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Propuesta del aprovechamiento de la manzana del marañón 
para aplicación en producto cosmocéutico de alto valor 
agregado 
 
 
 
 
 
 
 
 
Proyecto de grado 
por: 
Diana Catherin Rocha Gámez 
 
 
 
 
 
 
 
 
Asesora: 
Rocío Sierra Ramírez. PhD. 
 
Co-asesora: 
Asistente de investigación Daniela Guaqueta. Ing. Química. 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
Departamento de Ingeniería Química 
 
Universidad de los Andes 
 
Bogotá 
 
Junio 2020 
 2 
Objetivo general 
• Proponer un producto cosmocéutico de alto valor agregado a partir del residuo de la 
manzana del marañón con propiedad astringente preservando la capacidad 
antioxidante. 
 
Objetivos específicos 
1. Determinar el proceso viable de deshidratación para la preservación de las 
propiedades de la manzana del marañón, tal como la capacidad antioxidante y la 
vitamina C. 
 
2. Analizar las diferentes condiciones de operación de las extracciones de 
biocompuestos de la manzana del marañón y otras matrices vegetales. 
 
3. Proponer una formulación de una emulsión incluyendo los compuestos tentativos del 
bagazo de la manzana del marañón. 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 3 
Resumen 
El marañón es un fruto proveniente del Brasil, el cual está compuesto por un fruto, la nuez, 
y un pseudofruto que se lo conoce como manzana del marañón. En Colombia el fruto se 
cultiva principalmente en los departamentos del Meta, Vichada, Huila, Tolima, Santander, y 
la región caribe. La industria solo se ha enfocado en el proceso de la nuez el cuál solo es el 
10% del fruto. El otro 90% es el pseudofruto el cual tiene un alto contenido de vitamina C, 
polifenoles y otros compuestos. En este trabajo se realizaron dos partes, una práctica y una 
teórica. En la parte práctica se realizó un proceso de deshidratación de la manzana del 
marañón en la cual se quería preservar su contenido de vitamina C, polifenoles y su 
capacidad antioxidante. De acuerdo con los resultados obtenidos las muestras del proceso de 
liofilización y las muestras del horno a 30 °C con pretratamiento de ácido ascórbico fueron 
las que mejor valor de estos compuestos reportaron, pero se decide elegir la segunda para el 
proceso de extracción porque a nivel industrial la liofilización es un proceso que genera 
muchos costos. Luego se realizó la extracción de polifenoles de la muestra deshidratada con 
acetato de etilo y agua. De acuerdo a los resultados se obtuvo que la fase que contenía como 
solvente al agua fue la que mayor cantidad de polifenoles extrajo. La segunda parte fue una 
revisión de literatura de la extracción de biocompuestos, donde se encontró que la muestra 
a temperatura ambiente (20 ºC), tiempo de extracción de 30 minutos, 4 g de muestra y un 
volumen de 100 ml de solvente acetato de etilo agua v/v (30:70) se obtuvo un gran contenido 
de polifenoles el cual es similar al encontrado en la literatura como mejor valor. Estas 
condiciones no se pueden reportar como las mejores, ya que falta revaluar el diseño de 
experimentos para una mejor extracción de biocompuestos. Por otro lado, se observó que el 
etanol es el mejor solvente para extraer estos compuestos y que los solventes 
puros diluidos en agua logran una extracción más efectiva. Por último, con base a una 
revisión de formulaciones en cosméticos para pieles grasas, se propuso una formulación de 
un producto para este tipo de pieles con el fin de incorporar el extracto del marañón en el 
producto cosmético. 
 
Palabras claves: Deshidratación, extracción, polifenoles, biocompuestos, antioxidante, 
vitamina C, manzana del marañón, formulación, astringente. 
 
