Descarga la aplicación para disfrutar aún más
Vista previa del material en texto
Disponible en: http://redalyc.uaemex.mx/src/inicio/ArtPdfRed.jsp?iCve=65114270008 Redalyc Sistema de Información Científica Red de Revistas Científicas de América Latina, el Caribe, España y Portugal Osatinsky, Raquel ¿Que es la electroforesis capilar? Bioquímica y Patología Clínica, vol. 71, núm. 2, 2007, pp. 60-66 Asociación Bioquímica Argentina Argentina ¿Cómo citar? Número completo Más información del artículo Página de la revista Bioquímica y Patología Clínica ISSN (Versión impresa): 1515-6761 info@aba-online.org.ar Asociación Bioquímica Argentina Argentina www.redalyc.org Proyecto académico sin fines de lucro, desarrollado bajo la iniciativa de acceso abierto http://redalyc.uaemex.mx http://redalyc.uaemex.mx/principal/ForCitArt.jsp?iCve=65114270008 http://redalyc.uaemex.mx/src/inicio/IndArtRev.jsp?iCveNumRev=14270&iCveEntRev=651 http://redalyc.uaemex.mx/src/inicio/ArtPdfRed.jsp?iCve=65114270008 http://redalyc.uaemex.mx/src/inicio/HomRevRed.jsp?iCveEntRev=651 http://redalyc.uaemex.mx/src/inicio/ArtPdfRed.jsp?iCve=65114270008 http://redalyc.uaemex.mx/src/inicio/HomRevRed.jsp?iCveEntRev=651 http://redalyc.uaemex.mx ¿Que es la electroforesis capilar? RESUMEN La electroforesis capilar (CE) es una técnica de separación basada en la diferente velocidad de migración de las distintas especies cargadas bajo la acción de un campo eléctrico. La separación se lleva a cabo en un capilar de sílice fundida de diámetro muy pequeño ( 10-200 µm). El uso de estos capilares tiene múltiples ventajas: a) los capilares son anticonvectivos en sí mismos, por lo tanto, no es necesaria la utilización de un gel soporte como medio; b) el calor generado al pas- ar la corriente eléctrica (efecto Joule), que daría lugar a problemas de gradientes de temperatura no uniformes ( cambios locales de viscosidad ), es fuertemente reducido, ya que la disipación de calor es muy efectiva; c) pueden aplicarse altos voltajes consiguiéndose una reducción del tiempo de análisis y altas eficiencias. Se la considera una técnica intermedia entre la clásica electroforesis de zona (ZE) y la cromatografía (HPLC) líquida.Utiliza el principio de la electroforesis capi- lar en solución libre. La separación por CE es muy rápida, se realiza en menos de 5 minutos, con una reproducibilidad que muestran un coeficiente de variación (CVs) < 2%, muchos investigadores consideran que su sensibilidad es 10 veces mayor que la de la cromatografía líquida de alta performance. Se conocen varios sistemas de separación por ésta tecnología. La electroforesis capilar de zona(CZE); el isoelectroenfoque capilar (CIEF); la isotacoforesis capilar ( CITF) y la cromatografía micelar electrocinética (MECC). Desde 1990 el avance en ésta campo fue vertiginoso, ya que podemos incluir diagnósticos estudiando DNA, dficiencias enzimáticas, estudios de drogas de abuso en orina , estudios de esteroides y en cuando a el labortorio clínicoa, métodos para separasión de pro- téinas séricas, urinarias , variantes de hemoglobina, crioglobulinas, líquido céfalo raquídeo, proteinas reactantes de la fase aguda y muchas variantes más. SUMMARY The process of electrophoresis is defined as the differential movement or migra- tion of ions by attraction or repulsion in an electric field. In practical terms, a positive ( anode) and negative (cathode) electrode are placed in a solution con- taining ions. Then, when a voltage is applied across de electrodes, solute ions of different charge, i.e. anions (negative) and cations (positive), will move through the solution towards the electrode of opposite charge. Capillary electrophoresis, then is the technique of performing electrophoresis in buffer-filled, narrow-bore capillaries, normally from 25 to 100 µm in internal diameter. The ends of a capillary are placed in separate buffer reservoirs, each containing a electrode connected to a high-voltage power supply. Capillary electrophoresis is