GUIA DE LABORATORIO MEDICINA 1-3

Vista previa del material en texto

Valores Hematológicos en el adulto
Cuadro N°1
	PRUEBAS
	HOMBRES
	MUJERES
	Hematología
	13.3 -17.7
	11.7-15.7%
	Hematocrito
	40-52
	35-47%
	Glóbulos blancos(109/lt)
	3.9 -10.6
	3.5-11.0
	Glóbulos rojos(106 /mm3
	4.6 -6.2
	4.2-5.4
	Plaquetas (mm3)
	150,000-440,000
	150,000-440,000
	VES (wintrobe)
	0-15 mm/hr
	0-20 mm/hr
	VES (westergreen)
	0-12 mm/hr
	0-33 mm/hr
	VCM (fl)
	80 -100
	80 -100
	HCM (pg)
	27-34
	27-34
	CHCM (g/100 ml)
	31-36
	31-36
	RDW
	11.5-14.5%
	11.5-14.5%
	Reticulocitos
	0.5 - 1.5%
	0.5 - 1.5%
	Hemoglobina A
	95-97%
	95-97%
	Hemoglobina A2
	1.7-3.5%
	1.7-3.5%
	Hemoglobina Fetal
	>2%
	>2%
	Tiempo de protrombina (TP) (seg).
	11-13
	11-13
	Tiempo Tromboplastina (TPT) (seg).
	25-35
	25-35
	Tiempo de Trombina (seg).
	14-20
	14-20
	Fibrinógeno (mg/dL)
	200-400
	200-400
	Tiempo de Sangría (DUKE)(min)
	1-4
	1-4
	Tiempo de Sangría (IVY) (min)
	4-8
	4-8
	Hierro Sérico (ug/dL)
	65-170
	65-170
	TIBC (Cap. saturación de Fe) (ug/dL)
	250-450
	250-450
	Ferritina (ng/mL)
	20-400
	20-400
	Acido Fólico (ng/mL)
	3-17
	3-17
	Vitamina B12 (pg/mL)
	200-950
	200-950
	Recuento diferencial
	%
	(109/lt)
	Neutrófilo
	40-80
	2-7
	Eosinófilo
	1-3
	0.0.45
	Monocitos
	4-10
	0.2-0.8
	Linfocitos
	20-40
	1.5-4.0
	Basófilos
	0-1
	0.0.2
Fuente: Hemaología Clínica, Shirlyn B.McKensie Ms,MT(ASCP)SH.CLS. y otras fuentes Stándares
3
LABORATORIO DE HEMATOLOGIA CLINICA
LABORATORIO Nº 1
MANEJO DEL MICROSCOPIO
OBJETIVOS:
 Identificar las partes del microscopio.
 Utilizar el microscopio como herramienta diagnóstica de los elementos celulares de la sangre
INTRODUCCIÓN
El microscopio es un instrumento que permite aumentar una imagen un número determinado de veces. Existen dos grandes tipos de microscopios, el microscopio óptico (de luz) y el microscopio electrónico (de electrones). El microscopio óptico fue el instrumento que llevó al descubrimiento de la célula, mientras que el microscopio electrónico, dado su enorme poder de resolución, permitió establecer una descripción detallada de las estructuras subcelulares (organelos celulares).
a) Sistema Óptico
 Ocular: Lente situada cerca del ojo del observador. Amplía la imagen del objetivo.
 Objetivo: Lente situada cerca de la preparación. Amplía la imagen de ésta. Sus aumentos de menor a mayor son 4x, 10x, 40x, 100x. Si se utiliza el aumento 100x es necesario agregar a la preparación aceite de inmersión. cuya función es evitar la dispersión de los rayos luminosos.
 Condensador: Lente que concentra los rayos luminosos sobre la preparación. 
 Diafragma: Regula la cantidad de luz que entra en el condensador. 
 Foco: Dirige los rayos luminosos hacia el condensador.
b) Sistema Mecánico
 Soporte: Mantiene la parte óptica. Tiene dos partes: el pie o base y el brazo.  Platina: Lugar donde se deposita la preparación.