 4 
Abstract 
Cashew is a fruit from Brazil, which is made up of one fruit, the walnut, and a pseudo fruit 
that is known as the cashew apple. In Colombia, the fruit is grown mainly in the departments 
of Meta, Vichada, Huila, Tolima, Santander, and the Caribbean region. The industry has only 
focused on the nut process which is only 10% of the fruit. The other 90% is the pseudo fruit 
which is high in vitamin C, polyphenols, and other compounds. In this work two parts were 
made, one practical and one theoretical. In the practical part, a dehydration process of the 
cashew apple was carried out in which he wanted to preserve its content of vitamin C, 
polyphenols, and its antioxidant capacity. According to the results, the samples from the 
lyophilization process and the samples from the oven at 30 °C with pre-treatment of ascorbic 
acid were the ones that reported the best value for these compounds, but it was decided to 
choose the second one for the extraction process because, in the industry, lyophilization is a 
process that generates many costs. Then, the polyphenols were extracted from the dehydrated 
sample with ethyl acetate and water. According to the results, it was obtained that the phase 
containing the highest number of polyphenols as a solvent to water was extracted. The second 
part was a literature review of the extraction of biocomposites, where it was found that the 
sample at room temperature (20 ºC), extraction time of 30 minutes, 4 g of sample and a 
volume of 100 ml of solvent ethyl acetate water v / v (30:70) a high content of polyphenols 
was obtained, which is similar to that found in the literature as the best value. These 
conditions cannot be reported as the best since the design of experiments needs to be re-
evaluated for better extraction of biocomposites. On the other hand, it was observed that 
ethanol is the best solvent to extract these compounds and that pure solvents diluted in water 
achieve a more effective extraction. Finally, based on a review of cosmetic formulations for 
oily skin, a formulation of a product for this type of skin was proposed in order to incorporate 
cashew extract into the cosmetic product. 
 
Key words: Dehydration, extraction, polyphenols, biocomposites, antioxidant, vitamin C, 
cashew apple, formulation, astringent. 
 
 
 
 
 5 
TABLA DE CONTENIDO 
1. INTRODUCCIÓN ........................................................................................................ 9 
2. ESTADO DEL ARTE ................................................................................................ 11 
3. METODOLOGÍA ....................................................................................................... 15 
3.1 PROCESO DE SECADO DEL FRUTO ........................................................................ 15 
3.1.1 Liofilización ........................................................................................................ 15 
3.1.2 Secado horno de convección forzada .............................................................. 16 
3.2 MOLIENDA ............................................................................................................ 16 
3.3 EXTRACCIÓN DE BIOCOMPUESTOS ...................................................................... 17 
3.4 PRUEBA DE VITAMINA C ...................................................................................... 18 
3.5 PRUEBA DE POLIFENOLES .................................................................................... 19 
3.6 PRUEBA DE CAPACIDAD ANTIOXIDANTE .............................................................. 19 
3.7 REVISIÓN DE LITERATURA DE EXTRACCIONES ................................................... 19 
3.8 REVISIÓN DE LITERATURA DE FORMULACIONES DE CREMAS ............................. 20 
4. ANÁLISIS DE RESULTADOS ................................................................................. 20 
4.1 PRUEBA DE VITAMINA C EN MUESTRAS DESHIDRATADAS ........................................ 20 
4.2 PRUEBA DE POLIFENOLES DE MUESTRAS DESHIDRATADAS ....................................... 23 
4.3 PRUEBA DE CAPACIDAD ANTIOXIDANTE DE MUESTRAS DESHIDRATADAS ................ 25 
4.4 EXTRACCIÓN DE POLIFENOLES ..................................................................................27 
4.5 REVISIÓN DE LITERATURA DE LA MANZANA DEL MARAÑÓN .................................... 30 
4.6 REVISIÓN DE LITERATURA DE MATRICES VEGETALES .............................................. 35 
4.7 FORMULACIÓN EMULSIÓN PARA LA PIEL GRASA ...................................................... 41 
5. CONCLUSIONES ...................................................................................................... 49 
6. TRABAJO FUTURO ................................................................................................. 51 
7 BIBLIOGRAFÍA ............................................................................................................. 52 
8. ANEXOS ...................................................................................................................... 61 
ANEXOS 1. CURVAS DE CALIBRACIÓN DE ÁCIDO ASCÓRBICO ......................................... 61 
ANEXOS 2. CURVAS DE CALIBRACIÓN FOLIN-CIOCALTEU ...................................... 61 
 6 
ANEXOS 3. CURVAS DE CALIBRACIÓN PRUEBA TROLOX ............................................. 62 
ANEXOS 4. IMÁGENES DE LAS MUESTRAS ........................................................................ 62 
ANEXOS 5. ANÁLISIS ESTADÍSTICO PRUEBA VITAMINA C .............................................. 63 
ANEXOS 6. ANÁLISIS ESTADÍSTICO PRUEBA DE POLIFENOLES ....................................... 64 
ANEXOS 7. ANÁLISIS ESTADÍSTICO PRUEBA DE CAPACIDAD ANTIOXIDANTE ................. 65 
ANEXOS 8. IMAGEN DE MUESTRA POSTERIOR A LA EXTRACCIÓN .................................. 66 
 