very suited to automation, and the arrangement of comercial CE instruments will seen familiar to those with knowledge of modern HPLC. A vitally important feature of CE is the bulk flow of liquid through the capillry. This is called the electroosmotic flow. An uncoated fused-silica capillary tube is typically used por CE. The surface of the inside of the tube has ionisable silanol groups, which are in contac with the buffer during CE. These silanol groups readily dissociate, giving the capillary wall a negative charge. Therefore, when the capillary is filled with buffer, the negatively charged capillary wall attracts positively charged ions fron the buffer solution, creating an electrical double layer and a potential difference. Raquel Osatinsky * Bioquímica – Especialista en Química Clínica: Orientación Proteínas Lugar de Trabajo: MANLAB - Diagnóstico Bioquimico M. T. de Alvear 2263 gerenciaanalitica@emanlab.com.ar Enviar Correspondencia a: Av. Corrientes 2818 - Piso10 - Dto. “D” 1193 – Ciudad A. de BS.As e- mail : raquelo@arnet.com. ¿Que es la electroforesis capilar? Revista ByPC. Incorporada al Latindex. ISSN 1515-6761 Código Bibliográfico: RByPC Trabajo Recibido: 20-07-07 Aceptado: 08-08-07 mailto:gerenciaanalitica@emanlab.com.ar mailto:raquelo@arnet.com Pág | 61REVISTA BIOQUIMICA Y PATOLOGIA CLINICA VOL 71 Nº 2 2007 Trabajo: págs 60 | 66 INTRODUCCION La electroforesis capilar (CE) es una técnica de separación basada en la diferente velocidad de migración de las distin- tas especies cargadas bajo la acción de un campo eléctrico. La separación se lleva a cabo en un capilar de sílice fundida de diámetro muy pequeño ( 10-200 μm). El uso de estos capilares tiene múltiples ventajas: a) los capilares son an- ticonvectivos en sí mismos, por lo tanto, no es necesaria la utilización de un gel soporte como medio; b) el calor genera- do al pasar la corriente eléctrica (efecto Joule), que daría lu- gar a problemas de gradientes de temperatura no uniformes ( cambios locales de viscosidad ), es fuertemente reducido, ya que la disipación de calor es muy efectiva; c) pueden aplicarse altos voltajes consiguiéndose una reducción del tiempo de análisis y altas eficiencias. (1-2-3) Se la considera una técnica intermedia entre la clásica elec- troforesis de zona (ZE) y la cromatografía (HPLC) líquida.(4- 5) Utiliza el principio de la electroforesis capilar en solución libre. J. Gras en el Capítulo 1 de su libro Proteínas Plasmáti- cas (1983) dice: “Electroforesis libre.- Los grandes avances obtenidos en el estudio de las proteínas plasmáticas fueron conseguidos gracias a la electroforesis libre. Los elementos técnicos más fundamentales para la misma están constituí- dos por la célula con electrodos y los dispositivos ópticos que permiten visualizar el fenómeno. Célula y electrodos: Desde las primeras determinaciones de movilidad electroforética llevados a cabo por Nernst y por Hardy, el tubo en U utilizado fue perfeccionado incesantemente por numerosos investi- gadores, entre ellos por Tiselius, quien llego en 1937 a idear un tipo que ha sido desde entonces la base del utilizado en todos los aparatos de electroforesis analítica libre y median- te el cual el método adquiere todo su desarrollo actual”. Arne Tiselius, Bioquímico sueco, fue Premio Nobel de Quími- ca 1948. aisló e identificó por electroforesis proteínas de la sangre y de la leche, además obtuvo por absorción la sepa- ración de diversos aminoácidos. (6) La separación por CE es muy rápida, se realiza en menos de 5 minutos, con una reproducibilidad que muestran un coefi- ciente de variación (CVs) < 2%, muchos investigadores con- sideran que su sensibilidad es 10 veces mayor que la de la cromatografía líquida de alta performance.