 Cabezal: Contiene los sistemas de lentes oculares. Puede ser monocular, binocular.
 Revólver: Contiene los sistemas de lentes objetivos. Permite, al girar, cambiar los objetivos.
 Tornillos de enfoque: El Tornillo macrométrico que aproxima el enfoque y el Tornillo Micrométrico que consigue el enfoque correcto.
LABORATORIO DE HEMATOLOGIA CLINICA
Mantenimiento y precauciones:
1. Al finalizar el trabajo, hay que dejar puesto el objetivo de menor aumento en posición de observación, asegurarse de que la parte mecánica de la platina no sobresale del borde de la misma y dejarlo cubierto con su funda.
2. Cuando no se está utilizando el microscopio, hay que mantenerlo cubierto con su funda para evitar que se ensucien y dañen las lentes.
3. Nunca hay que tocar las lentes con las manos. Si se ensucian, limpiarlas muy suavemente con papel filtro.
4. No dejar el portaobjetos puesto sobre la platina si no se está utilizando el microscopio.
5. Después de utilizar el objetivo de inmersión, hay que limpiar el aceite que queda en el objetivo con pañuelos especiales para óptica o papel muy suave, que no deje pelusas.
MATERIALES
 Microscopios ópticos
 Portaobjetos y cubreobjeto 
 Papel lente
 Aceite de inmersión
 Frotis sanguíneo preparado
PROCEDIMIENTO
1. Colocar la placa asignada en la platina del microscopio.
2. Enfocar con el objetivo de bajo poder.
3. Mirando a través del ocular, buscar la imagen a través del macrométrico.
4. Cuando se observe la muestra, girar el micrométrico para obtener un enfoque fino.
5. Pasar al siguiente objetivo 40x
6. Girar el revólver hacia el objetivo de inmersión dejándolo a medio camino entre éste y 
	el de x40.
7. Colocar una gota mínima de aceite de inmersión sobre el círculo de luz.
8. Terminar de girar suavemente el revólver hasta la posición del objetivo de inmersión.
9. Mirando directamente al objetivo, subir la platina lentamente hasta que la lente toca la 
	gota de aceite. En ese momento se nota como si la gota ascendiera y se adosara a la 
	lente.
10. Enfocar cuidadosamente con el micrométrico. La distancia de trabajo entre el objetivo 
	de inmersión y la preparación es mínima, aun menor que con el de 40x por lo que el 
	riesgo de accidente es muy grande.
11. Una vez se haya puesto aceite de inmersión sobre la preparación, ya no se puede volver 
	a usar el objetivo 40x sobre esa zona, pues se mancharía de aceite.
5
LABORATORIO DE HEMATOLOGIA CLINICA
12. Una vez finalizada la observación de la preparación se baja la platina y se coloca el 
	objetivo de menor aumento girando el revólver. En este momento ya se puede retirar la 
	preparación de la platina. Nunca se debe retirar con el objetivo de inmersión en 
	posición de observación.
13. Limpiar el objetivo de inmersión con cuidado empleando papel lente. Comprobar 
	también que el objetivo de 40x esté perfectamente limpio.
HOJA DE ACTIVIDAD N° 1
MANEJO DEL MICROSCOPIO
FECHA: __________
ID:_______________________ Actividad 1
1.	Identifique las partes del microscopio
Actividad: En 20 párrafos narre la historia del Microscopio incluyendo los tipos de microscopios 
y el uso de cada uno:
LABORATORIO DE HEMATOLOGIA CLINICA
LABORATORIO Nº 2
USO CORRECTO DE LOS TUBOS PARA PRUEBAS DE HEMATOLOGÍA Y 
	COAGULACIÓN /ANTICOAGULANTES UTILIZADOS
OBJETIVOS:
1. 	Conocer y diferenciar los tubos para la realización de pruebas de Hematología en
el Laboratorio Clínico
2. 	Conocer los diferentes anticoagulantes utilizados en tubos para pruebas de
hematología
3. 	Describir la importancia de una adecuada toma de muestra.
INTRODUCCION
Es necesario garantizar una buena calidad en la fase preanalítica que incluye una adecuada: 
	Indicación del examen,
Preparación del paciente. 
