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Validación prospectiva del proceso de limpieza y desinfección de áreas estériles y cabinas en la central de mezclas de una institución hospitalaria de alto nivel de complejidad. Leslie Massiel González del Rio UNIVERSIDAD DE CARTAGENA FACULTAD DE CIENCIAS FARMACÉUTICAS PROGRAMA DE QUÍMICA FARMACÉUTICA CARTAGENA DE INDIAS 2020 Validación prospectiva del proceso de limpieza y desinfección de áreas estériles y cabinas en la central de mezclas de una institución hospitalaria de alto nivel de complejidad Leslie Massiel González Del Rio Trabajo de grado presentado como requisito para optar al título de Químico Farmacéutico María del Rosario Osorio Fortich Director UNIVERSIDAD DE CARTAGENA FACULTAD DE CIENCIAS FARMACÉUTICAS PROGRAMA DE QUÍMICA FARMACÉUTICA CARTAGENA DE INDIAS 2020 Nota de aprobación del jurado ________________________ ________________________ ________________________ _______________________ Presidente del jurado _______________________ Jurado ______________________ Jurado CARTAGENA DE INDIAS 2020 La Universidad de Cartagena ni el jurado examinador se hacen responsables de los conceptos emitidos en el presente trabajo. CARTAGENA DE INDIAS 2020 AGRADECIMIENTOS En primer lugar, a Dios por llenarme de fortaleza y sabiduría para llegar hasta aquí. A mi familia por su apoyo incondicional, a mi mamá y a mi hermana por ser mi fuente de inspiración y mi roca. A Sandy, mi hermana de vida, por siempre creer en mí y por siempre darme luz cuando todo tornaba oscuro. A la Universidad de Cartagena y a la Facultad de Ciencias Farmacéuticas por formarme como profesional y como persona. Estoy muy orgullosa de ser parte de nuestra Alma Mater. A mi tutora, María del Rosario Osorio, por su apoyo, por sus consejos y ser una gran guía. A todos los docentes que hicieron parte de mi formación, en especial a la profesora Deniles por ser una excelente docente y amiga. A mis amigos (Dhayanna, Christina, Donaldo y Daniela) por su apoyo y siempre creer en mí. A la Fundación Valle del Lili por confiar en mí y darme la oportunidad de ser parte de su equipo y llevar a cabo este trabajo. A mi jefe, Christian Cuello, por ser un gran amigo y por siempre confiar en mí. CONTENIDO 1. RESUMEN ................................................................................................................ 8 2. INTRODUCCION ...................................................................................................... 9 3. MARCO TEORICO ................................................................................................. 11 4 METODOLOGIA ..................................................................................................... 15 4.1 Tipo de estudio .................................................................................................. 15 4.2 Lugar y puntos de muestreo ......................................................................... 15 4.3 Técnicas de muestreo ................................................................................... 16 4.5 Criterios de inclusión ........................................................................................ 17 4.6 Análisis de datos ............................................................................................... 18 5. RESULTADOS Y DISCUSION ............................................................................... 18 5.1 Elaboración y ejecución de los protocolos de limpieza y desinfección de áreas y equipos de la central de mezclas. ............................................................. 18 5.2 Evidencia de la efectividad del proceso de limpieza y desinfección áreas y cabinas de la central de mezclas. ........................................................................... 19 5.2.1 Resultados de superficies y ambiente de cabinas. .................................. 20 5.2.2 Resultados de superficie y ambiente de áreas. ........................................ 23 5.3 Elaboración del informe final del programa de validación. ............................ 29 6. CONCLUSION ........................................................................................................ 30 7. RECOMENDACIONES .......................................................................................... 31 8. BIBLIOGRAFÍA ...................................................................................................... 32 9. ANEXOS ................................................................................................................ 34 LISTA DE TABLAS Tabla 1. Clasificación general de los desinfectantes………………………14 Tabla 2. Puntos de muestreo de áreas……………………………………...16 Tabla 3. Puntos de muestreo de equipos…………………………………...16 Tabla 4. Muestreo microbiológico de superficie de la pared 1……………20 Tabla 5. Muestreo microbiológico de superficie de la pared 2………...