 
 
Diversos problemas pueden surgir durante la colección de sangre venosa esto 
pudiera conllevar a no obtenerse sangre o su colección sea incompleta. 
 
 
 
Colocación correcta de la aguja: Coloque la aguja con el bisel hacia arriba 
 
 
 
 
Cambio en la posición de la aguja. Movimiento de retroceso que la saca del 
lumen venoso. 
 
 
 
Movimiento hacia delante que atraviesa la vena. 
 
 
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Clínico Vigencia: Abril 2014Movimiento de la aguja, tal que el bisel de la aguja quede contra la pared de la 
vena, afectando la entrada de la sangre. 
 
 
 
Colapso de la vena: En estos casos, afloje el torniquete para incrementar el flujo 
sanguíneo, remueva la aguja ligeramente y vuelva a redireccionarla. 
 
 
Formación de hematoma: Si se forma un hematoma bajo la piel adyacente al sitio 
de la punción, afloje la ligadura y retire la aguja. Aplique presión firmemente 
sobre el hematoma. 
 
 
 
Sangre arterial: Pudiera suceder que se atraviese una arteria, en estos casos la 
sangre se observa de un color rojo brillante. Retire la aguja y aplique presión por 5 
minutos 
 
 
 
6.7 Medidas de prevención de formación de hematomas y hemólisis: 
 
6.7.1 Como prevenir los hematomas: 
 
• Puncionar solamente la pared superior de la vena. 
• Retirar la ligadura antes de remover la aguja. 
• Escoger las venas superficiales mayores. 
• Aplicar presión sobre el sitio de la punción. 
 
6.7.2 Como prevenir la hemólisis: 
 
La hemólisis de una muestra sanguínea puede ocurrir por diversas razones entre las 
que se encuentran: 
• Trauma con una aguja de calibre muy pequeño. 
• Contaminación con agentes antisépticos. 
• Agitación violenta o excesiva de los tubos. 
• Tiempo de demora en ser analizadas las muestras o en ser separado el coágulo de 
sangre. 
• Presión excesiva para mejorar el flujo sanguíneo. 
• En tubos no llenados al vacío, puede ocurrir hemólisis al llenarlos haciendo una fuerte 
presión sobre el émbolo. 
 
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Los componentes más afectados son aquellos cuya concentración es más alta 
intracelularmente que en el plasma, por ejemplo, ión potasio, fosfato, deshidrogenasa 
láctica, aspartato aminotransferasa, hierro sérico, etc. Además, la hemólisis afecta la 
medición instrumental de diferentes componentes sanguíneos. 
 
La hemólisis puede ser prevenida tomando en cuenta los siguientes elementos: 
• Mezcle los tubos con aditivos anticoagulantes lentamente por 5 a 10 veces, 
inmediatamente después de ser llenado el tubo. 
• Acerque el bisel de la aguja a la pared interna del tubo, para evitar el choque fuerte de 
la sangre contra el fondo del tubo. 
• Esté seguro que el sitio de la punción esté seco del antiséptico. 
• Evite una punción traumática. 
• Evite la agitación vigorosa de los tubos. 
• Evite el calentamiento de los tubos. 
 
6.8 Causas de la Hemoconcentración: 
 
• Aplicación prolongada de la ligadura. La presión hidrostática causa que algo de agua y 
elementos filtrables escapen al espacio extracelular. Esto tiene efectos también sobre 
el empaque celular. 
• Masaje vigoroso del sitio a puncionar. 
• Esclerosis u obstrucción venosa. 
6.9 La punción capilar: 
 
La sangre de la punción capilar es una mezcla de sangre arteriolar y venosa, más 
que de capilar. La obtención de sangre por punción capilar es particularmente útil en las 
siguientes circunstancias: 
• Punción venosa es peligrosa para el paciente. 
• No se puede acceder las venas recomendadas. 
• Las venas se están utilizando para administrar medicamentos. 
• El volumen de sangre requerido no justifica una extracción venosa. 
 
Estas circunstancias se aplican a: 
• Neonatos. 
• Lactantes. 
• Niños. 
• Adultos con quemaduras severas. 
• En pacientes muy obesos. 
• En caso de terapias intravenosas. 
 
La punción cutánea se puede llevar a cabo en: 
• La superficie más lateral o más medial de la planta del pie. 
• La superficie medial plantar del dedo gordo del pie. 
• La superficie lateral del dedo medio o anular, preferiblemente. 
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• El lóbulo de la oreja, evitando la mejilla. 
 
6.9.1 Sitios para punción: 
 
 
Sitio recomendado para punción capilar. 
 
 
 
 
 
Punción capilar con porta-lanceta 
 
 
 
 
 
6.9.2 Procedimiento de la punción capilar: 
 
• Una vez escogido el sitio de la punción, dar un ligero masaje al área para concentrar la 
sangre. 
• Limpiar el sitio con de punción con alcohol al 70%. 
• Con una mano sostener el dedo o área a puncionar y con la otra sostener la lanceta. 
• Realizar la punción con la lanceta, realizando un movimiento rápido, firme y profundo. 
• Después de puncionar, descartar la primera gota de sangre, que contiene líquido 
tisular, limpiándolo con el algodón. 
• Presionar el dedo para hacer salir la sangre, procurando que sea de manera 
ininterrumpida. 
• Una vez tomada la muestra, sellar los tubos capilares con sellador o los microtubos 
con su tapa. 
• Los microtubos y capilares con anticoagulantes deben ser invertidos suavemente por 
lo menos 10 veces para evitar su coagulación. 
• Colocar algodón sobre el sitio puncionado haciendo presión para detener el 
sangramiento. 
 
6.9.3 Consideraciones adicionales de la punción capilar: 
 
• La mala circulación causa modificaciones en la concentración de ciertos componentes 
sanguíneos, por ejemplo el ión potasio y del fosfato, debido a la contaminación con 
líquido tisular causada por la presión que se aplica para obtener la muestra. 
• Al escoger el sitio de la punción, evite hacerlo en dedos con quemaduras, 
escoriaciones o cianóticos. 
 
 
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6.9.4 Colección en Neonatos: 
 
• El pie del neonato es el sitio apropiado para colectar la muestra sanguínea por punción 
capilar. 
• Es recomendable realizar previa limpieza del pie con una gasa tibia para incrementar 
el flujo sanguíneo. 
• En el siguiente diagrama se ilustra en la zona achurada los sitios de punción 
recomendados. 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
• Limpiar el área seleccionada con alcohol al 70%. 
• Mantener firmemente el pie del neonato para evitar cualquier movimiento. 
• Usando una lanceta estéril realizar la punción con movimiento rápido, firme y profundo. 
• Limpiar con el algodón la primera gota obtenida. Utilizar una ligera presión para 
obtener las gotas de sangre requeridas. No haga presión excesiva o masajes, que 
puedan provocar que la sangre se diluya con líquido tisular. 
• Llenar los microtubos requeridos. 
• Al terminar mantener presión sobre el sitio de la punción con gasa o algodón para 
parar el sangramiento. 
• Desechar la lanceta en la caja para material cortopunzante. 
 