Obtención de la muestra. 
Manipulación de la muestra
Conservación y transporte de la muestra.
Todo el personal que participa en los diferentes procesos referidos a esta fase tiene que 
disponer de la capacitación, habilidades y experiencia necesarias para ejecutar las actividades 
requeridas.
Una muestra mal tomada da resultados inútiles que confunden al profesional que la interpreta y pueden llegar a constituir un riesgo para el paciente.
7
LABORATORIO DE HEMATOLOGIA CLINICA
CUIDADOS QUE DEBE TENERSE POSTERIOR A LA EXTRACCIÓN
VACIADO DE LA MUESTRA SANGUÍNEA AL TUBO Si no se está utilizando sistema tipo vacutainer, procurar que el choque de la sangre con el interior del tubo no se realice de forma drástica.
Mezclar 10 veces invirtiendo el tubo suavemente TRANSPORTE
El transporte en gradillas a temperatura ambiente, debe ser en receptáculo cerrado, el tiempo de traslado que no debe exceder a 2 horas, luego de ser obtenida la muestra.
SOBRE EL ALMACENAMIENTO DE TUBOS PARA HEMOGRAMA Mantener refrigerada y en posición vertical
INSUMOS REQUERIDOS
Tubos de hematología 
Tubos de coagulación
Tubos Utilizados para realizar velocidad de eritro sedimentación
PROCEDIMIENTO
El laboratorio se realizará de forma descriptiva y por observación Desarrollar la hoja de trabajo
8
LABORATORIO DE HEMATOLOGIA CLINICAHOJA DE ACTIVIDADES N° 2
USO CORRECTO DE LOS TUBOS PARA PRUEBAS DE HEMATOLOGÍA Y COAGULACIÓN 
	/ANTICOAGULANTES UTILIZADOS
FECHA:___________
ID:________________________________________
Actividad 1
El Profesor mostrará la utilizad de cada tubo y explicará mediante presentaciones, la importancia de su uso y correcto llenado El profesor procede a mostrar los diferentes tubos a utilizar en el Laboratorio clínico de Hematologia
Actividad 2
Cada grupo desarrollará la preguntas presentadas en ésta hoja
PARA DESARROLLAR:
1. Señale los pasos a seguir para una toma de muestra y obtener resultados confiables?
2. Pruebas de laboratorio que se pueden realizar con el tubo con citrato de Na?
3.Qué anticoagulante tiene el tubo de tapa negra y para que qué prueba se utiliza.
3. Cuáles son los motivos de rechazo de muestra en el Laboratorio Clínico y porque?
4.Describa la secuencia d los pasos para obtener plasma de sanguíneo.
5. Describa la secuencia de pasos para obtener Suero sanguíneo
9
LABORATORIO DE HEMATOLOGIA CLINICA
LABORATORIO N° 3
TÉCNICA PARA REALIZAR LA EXTRACCIÓN SANGUINEA EN PACIENTES
OBJETIVOS
Realizar una punción venosa correctamente
Realizar frotis de sangre periférico correctamente
INTRODUCCIÓN
La extracción de sangre es un procedimiento médico usual para la detección de posibles 
enfermedades, al realizar el análisis de la muestra obtenida es importante tener presente que 
existen muchos factores que pueden afectar las pruebas de laboratorio, algunos de los cuales 
pueden ser evitados con una adecuada orientación al paciente y una correcta técnica de 
extracción sanguínea.
Los tubos con anticoagulante u otros aditivos deben invertirse suavemente de acuerdo a lo que recomienda el fabricante y colocarlos en posición vertical, para evitar el contacto prolongado con el tapón de caucho
INSUMOS Y EQUIPOS REQUERIDOS
Gasas
Algodón
Torniquete 
Jeringuilla
Tubos de hematología Portaobjetos
Alcohol
Palillo sin algodón
DESCRIPCION DEL PROCEDIMIENTO
Verificar condiciones del paciente
1. Verificar datos de pacientes
2. Verificar el estado de ayuno, tipo de pruebas y condiciones del paciente
3. Observe si el paciente está sudoroso, agitado, sedado o muestra alguna otra 
	alteración emocional.