(7-8-9) Desde 1937, luego de la primera publicación de Tiselius, se multiplicaron las investigaciones sobre el tema, mejoran- do el equipo , los capilares empleados, aplicando metodos como el isoelectroenfoque sobre éste sistema y en los últi- mos tiempossu aplicación en bioquímica clínica. Se conocen varios sistemas de separación por ésta tecno- logía. La electroforesis capilar de zona(CZE); el isoelectro- enfoque capilar (CIEF); la isotacoforesis capilar ( CITF) y la cromatografía micelar electrocinética (MECC). Desde 1990 el avance en ésta campo fue vertiginoso, ya que podemos in- cluir diagnósticos estudiando DNA, dficiencias enzimáticas, estudios de drogas de abuso en orina , estudios de esteroides y en cuando a el labortorio clínicoa, métodos para separasión de protéinas séricas, urinarias , variantes de hemoglobina, crioglobulinas, líquido céfalo raquídeo, proteinas reactantes de la fase aguda y muchas variantes más. (10-11-12) Figura 1a. Tubo en U de Tiselius (J. Gras Proteinas Plasmáticas pag. 31 Ed. JMS 1983) Figura 1b. Tubo de Tiselius acoplado a portaelectrodos y baño termo regulador. (J.Gras Proteínas Plasmáticas- pag- 32. Ed. JMS 1983) ¿Que es la electroforesis capilar? FUNDAMENTOS La electroforesis capilar es la modalidad más utilizada por su simplicidad operacional y versatilidad. Requiere peque- ños volúmenes de muestra por lo que ha despertado un gran interés en diferentes campos, tal como lo demuestra el incremento de publicaciones realizadas en el área de la bioquímica y biotecnología, industria farmaceútica, análisis clínicos y medio ambiente. (13) El capilar y los viales se llenan con una solución buffer. La muestra está formada por un conjunto de aniones y catio- nes que se introduce dentro del sistema ocupando una úni- ca zona. Al someterlo a la influencia de un campo eléctrico, migran hacia el electrodo correspondiente, estableciéndose un movimiento de iones que forman parte del sistema. Permite la separación de moléculas cargadas en función de su movilidad electroforética, en un buffer a un pH determina- do, según el punto isoeléctrico (pI) de la molécula y de un flu- jo electrosmótico (EOF) más o menos importante. El EOF es el flujo del líquido en el interior del capilar originado por la carga eléctrica negativa existente en la pared interna del capilar. En el caso de los capilares de sílice fundida ésta superficie de carga es generado por la ionización de los grupos silanol. La carga de la superficie interna del capilar atrae hacia si iones positivos que forman una capa adyacente fija por adsorción ( capa de Stern ), y una capa difusa y móvil, tam- bién positiva ( capa de Gouy – Chapman ). Los iones de la capa difusa experimentan una fuerza paralela a la superficie y migran hacia el cátodo al aplicarse una diferencia de po- tencial entre los extremos del capilar. Éstos iones, al estar sulfatados, generan un movimiento global del flúido hacia el cátodo. Éste movimiento del flúido constituye la fuerza electrosmótica (EOF). (14-15) La separación electroforética se efectúa en un capilar de díametro inferior a 100 μ m, que contiene un buffer. El uso de capilares para la separación electroforética tiene múlti- ples ventajas. Los capilares son anticonvectivos, razón por la que no es necesario el empleo de un gel como soporte. El calor generado por el paso de la corriente eléctrica, que daría lugar a problemas de temperatura, está muy reducido porque la disipación del calor es muy efectiva. DESCRIPCIÓN DE UN EQUIPO Requiere una fuente de alto voltaje ( +/- 8000 voltios). Uno o más capilares cuyos extremos se encuentren sumergidos, junto con dos electrodos, en dos viales que contienen una solución buffer, un detector y un sistema de adquisición de datos. Los capilares son generalmente de sílice fundida, con diametros internos de +/- 50 nm, cubiertos con poliamida para darle flexibilidad y disminuir su fragilidad. El pequeño diámetro facilita la disipación del calor generado por la re- sistencia eléctrica del electrolito dentro del capilar. La sílice fundida es mejor conductor de calor que cualquiera de los otros materiales usados para fabricar capilares de diámetro pequeño ( teflón, pyrex). Durante las separaciones, los extremos del capilar están colocados en dos recipientes que contienen un buffer, el mismo con el que se ha llenado la columna. Junto con otras condiciones, la composición del buffer define el método de análisis. Ambos recipientes contienen el mismo buffer y su nivel debe ser el mismo en los dos para evitar cualquier tipo de flujo debido a un desequilibrio hidrostático. Al introducir el electrolito en el capilar, pueden formarse burbujas de aire, que provocan fluctuaciones en la línea de base e interrumpir la corriente eléctrica. Debe evitarse este problema.