….21 Tabla 6. Muestreo microbiológico de superficie de la pared 3.……………21 Tabla 7. Muestreo microbiológico de superficie del piso.………………….22 Tabla 8. Muestreo microbiológico de ambiente de cabinas…………….....22 Tabla 9. Muestreo microbiológico de superficie del techo.……………...…22 Tabla 10. Muestreo microbiológico de superficie del piso.…………….…..24 Tabla 11. Muestreo microbiológico de superficie de la pared……………...24 Tabla 12. Muestreo microbiológico de superficie de la pared 2. ……..…...25 Tabla 13. Muestreo microbiológico de superficie de la pared………….…..25 Tabla 14. Muestreo microbiológico de superficie de la puerta….……….…26 Tabla 15. Muestreo microbiológico de ambiente de áreas ……….………...27 1. RESUMEN La limpieza y desinfección son herramientas empleadas dentro del ambiente hospitalario para la disminución de microorganismos viables y no viables que se encuentran en objetos, equipos e instrumentos utilizados en el cuidado del paciente, sin embargo estos pueden servir como vehículo para transmitir enfermedades a pacientes susceptibles; por lo anterior, es importante realizar un control estricto sobre la estimación de la biocarga en las superficies después de realizar el proceso de desinfección. El presente trabajo de investigación se realizó con el objetivo de validar el proceso de limpieza y desinfección de áreas y equipos en la central de mezclas de una institución hospitalaria de alto nivel de complejidad ubicado en la ciudad de Cali, con el fin de evitar que los microorganismos que se encuentran en las superficies puedan ser transportados a personas susceptibles y produzcan una infección intrahospitalaria, a la vez evidenciar que el proceso de limpieza es efectivo para controlar la presencia de microorganismos en las áreas y equipos de la central de mezclas. Para esto se realizó una validación prospectiva, se tomaron muestras y se realizó análisis microbiológico antes y después de la limpieza de ambientes y superficies. Para tomar las muestras de ambiente se usó la técnica de sedimentación de aire, mientras que las de superficie se tomaron mediante la técnica de placa por contacto (Rodac) y los resultados se obtuvieron por medio del conteo de colonias que fueron expresadas en unidades formadoras de colonia (UFC). Los datos obtenidos fueron tabulados en una base de datos de Excel para luego realizar el análisis correspondiente de los resultados. Los resultados de este trabajo fueron un valioso aporte para la institución ya que permitió tener validado el proceso de limpieza realizado en las áreas y cabinas de la central de mezclas para así dar cumplimiento a los requisitos exigidos por el INVIMA sobre las Buenas Prácticas de Manufactura. 2. INTRODUCCION La limpieza y desinfección son herramientas empleadas dentro del ambiente hospitalariopara la disminución de microorganismos tanto patógenos como no patógenos que se encuentran en objetos, equipos e instrumentos utilizados a favor del bienestar y cuidado del paciente. Sin embargo, estos objetos sirven de vehículo para transmitir enfermedades de pacientes infectados a pacientes susceptibles; por lo anterior, es importante realizar un control estricto sobre la estimación de la biocarga en las superficies (Gallego, 2016). El riesgo de transmisión directa de una infección por una superficie es mínimo, pero puede contribuir a la contaminación cruzada secundaria a través de las manos de los profesionales o de los instrumentos en contacto con estas superficies. Por eso la higiene y la desinfección de las superficies es de extremada importancia (Chiles et al., 2018). La validación de limpieza es un requisito esencial en todos los entornos, no solo es necesario establecer protocolos de limpieza sino también validarlos, para asegurarse de que cumplan con su funcionalidad: evitar los riesgos físicos, químicos, biológicos y alergénicos de la contaminación cruzada (Linares, 2018). Según la FDA (Food and Drug Administration), agencia gubernamental de Estados Unidos responsable de la regulación de alimentos, medicamentos, cosméticos, aparatos médicos, productos biológicos y derivados, en búsqueda de la calidad y el mejoramiento continuo, plantea en la guía de inspecciones de validaciones de procesos de limpieza “Guide to inspections of Validation of Cleaning Processes” de Julio de 1993, que cada empresa es la encargada de desafiar el método analítico en combinación con el método de muestreo, para demostrar de esta manera que los contaminantes pueden ser encontrados en las superficies y equipos, por lo cual este trabajo de grado busca validar el proceso de limpieza y desinfección de áreas y equipos en la