4. Identificación correcta del paciente
Si se trata de un paciente hospitalizado que no puede comunicarse, observe su brazalete de identificación y su nombre en la cama
10
LABORATORIO DE HEMATOLOGIA CLINICA
5. Preparación del equipo
Se debe preparar y ordenar el material que se va a utilizar antes de hacer la punción: torniquete, guantes, pad de algodón, sistema de tubos al vacío o jeringuilla, afloje la capucha de la aguja pero no la quite hasta cuando vaya que iniciar la punción para mantener la esterilidad
6. Identificación de los tubos
El etiquetado de los tubos debe realizarse inmediatamente antes de la 
extracción sanguínea. No se recomienda rotular los tubos después de la 
punción.
En caso de pacientes hospitalizados, ésta tarea se realiza en la cama del paciente. La rotulación debe incluir nombre, cédula, como mínimo o de acuerdo normativas de cada laboratorio.
PUNCIÓN VENOSA
1. La postura ideal para la toma de muestra es mantener el brazo en posición 
	horizontal, se han demostrado que existen incrementos significativos en varias 
	determinaciones con respecto a la postura vertical, debido al aumento de la 
	presión de filtración efectiva la cual aumenta cuando se cambia a la posición 
	vertical.
2. Las venas más comúnmente utilizadas son las del área ante cubital, debido a su 
	accesibilidad, fácil manejo y comodidad para el paciente.
3. Preparar el material
4. Localizar la vena con el dedo índice y/o medio, evitar utilizar el pulgar.
5. Limpiar la zona con alcohol Isopropílico al 70 % de manera circular del centro 
	hacia fuera. Dejar secar al aire.
6. Punción en ángulo de 45º C insertando primero la aguja, hale el embolo extraiga 
	la cantidad necesaria de sangre
2. Retirar la ligadura en cuanto la sangre empiece a fluir
3. Llenar los tubos hasta la marca preestablecida, y según el orden de llenado.
4. Mezclar suavemente los tubos que contengan anticoagulante
PROCEDIMIENTO PARA PUNCIÓN SANGUÍNEA
 Asegúrese que el paciente se ubique en una posición segura y cómoda.
 Nunca practique una punción sanguínea en un paciente que se encuentre de pie 
	(La posición de pie es inestable y en caso que el paciente pierda el conocimiento 
	o se desmaye, será más difícil evitar que se lesione).
 No elija una extremidad en donde esté colocada algún tipo de venoclisis  Inspecciones la vena que se va a puncionar.
 Coloque el torniquete con suficiente tensión. No se exceda (Un torniquete muy 
	apretado produce hemólisis, colapso venoso, dolor, etc.)
11
LABORATORIO DE HEMATOLOGIA CLINICA
 Si la vena no es muy visible ni palpable, realice un suave masaje en el antebrazo 
	(si es el caso), con movimientos desde la muñeca hacia el codo.
 Observe siempre las dos extremidades superiores (brazos), para elegir el mejor 
	sitio de punción.
 Al finalizar el procedimiento, indíquele al paciente que debe hacer presión en el 
	sitio punzado por lo menos durante cinco (5) minutos. Coloque finalmente una 
	banda adhesiva sobre la herida de la punción.
 Si el sangrado no se detiene, aplique presión constante sobre la herida durante
10 minutos más.
 Deposite y destruya todo el material desechable en los recipientes diseñados 
	para este propósito.
 Asegúrese de que los recipientes que contengan las muestras del paciente estén 
	debidamente rotulados, marcados o identificados antes de atender a un nuevo 
	paciente o realizar cualquier tarea.
Consideraciones en pacientes hospitalizados.
Siga las instrucciones de bioseguridad con todos los pacientes, especialmente las indicadas en la entrada de las salas de pacientes potencialmente peligrosos.