6.10 Orden de llenado de los tubos: 
 
La obtención de muestras debe mantener un orden de llenado de los tubos para 
evitar errores en la fase pre analítica. El orden recomendado es el siguiente: 
 
1º Frasco de hemocultivo, si corresponde.2º Tubos para pruebas de coagulación (Tapa celeste). 
3º Tubos que contienen aditivos especiales para evitar la coagulación de la muestra: 
- Tubo con heparina (Tapa verde). 
- Tubo con EDTA (Tapa lila) 
- Tubo con Fluoruro de sodio (Tapa gris). 
4º Por ultimo los tubos sin aditivos (Tubos de tapa roja para pruebas químicas y de 
serologia). 
 
Nota: Los tubos con aditivos deben ser rápida y completamente mezclados. 
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6.11 Etiquetado o rotulación: 
 
1.-Etiquetado de los tubos debe realizarse inmediatamente posterior a la extracción 
sanguínea pegando la etiqueta de código de barra correspondiente a cada tubo. Es 
incorrecto etiquetar los tubos previamente a la punción. Una muestra del etiquetado de 
los tubos puede ser el siguiente: 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
2.-Rotulación de los tubos debe realizarse previo a la punción del paciente indicando en el 
tubo el nombre completo y la procedencia 
 
 
6.12 Cuidados del paciente posterior a la extracción: 
 
• Una vez realizada la extracción, asegurarse que el paciente se encuentra apto para 
levantarse de la silla y retirarse, ya que algunos pacientes pueden descompensarse. 
• Para evitar caídas observar al paciente y preguntar si está bien antes de indicarle que 
se retire. 
• Si un paciente presenta alguna descompensación hemodinámica o convulsión seguir 
el procedimiento de alerta y organización de la atención de emergencia (Ver protocolo 
institucional). 
 
 
6.13 Conservación y transporte de la muestra: 
 
Una vez que se haya colectado la muestra sanguínea, ésta debe ser llevada pronto al 
laboratorio para su procesamiento. Algunas pruebas exigen que el suero sea separado 
cuanto antes del coágulo sanguíneo, para evitar alteraciones en la composición o niveles 
de algunos metabolitos. 
Al momento de entregar la muestra en recepción esta debe ser acompañada por su 
correspondiente orden de solicitud de examen. Los requisitos de conservación y 
transporte de cada muestra se detallan en Anexo N° 1 
 
 
 
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6.14 Instrucciones al paciente con exámenes que requieren preparación especial: 
 
Espermiograma 
Recomendaciones previas al examen : 
• La abstinencia sexual previa deberá ser de 3 días (No menos de 2 días ni más de 5 días). La 
muestra debe ser obtenida por masturbación. 
• La fecha de la última relación sexual DEBE SER………………………… 
• Usted deberá concurrir a la toma de muestras, el día…………… a las…………hrs. 
• Presentar la orden en la ventanilla y esperar a que lo llamen. 
 
Instrucciones día del examen: 
La toma de muestra se realiza en el baño privado de la toma de muestra, donde le 
entregarán un frasco a 37 ºC identificado con su nombre, donde usted deberá depositar el semen 
obtenido. Se debe recolectar toda la muestra sin eliminar ninguna gota y avisar de inmediato al 
técnico que lo atendió, una vez terminado el procedimiento. 
 
 
Urocultivo y orina completa en hombres 
• Tipo de muestra: Orina 
• Idealmente utilizar la primera orina de la mañana. 
• Antes de tomar la muestra, realizar aseo de la zona genital: 
- Lávese las manos con agua y jabón. Retraiga la piel del prepucio, y limpie con una mota de 
algodón empapado en agua con jabón la cabeza del pene. 
- Enjuague directamente con agua, o con motas de algodón empapadas en agua eliminando 
todo el jabón. Después del aseo, tomar inmediatamente la muestra de orina. 
 
Procedimiento: 
• Abra cuidadosamente el frasco que se le ha entregado sin tocar los bordes. 
• Mantenga el prepucio retraído durante todo el procedimiento. 
• Comience a orinar y elimine el primer chorro de orina en el baño. 
• Recolecte el segundo chorro de orina en el frasco, llenando hasta la mitad del frasco. 
• Elimine la última parte del chorro de orina en el baño. 
• El frasco debe sujetarse para que no tome contacto con su pierna o ropa. 
• Los dedos no deben tocar el borde del frasco ni su superficie interior. 
• Tape cuidadosamente el frasco y compruebe que quede bien cerrado. Colóquele su nombre. 
• Trasladar la muestra al Laboratorio dentro de una bolsa plástica con hielo, antes de dos horas 
de su obtención. 
 
IMPORTANTE: Horario de entrega de muestras: Lunes a Viernes de 8.00 a 10:00 hrs. 
 
 
Urocultivo y orina completa en mujeres 
• Tipo de muestra: Orina 
• Idealmente utilizar la primera orina de la mañana. 
• Antes de tomar la muestra, realizar aseo de la zona genital: 
- Lávese las manos con agua y jabón. 
- Separando los labios genitales, lavar la vulva con una mota de algodón empapada en agua 
con jabón, arrastrando siempre de delante hacia atrás. 
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- Enjuagar cuidadosamente con bastante agua para eliminar los restos de jabón. 
- Después del aseo, tomar inmediatamente la muestra de orina. 
 
Procedimiento: 
• Abra cuidadosamente el frasco que se le ha entregado, sin tocar los bordes. 
• Comience a orinar y elimine el primer chorro de orina en el baño. 
• Recolecte el segundo chorro de orina en el frasco, llenando hasta la mitad del frasco. Elimine 
la última parte del chorro de orina en el baño. 
• El frasco debe sujetarse para que no tome contacto con su pierna o ropa. 
• Los dedos no deben tocar el borde del frasco ni su superficie interior. 
• Tape cuidadosamente el frasco, y compruebe que quede bien cerrado. Colóquele su nombre. 
• Trasladar la muestra al Laboratorio dentro de una bolsa plástica con hielo, antes de dos horas 
de su obtención. 
 
IMPORTANTE: Horario de entrega de muestras: Lunes a Viernes de 8.00 a 10:00 hrs. 
 
 
 
 
Coprocultivo 
• Tipo de muestra: Deposición 
• En medio de transporte - gelatina (Cary-Blair) 
• El tubo con el medio de transporte deberá permanecer refrigerado (4ºC) hasta el momento de 
la obtención de la muestra. 
• Recolectar la deposición en un recipiente limpio. Si no es posible obtener deposición al 
momento de obtener la muestra, introducir cuidadosamente la tórula estéril +/- 2 cms. a través 
del esfínter anal, girar suavemente la tórula y retírela. Puede utilizarse deposición desde el 
pañal, siempre que sea recién emitida. 
• Introduzca la tórula con la deposición en el tubo con el medio de transporte, cuidando que el 
algodón quede dentro del gel y cierre herméticamente el tubo con la tapa. 
• Llevar lo antes posible al Laboratorio, puede permanecer a temperatura ambiente en el medio 
de transporte hasta24 horas. 
 
IMPORTANTE: Horario de entrega de muestras: Lunes a Viernes de 8.00 a 10:00 hrs. 
 