central de una mezclas de una institución hospitalaria de alto nivel de complejidad ubicado en la ciudad de Cali, con el fin de evidenciar la efectividad del proceso de limpieza y evaluar la cantidad de microorganismos que se encuentran en las superficies puedan ser transportadas a personas susceptibles y produzcan una infecciones nosocomiales o también conocidas como infecciones adquiridas en el hospital, estas infecciones ocurren en pacientes que están recibiendo atención médica. Una infección nosocomial se contrae debido a una toxina que existe en un lugar determinado, como un hospital. Estas infecciones se dan en pacientes que fueron admitidos por causas distintas a la infección desarrollada (González, 2017). Estudios nacionales e internacionales sobre enfermedades asociadas al cuidado de la salud e infecciones nosocomiales, han reportado el impacto económico-social en términos de costos y mortalidad que tienen los procesos de vigilancia y control de microrganismos en áreas críticas de instituciones hospitalarias. Aunque el tema se encuentra muy desarrollado en países como Estados Unidos, donde se han establecido guías de higiene, saneamiento y limpieza, en Colombia aún, queda mucho por recorrer para alcanzar los objetivos de minimizar la incidencia de infecciones nosocomiales y el control de patógenos resistentes con los procesos y productos de desinfección (Huamaní, 2014). 3. MARCO TEORICO La validación se define como el establecimiento de pruebas documentales que aportan un alto grado de seguridad de que un proceso planificado se efectuará uniformemente en conformidad con los resultados previstos especificados. Los estudios de validación son aplicables a procesos de fabricación, métodos analíticos, sistemas computarizados y métodos de limpieza (Chaloner-Larsson, et al., 1998). Existen 3 tipos de validación: Validación prospectiva: Se basa en información obtenida antes de implementar el proceso de validación, se realiza un análisis de riesgo para determinar si podría conducir a situaciones críticas; se investiga posibles causas y se determina la probabilidad de que suceda. Posteriormente se efectúan los ensayos y se hace una valoración general; si los resultados son aceptables al final, el proceso es satisfactorio (Bedoya & Corredor, 2013). Validación retrospectiva: Este tipo de validación involucra la revisión y análisis de la información histórica del proceso para proveer la evidencia documentada necesaria que el proceso está haciendo lo que debe hacer. Los pasos involucrados en este tipo de validación requieren la preparación de un protocolo específico, el reporte de los resultados de los datos analizados que conlleve a unas conclusiones y recomendaciones (Bedoya & Corredor, 2013). Validación concurrente: Este tipo de validación sirve para demostrar y establecer evidencia documentada que un proceso hace lo que debe hacer basado en información generada durante una implementación real del proceso. Este tipo de validación es muy utilizada cuando se ha variado alguna etapa del proceso. Esta da una información muy valiosa para modificar y corregir el proceso. Podría considerarse como una evaluación continua del proceso mientras se controla al máximo para procurar que el producto o resultado final sea correcto (Bedoya & Corredor, 2013). Protocolo de validación: Documento que describe los detalles de un estudio de validación. Los protocolos incluyen antecedentes importantes, explican el fundamento lógico y el objetivo del estudio, ofrecen una descripción completa de los procedimientos que habrán de seguirse, fijan los parámetros que habrán de medirse, describen como se analizarán los resultados y facilitan criterios de aceptación determinados con anterioridad para extraer las conclusiones (INVIMA, 2018). En esta propuesta se realizó una validación prospectiva de limpieza la cual consiste en generar evidencia documentada que establece que los procedimientos de limpieza están eliminando residuos (de la formulación, los agentes de limpieza y carga microbiana) a niveles aceptables, tomando en consideraciones factores como tamaño de lote, dosificación, toxicología y tamaño de equipo. Es un importante mecanismo para proteger los productos farmacéuticos de la contaminación cruzada (INVIMA, 2018). Se entiende por limpieza la cualidad que se le atribuye a una superficie a la cual se le han retirado todas las todas las partes orgánicas e inorgánicas, incluyendo microorganismos, biofilms, etc. El propósito de la limpieza es eliminar todo tipo de residuos presentes en las diferentes áreas de proceso de producción, con el fin de restablecer el normal funcionamiento de estas, prolongar la vida útil de instalaciones y por ende asegurar la calidad óptima del producto a obtener, así