 
 7 
 
TABLA DE CONTENIDO DE GRÁFICAS 
Gráfica 1. Concentración de vitamina C .............................................................................. 22 
Gráfica 2. Prueba Tukey para vitamina C ........................................................................... 23 
Gráfica 3. Concentración de polifenoles .............................................................................. 24 
Gráfica 4. Prueba Tukey para polifenoles ........................................................................... 25 
Gráfica 5. Capacidad antioxidante ..................................................................................... 26 
Gráfica 6.Prueba Tukey para la capacidad antioxidante .................................................... 27 
Gráfica 7. Polifenoles extraídos en fase pesada .................................................................. 29 
Gráfica 8. Polifenoles extraídos en fase liviana ................................................................... 30 
Gráfica 9. Curva de calibración de Vitamina C .................................................................. 61 
Gráfica 10. Curva de calibración de Polifenoles ................................................................. 61 
Gráfica 11. Curva de calibración de capacidad antioxidante ............................................. 62 
Gráfica 12. Gráfica de residuos para concentración de vitamia C ..................................... 64 
Gráfica 13. Gráfica de residuos para concentración de polifenoles ................................... 65 
Gráfica 14. Gráfica de residuos para capacidad antioxidante ............................................ 66 
 
 8 
TABLA CONTENIDO TABLAS 
Tabla 1. Pectina en la manzana del marañón ...................................................................... 11 
Tabla 2. Tabla composicional de la manzana del marañón ................................................. 13 
Tabla 3. Muestras del proceso de deshidratación ............................................................... 16 
Tabla 4. Muestras del proceso de extracción ...................................................................... 17 
Tabla 5. Peso de las muestras a extraer ............................................................................... 28 
Tabla 6. Extracciones de la manzana del marañón ............................................................. 31 
Tabla 7. Extracciones de matrices vegetales ........................................................................ 36 
Tabla 8. Selectividad de extracción de biocompuestos según el solvente ............................ 40 
Tabla 9. Formulaciones de cremas ...................................................................................... 42 
Tabla 10. Propuesta de formulación de crema para la piel grasa ....................................... 48 
 
 9 
1. INTRODUCCIÓN 
Colombia es un país con una producción de una extensa variedad de frutas gracias a sus 
condiciones climáticas y ubicación. Durante las últimas décadas, la siembra de frutas ha 
venido creciendo considerablemente, consiguiendo que se aumente su participación en el 
área agrícola. El desarrollo del sector frutícola en el país significa una fuente de crecimiento 
de la agricultura muy importante, de generación de empleo y desarrollo de las regiones 
(Lasprilla, 2011). Por otro lado, Colombia es el tercer país latinoamericano mayor número 
de hectáreas cultivadas en frutas (Colombia, el tercer país latinoamericano con mayores 
hectáreas cultivadas de fruta, 2017). 
 
El marañón, (Anacardium occidentale), es un fruto que proviene de Brasil, el cual se 
caracteriza por tener una alta resistencia a plagas y enfermedades, una gran acción de renovar 
suelos y muy poca necesidad de cuidado en el cultivo. Por lo anterior es que esta fruta es 
óptima para tener un cultivo ventajoso, ya que puede tener un bajo costo de producción que 
puede significar grandes fuentes de ingreso a los agricultores (obando, 1996). A nivel 
mundial, los principales productores de marañón son Vietnam, India, Nigeria, Costa de 
marfil, Brasil e indonesia, siendo Vietnam el país con mayores exportaciones a nivel mundial. 
En Colombia el fruto se cultiva principalmente en los departamentos del Meta, Vichada, 
Huila, Tolima, Santander, Norte de Santander y la región caribe (Cardona A. , 2017). Los 
cultivos de marañón en el país tienen un potencial de plantación (Cardona A. O., 2017) desde 
5.000 hasta 10.000 hectáreas por año. 
 