 
 
 
Leucocitos fecales 
• Tipo de muestra : Deposición fresca. 
• Procedimiento: 
- Obtener la muestra por eliminación espontánea. 
- Depositar la muestra en un frasco limpio entregado por el Laboratorio; debe ser trasladada 
al laboratorio, rodeada en hielo, antes de dos horas de su obtención. 
- Cantidad mínima requerida: Media a una cucharadita de té. 
 
Recolección de muestra de deposición de pañal: (par a niños o ancianos): 
- Sacar con la espátula de madera, la deposición más superficial y abundante que 
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contenga el pañal; ojalá recién emitida para evitar sea absorbida por el pañal. 
- Sacar mínimo un tercio de la espátula y depositarla en frasco de boca ancha 
entregado por el laboratorio. Taparlo y meterlo en una bolsa plástica, con cubos de 
hielo. 
- La muestra debe ser trasladada al Laboratorio antes de dos horas de su obtención. 
 
IMPORTANTE: Horario de entrega de muestras: Lunes a Viernes de 8.00 a 10:00 hrs. 
 
 
 
Esteatocrito 
• Tipo de muestra : Deposición fresca. 
• Procedimiento: 
- Obtener la muestra por eliminación espontánea. 
- Depositar la muestra en un frasco limpio entregado por el Laboratorio. Debe ser trasladada 
al laboratorio, rodeada en hielo, antes de dos horas de su obtención. 
- Cantidad mínima requerida: Media a una cucharadita de té. 
 
Recolección de muestra de deposición de pañal: (par a niños o ancianos) 
- Sacar con la espátula de madera, la deposición más superficial y abundante que contenga 
el pañal, ojalá recién emitida para evitar sea absorbida por el pañal. 
- Sacar mínimo un tercio de la espátula y depositarla en frasco de boca ancha entregado por 
el laboratorio. Taparlo y meterlo en una bolsa plástica, con cubos de hielo. 
- La muestra debe ser trasladada al Laboratorio antes de dos horas de su obtención. 
 
IMPORTANTE: Horario de entrega de muestras: Lunes a Viernes de 8.00 a 10:00 hrs. 
 
 
 
Rotavirus 
• Tipo de muestra : Deposición fresca. 
• Procedimiento: 
- Obtener la muestra por eliminación espontánea. 
- Depositar la muestra en un frasco limpio entregado por el Laboratorio, debe ser trasladada 
al laboratorio, rodeada en hielo, antes de dos horas de su obtención. 
- Cantidad mínima requerida: Media a una cucharadita de té. 
 
Recolección de muestra de deposición de pañal: (par a niños o ancianos): 
 
- Sacar con la espátula de madera, la deposición más superficial y abundante que contenga 
el pañal; ojalá recién emitida para evitar sea absorbida por el pañal. 
- Sacar mínimo un tercio de la espátula y depositarla en frasco de boca ancha entregado por 
el laboratorio. Taparlo y meterlo en una bolsa plástica, con cubos de hielo. 
- La muestra debe ser trasladada al Laboratorio antes de dos horas de su obtención. 
 
IMPORTANTE: Horario de entrega de muestras: Lunes a Viernes de 8.00 a 10:00 hrs. 
 
 
 
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Hemorragia oculta 
• Tipo de muestra : Deposición fresca. 
• Procedimiento: 
- Obtener la muestra por eliminación espontánea. 
- Depositar la muestra en un frasco limpio entregado por el Laboratorio; debe ser trasladada 
al laboratorio, rodeada en hielo, antes de dos horas de su obtención. 
- Cantidad mínima requerida: Media a una cucharadita de té. 
 
Recolección de muestra de deposición de pañal: (par a niños o ancianos): 
 
- Sacar con la espátula de madera, la deposición más superficial y abundante que contenga 
el pañal; ojalá recién emitida para evitar sea absorbida por el pañal. 
- Sacar mínimo un tercio de la espátula y depositarla en frasco de boca ancha entregado por 
el laboratorio. 
- Taparlo y meterlo en una bolsa plástica, con cubos de hielo. 
La muestra debe ser trasladada al Laboratorio antes de dos horas de su obtención. 
 
IMPORTANTE: Horario de entrega de muestras: Lunes a Viernes de 8.00 a 10:00 hrs. 
 
 
 
Orina de 24 horas 
Usted debe juntar toda la orina emitida durante 24 horas . 
 
Procedimiento : 
• El día previo al examen, a las 7:00 hrs., debe vaciar la vejiga orinando a fondo y botar esa 
orina. 
• De ahí en adelante debe juntar toda la orina de cada micción en el envase, durante las 24 
horas hasta las 7:00 de la mañana siguiente. NO ELIMINAR NINGUNA ORINA DEL DIA DE 
RECOLECCION. 
• Toda la orina recolectada durante el período completo debe guardarse refrigerada y llevarla 
antes de 2 horas al laboratorio. Durante el período de recolección de la orina, usted debe 
ingerir 1 y 1/2 litros de agua (agua de la llave), salvo que su médico tratante disponga lo 
contrario. Le solicitamos no mezclar la orina con papel higiénico, deposiciones o flujo 
menstrual. Si hay presencia de este último, la recolección de orina debe realizarse una vez 
finalizado el período menstrual. Si necesita obrar debe orinar primero y luego obrar. 
COLOCAR SU NOMBRE EN EL ENVASE. 
 
IMPORTANTE: Horario de entrega de muestras: Lunes a Viernes de 8.00 a 10:00 hrs. 
 
 
 
Prueba de tolerancia a la glucosa 
Preparación del paciente : 
• El día del examen debe estar en ayunas (última comida a las 20:00 del día anterior) 
• Debe traer el jugo exprimido de dos limones en un frasco. 
• El examen se demora dos horas, por lo tanto debe presentar su orden en ventanilla antes de 
la 9.00 hrs. 
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• Debe venir acompañado de un familiar 
 
Procedimiento: 
• Se le tomará una muestra de sangre basal en ayunas. 
• Luego deberá ingerir en 5 minutos, una solución de glucosa con limón disuelta en agua. 
• A continuación deberá esperar, en reposo, dos horas para tomar la segunda muestra de 
sangre. Al término del proceso debe avisar si se siente mal por la sobrecarga de glucosa 
ingerida. 
 
 
 
Parasitológico 
Tipo de Muestra: Deposición 
 
Procedimiento: 
• El paciente debe defecar en un recipiente limpio y seco, sin mezclar con orina. Si es lactante, 
tomar del pañal la muestra recién emitida. 
• Coloque una porción del tamaño de una nuez dentro del frasco y mezcle con el líquido que 
contiene, hasta obtener una emulsión homogénea utilizando una paleta de madera. Las 
muestras deben obtenerse día por medio hasta completar las tres. En caso de no poder 
obtener las muestras día por medio, puede traerlas cuando complete la última muestra. 
• Si observa algún gusano, debe colocarlo en un frasco limpio con agua de la llave. Dejarlas 
muestras a temperatura ambiente en un lugar fresco o en refrigerador a 4ºC. 
 