mismo la desinfección es definida como la destrucción, inactivación o remoción de aquellos microorganismos que pueden causar infección u ocasionar otros efectos indeseables en superficies u objetos inanimados; la desinfección no implica necesariamente esterilización. Dentro de los objetivos de la desinfección están proteger la salud del consumidor y asegurar la calidad del producto frente a la influencia microbiana. Además, el proceso de desinfección de superficies consiste en la aplicación manual de un desinfectante que moja e impregna las superficies tratadas, dependiendo del producto que se utilice (Pérez & Vera, 2008). Todo desinfectante debe cumplir con ciertos requisitos como: Ser una solución estable compuesta por una o más sustancias limpiadoras y desinfectantes, debe ser miscible en el agua, no debe dejar olor residual desagradable, debe tener buena estabilidad y la formulación no debe ser tóxica, ni tener efectos perjudiciales para la piel humana (NTC 2455, 2000). La efectividad de los desinfectantes depende de los factores intrínsecos, la concentración, el tiempo de contacto, la naturaleza del material donde se va a aplicar, la cantidad de materia orgánica presente y el tipo y número de microorganismospresentes. También deben tenerse en cuenta los mecanismos de acción que los sanitizantes usan, ya que basado en la estrategia de rotación para la prevención de resistencia de los microorganismos, es determinante que estos actúen por medio de mecanismos diferentes y que no se inactiven entre ellos. Y al menos uno de los sanitizantes en rotación debe tener acción esporicida (USP 41, 2018) En la tabla 1 se encuentra la clasificación dada por la farmacopea americana USP 41 de 2018 a los desinfectantes dependiendo de la actividad, la naturaleza química del compuesto y el nivel de desinfección. Tabla 1. Clasificación general de los desinfectantes. COMPUESTOS CLASIFICACIÓN EJEMPLOS Aldehídos Agente esporicida Glutaraldehído 2% Alcoholes Desinfectante aséptico y agente antibacterial Alcohol 70% Derivados de halógenos Agente esporicida Hipoclorito de sodio 0,5% Compuestos fenólicos Desinfectante de uso general 500 μg por g de Clorocresol, 500μg por g de Cloroxylenol Ozono Agente esporicida 8% en peso del Gas Peróxidos Esterilizante en fase de vapor, agente esporicida líquido, antiséptico 4 μg por g de vapor de H2O2,10% de solución, solución al 3% Compuestos de amonio cuaternario Desinfectante, antiséptico Cloruro de benzalconio Biguanidas sustituidas Agente antiséptico Gluconato de clorhexidina 0,5% La Central de mezclas parenterales es un área diferenciada dedicada a la preparación de mezclas intravenosas, ajuste de concentraciones, adecuación de dosis de medicamentos estériles y no estériles, manteniendo el control y las condiciones de estabilidad, compatibilidad y esterilidad, con el fin de garantizar productos seguros y de calidad (Casaus et al., 2014). Cuenta con 2 áreas diferenciadas entre sí, un área blanca, en donde se garantiza el control de la carga contaminante, tales como virus, bacterias, hongos y partículas en suspensión, también posee condiciones controladas de iluminación, ventilación, temperatura, humedad relativa del ambiente, con controles permanentes de carga microbiana. De igual manera posee un área gris, la cual cuenta con instalaciones que no requieren de un control de la carga contaminante ni de condiciones controladas de iluminación, ventilación, temperatura y humedad relativa del ambiente (Carvajal, 2013). 4 METODOLOGIA 4.1 Tipo de estudio Se realizó un estudio de tipo experimental mediante una validación prospectiva. 4.2 Lugar y puntos de muestreo Se realizó un muestreo microbiológico en las áreas y cabinas de la central de mezclas de la institución. Los puntos de muestreo se seleccionaron teniendo en cuenta las áreas donde se realizan la mayoría de los procesos y las cabinas usadas para ello, buscando así obtener resultados significativos. Tabla 2. Puntos de muestreo de áreas. ÁREA DE LA VALIDACIÓN PROCESO Área estériles 1 Preparación No Antibióticos Área estériles 2 Preparación Antibióticos Área Nutrición Parenteral Total Preparación Nutriciones Parenterales Totales Área citostáticos 1 Preparación Quimioterapias Hospitalarias y Ambulatorias Área citostáticos 2 Preparación Quimioterapias Hospitalarias y Ambulatorias Tabla 3. Puntos de muestreo de equipos EQUIPO PRINCIPAL DE LA VALIDACIÓN ÁREA PROCESO Cabina de seguridad biológica Estériles 1 Preparación Antibióticos Cabina de seguridad biológica Estériles 2 Preparación No Antibióticos Cabina de flujo laminar horizontal Nutrición Parenteral Total Preparación TPN Cabina de flujo laminar horizontal Nutrición Parenteral Total Preparación TPN Cabina de seguridad biológica Citostáticos 1 