En la actualidad la industria del marañón, en el país se ha orientado solo en el proceso de la 
nuez que representa tan solo el 10% del fruto. Lo anterior quiere decir que el otro 90%, el 
cual es el pseudofruto, está siendo desperdiciado. Este pseudofruto es llamado también 
manzana del marañón. Adicionalmente es altamente consumido como jugo para tomar y 
concentrarlo. Este pseudofruto, al igual que el bagazo, tiene un alto contenido de vitamina C, 
muy significativo en comparación al contenido en otras frutas, polifenoles y se considera que 
tiene una buena fuente de compuestos antioxidantes (Ana Lucia F. Pereira, 2010). 
 
 10 
Los polifenoles vienen del metabolismo secundario de las plantas y están presentes de forma 
natural en muchos alimentos. Están enlazados con algunas características en los alimentos 
como su sabor, palatabilidad y valor nutricional (F. C. Padilla, 2008). Existen dos subtipos 
de polifenoles, los flavonoides y los no flavonoides. Entre los flavonoides se encuentran las 
flavonas, flavanoles, antocianidas, flavonoles, isoflavonas y flavanonas. En cuanto a los 
compuestos no flavonoides se lo abarcan los mono-fenólicos y ácidos fenólicos (Portal 
antioxidantes). Los taninos son compuestos de origen vegetal que tiene la capacidad de unirse 
a macromoléculas en el cuerpo. Además, tiene un gran poder antioxidante que hace que se 
reduzca el riesgo de padecer enfermedades de envejecimiento, aporta propiedades 
astringentes y antiinflamatorias. Adicionalmente, existen dos tipos de taninos, los 
hidrolizables y los condensados. Los primeros se caracterizan por hidrolizarse con facilidad 
como ácidos, álcalis o por vía patológica. En este grupo se encuentran polímeros de ácido 
gálico, ésteres, entre otros (Compuestos fenólicos: taninos, s.f.). Por otro lado, tenemos los 
taninos complejos o no hidrolizables,estos se caracterizan por no hidrolizarse con 
naturalidad. Se generan en el metabolismo de algunos vegetales y se forman a partir de 
catequinas o catecoles. 
 