 No colecte sangre de una extremidad edematosa.
 En caso de pacientes con línea arterial, las muestras de sangre deben ser 
	extraídas por el médico, a excepción de la muestra por tiempo de coagulación, 
	que debe ser tomada del otro brazo y lo cual puede hacerlo el flebotomista. 
 Si el paciente está siendo transfundido o ha recibido una transfusión de sangre 
	debe esperarse 8 horas para poder colectar una muestra de sangre.
12
LABORATORIO DE HEMATOLOGIA CLINICA
HOJA DE ACTIVIDADES Nº 3
EXTRACCIÓN SANGUINEA
NOMBRE:________________________ ID: ___________________________ Fecha : _________________
Actividad 1
El profesor explica la técnica a realizar
Actividad 2
Los estudiantes formarán grupos de 
Actividad 3
,________________________________
Se estarán evaluando la realización de la punción por grupo.
Invetigue para entregar
1-Cuando se hace una punción Venosa.
																										2-En qué casos es recomendable hacer una punción capilar
																										3-Que cuidados hay que tener al hacer una punción capilar en un neonato.
 
																								LABORATORIO DE HEMATOLOGIA CLINICA
LABORATORIO Nº 4
TÉCNICA Y CONFECCIÓN DE UN FROTIS DE SANGRE PERIFERICA
OBJETIVOS:
 Realizar correctamente frotis de sangre periférica
 Realizar correctamente el procedimiento de extracción sanguíneas
INTRODUCCIÓN:
La realización de extensiones y tinciones es práctica habitual en el laboratorio. Pese a no 
realizarse a todas las muestras, al no ser considerado procedimiento de rutina, es necesario en 
aquellos casos en los que se detecte mediante análisis previos alguna alteración. 
La correcta realización, así como una buena interpretación de lo observado, permite en muchos 
casos el diagnóstico de hematopatías. Las tinciones hematológicas son un conjunto de 
procesos que conducen a la coloración de las estructuras que componen las células sanguíneas. 
Esto tiene por objeto el aumentar el contraste entre esas estructuras y el medio que las rodea, 
y permite por tanto que las células sean visualizadas microscópicamente con mayor facilidad.Las tinciones hematológicas pueden clasificarse según distintos criterios, atendiendo al nivel de 
vitalidad de las células que se pretende colorear, se dividen en tinciones vitales y las no vitales. 
Las tinciones vitales son aquellas que se efectúan sobre células que están vivas, mediante la 
introducción de un colorante en la circulación de un organismo vivo.
Son colorantes vitales, por ejemplo, el verde Jano y el azul de metileno. 
Las tinciones supravitales son aquellas que se realizan sobre células o tejidos vivos, pero que 
están aislados del organismo del que proceden.
Las tinciones no vitales se realizan sobre células muertas. La coloración de células muertas requiere un proceso previo de fijación, que tiene por objeto el mantener inalterada su estructura y el adherirlas firmemente a la superficie del portaobjetos.
La fijación puede realizarse mediante calor, aunque habitualmente se realiza con etanol o metanol. Tradicionalmente, las tinciones se han logrado mediante el uso de colorantes que con frecuencia derivan de la anilina (tinciones tradicionales o clásicas).
Estos colorantes se reúnen en 4 grupos:
Colorantes ácidos: tienen una especial afinidad por las estructuras alcalinas de las células, como por ejemplo la hemoglobina. El principal de ellos es la eosina.
Colorantes básicos: tienen una especial afinidad por las estructuras ácidas de las células, como por ejemplo los ácidos nucleicos. Uno de ellos es el azul de metileno.
Colorantes neutros: son sales de un ácido y de una base coloreados. Tiñen el núcleo de un color y el citoplasma de otro. Uno de ellos es el eosinato de azul de metileno.
Colorantes indiferentes: son los que no tienen afinidad por estructuras ácidas o básicas. Son 
insolubles en el agua y tiñen a aquellas sustancias que tienen un poder de disolución superior al 
del líquido empleado para preparar la solución colorante.