(16) Existen distintos modelos de aparatos con sistemas muy si- milares, variando en la cantidad de capilares que funcionan en forma simultánea. Es un método totalmente automatiza- do. Se conocen dos equipos en el mercado*. que emplean el principio de electroforesis capilar en solución libre, uno tiene ocho capilares que funcionan en paralelo, permitien- do realizar ocho determinaciones simultáneas y 90 en una hora y otros trabajan con seis capilares en forma simultá- nea.(17) INYECCIÓN DE LA MUESTRA Existen diferentes sistemas de inyección en la electrofore- sis capilar, se basan en aplicar un gradiente de voltaje ( elec- trocinética) o en un gradiente de presión ( hidrodinámica o hidrostática), entre los dos extremos del capilar. En todos High Voltage Capilary Detector Recorder Buffer Figura 3. Esquema de un aparato de electroforesis capilar. (Jenkins M A. Clin Aplic of CE.- pag 2.- Human Press Inc. 1999) Figura 2. Diagrama que muestra la dirección del flujo electrosmótico (EOF). (Jenkins MA.-Clin Apli. of CE- pag.3-Human Press Inc.1999) Pág | 63REVISTA BIOQUIMICA Y PATOLOGIA CLINICA VOL 71 Nº 2 2007 Trabajo: págs 60 | 66 los casos, para introducir la muestra dentro del capilar, se cambia el vial de entrada por un vial con muestra y se aplica la inyección de la misma durante 10-30 segundos. Introdu- ciendose en el capilar un volumen de muestra del orden de los nanolitros. En la inyección hidrodinámica , la introducción de la mues- tra en el capilar se efectúa mediante una diferencia de pre- sión entre los dos extremos de la columna ( es el método convencional de inyección). Existen diferentes formas de producir una presión superior al extremo del capilar en contacto con la disolución de la muestra: por flujo gravitatorio de la disolución electrolítica mediante la elevación del vial con la muestra y la aplicación de presión sobre la misma, luego por succión de la mues- tra aplicando vacío al vial de salida. Éste tipo de inyección no depende de la movilidad electroforética , ni de la com- posición de la muestra. El volumen de muestra inyectada se define por las dimensiones del capilar, la viscosidad del electrolito, la presión aplicada y el tiempo. Se debe contro- lar con presición la temperatura capilar porque puede verse afectada la viscosidad y variar la cantidad de muestra que se inyecta. En gran parte de los instrumentos de CE la di- ferencia de presión se utiliza, además de para introducir la muestra, para renovar el buffer del capilar, ya que normal- mente debe cambiarse luego de un número determinado de análisis para conseguir repetibilidad en el tiempo de migra- ción en las muestras a determinar. La inyección electrocinética se basa en que el voltaje puede causar movimientos electroforéticos y electrosmóticos. Se introduce un extremo del capilar en el vial que contiene la muestra y el otro extremo en el vial que contiene el buffer, se aplica un voltaje elevado durante un breve período de tiempo. Los compuestos se introducen en el caplilar por la acción conjunta de la migración y del efecto de la movilidad electrosmótica. Si el voltaje se aplica durante un un período de tiempo corto, la muestra se introducirá por el movimiento electroforético. Diversos investigadores demostraron que por una serie de fenómenos que produce la inyección electrocinética es me- nos reproducible que la inyección hidrodinámica. Los límites dedetección de los compuestos estudiados mediante la in- yección