IMPORTANTE: Identificar las muestras y NO DEJAR LOS FRASCOS AL ALCANCE DE LOS 
NIÑOS PUES EL LÍQUIDO ES TOXICO. 
 
 
 
Test de Graham 
Instrucciones previas al procedimiento: 
La aplicación de esta técnica debe ser efectuada por una persona que no sea el paciente. No se 
deben aplicar pomadas o polvos-talco en la región anal durante la noche anterior. 
La toma de muestra se debe efectuar a primera hora de la mañana SIN ASEO PREVIO. NO ES 
DEPOSICION. 
Procedimiento . 
 Desprenda de la placa de vidrio la tira de papel celofán (scotch transparente). 
 Aplique varias veces la tira de papel celofán, por el lado engomado, en todos los alrededores 
del ano. 
 Pegue el scotch bien estirado en la placa de vidrio. No poner el nombre en el scotch. 
 Si detecta "pidulle", colóquelo entre el scotch y la placa de vidrio. 
 Cada día, envuelva en un papel aparte la placa de vidrio usada, y guárdela en el sobre 
correspondiente, hasta completar los cinco. 
 Escriba el nombre, los dos apellidos y la edad del paciente. Y entréguela finalmente en la 
recepción de la toma de muestra. 
 
IMPORTANTE: Horario de entrega de muestras: Lunes a Viernes de 8.00 a 10:00 hrs. 
 
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Test de sudor 
Preparación del paciente: 
• El día citado debe traer lo siguiente: 
- Una mamadera 
- Leche, te o café (dependiendo de la edad) 
- Carné de identidad 
- Orden de examen timbrada en recaudación 
- Una muda de ropa 
• El examen se realiza en el brazo del paciente, (no se pincha), primero se estimula la 
producción del Sudor, luego se recolecta este sudor en un capilar, para finalmente leer la 
concentración de sal que existe en la muestra. Se demora de 30 – 60 minutos según la 
condición del paciente. 
 
Se puede solicitar repetir este examen de acuerdo a l criterio médico . 
 
 
 
Baciloscopía. 
Procedimiento: 
• Enjuagar la boca con agua. 
• Obtener el esputo tras una expectoración profunda, preferentemente matinal. 
• Depositar la muestra en frasco boca ancha limpio entregado por la Unida de Toma de 
Muestra. 
• Rotular el frasco con el nombre del paciente. 
• Transportar la muestra a temperatura ambiente a la Unidad de Toma de Muestra. 
• Se debe repetir el procedimiento en días consecutivos hasta completar tres muestras, 
enviándolas cada día a la Unidad de Toma de Muestra. 
 
Nota: Entregar la muestra en ventanilla antes de la s 10:00 AM. 
 
 
 
 
Expectoración 
Procedimiento: 
• Enjuagar la boca con agua. 
• Obtener el esputo tras una expectoración profunda, preferentemente matinal. 
• Depositar la muestra en frasco boca ancha estéril entregado por la Unida de Toma de 
Muestra. 
• Rotular el frasco con el nombre del paciente. 
• Transportar la muestra a temperatura ambiente a la Unidad de Toma de Muestra antes de dos 
horas de emitida. 
 
Nota: Entregar la muestra en ventanilla antes de la s 10:00 AM. 
 
 
 
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Urocultivo y orina completa en niños. 
Debe presentarse el día _______________ a las 08:00 hrs. en la Unidad de Toma de Muestras y 
traer lo siguiente: 
• 2 pañales de tela o toallas. 
• Una mamadera con agua azucarada o jugo. 
 
El día que se tomará el examen no colocar talco ni pomadas en la zona genital. 
 
 
 
6.15 Criterios de rechazo: 
 
6.15.1 Muestras mal identificadas: 
 
• Falta de identificación del paciente. 
• Discrepancia entre identificación de orden médica y rotulación de la muestra. 
• Falta de identificación del tipo de muestra. 
• Falta de identificación en la orden médica del tipo de estudio solicitado. 
• Falta de la orden de examen. 
• Examen no se realiza en este Laboratorio 
 
6.15.2 Muestras no adecuadas para procesamiento: 
 
• Muestra en tubo erróneo. 
• Muestra mal colectada. 
• Muestra a una temperatura inadecuada. 
• Muestra enviada en medio de transporte no adecuado. 
• Muestra que requiere medio de transporte enviada sin el medio de transporte 
necesario. 
• Muestra enviada en envase no adecuado. 
• Muestras derramadas. 
• Muestras inadecuadas para el tipo de estudio solicitado. 
• Muestras contaminadas o en descomposición visible. 
 
6.16 Características generales del traslado de las muestras: 
 
Las muestras deben ser transportadas en contenedores especiales con tapa y en gradillas 
que impidan su derrame según tipo de muestra. 
Aquellos que requieren cadena de frío deben transportarse con unidades refrigerantes en 
cooler. 
El personal encargado debe estar capacitado en el transporte de material biológico y debe 
utilizar guantes. 
 
 
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7. Flujograma: Procesos de Toma de Muestras. 
 
Procesos operativos 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
Procesos de Apoyo 
 
 
* Se entregara a cada paciente ambulatorio comprobante de toma de muestra que incluye fecha de entrega del resultado. 
No conformidades Gestión de 
Personal 
Indicadores Acciones 
correctivas 
Acciones 
Preventivas 
Auditorias 
 
P 
 
A 
 
C 
 
I 
 
E 
 
N 
 
T 
 
E 
L 
 
A 
 
B 
 
O 
 
R 
 
A 
 
T 
 
O 
 
R 
 
 I 
 
O 
RECEPCIÓN de 
ÓRDENES de 
EXAMEN 
Generación de etiquetas 
Llamado del paciente 
Toma de muestra 
Clasificación de Muestras 
Traslado y 
entrega a 
Recepción del 
Laboratorio 
Recurso 
Humano 
Abastecimiento Mantención 
de equipos 
Planta física Sistemas 
informáticos 
Aseo y 
lavado 
Bioseguridad Control de 
documentos 
Paciente 
ambulatorio 
Paciente 
hospitalizado 
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8. Indicadores y método de evaluación: 
 
 
Indicador Porcentaje de muestras rechazadas según registro 
 
Formula 
 
Nº de muestras rechazadas X 100 
 Nº total de muestras recibidas 
 
Umbral de 
cumplimiento 
Excelente : 0 – 4 % 
Aceptable: 5 – 8 % 
Critico : 9 – 100 %Evaluación Trimestral 
Revisión de planilla de registro de rechazo de muestras de la recepción de 
Laboratorio. 
 
 
Indicador Porcentaje de gases arteriales y venosos transportados según instructivo 
institucional 
 
Formula 
 
Nº de gases arteriales y venosos transportados en cadena de frío / Nº total de 
gases arteriales y venosos recibidos X 100. 
 
Umbral de 
cumplimiento 
Excelente : 100 – 98% 
Aceptable: 97 – 90% 
Critico : 89 – 0% 
Evaluación Trimestral 
Revisión de planilla de registros de gases arteriales y venosos que se reciben en 
Laboratorio de Urgencia con cadena de frío. 
 