La polifenol oxidasa es un grupo de enzimas que tiene la manzana del marañón y son las 
responsables de dar una coloración oscura al fruto. Estas enzimas catalizan la oxidación de 
los polifenoles a quinonas que reaccionan de forma no enzimática para formar los pigmentos. 
La activación de esta enzima se genera después del rompimiento de los compartimientos de 
los tejidos del fruto luego de una lesión del tejido (Christiane Queiroz, 2010). El rango óptimo 
de pH para operar es de (5.0 - 7.0) (Pardo & Méndez, 2017). El proceso de pigmentación, o 
también llamado pardeamiento, es un gran problema a nivel industrial, ya que una de las 
causas de este proceso es que el fruto pierde calidad y valor. Esto ya que produce cambios 
tanto en la apariencia del fruto como en sus propiedades, puede generar olores y efectos 
desfavorables en su valor nutricional (Morante, y otros, 2014). Por los valores agregados del 
fruto como lo son los antioxidantes, entre ellos los polifenoles y la vitamina C, este proyecto 
se centra en aprovechar sus propiedades para aplicación en un producto cosmocéutico. 
 11 
2. ESTADO DEL ARTE 
Se realizó una búsqueda sobre el contenido de pectina en la manzana del marañón, ya que la 
pectina es una especie de fibra que se encuentra en los tejidos vegetales de algunos frutos, 
tiene un gran interés comercial por sus propiedades espesantes, por lo que se usa en la 
formulación de varios productos alimenticios y cosméticos (Molina, 2016). En la tabla 2 se 
pueden observar algunos datos que se encontraron del contenido de pectina en el fruto y de 
la cantidad extraída. 
Tabla 1. Pectina en la manzana del marañón 
Cantidad 
Métodología de cuantificación / 
extracción 
Referencia 
Porcentaje de 
pectato de calcio de 
la parte comestible 
de fruto (2.96 ± 
0.33%). 
Para el método de cuantificación se utilizaron 
15 g de muestra seca y 400 mL de ácido 
clorhidrico 0.05N; se calentó a 85°C por 2h. 
(Molina, 2016). 
Porcentaje de ácido 
galacturónico(GalA: 
69.9% –84.5%) 
Las pectinas se extrajeron de alcohol-
insoluble material mediante agua acidificada 
con HNO3 a (pH 1.0, 1.5 y 2.0), relación 1:25 
(p / v), 75 ° C y 90 min, respectivamente. Se 
realizaron dos extracciones sucesivas 
(Yapo & Koffi, 
2013) 
8.39% de pectina 
La cantidad de pectina se determinó de 
acuerdo con el método de precipitación 
gravimétrica utilizando % de pectato de calcio. 
(Siumara, Francisco, 
& Flávilo, 2010) 
 (27-190 mg/ml) 
Por medio del método de hidrólisis de la 
pectina, se utilizó un rango de concentración 
del contenido de pectina. 
(Silva, Lopes, 
Converti, & Souza, 
2018) 
 12 
10.67 ± 0.05 pectato 
de calcio 
Proceso de fermentación del bagazo del 
marañon. 
(Alcântara & Silva, 
2017) 
El 0.95% de la 
pectina estaba 
presente en el jugo 
Se extrajeron sustancias pécticas con 400 ml 
de HCl durante 2 horas a 80–90 ° C. Se filtró, 
se neutralizó y luego se añadieron 10 ml de 
NaOH con agitación constante. Se añadieron 
50 ml de ácido acético, se dejó reposar 
durante 5 minutos. Esto fue seguido por la 
adición de 25 ml de CaCl2 0.5 M. (Probada 
con 1% de nitrato de plata) 
(Cajethan, y otros, 
2020) 
 
Con lo anterior se puede decir que todavía no hay mucha información sobre la pectina en la 
manzana del marañón y por ende, no se puedo encontrar información adicional para analizar 
los resultados encontrados. El ácido galacturónico es el que nos indica el valor de la pectina 
en el fruto, pero no en todas las referencias se encontró este indicador, sino que por el 
contrario se reporta en porcentaje de pectato de calcio. De lo registrado en la tabla anterior 
se puede decir que el porcentaje del contenido de pectina de la manzana del marañón se 
encuentra dentro del rango (10% - 80%) aproximadamente. Se puede evidenciar que el rango 
del contenido es muy amplio por lo que los resultados encontrados son muy distintos. Esto 
se debe a que no hay una metodología estándar para cuantificar la pectina, por lo que cada 
método arroja resultados distintos, pero se espera que el contenido de pectina en el 
pseudofruto sea alto, ya que según (Agro negocios sostenible, n.d) este se utiliza para la 
elaboración de jamones, gelatinas, mermeladas, entre otros. 
 
Por otra parte, en la Tabla 2 se puede observar el composicional de la manzana del marañón 
para analizar sus componentes y sus respectivas cantidades. Esto para conocer que 
componentes son interesantes para rescatar, según sus propiedades, y utilizar con un fin de 
alto valor agregado. 
 13 
Tabla 2. Tabla composicional de la manzana del marañón 
Componentes Cantidad Unidad Referencia 
Humedad 84.5-90.4 % (Sargent & Berry, 2011) 
Calorías 45 Kcal (Palomino, 2019) 
Proteínas 0.101-0.162 g (Bojorge, Hernández, & Pérexz, 2007) 
Grasas 0.05-0.5 g (Rodríguez A. O., 2011) 
Carbohidratos 9.08-9.75 g (Rodríguez J. F., 2018) 
Canizas 0.19-0.34 g (Rodríguez A. O., 2011) 
Calcio 0.9-5.4 mg (Bojorge, Hernández, & Pérexz, 2007) 
Hierro 0.91-0.71 mg (Bojorge, Hernández, & Pérexz, 2007) 
Fosforo 6.1-21.4 mg (Rodríguez A. O., 2011) 
Flavonoides 63.8 mg/100g (Palomino, 2019) 
Polifenoles 215.1-412.8 mg/100ml (Runjala & Kella, 2017) 
Vitamina C 126-372 mg/100ml (Runjala & Kella, 2017) 
Taninos 0.22-0.58 mg/100g (Runjala & Kella, 2017) 
Caroteno 0.4 mg/100g (Palomino, 2019) 
pH 3.5-4.6 (Prommajak, Leksawasdi, & Rattanapanone) 
Total 
azucares 30.60 % 
(Correira da costa, Milô de 
Freitas, Arraes, Ferreyra, & 
Montenegro, 2008) 
 14 
Agua 84.4-88.7 g (Rodríguez J. F., 2018) 
 