Uno de ellos es el Sudán III empleado para teñir las grasas. También hay combinaciones de 
colorantes que dan lugar a tinciones polícromas. Una coloración es panóptica cuando se utilizan 
sucesivamente sustancias colorantes neutras y es Pancrómica cuando se aplican todas las
14
LABORATORIO DE HEMATOLOGIA CLINICA
sustancias colorantes neutras juntas. El primero que tuvo la idea de realizar una de estas 
combinaciones fue Romanowsky, y los colorantes hematológicos utilizados en la actualidad 
suelen derivar del que él preparó. Los colorantes de tipo Romanowsky constan de un 
colorante ácido (eosina) y de colorantes básicos (tiacinas).
Las tiacinas son el azul de metileno y sus derivados obtenidos por desmetilación oxidativa (tinciones realizadas con colorantes de tipo Romanowsky, que más frecuentemente se emplean en el diagnóstico hematológico, son la de Wright y la de Giemsa (utilizada sola o en combinación con la de May-Grünwald). También hay tinciones panópticas rápidas que producen una coloración fácil y rápida de las estructuras celulares. Las tinciones especiales sólo se usan en circunstancias específicas.
Son de dos clases:
Tinciones fluorescentes: emplean colorantes (fluorocromos) que se fijan a las células y que, 
cuando son estimulados por una luz ultravioleta, emiten una radiación visible, de un color 
característico.
Los fluorocromos más utilizados en esta clase de tinciones son el naranja de acridina y el rojo 
neutro.
Tinciones cito químicas: demuestran la presencia, más o menos abundante, o la ausencia de 
determinadas sustancias, localizadas en el interior de los gránulos citoplasmáticos de los 
leucocitos.
INSUMOS Y EQUIPOS REQUERIDOS 
	 Portaobjetos (10 por alumno) 
	 Jeringas
 Agujas desechables 
 Algodón
 Alcohol al 70%
 Tinciones para hematología, Wrigth
  Cubetas para tinción,
 Gasas
 Papel toalla
 Aceite de inmersión 
 Palillos de madera 
 extensor
 Guantes
 Cubreobjetos 1 caja
 Tubos con muestras de sangre con EDTA
DESCRIPCION DEL PROCEDIMIENTO
1. Con la lanceta estéril realizar una punción en un pulgar o utilizar una gota de sangre del 
	tubo de hemograma. ( lo ideal es una gota sin mezcla de anticoagulante)
2. Con un palillo de madera depositar una gota de sangre a unos 2 cm de unos de los 
	extremos de un portaobjetos muy limpio (libre de pelusas y grasa).
15
LABORATORIO DE HEMATOLOGIA CLINICA
3. Con un portaobjetos, (cubreobjetos tomarlo lateralmente entre las yemas de los dedos) 
	en un ángulo de 45º y deslizarlo sobre toda la superficie del porta de manera que se 
	pueda obtener una fina película de sangre. El inicio del frotis se denomina cabeza y la 
	parte final del frotis se denomina cola ).
4. Esperar a que se seque la lámina, dejarla sobre una rejilla o toalla de papel, con la zona 
	donde está la muestra mirando hacia arriba.
Habitualmente éste se realiza al momento de tomar el hemograma al paciente. 
En algunos laboratorios prefieren que éste sea hecho por personal capacitado y 
lo realizan al recibir la muestra. Esto estará relacionado con el tiempo de 
traslado del hemograma al laboratorio; ya que si es menor a dos horas la calidad 
de un frotis se conserva, pero si es mayor puede empezar a adulterarse el estado 
de las células.
Una buena extensión realizada presentará tres áreas de diferente grosor
Zona Gruesa (cabeza) se encuentra ubicada en la zona inmediata al punto de partida de la extensión, en ella se aprecia un aumento del número de linfocitos. Zona Fina (cola) corresponde al final de la extensión. En ésta región se observa un exceso de monocitos y granulocitos
Zona ideal (cuerpo) corresponde a la región situada entre las dos anteriores y en ella existe una distribución homogénea de la célula.