 
9. Distribución del documento: 
 
8.1 Unidad de Calidad y Seguridad del paciente. 
8.2 Laboratorio Clínico. 
8.3 Policlínicos de toma de muestra. 
8.4 Unidades y Servicios clínicos. 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
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10. Referencias bibliográficas: 
 
• América Latina. Editores: M.L.Castillo de Sánchez y M.E.Fonseca Yerena en 
colaboración con COLABIOCLI. Editorial Médica Panamericana. 
• California Phlebotomy Training. 
http://www.parsons.umaryland.edu/~vguy/phleb.htm 
• Center for Phlebotomy Education. http://www.scpt.com/PhlebotomyViews.html 
• Garza D and Becan-McBride K. Phlebotomy Handbook, 2nd Ed. Norwalk, 
Connecticut: Appleton and Lange: 1989. 
• Medstat Utah http://www.medstat.med.utah.edu/webpath/tutorial/PHLEB/PHLEB.html 
• Mejoría Continua de la Calidad. Guía para los laboratorios clínicos de National 
Committee for Clinical Laboratory Standards. Procedures for the Collection of 
Diagnostic Blood Specimens by Skin Puncture. Document H4-A3. Vol. 11 No. 11, 
1991. 
• National Committee for Clinical Laboratory Standard s; Procedures for the 
Collection of Diagnostic Blood Specimens by Venipuncture, 3rd Ed. Document H3-
A3. Vol. 11 No. 10, 1991. 
• Phelan, S. Phlebotomy Techniques: A Laboratory Workbook. Chicago, Ill.: 
American Society of Clinical Pathologists: 1993. 
• University of Iowa Hospital and Clinics, Pediatric Phlebotomy Training Manual. 
1994. 
• University of Iowa Hospital and Clinics , Phlebotomy Training Manual. 1994. 
• Virtual Hospital: CLIA . Pre-Analytical Factors Affecting Laboratory, 
http://www.vh.org/Providers/CME/CLIA/Phlebotomy/Phlebotomy.html 
• Virtual Phlebotomy: A Computer Aided Course of Instruction. 
http://www.phlebotomy.com 
• W.G Guder, S. Narayanan, H. Wisser, B. Zawta, “simples from the patient to the 
laboratory”, 3rd Ed. Wiley-VCH, 2003 
 
 
11. Anexos: 
 
11.1 Conservación y transporte de muestras. 
11.2 Orden de examen. 
11.3 Registro planilla de flebotomista. 
11.4 Registro de rechazo de muestras. 
11.5 Registro recepción de muestras de laboratorio clínico. 
11.6 Registro de actividades diarias de toma de muestras. 
 
 
 
 
 
Código: DOC – LAB 5 
APL 1.2 
Edición: 2 
Fecha: Junio 2010 
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Laboratorio 
Clínico 
 
SERVICIO DE SALUD METROPOLITANO 
OCCIDENTE 
HOSPITAL SAN JUAN DE DIOS-CDT 
 
Manual de Toma de muestra de 
Laboratorio Clínico Vigencia: Abril 2014 
 
 
 