electrocinética son aproximadamente cinco veces más bajos que los conseguidos con la hidrodinámica. SISTEMA DE DETECCIÓN La detección se realiza directamente sobre el capilar, es decir que el mismo capilar actúa como celda de detección. El tipo de detector escogido dependerá de los analitos a de- terminar y, siempre que se pueda, se escogerá aquel que proporcione una sensibilidad elevada para todos los com- puestos. El detector ultravioleta – visible es uno de los más emplea- dos en la CE. La longitud de onda escogida es de 214 nm, o de 200 nm de acuerdo al equipo con el que se trabaja. Éste sistema a pesar de la estabilidad y facilidad de operación, presenta algunos incovenientes ya que opera a una única longidtud de onda. La introducción del detector de diodos en fila ha resuelto este problema permitiendo adquirir al mismo tiempo el espectro de cada uno de los analitos en un mismo análisis. Una alternativa a la detección UV-Visible es la detección de fluorescencia, que es ampliamente utilizada en bioquímica clínica. Otro tipo de detección utilizada por la CE es la electroquímica, los más utilizados han sido los con- ductimétricos y los amperométricos. PRINCIPIOS DE SEPARACIÓN Flujo electrosmótico (EOF).- En la CE, se desplazan por el ca- pilar bajo la influencia de la corriente eléctrica, las moléculas de soluto y la solución buffer. Éste es un fenómeno cono- cido como flujo electrosmótico. El polo positivo o ánodo se encuentra en el extremo del capilar donde se realiza la inyec- ción de la muestra. El EOF va del polo positivo al negativo, de manera que el buffer se mueve del vial que lo contiene ( el de entrada) hacia el detector, en el vial de salida. La pared del capilar está constituida por un entramado de grupos silanol , por lo tanto al trabajar con bufferes básicos se encuentra cargada negativamente con grupos sialonatos, y hace que las otras cargas positivas libres se situen cerca de las cargas negativas de la pared formando una doble capa. Al aplicar una diferencia de potencial las cargas libres (positivas y ne- gativas) se moveran hacia los polos contrarios. Las cargas negativas de la pared no pueden moverse dando como resul- tado un flujo de cargas positivas hacia el polo negativo. FLUJO ELECTROFORÉTICO Bajo la acción de un campo electrico, los solutos ionicos se desplazan a través del capilar : a) por el flujo electrosmotico que arrastra todo el seno de la disolución y b) la carga pro- pia de un soluto hace que éste muestre una movilidad por si mismo, a lo que se denomina flujo electroforético. La movili- dad electroforética de un soluto es función de su carga, del radio de la molécula y de la viscosidad del medio. Cuando se introduce una muestra en el capilar y se aplica una diferen- cia de potencial, cada uno de sus componentes tendrá una movilidad que dependerá de las velocidades electrosmóti- cas y electroforéticas. (18-19) Una vez inyectada la muestra por aspiración en el o los capila- res, se procede a la separación de la misma, aplicando una di- ferencia de potencial de varios miles de voltios (≈ 8000), en los extremos de cada capilar. La detección directa de las proteínas se lleva a cabo a 200 nm en el extremo catódico del capilar. Las proteínas separadas ( en capilares de sílice fundido) son detectadas directamente en una burbuja existente en el capilar por espectrofotometría de absorbancia. Emplean- ¿Que es la electroforesis capilar? do buffer a pH alcalino, el orden de migración de las proteí- nas es el siguiente: Gamma globulinas 2 globulinas 1 globulinas 2 globulinas 1 globulinas Albúmina Se visualiza la curva que produce el contenido proteico de la muestra. La detección es directa por cuanto “no existe el paso correspondiente a la coloración y decoloración de las corridas”. La figura similar a una electroforesis en agarosa que se observa en un costado de la pantalla donde se obtie- nen los datos es virtual. (20-21) Como ya se mencionó los equipos de CE para su aplicación en el laboratorio