Preparación Quimioterapias Hospitalarias y Ambulatorias Cabina de seguridad biológica Citostáticos 2 Preparación Quimioterapias Hospitalarias y Ambulatorias 4.3 Técnicas de muestreo Para validar la efectividad del protocolo de limpieza empleado en las áreas blancas de la de la Central de Mezclas de la institución, se utilizaron dos técnicas de análisis: Técnica de sedimentación: es el método más rudimentario de medición en el ambiente, el cual consistió en exponer las placas de Petri con un medio nutritivo sólido al ambiente durante un periodo de 4 horas, luego se incubaron las placas de 3 a 5 días a una temperatura de 30-35°C y se realizó el recuento de colonias. Los resultados se expresaron en UFC (unidades formadoras de colonia). Como las condiciones ambientales influyen en la sedimentación de los microorganismos es necesario que, cuando se realiza este método, las placas se expongan siempre en el mismo lugar y bajo las mismas condiciones para poder comparar los resultados obtenidos. Técnica de Contacto o Rodac (Replicate Organism Direct Agar Contact): esta técnica se usó para las muestras tomadas en superficies, el cual cuenta con placas llenas de un medio de cultivo nutritivo sólido con una superficie convexa que se presionan sobre la superficie plana a evaluar, estas placas se llevaron a incubación a una temperatura de 30-35°C, luego se realizó el conteo de las colonias y estos resultados se expresaron en UFC (unidades formadoras de colonia). Para ambas técnicas se usaron medios de cultivo con Agar Casoy- Agar sabouraud. Con este procedimiento se buscó conocer la cantidad de microorganismos presentes en los ambientes y superficies de las áreas y equipos de la Central de Mezclas y se hizo por triplicado durante 3 días, antes y después de realizar una limpieza general. 4.5 Criterios de inclusión Áreas estériles de la central de mezclas clasificadas en ISO clase 7 y cabinas clasificadas en ISO clase 5. 4.6 Análisis de datos Se creó una matriz en Excel con la tabulación de los resultados obtenidos, lo que permitió la obtención de tablas con los diferentes datos y además se realizó una estadística del tipo descriptiva. 5. RESULTADOS Y DISCUSION 5.1 Elaboración y ejecución de los protocolos de limpieza y desinfección de áreas y equipos de la central de mezclas. Los protocolos se realizaron con el objetivo de describir y brindar información sobre los procedimientos establecidos para la limpieza y desinfección de los equipos y áreas de la central de mezclas y definir los criterios a tener en cuenta durante la validación para así generar evidencia documentada de que el proceso cumple con los requisitos exigidos. Dichos protocolos se llevaron a cabo bajo las políticas de infraestructura y recursos proporcionados por la empresa y siguiendo el marco legal que rige el servicio farmacéutico. Se seleccionaron las áreas y cabinas que serían evaluadas teniendo en cuenta los procesos que se realizan en estas. Se establecieron las siguientes estrategias de validación: Criterios de aceptación: realizar inspección visual, la cual se debe realizar bajo las condiciones adecuadas para asegurar que no haya residuos de ningún material en el área o en la cabina. Se considerará validado el proceso de limpieza si los resultados de mínimo 3 procedimientos consecutivos cumplen con las especificaciones establecidas. Carga microbiana: si se encuentra alguna desviación se debe realizar la respectiva investigación, revisar el proceso de limpieza y si aplica, el proceso de validación debe ser repetido. Se desarrolló una metodología para el estudio de validación en la que se tuvo en cuenta parámetros de verificación para dar cumplimiento a lo establecido por las guías de validación de limpieza de áreas y equipos. Se seleccionaron los puntos de muestreo de áreas y cabinas teniendo en cuenta donde se realizan la mayoría de los procesos para así lograr tener resultados significativos. Se escogieron las técnicas de análisis, las muestras tomadas en ambiente se tomarán usando la técnica de sedimentación dejando las cajas Petri expuestas al ambiente por 4 horas y las muestras de superficie se tomarán con la técnica de contacto usandoplacas rodac. A demás se crearon instructivos del procedimiento limpieza para áreas y cabinas (ver anexo 1 y 2) Esta validación se realizó con muestras por triplicado, tomadas cada una en un día distinto, se realiza anterior y posterior al proceso de limpieza y desinfección, además se definió que esta validación se realizará cada 3 años, igualmente se realizaran muestreos microbiológicos mensuales con el fin de llevar un control de este proceso. 