 
Anexo 1: Conservación y transporte de muestras. 
EXAMENES MUESTRA REQUISITOS ENVASE TRASLADO Y CONSERVA CIÓN LUGAR PROCESO FONO OBSERV. RESULTADOS
ADA (Adenosindeaminasa) Liquidos Sin ayuno Tubo tapa Roja, 5 ml Envio rápido T°.amb Química 242003 7 días
ACIDO LACTICO Sangre Venosa Sin ayuno Tubo Lila, 5 ml sin ligadura Envio rápido, cadena frio Química 242003 En el día
ACIDO URICO (Uricemia) Sangre Venosa Ayuno 8 hrs Tubo tapa Verde, 5 ml T. amb Química 242003 En el día
ACIDO URICO (Uricosuria) Muestra Orina Aislada o de 24 hrs Frasco / Bidón T. amb Química 242003 En el día
ACIDO VALPROICO Sangre Venosa Sin Ayuno, Sin dosis matinal Tubo tapa Amarilla, 5 ml T. amb H.F.BULNES 281580 Última dosis (hora), peso, talla 2 días
ADENOCORTICOTROFINA (ACTH) Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Amarilla, 5 ml T. amb H.F.BULNES 281580 3 a 4 días
ALDOSTERONA Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Amarilla, 5 ml T. amb H.F.BULNES 281580 3 a 4 días
ALBUMINA Sangre Venosa Ayuno 8 hrs Tubo tapa Verde, 5 ml T. amb Química 242003 En el día
ALFAFETOPROTEINA Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Amarilla, 5 ml T. amb H.F.BULNES 281580 2 días
AMILASA (sangre) Sangre Venosa Ayuno 8 hrs Tubo tapa verde, 5 ml T. amb Química 242003 En el día
AMILASURIA (orina) Orina Orina aislada o 24 hrs. Frasco estéril/bidón solic. Laboratorio T. amb Química 242003 En el día
AMONIO (sangre) Sangre Venosa Sin ayuno Tubo tapa Lila , 5 ml Envío rápido, cadena de frio Química 242003 En el día
ANDROSTENIDIONA Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Amarilla, 5 ml T. amb H.F.BULNES 281580 3 a 4 días
ANTIGENEMIA CMV (Citomegalovirus) Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Lila , 5 ml T. amb J.J. AGUIRRE 9788522 Carta Resg. SDA 24 a 72 horas
APE Total (PSA Total) Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Amarilla, 5 ml T. amb H.F.BULNES 281580 2 días
Ac.ANCA (anti PR3 - anti MPO) Sangre Venosa Sin ayuno Tubo tapa Roja, 5 ml T. amb Inmunología 242332 1 a 7 días
Ac. ANTICITRULINA (CCP) Sangre Venosa Sin ayuno Tubo tapa Roja, 5 ml T. amb Inmunología 242332 1 a 7 días
Ac.ANTI - DNA Sangre Venosa Sin ayuno Tubo tapa Roja, 5 ml T. amb Inmunología 242332 1 a 7 días
AC.ANTIENDOMISIO Sangre Venosa Sin ayuno Tubo tapa Roja, 5 ml T. amb Inmunología 242332 1 a 7 días
AC.ANTIMITOCONDRIALES Sangre Venosa Sin ayuno Tubo tapa Roja, 5 ml T. amb Inmunología 242332 1 a 7 días
AC.ANTIMUSCULO LISO Sangre Venosa Sin ayuno Tubo tapa Roja, 5 ml T. amb Inmunología 242332 1 a 7 días
AC. ANTINUCL. SCREEN, ANA Sangre Venosa Sin ayuno Tubo tapa Roja, 5 ml T. amb Inmunología 242332 1 a 7 días
AC.ANTINUCL. IFI Sangre Venosa Sin ayuno Tubo tapa Roja, 5 ml T. amb Inmunología 242332 1 a 7 días
AC.ANTICENTROMERO Sangre Venosa Sin ayuno Tubo tapa Roja, 5 ml T. amb Inmunología 242332 1 a 7 días
AC.ANTICARDIOLIPINA Sangre Venosa Sin ayuno Tubo tapa Roja, 5 ml T. amb Inmunología 242332 1 a 7 días
AC.ANTIPEROXIDASA (TPO) Sangre Venosa Sin ayuno Tubo tapa Roja, 5 ml T. amb Inmunología 242332 1 a 7 días
AC.ANTITRANSGLUTAMINASA Sangre Venosa Sin ayuno Tubo tapa Roja, 5 ml T. amb Inmunología 242332 1 a 7 días
AC.ANTITIROGLOBULINA Sangre Venosa Sin ayuno Tubo tapa Roja, 5 ml T. amb Inmunología 242332 1 a 7 días
AC.ANTITIROIDEOS Sangre Venosa Sin ayuno Tubo tapa Roja, 5 ml T. amb Inmunología 242332 1 a 7 días
AC.ANTI ENA Screen(Ro-La-Scl-Sm-Jo1) Sangre Venosa Sin ayuno Tubo tapa Roja, 5 ml T. amb Inmunología 242332 1 a 7 días
AC.ANTI ENA Perfil(Ro-La-Scl-Sm-Jo1) Sangre Venosa Sin ayuno Tubo tapa Roja, 5 ml T. amb Inmunología 242332 1 a 7 días
BANDAS OLIGOCLONALES (Lectroforésis) LCR Sin ayuno Tubo tapa Roja, 2ml T. amb Inmunología 242332 1 a 7 días
BHCG CUALITATIVA Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Amarilla, 5 ml T. amb H.F.BULNES 281580 En el día
BHCG CUANTITATIVA Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Amarilla, 5 ml T. amb H.F.BULNES 281580 En el día
BETA 2 MICROGLOBULINA Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Amarilla, 5 ml T. amb H.F.BULNES 281580 En el día
BILIRRUBINA (total, directa e indirecta) Sangre Venosa Ayuno 8 hrs Tubo tapa Verde, 5 ml T. amb Química 242003 En el día
BICARBONATO EN SANGRE Sangre Venosa Sin Ayuno Jeringa conheparina de litio Envío rápido, cadena de frio Química 242003 En el día
CALCIO (Calcemia, Ca) Sangre Venosa Ayuno 8 hrs Tubo tapa Verde, 5 ml T. amb Química 242003 En el día
CALCIO IONICO (sangre) Sangre Venosa Sin Ayuno Jeringa o tubo hep. de litio Envío rápido, cadena de frio Química 242003 En el día
CALCIURIA (calcio en orina) Orina Aislada o de 24 hrs Frasco estéril/bidón solic. Laboratorio T. amb Química 242003 En el día
CARBAMAZEPINA Sangre Venosa Sin Ayuno, Sin dosis matinal Tubo tapa Amarilla, 5 ml T. amb H.F.BULNES 244550 Última dosis (hora), peso, talla 2 días
CARIOGRAMA (Sangre) Sangre Venosa Sin ayuno Jeringa con heparina de litio, 5 mL T. amb U.CATOLICA 3543000 Resguardo SDA 1 a 2 semanas
CARIOGRAMA EN LÍQ. AMNIÓTICO L.Amniótico Sin ayuno 2 jeringas s/anticoagulante 10 mL c/u T. amb U.CATOLICA 3543000 Resguardo SDA 1 a 2 semanas
CEA Sangre Venosa Sin ayuno Tubo tapa Amarilla, 5 ml T. amb H.F.BULNES 281580 En el día
Ca 125 Sangre Venosa Sin ayuno Tubo tapa Amarilla, 5 ml T. amb H.F.BULNES 281580 En el día
CELULAS INCLUSION CMV Muestra Orina Sin Ayuno Frasco En cadena frio Orina 242042 En el día
CETONEMIA (cetonas en sangre) Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Verde T. amb Quimica 242003 En el día
CETONURIA (cetonas en orina) Muestra Orina Orina aislada Frasco Esteril o Bidón T. amb Orina 242042 En el día
CICLOSPORINA Basal (Co) Sangre Venosa Sin dosis matinal Tubo tapa Lila , 5 ml En cadena frio Química 242003 24 horas
CICLOSPORINA Post carga ( Co 2 ) Sangre Venosa 2 hrs post Dosis Tubo tapa Lila , 5 ml En cadena frio Química 242003 48 horas
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Clínico 
 
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OCCIDENTE 
HOSPITAL SAN JUAN DE DIOS-CDT 
 
Manual de Toma de muestra de 
Laboratorio Clínico Vigencia: Abril 2014 
 
 
 