bioquímico clínico separan las proteínas sé- ricas en forma similar a las que se observan en los equipos que emplean agarosa como soporte. Debe quedar claro que el proteinograma electroforético está expresado directa- mente en la curva que se observa en la pantalla del monitor. La lectura de los valores se realizan a 200 nm y expresan el contenido directo de cada fracción visualizada. Tiene una sensibilidad muy grande que se ve en los detalles de la cur- va, sobre todo en la zona de las alfa 1, alfa 2 y gamas. Con éste método se puede observar con más frecuencia la pre- sencia de bisalbuminemias. Respecto de las patentes oligo y monoclonales en la zonade las gamas, asi como la presen- cia de pequeñas bandas homogéneas son visibles conclari- dad. Probablemente las pequeñas bandas homogéneas en la zona de las betas deban observarse con más detenimien- to. Es un método completamente distinto a las electrofore- sis de zona tanto en agarosa como en acetato de celulosa Alb. � 1 � 2 �1 �2 � Figura 4a. Curva de CE normal * Alb. �1 � 2 � 1 �2 � Figura 4b. Curva de CE normal * Éste método tiene una sensibilidad mayor en la definición de las fracciones que presenta la curva, relacionada con lasconcentraciones de las proteínas tanto absolutas como las relativas. Figura 5a. Aumento de las fracciones α1 y α2 Gamma globulina con patente oligoclonal. *** Figura 5b. Gamma globulina con patente *** oligoclonal. Observar en fig. a y en la b los distintos picos correspondientes a las múltiples bandas homogéneas. Pág | 65REVISTA BIOQUIMICA Y PATOLOGIA CLINICA VOL 71 Nº 2 2007 Trabajo: págs 60 | 66 y como toda innovación debe estudiarse, validarse, hacer trabajos comparativos para asegurar un resultado correcto. La gammapatías monoclonales se diagnostican por la curva y la tipificación de las mismas se realiza por inmunofijación (22) . En el sistema de CE la IF se efectúa por el método de inmunosubstracción. (23-24-25-26) Las electroforesis de hemoglobina realmente son inmejora- bles, ya que permite la separación y valoración precisa de las diferentes fracciones de la hemoglobina A, A2 y HbF, asi como de las difrentes hemoglobinopatías estructurales. En el caso de la presencia de una probable HbLepore la separa de una probable HbS, tambien cuando se presentan proba- bles Hb C y/o E se puede cuantificar la fracción de la HbA2 que ninguno de los métodos de electroforesis de zona sobre agarosa lo soluciona. (27) CONCLUSIÓN Considero que la aplicación de la electroforesis capilar en el laboratorio clínico permite contar con una herramienta téc- nica de gran versatilidad. Es completamente automático, tiene una gran sensibilidad, acorta el tiempo por cada análi- sis que realiza disponiendo el profesional a cargo emplearlo para analizar con tranquilidad los resultados y validarlos y/o realizar otras tareas dentro del laboratorio. * Los equipos mencionados son :Capillarys 2 de Sebia y Pa- ragon 2000 CZE de Beckman. BIBLIOGRAFÍA 1.- Meunier C .-La detection et la caracterisation des com- poses monoclonaux difficiles dans le serum: techniques sur gel au electrophorese capillaire.-Ann Biol Clin 1999 ; 57 : 605-10. 2.- Blessum c, Joppson O, Aguzzi F, Bernon H, Bienvenu J.- L´electrophorese capillaire : principe et applications au labo- ratoire de biologie clinique.- Ann Biol Clin 1999 ;57 :643-57. 3.- Keren D.- Capillary zone electrophoresis in the evalua- tion of serum protein abnormalities. Am J Clin Pathol.- 1998; 110; 248-252. 4.- Compton S W, Brownlee R G.- Capillary electrophoresis.- Biotechniques.- 1988; 6:432. 5.- Deyl z, Rochlicek V, Struzinsky R.- Some rules applicable to capillary zone electrophoresis of peptides and proteins. J Liquid Chromatograf. 1989; 12: 2515. 6.- Tiselius A.- New apparatus for electrophoretic analysis of colloidal mixtures.- Trans Faraday Soc 1937; 33:524-536 7.- Herten S.- Zone broadening inelectrophoresis whith spe- cial reference to high – permormance electrophoresis in capillaries: an interplay between theory and practice. Elec- trophoresis.