De las composiciones de la manzana del marañón encontradas en la tabla anterior, se puede 
observar que el fruto tiene alto contenido en ácido ascórbico (vitamina C). Además de este 
compuesto, que son interesantes, existen otros componentes del fruto que también tienen 
grandes propiedades en la industria cosmética como en la alimenticia, estos son los 
caroteoides y los flavonoides. Los flavonoides tienen un papel importante en disminuir la 
híper pigmentación de la piel, y posee una actividad desodorante (Cartaya & Reynaldo, 
Flavonoides: caracteristicas químicas y aplicaciones, 2001). Los carotenoides son más 
usados en la industria alimenticia como colorante, el rol nutricional más importante de los 
carotenoides es el de precursor de la vitamina A, particularmente el ß-caroteno (Piedra, 
2017). La astaxantina, un tipo de carotenoide, también es un poderoso antiinflamatorio y 
además de prevenir el envejecimiento (Quintana, Miguel, Hernández, & Helena, 2018). Su 
aplicación tópica protege de los efectos dañinos de la radiación UV-A. 
 
El ácido ascórbico (vitamina C) es un ácido orgánico esencial que actúa como un agente 
reductor y es un potente antioxidante. Este agente es necesario para la formación y 
mantenimiento del material intercelular. La deficiencia de esta vitamina en el cuerpo puede 
provocar anemia, hemorragias y un proceso lento de circulación de las heridas (Bastías, 
2016). Se encuentra en la mayor parte de los mamíferos y de las plantas, estos tienen la 
capacidad de sintetizar la vitamina, menos los humanos (Valdés, 2006). Existen dos tipos de 
vitamina C, la natural que se obtiene a partir de extracciones de frutas y vegetales, y la 
sintética que se fabrica a partir de glucosa (La Perla Del Sur, 2011). Se ha propuesto la acción 
protectora de la vitamina C en el fotoenvejecimiento (Castellano & Hernández, 2018), pues 
el número de células quemadas por la radiación UV es menor después de aplicar 
conjuntamente ácido ascórbico y vitamina E sobre la piel. 
 
Los antioxidantes son compuestos químicos que neutralizan los radicales libres que generan 
estrés oxidativo de las células que se encuentran dentro del organismo, lo cual generan 
enfermedades crónicasy degenerativas. Existen antioxidantes no enzemáticos que 
 15 
corresponden a las vitaminas y otros compuestos como los polifenoles, y los enzemáticos 
que corresponden a los producidos por el cuerpo (Ramírez, y otros, 2012). 
 
Los compuestos fenólicos (taninos) son considerados potentes antioxidantes pues captan 
radicales libres, estos radicales son átomos que tienen un electrón desapareado en su 
estructura, lo que les confiere una elevada reactividad e inestabilidad. Una nueva molécula 
reaccionará con otras para completar su par electrónico y poder estabilizarse (Lluva Lord, 
2019). Los taninos son el principal representante en el marañón. Estos presentan propiedades 
anti-inflamatorias, atisépticas y es un astringente, lo cual ayuda a las pieles grasas (Sergio, 
2015). En adición los taninos ejercen un efecto reparador de los surcos y arrugas marcados 
por el depósito irregular de fibras elásticas (Castellano & Hernández, 2018). En uso tópico 
están indicados en diversos problemas de la piel, empleándose en ciertas dermatosis, así 
como en cosmética como tónicos astringentes (Compuestos fenólicos: taninos, s.f.). Por estos 
valores agregados de los antioxidantes y vitamina C que tiene el bagazo del fruto, este 
proyecto se centra en aprovechar sus aplicaciones en la industria cosmocéutica. 
3. METODOLOGÍA 
3.1 Proceso de secado del fruto 
Para esta primera parte, la fruta del marañón, la cual proviene de plantaciones del marañón 
del departamento del Vichada, fue secada por 3 diferentes procesos de secado para obtener 
el mejor procedimiento. Para hacer la elección del mejor fruto secado se tuvieron en cuenta 
2 parámetros, la vitamina C y los antioxidantes presentes. Previo a esto, el fruto seco, se 
molió y el polvo resultante fue disuelto con agua destilada. 
 