 
EXAMENES MUESTRA REQUISITOS ENVASE TRASLADO Y CONSERVA CIÓN LUGAR PROCESO FONO OBSERV. RESULTADOS
CITOLÓGICO DE LAVADO BRONCOALV. LBA Sin Ayuno Tubo tapa Lila , 5 ml T. amb Hematología 241999 En el día
CISTICERCOSIS Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Roja, 5 ml T. amb ISP 3507244 Formulario Especial ISP 8 a 15 días
CD 4 Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Lila , 5 ml T. amb J.J. AGUIRRE 9788522 Martes y Jueves hasta 10:30 hrs 10 días
CARGA VIRAL VIH Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Lila, 6 ml Cadena de frio J.J. AGUIRRE 9788522 Martes y Jueves hasta 10:30 hrs 10 días
CHAGAS Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Roja, 5 ml T. amb ISP 3507244 Formulario Especial ISP 8 a 15 días
CHAGAS PCR Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Lila , 5 ml Cadena de frio ISP 3507244 Formulario Especial ISP 8 a 15 días
CITOMEGALOVIRUS (IgG-IgM) Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Roja, 5 ml T. amb Química 242003 7 días
CK TOTAL Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Verde, 5 ml T. amb Química 242003 En el día
CK MB Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Verde, 5 ml T. amb Química 242003 En el día
CLEARENCE CREATININA 202003 En el día
CREATININA(sangre) Sangre Venosa Ayuno de 8 hrs Tubo tapa Verde, 5 ml T. amb Química 242003 En el día
CREATININA (orina) Muestra Orina Orina aislada o de 24 hrs. Frasco o Bidón T. amb Química 242003 En el día
COLESTEROL Sangre Venosa Ayuno Estricto 12 hrs Tubo tapa Verde, 5 ml T. amb Química 242003 En el día
COLESTEROL HDL- LDL Sangre Venosa Ayuno Estricto 12 hrs Tubo tapa Verde, 5 ml T. amb Química 242003 En el día
COMPLEMENTO C3 - C4 Sangre Venosa Ayuno de 8 hrs Tubo tapa Roja, 5 ml T. amb Química 242003 7 dias
COLINESTERASA Sangre Venosa Ayuno de 8 hrs Tubo tapa verde, 5 ml Envío rápido, T. amb Química 242003 En el día
CORTISOL PLASMATICO AM - PM Sangre Venosa Sin Ayuno a las 8 y 16 hrs Tubo tapa Amarilla, 5 ml T. amb H.F.BULNES 281580 En el día
CORTISOL LIBRE URINARIO Orina Orina de 24 hrs Bidón T. amb H.F.BULNES 281580 Diuresis medida 3 a 4 días
DHEA (Dehidroepiandrosterona) Sangre Venosa Sin ayuno Tubo tapa Amarilla, 5 ml T. amb H.F.BULNES 281580 En el día
DIMERO D Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Celeste Cadena de frio Coagulación 242003 Previo aviso a Lab. Coagulación En el día
ELISA TP (Treponema) Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Roja, 5 ml T. amb Serologia 242332 24 horas
EOSINOFILOS URINARIOS Orina Sin Ayuno Frasco T. amb Hematología 241999 En el día
ESPERMIOGRAMA Semen 3 Días abstinencia sexual Frasco Estéril Envío rápido, 37 °C Lab. Koch 242122 Previo aviso a Laborato rio 24 horas
ESTEATOCRITO Deposición Régimen sin grasas Frasco pesado en lab. T. amb Química 242003 24 horas
ESTRADIOL (17-Beta Estradiol) Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Amarilla, 5 ml T. amb H.F.BULNES 281580 En el día
ELECTROLITOS, Na,K,Cl (sangre) Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Verde, 5 ml T. amb Química 242003 En el día
ELECTROLITOS (orina) Orina Aislada o de 24 hrs. Frasco estéril/bidón solic. Laboratorio T. amb Química 242003 En el día
EFP(electroforesis proteínas) SANGRE Sangre Venosa Sin ayuno Tubo tapa Roja, 5 ml T. amb Inmunología 242332 1 a 7 dias
EFP(electroforesis proteínas) ORINA Muestra Orina Orina de24 hrs Bidón T. amb Inmunología 242332 Diuresis medida 1 a 7 dias
EFP(electroforesis proteínas) LCR LCR Sin ayuno Tubo tapa Roja, 2ml T. amb Inmunología 242332 1 a 7 días
FACTOR REUMATOIDEO Sangre Venosa Sin ayuno Tubo tapa Roja, 5 ml T. amb Inmunología 242332 1 a 7 dias
FERRITINA Sangre Venosa Ayuno de 8 hrs Tubo tapa Roja, 5 ml T. amb Química 202003 En el día
FENITOINA Sangre Venosa Sin Ayuno, Sin dosis matinal Tubo tapa Amarilla, 5 ml T. amb H.F.BULNES 281580 Última dosis (hora), peso, talla 2 días
FENOBARBITAL Sangre Venosa Sin Ayuno, Sin dosis matinal Tubo tapa Amarilla, 5 ml T. amb H.F.BULNES 281580 Última dosis (hora), peso, talla 2 días
FIBRINOGENO Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Celeste Cadena de frio Coagulación 242003 En el día
FIERRO Sangre Venosa Ayuno 8 hrs. Tubo tapa Roja, 5 ml T. amb Química 242003 En el día
FOSFATASA ALCALINA Sangre Venosa Ayuno 8 hrs. Tubo tapa Verde, 5 ml T. amb Química 242003 En el día
FOSFORO (plasma) Sangre Venosa Ayuno 8 hrs. Tubo tapa Verde, 5 ml T. amb Química 242003 En el día
FOSFORO (orina) Muestra Orina Aislada o de 24 hrs. Frasco estéril/Bidónsolic. Lab T. amb Quimica 242003 En el día
FSH (Hormona foliculo estimulante) Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Amarilla, 5 ml T. amb H.F.BULNES 281580 En el día
FTA-ABS / MHA TP Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Roja, 5 ml T. amb ISP 3507244 Formulario Especial ISP 7 a 30 días
GASES ARTERIALES Sangre Arterial Sin Ayuno Jeringa con heparina de litio Envío rápido, cadena frío Quimica 242003 En el día
GASES VENOSOS Sangre Venosa Sin Ayuno Jeringa con heparina de litio Envío rápido, cadena frío Quimica 242003 En el día
GENOTIPO VIH -1 Sangre Venosa Sin Ayuno Tupo tapa Lila,5 ml T. amb., Envío antes 2 hrs. J.J. AGUIRRE 9788522Formulario especial, Carta Resg. SDA 1 mes
GGT Sangre Venosa Ayuno 8 hrs. Tubo tapa Verde, 5 ml T. amb Quimica 242003 En el día
GLUCOSA (plasma) Sangre Venosa Ayuno estricto 8 hrs. Tubo tapa Gris, 5 ml T. amb Quimica 242003 En el día
GLUCOSA (orina) Muestra Orina Aislada o de 24 hrs. Frasco o Bidón T. amb Orina 242003 En el día
GLUCOSA POST PRANDIAL Sangre Venosa 2 hrs post Desayuno liviano Tubo tapa Gris, 5 ml T. amb Quimica 242003 En el día
GLOBULINA Sangre Venosa Ayuno 8 hrs. Tubo tapa Verde, 5 ml T. amb Quimica 242003 En el día
GOT Sangre Venosa Ayuno 8 hrs. Tubo tapa Verde, 5 ml T. amb Quimica 242003 En el día
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MEDICION SIMULTANEADE CREATININA EN SANGRE Y EN ORINA. Debe consignarse el PESO y TALLA del paciente Orina
 
 
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Manual de Toma de muestra de 
Laboratorio Clínico Vigencia: Abril 2014 
 
 
 