-1990; 11: 665-690. 8.- Gordon M J, Huang X, Pentoney S LJr, and Zare RN.- Capi- llary electrophoresis. Science 1988; 242:224-228 9.- Deyl Z and Struzinsky R.- Review. Capillary zone elec- trophoresis: its applicability and potential in biochemical analysis. J Chromatograf. 1991; 569: 63-122. 10.- Mazzeo J R and Krull I S.- Coated capillaries and additi- ves for the separations of proteins by capillary zone electro- phoresis and capillary isoelectric focusing. Biotechniques 1991; 10: 638-645. 11.- Jenkins M A and Guerier M D.- Cappillary electrophoresis as a clinical tool. J Chromatograf. B. 1996; 682: 23-24. 12.- Lehmann R, Liebick H M and Voelter W.- Application of ca- pillary electrophoresis in clinical chemistry: developments from prelimilary trials to routine analysis. J Cap Electrophor. 1996; 3: 89-110.- 13.- Ruiz Marrondo S.- Desarrollo de métodos de electrofore- Figura 6a. Gamma globulina con un pico de banda **** homogénea sobre patente policlonal Figura 6b. Gamma globulina con un pico correspondiente a **** un componente monoclonal, y dos pequeños picos agregados *,**,***,****, Estudios realizados con el Capillarys 2 -Sebia ¿Que es la electroforesis capilar? sis capilar en fase micelar. Aplicación al análisis de herbici- das y sus productos de degradación.- Universidad Politécni- ca de Cataluña.- Tesis defendida : 2001; 2 de Octubre. 14.- Schwartz H E, Ulfeder K J, Chen F T A and Pentoeny S R. Utility of laser- induced fluorescence detection in appli- cations of capillary electrophoresis. J Cap Electroph. 1994; 3: 89-110. 15.- Zhu M, Rodriguez R, Hansen P and Wehr T. Capillary electrophoresis under alkaline conditions.- J Chromatogrf. 1990; 516: 123- 131. 16.- Robert F, Bouilloux J P, Denoroy L..- Revues. L´electrophorese capillaire : principe et applications.- Ann Biol Clin 1991 ; 49 : 137-148 17.- Lissoir B, Wallemacq P, Maisin De.- Electrophorese des proteins seriques : compairison de la technique en capillaire du zon Capillarys (Sebia) et la electrophorese au gel d´agarose Hydrasis ( Sebia ). An Biol Clin.- 2003 ; 61 : 557-562. 18.- Gordon M J, Lee K J, Arias A A and Zare R N.- Protocol for resolving protein mixtures in capillary zone electropho- resis.-Ann Chem 1991; 63: 69-72 19.- Kun J W, Park J H, Park J W, Doh H J, Heo G S and Lee K J.- Quantitative analysis of serum proteins separated by capillary electrophoresis- Clin Chem 1993; 39: 689-692. 20.- Jonsson M and Carlson J.- Computer-sopported inter- pretation of protein profiles after capillary electrophoresis.- Clin Chem 2002; 48: 1084-1093. 21.- Gay Bellier C, Bengunfa D, Honze P, Diddier Le Carrier, Bentakehal M, Bousquet B, Gourmel B and Le Bricon T.- Auto- mated multicapillary electrophoresis for analysis of human serum proteins.- Clin Chem 2003; 49: 1909-1915- 22.- Huskens Y, De Winter J, Pekelharing M and Ponzee G.- Detection and identification of monoclonal gammopathies by capillary electrophoresis. Clin Chem .-1998; 44: 1184- 1190. 23.- Narvaiza R C, Casado B, Fernandez M A, Lobeera I, Bor- que L A.- Inmunosustracción en fase homogénea : un nuevo procedimiento para la tipificación de componentes mono- clonales en suero.- Revista de Diagnóstico Biológico 2006; 2: 88-94. 24.- Luraschi P, Infusmo I, Melotti F , Franzeni C.- Analytical variation in the measurement of serum monoclonal compo- nent by capillary electrophpresis. Clin Chim Acta 2004; 349 (1-2): 151-6 25.- Roudiere l, Boularan A M, Boncudet A, Vallat C, Cristol J P, Dupuy A M.- Evaluation of a capillary zone electrophoresis system versus a conventional agarose gel system for routi- ne serum protein separation and monoclonal component typing. Clin Lab 2006; 52(1-2) 19-27. 26.- Terreni A, Caldieri A, Ognbene A, Salvadori B, Messeri G.- Serum proteins capillary zone electrophoresis: A compari- son of two systems.-Lab Med 2006; 37(4): 233-236. 27.- Clinical Applications of Capillary Electrophoresis.- Edi- ted by Stephen M Palfrey.- Human Press Inc. 1999.
Compartir