5.2 Evidencia de la efectividad del proceso de limpieza y desinfección áreas y cabinas de la central de mezclas. Para la preparación de productos farmacéuticos estériles es importante garantizar productos con una alta calidad que no posean contaminación por microorganismos que estén presentes en el aire de la zona de elaboración por lo que es necesario contar con áreas limpias. En dichas áreas se debe cumplir con ciertos controles que permitan minimizar al máximo los riesgos de contaminación microbiana (Caorsi, et al., 2011). La calidad microbiológica de los puntos de muestreo correspondiente a las diferentes áreas y cabinas se evaluó mediante un recuento bacteriano. Se tomaron 354 muestras y los resultados obtenidos se interpretaron según las especificaciones de la USP vigente, los cuales se muestran en las siguientes tablas: 5.2.1 Resultados de superficies y ambiente de cabinas. Tabla 4. Resultados de muestreo microbiológico de superficie de la pared 1. Tabla 5. Resultados de muestreo microbiológico de superficie de la pared 2. Tabla 6. Resultados de muestreo microbiológico de superficie de la pared 3. Tabla 7. Resultados de muestreo microbiológico de superficie del piso. Tabla 8. Resultados de muestreo microbiológico de ambiente de cabinas. En las tablas 4 a la 8 se muestran los promedios y desviaciones de los resultados obtenidos del muestreo microbiológico realizado en las superficies de las diferentes cabinas seleccionadas, antes y después de realizada la limpieza general, durante los 3 días de estudio, en el cual fueron analizados 3 tipos de microorganismo (bacterias, hongos y levaduras), dichos resultados expresados en UFC (unidades formadoras de colonia). En estos puntos se tomaron 144 muestras, lo que corresponde al 41% del total de las muestras, en las cuales no se evidenció presencia de microorganismos en el 100% de las muestras, es decir, los resultados obtenidos fueron de 0 UFC, lo que indica que el proceso de limpieza fue efectivo, ya que los valores se encontraron dentro de las especificaciones establecidas por la USP que es de máximo 0 UFC para cabinas clasificadas en ISO clase 5 (ver anexo 3). 5.2.2 Resultados de superficie y ambiente de áreas. Tabla 9. Resultados de muestreo microbiológico de superficie del techo. Tabla 10. Resultados de muestreo microbiológico de superficie del piso. Tabla 11. Resultados de muestreo microbiológico de superficie de la pared 1. Tabla 12. Resultados de muestreo microbiológico de superficie de la pared 2. Tabla 13. Resultados de muestreo microbiológico de superficie de la pared 3. Tabla 14. Resultados de muestreo microbiológico de superficie de la puerta. En las tablas 9 a la 14 se muestran los promedios y desviaciones de los resultados obtenidos de las muestras microbiológicas tomadas en las superficies de las diferentes áreas seleccionadas (techo, piso, pared 1, pared 2, pared 3, puerta), antes y después de realizada la limpieza general, durante los 3 días de estudio, en el cual fueron analizados 3 tipos de microorganismo (bacterias, hongos y levaduras), dichos resultados expresados en UFC (unidades formadoras de colonia). El total de muestras para estos puntos fueron de 180, lo que corresponde a un 51% del total de las muestras. A pesar que en algunos puntos se presentaron desviaciones los resultados estuvieron dentro de los rangos establecidos por la USP que para las superficies de áreas clasificadas en ISO clase 7 el valor máximo permitido es de 25 UFC (ver anexo 3). Estas desviaciones pudieron ser causadas por un aumento de la carga microbiana la cual se pudo dar por residuos de los sanitizantes, aumento de la temperatura o humedad. Tabla 15. Resultados de muestreo microbiológico de ambiente de áreas En la tabla 15 se encuentran los resultados de las muestras tomadas del ambiente de las diferentes áreas seleccionadas, antes y después de realizada la limpieza general, durante los 3 días de estudio, en el cual fueron analizados 3 tipos de microorganismos (bacterias, hongos y levaduras), dichos resultados expresados en UFC (unidades formadoras de colonia). El total de muestras en estos puntos fueron 30 lo que corresponde al 8% del total de las muestras. A pesar que se presentaron desviaciones en algunos puntos todos los resultados obtenidos cumplen con los parámetros microbiológicos establecidos por la USP que para ambiente de áreas clasificadas en ISO clase 7 el valor máximo debe ser de 50 UFC (ver anexo 3). Los resultados obtenidos anteriormente permitieron establecer que la calidad microbiológica del aire y superficies de las áreas y cabinas dentro de la central de mezclas se encuentran dentro de los estándares permitidos por la normatividad vigente, aun así, se evidenció que en algunos puntos la carga microbiana aumentó luego de realizada la limpieza. Cuando esto sucede se deben revisar ciertas variables como: la temperatura, humedad de las