 
EXAMENES MUESTRA REQUISITOS ENVASE TRASLADO Y CONSERVA CIÓN LUGAR PROCESO FONO OBSERV. RESULTADOS
GPT Sangre Venosa Ayuno 8 hrs. Tubo tapa Verde, 5 ml T. amb Quimica 242003 En el día
HEMATOCRITO Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Lila , 5 ml T. amb Hematología 241999 En el día
HEMOGLOBINA GLICOSILADA Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Lila , 5 ml cadena de frio Hematología 241999 1 a 4 días
HEMOGLOBINA Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Lila , 5 ml T. amb Hematología 241999 En el día
HEMOGRAMA Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Lila , 5 ml T. amb Hematología 241999 En el día
HEMOSIDERINA Médula Osea Sin Ayuno Laminas identificadas T. amb Hematología 241999 7 dias
HEPATITIS B Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Verde, 5 ml T. amb Serología 242332 1 día
HEPATITIS C Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Verde, 5 ml T. amb Serología 242332 1 día
HIDATIDOSIS Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Roja, 5 ml T. amb ISP 3507244 Formulario Especial ISP 8 a 15 días
HLA-B 27 Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Lila, 12 ml T. amb ISP 3507244 Formulario Especial ISP 10 días
HLA-B 5701 (Protocolo) Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Lila, 5 ml T. amb U.CATOLICA 3543000 Formulario Especial 10 días
HTLV 1 Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Lila,5 ml T. amb ISP 3507244 Formulario Especial ISP 10 días
HORMONA CRECIMIENTO (HGH,GH,HC) Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Amarilla, 5 ml T. amb H.F.BULNES 281580 3 a 4 dias
INMUNOGLOBULINAS (A,G,M,E) Sangre Venosa Ayuno 8 hrs Tubo tapa Roja, 5 ml T. amb Química 242003 1 a 7 dias
INDICE PROTEINURIA/CREATININURIA Muestra Orina Orina aislada Frasco T. amb Orina 242003 En el día
INDICE MICROALBUMINURIA/CREATININU. Muestra Orina Orina aislada Frasco T. amb Orina 242042 En el día
INDICE ALBUMINA/GLOBULINA Sangre Venosa Ayuno 8 hrs Tubo tapa Verde, 5 ml T. amb Quimica 242003 En el día
IGF 1 (Somatomedina) Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Amarilla, 5 ml T. amb H.F.BULNES 281580 En el día
IGFBP 3 Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Amarilla, 5 ml T. amb H.F.BULNES 281580 En el día
INMUNOFIJACIÓN (IFIX)sangre Sangre Venosa Sin ayuno Tubo tapa Roja, 5 ml T. amb Inmunología 242332 1 a 7 dias
INMUNOFIJACIÓN (IFIX)orina Orina Orina de 24 hrs Bidón T. amb Inmunología 242332 1 a 7 dias
INSULINA Sangre Venosa Ayuno 12 hrs Tubo tapa Amarilla, 5 ml T. amb H.F.BULNES 281580 En el día
INSULINA, Curva de Sangre Venosa Post ingesta glucosa Tubo tapa Amarilla, 5 ml T. amb H.F.BULNES 281580 Identif. 1 y 2° muestra En el día
LAMOTRIGINAS Sangre Venosa Sin Ayuno, Sin dosis matinal Tubo tapa Roja, 5 ml T. amb I.NEUROCIR 5754827 Última dosis (hora), peso, talla 24 a 72 horas
LDH Sangre Venosa Ayuno 8 hrs Tubo tapa Verde, 5 ml T. amb Química 242003 En el día
LH (Hormona Luteinizante) Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Amarilla, 5 ml T. amb H.F.BULNES 281580 En el día
LIPASA Sangre Venosa Ayuno 8 hrs Tubo tapa Verde, 5 ml T. amb Quimica 242003 En el día
LIQ CEFALO RAQ. quimico LCR Sin Ayuno Tubo tapa Roja, 1 ml T. amb Quimica 242003 En el día
LIQ CEFALO RAQ. citológico LCR Sin Ayuno Tubo tapa Lila , 1 ml T. amb Hematología 241999 En el día
LIQ. AMNIOTICO quimico Liq.Amniótico Sin Ayuno Tubo tapa Verde, 5 ml T. amb Quimica 242003 En el día
LIQ. AMNIOTICO citológico Liq.Amniótico Sin Ayuno Tubo tapa Lila,5 ml T. amb Hematología 241999 En el día
LIQ. ASCITICO quimico Liq.Ascitico Sin Ayuno Tubo tapa Verde, 5 ml T. amb Quimica 242003 En el día
LIQ. ASCITICO citológico Liq.Ascitico Sin Ayuno Tubo tapa Lila,5 ml T. amb Hematología 241999 En el día
LIQUIEO PLEURAL químico Liq.Pleural Sin Ayuno Tubo tapa Verde, 5 ml T. amb Quimica 242003 En el día
LIQ.PLEURAL citológico Liq.Pleural Sin Ayuno Tubo tapa Lila,5 ml T. amb Hematología 241999 En el día
LIQ. PERICARDICO quimico Liq.Pericardico Sin Ayuno Tubo tapa Verde, 5 ml T. amb Quimica 242003 En el día
LIQ. PERICARDICO citológico Liq.Pericardico Sin Ayuno Tubo tapa Lila,5 ml T. amb Hematología 241999 En el día
LIQ.PERITONEAL quimico Liq.Peritoneal Sin Ayuno Tubo tapa Verde, 5 ml T. amb Quimica 242003 En el día
LIQ.PERITONEAL citológico Liq.Peritoneal Sin Ayuno Tubo tapa Lila,5 ml T. amb Hematología 241999 En el día
LIQ. ARTICULAR (Sinovial) Liq.Articular(sinovial) Sin Ayuno Tubo tapa Verde, 5 ml T. amb Química 202003 Sólo glucosa En el día
LIQ. ARTICULAR (Sinovial) Citologico Liq.Articular(sinovial) Sin Ayuno Tubo tapa Lila,5 ml T. amb Hematología 241999 En el día
LITIO Sangre venosa Sin Ayuno Tubo tapa Roja, 5 ml T. amb CRS 242676
MAGNESIO (sangre) Sangre Venosa Ayuno 8 hrs Tubo tapa Verde, 5 ml T. amb Quimica 242003 En el día
MAGNESIO (orina) Muestra Orina Aislada o de 24 hrs Frasco estéril/Bidónsolic. Lab T. amb Quimica 242003 En el día
MICROALBUMINURIA Muestra Orina Aislada o de 24 hrs Frasco / Bidón T. amb Orina 202042 En el día
MIELOGRAMA Médula Osea Sin Ayuno Láminas identicadas T. amb Hemato-Onco 241999 7 días
NITROGENO UREICO (sangre) Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Verde, 5 ml T. amb Quimica 242003 En el día
NITROGENO UREICO (orina) Muestra Orina Aislada o de 24 hrs Frasco/Bidón T. amb Quimica 242003 En el día
OXCARBAMAZEPINA Sangre Venosa Sin Ayuno, Sin dosis matinal Tubo tapa Roja, 5 ml T. amb I.NEUROCIR 5754827 Última dosis (hora), peso, talla 24 a 72 horas
ORINA COMPLETA Muestra Orina Sin Ayuno Frasco cadena de frio Orina 242042 En el día
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EXAMENES MUESTRA REQUISITOS ENVASE TRASLADO Y CONSERVA CIÓN LUGAR PROCESO FONO OBSERV. RESULTADOS
OSMOLALIDAD (plasma) Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Verde, 5 ml T. amb Quimica 242003 En el día
OSMOLALIDAD (orina) Orina Orina Aislada Frasco T. amb Quimica 242003 En el día
PAUL BUNELL, MONOTEST Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Roja , 5 ml T. amb Hematología 241999 En el día
PCR COXIELA Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Lila , 5 ml cadena de frio ISP 3507244 Formulario Especial ISP 7 a 30 días
PCR H1N1 Sec.nasofaringea Sin Ayuno Tubo con PBS cadena de frio Biol. Molecular 242332 1 día
PCR HPV (Virus Papiloma Humano) M. Endocervical Sin Ayuno Tubo con PBS cadena de frio Biol. Molecular 242332 Autorización Doctor Ginecología 1 a 7 días
PCR HERPES 1 y 2 (LCR) LCR Sin Ayuno Tubo tapa Lila , 1 ml cadena de frio Biol. Molecular 242332 1 a 4 días
PCR HERPER 1 y 2 (Sangre) Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa lila, 5 ml cadena de frio Biol. Molecular 242004 1 a 7 días
PCR TRASLOCACIÓN 15:17 (LPM) Med. Osea o S.V. Sin Ayuno Tubo tapa Lila , 5 ml cadena de frio Biol. Molecular 242332 2 semanas
PCR TRASLOCACIÓN 9:22 (LMC) Med. Osea o S.V. Sin Ayuno Tubo tapa Lila , 5 ml cadena de frio Biol. Molecular 242332 2 semanas
PCR VIRUS EPSTEIN BARR Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Lila , 5 ml cadena de