16
LABORATORIO DE HEMATOLOGIA CLINICA
TINCION DE WRIGHT
Una vez se seca la extensión sanguínea debe someterse lo antes posible a la tinción. Usualmente se utiliza métodos basado en la técnica Romanowsky. Las células adquieren la siguiente coloración:
Núcleo celular y resto de cromatina ( color azul) 
Citoplasma de los linfocitos (color azul) 
Citoplasma de los monocitos ( color grisáceo) 
Granulaciones de los polimorfonucleares 
Eosinófilo color naranja
Basófilo color azul oscuro 
Neutrófilo color pardo 
Eritrocito color rosa pálido 
Reticulocito: color azulado
PREPARACION DEL FROTIS DE SANGRE PERIFERICA
Después de la preparación, la solución se mezcla y se deja reposando por 48 horas en un envase ámbar en un lugar oscuro. Antes de su uso debe ser filtrado. El metanol además de disolver el polvo, fija las células. La parte ácida de la célula tiene afinidad por el colorante básico, mientras que la parte básica de la célula tiene afinidad por el colorante acido,
TINCION
Fijar la extensión de sangre añadiendo sobre la misma una cantidad de tinte que cubra el extendido, durante 3 minutos.
Añadir a la placa un poco de agua por los bordes procurando no derramar el tinte, el agua debe mezclarse
Esperar 5 minutos, cuando comienza a teñirse comienza a tornarse una placa 
platinada
Lavar bien la extensión con abundante agua destilada y limpiar la placa con una 
gasa la parte posterior, dejar seca. Una vez seca está lista para la observación en 
el microscopio.
Con el lente de 40x, busque la zona de grosor ideal para el recuento en el frotis de su paciente.
Toda anomalía morfológica de la serie roja debe ser cuantificada en cruces
1 + (leve) pequeña cantidad en cada campo
2+ (moderada) se observa en cantidad notable en cada campo
3 + (marcada) característica anormal prominente en cada campo.
17
LABORATORIO DE HEMATOLOGIA CLINICA
Observe característica de serie roja y plaquetas
CAUSAS DE ERROR EN LAS TINCIONES REALIZADAS A FROTIS SANGUÍNEOS.
a. Si la tinción de una extensión sanguínea es demasiado rosa, probablemente esto se 
deba a
Un pH bajo del colorante
Un tiempo de coloración insuficiente. 
Un lavado excesivamente prolongado.
Si la tinción es demasiado azul, posiblemente, esto esté causado por: 
un grosor excesivo de la extensión, o un pH alto del colorante. 
Unacoloración excesivamente prolongada.
Un lavado insuficiente.
Si tras la tinción aparecen artefactos o/y precipitados en la extensión, probablemente esto se deba a:
Un empleo de portaobjetos sucios.
Una falta de filtración del colorante.
Una coloración excesivamente prolongada. 
Un secado del colorante durante la tinción. 
Un lavado insuficiente.
18
LABORATORIO DE HEMATOLOGIA CLINICA
HOJA DE ACTIVIDADES. N° 4
TÉCNICA Y CONFECCIÓN DE UN FROTIS DE SANGRE PERIFERICA
Fecha :_________________
ID: ___________________________,___________________________
ACTIVIDADES REALIZADAS EN GRUPO DE 4 ESTUDIANTES
Actividad 1:
El docente explica y muestra en detalle los pasos del procedimiento para realizar 
frotis.
Actividad 2:
El docente realiza una simulación de la tinción de un frotis explicando en detalle 
la técnica.
Actividad 3: (por grupo de 4 alumnos)
Cada alumno realiza la técnica de realización de frotis, hasta obtener un resultado adecuado.
Actividad 4:
Cada grupo realiza la técnica de tinción de 3 frotis.
RESULTADOS
Evaluación	del	extendido	sanguíneo	(por	grupo	de	4
estudiantes)___________________
Evaluación de la tinción_______________________
Observe, dibuje e identifique los elementos observados en los diferentes 
objetivos.
Compare tamaño de las G.rojos 	Coloración de Citoplasma 
Contenido del Citoplasma ( detalle lo que observa)