áreas, el buen cumplimiento de los procesos de limpieza según instructivos por parte del personal encargado, hábitos de higiene del personal, los tiempos en que se llevan a cabo los procesos de limpieza y el acceso continuo del personal para así llevar a cabo planes de acción, dentro de los cuales se recomienda la realización de capacitaciones al personal de limpieza para obtener mayor adherencia a los procesos a su cargo con el fin de evitar el aumento de la carga microbiana ambiental, reforzar los hábitos de aseo al personal encargado de la limpieza y producción, estandarización de los tiempos de limpieza y la restricción de personal a ciertas áreas. Cabe resaltar que si los valores no mejoran al aplicar estas acciones se deben revisar los filtros para así descartar una falla, ya que este puede ser el motivo del aumento de la carga microbiana. Establecer las acciones correctivas en la central de mezclas permite detectar y conocer el origen de la carga microbiana y su implicación en elaborar las medidas de corrección o los puntos a intervenir. La implementación de acciones correctivas como el monitoreo microbiológico con los muestreos mensuales ha permitido a demás, llevar un control permanente de la carga microbiana de las diferentes áreas y cabinas y que estás cumplan con las especificaciones establecidas por la normatividad. 5.3 Elaboración del informe final del programa de validación. Este informe se realizó con el fin de generar la evidencia documental del proceso de validación realizado en la central de mezclas como requisito de cumplimiento de BPM (Buenas Prácticas de Manufactura). Uno de los objetivos de este informe fue documentar y comprobar que las etapas del proceso de limpieza y desinfección se cumplen de acuerdo a lo establecido en los instructivos propios de la institución. En este informe se incluyeron los documentos usados como referencia, se establecieron las responsabilidades del personal involucrado en el estudio (jefe de aseguramiento y control de la calidad, Químico Farmacéutico de validación de procesos, jefe de producción de central de mezclas y Director técnico). Se explicó la metodología que se llevó a cabo, los puntos que fueron muestreados, los criterios de inclusión que se tuvieron en cuenta y luego se incluyeron los resultados obtenidos de la toma muestra, los cuales fueron tabulados y analizados según lasespecificaciones establecidas por la normatividad para este tipo de estudio. Este informe fue realizado bajo la supervisión del Químico Farmacéutico encargado del área de validaciones y entregado a la dirección técnica del Servicio Farmacéutico para su revisión y aprobación. Cabe resaltar que debido a las políticas internas de la institución en lo que concierne a confidencialidad de la empresa este informe no puede ser publicado fuera de esta, por lo cual solo se explica a grandes rasgos su contenido en lo anteriormente descrito. 6. CONCLUSION Se estableció un protocolo para la realización de la validación del proceso de limpieza que se lleva a cabo en la central de mezclas de la institución, el cual se realizará cada 3 años, pero con muestreos microbiológicos mensuales para así llevar un control o en el caso de que haya cambios en alguno de los procesos realizados en la central de mezclas. Se pudo evidenciar la efectividad del proceso de limpieza ya que los resultados se encontraron dentro de los rangos establecidos por la normatividad vigente. Con la realización del análisis de los resultados se evidenciaron ciertas variables (temperatura, acceso continuo del personal) que se deben tener en cuenta a la hora de realizar el proceso de limpieza en las diferentes áreas y cabinas de la central de mezclas con el fin de evitar un aumento de la carga microbiana o una contaminación a algunos de los productos elaborados. 7. RECOMENDACIONES A la Universidad de Cartagena y a la Facultad de Ciencias Farmacéuticas: Mantener los mecanismos de desplazamiento de los estudiantes a diferentes ciudades con el fin de conocer un poco más sobre el desarrollo de nuestra profesión y formación profesional. Crear convenios con diferentes empresas que permitan a los estudiantes desempeñarse, en calidad de practicantes, en los distintos roles del químico farmacéutico. A la institución: Realizar constante capacitación al personal encargado de la limpieza para que haya mayor adherencia a este proceso. Establecer restricciones de acceso del personal a las áreas más críticas. 8. BIBLIOGRAFÍA Caorsi, B., Sakurada, A., Ulloa, F., Teresa, M., Pezzani, M., & Latorre, P. (2011). Calidad microbiológica del aire de una unidad de preparados farmacéuticos estériles. Revista chilena de infectología, 28(1), 14-18. Carvajal Criado, L. F. (2013). Diseño de la distribución física; documentación, estandarización e implementación de los procesos del servicio farmacéutico en el Instituto del Corazón de la FCV Bucaramanga, bajo las resoluciones 1403: 2007 y 0444: 2008. Casaus Lara, M. E., Tarno Fernández, M. L., Martín de Rosales Cabrera, A. M., & García Salom, P. (2014). Guía de Buenas Prácticas de Preparación de Medicamentos en Servicios de Farmacia Hospitalaria. Ministerio de Sanidad, Servicios Sociales e Igualdad, Agencia Española de Medicamentos y Productos Sanitarios, Sociedad Española de Farmacia Hospitalaria. Dirección General de Cartera Básica de Servicios del SNS y Farmacia. Subdirección General de Calidad de Medicamentos y Productos Sanitarios. Chaloner-Larsson, G., Anderson, R., & Egan, A. (1998). Guía de la OMS sobre los Requisitos de las Prácticas Adecuadas de Fabricación (PAF), Segunda parte: Validación. WHO/VSQ/97.02), Ginebra, 1998, 70. http://whqlibdoc. who. int/hq/1997/WHO_VSQ_97. 02_spa. pdf. Chiles, M., & Germania, J. (2018). Protocolo de limpieza, desinfección y disminución de infecciones cruzadas por parte del personal auxiliar de enfermería que labora en el área de emergencia del hospital Divina Providencia (Bachelor's thesis). Gallego Villanueva, L. S. (2016). Evaluación de la concentración mínima inhibitoria de un desinfectante de uso hospitalario y de uso comercial. Huamaní Godoy, A. E. (2014). Factores de riesgo asociados al desarrollo de infecciones intrahospitalarias en el servicio de medicina pediátrica del Hospital Madre Niño San Bartolomé, entre los años 2009-2011 (Doctoral dissertation). INVIMA. (2018). Guía de validación de limpieza. (pp. 1-3). Bogotá. Linares Rivera, J. A. (2018). Identificación de los riesgos biológicos en el área de quirófano de cirugía del Hospital León Becerra de la ciudad de Milagro, y medidas de intervención para prevenir enfermedades en el personal de salud (Master's thesis, Universidad de Guayaquil. Facultad de Ingeniería Industrial. Carrera de Ingeniería Industrial.). NTC 2455. (2000). Desinfectantes, limpiadores líquidos. Desinfectantes para uso doméstico. ICONTEC. Pérez Herrera, D. C., Vera, T., & Adriana, M. (2008). Revisión y actualización del programa de limpieza y desinfección de Anglopharma SA (Bachelor's thesis, Facultad de Ciencias). USP 41. (2018). Farmacopea USP 41- NF 36. 9. ANEXOS Anexo 1. Instructivo de limpieza de cabinas Apagar la cabina y esperar 10 a 15 minutos para iniciar la limpieza Realizar un barrido con un paño estéril seco por todas las partes de la cabina para retirar el polvo de arriba hacia abajo y de adentro hacia afuera. Se desmontan las bandejas de la cabina y se limpian con un paño esteril seco Se humedece una esponja de fibra verde con jabón multiproposito y se limpian las superficies se lavan las bandejas con agua y jabón neutro, se enjuagan con agua esteril, secarlas y se pasa un paño esteril impregnado con el sanitizante del dia correspondiente se enjabonan las partes internas de la cabina con un paño esteril humedecido con con jabon neutro, se enjuaga con agua esteril y se seca bien. Impregnar un paño estéril con el sanitizante correspondiente y se realiza asepsia al interior de la cabina. Adentro hacia afuera, sin devolver el paño iniciando por el techo, continúe con las paredes laterales y por último el mesón de trabajo. Monte nuevamente las bandejas y retire todos los materiales usados para la limpieza. Anexo 2. Instructivo de limpieza de áreas Colocar la mopa azul en el porta mopas Humedecer con jabon multiproposito Pasar la mopa por el techo de adentro hacia fuera y por las paredes de arriba hacia abajo. Enjuagar la mopa con agua destilada Remover el jabon de techos y paredes utilizando la mopa Enjuagar nuevamente la mopa hasta remover completamente el jabon Humedecer la mopa con el sanitizante segun el dia correspondiente Pasar la mopa por el techo de adentro hacia afuera y por las paredes de arriba hacia abajo y se deja por 15 minutos Enjuagar la mopa con agua destilada Remover el sanitizante del techo y paredes (solo aplica para Nutral Q) Enjuagar la mopa con agua destilada Anexo 3. Especificaciones microbiológicas MUESTRA ANALISIS METODO ESPECIFICACIONES USP VIGENTE Ambiente en área ISO 7 Recuento aerobios mesófilos Sedimentación Max. 50 UFC Recuento hongos y levaduras Max. 50 UFC Superficies de paredes, pisos, puertas, esclusas y equipo ISO 7 Recuento aerobios mesófilos Placa de contacto (Rodac) Max. 25 UFC Recuento hongos y levaduras Max. 25 UFC Superficie de cabina ISO 5 Recuento aerobios mesófilos Placa de contacto (Rodac) Max. 0 UFC Recuento hongos y levaduras Max. 0 UFC Ambiente de cabina ISO 5 Recuento aerobios mesófilos Sedimentación Max. 0 UFC Recuento hongos y levaduras Max. 0 UFC
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