3.1.1 Liofilización 
La fruta del marañón fue cortada en rodajas y puestas en una bandeja donde se dejaron 2 
horas aproximadamente en un ultracongelador. Pasadas estas horas, la fruta fue colocada en 
el liofilizador por 2 días. Al pasar este tiempo, se recogieron y se guardaron. En la Ilustración 
2 de Anexos 4 se puede observar la muestra liofilizada. 
 16 
 
3.1.2 Secado horno de convección forzada 
Para este caso, se quiso obtener el efecto que tiene la temperatura en el secado del fruto 
afectando la concentración de la vitamina C del fruto, ya que a altas temperaturas 
se empieza a degradar esta vitamina. Se decidió realizar el secado a temperatura ambiente 
(32 ºC) como referencia a la temperatura de los llanos, y a 42 ºC. El flujo del horno en este 
caso se mantuvo constante en el más alto, con un valor de 2.5 m/s. Para realizar cada uno de 
los secados, la fruta fue cortada en rodajas. La muestra 2, la cual corresponde a la temperatura 
de 42 ºC, se dejó aproximadamente 44 horas en el horno y la muestra 3, que corresponde a 
la temperatura de 32 ºC, se dejó en el horno 64 horas. En la Ilustración 3 y la Ilustración 4 de 
Anexos 4 se puede observar la fruta seca de las dos muestras mencionadas anteriormente. 
 
Posterior al secado de las dos muestras, se notó un color negro a medida que pasaban las 
horas. Esto se debe a la polifenol oxidasa, la cual forma la pigmentación. Para quitar este 
problema, se decide realizar otra muestra, a la temperatura más baja, con solución de ácido 
ascórbico. El ácido lo que hace es bajar los niveles de pH de la enzima y así inactivarla. La 
fruta fue picada, y posteriormente se bañó con ácido ascórbico (10%) por aproximadamente 
una hora, finalmente se ingresaron al horno a 32 ºC por 68 horas aproximadamente. En la 
Ilustración 6 en anexos se puede observar la muestra 4, que corresponde a la mencionada 
anteriormente. 
Tabla 3. Muestras del proceso de deshidratación 
Muestra 1 Liofilizada 48 (horas) 
Muestra 2 42 °C 44 (horas) 
Muestra 3 32 °C 64 (horas) 
Muestra 4 32 °C (ácido 
ascórbico) 
68 (horas) 
 
3.2 Molienda 
Después del secado de todas las muestras se prosiguió al proceso de molienda del fruto 
secado, se hizo uso del molino de cuchillas de 0.25 mm. Cada una de las muestras molidas 
fue recogida en una bolsa plástica. Finalmente, cada una de las muestras fue marcada y 
guardada. 
 17 
3.3 Extracción de biocompuestos 
Se inició eligiendo el mejor método de deshidratación con las pruebas nombradas 
anteriormente, luego se siguió a obtener el bagazo de la fruta del marañón, el cual se obtuvo 
como residuo después de la realización del jugo con la fruta. Posterior al secado del bagazo, 
se realizó la extracción de los biocompuestos. Para la extracción se realizó un diseño 
experimental en el cual se mantuvo constante el tiempo (30 min), se varió la relación de 
acetato de etilo y agua v/v (30:70, 70:30), y se analizaron 2 temperaturas (20 ºC, 40 ºC). Cada 
una de las muestras tiene una condición distinta, estas se pueden observar en la Tabla 4. 
Tabla 4. Muestras del proceso de extracción 
Muestra Acetato de etilo-agua 
(v/v) 
Temperatura (ºC) 
1 30:70 20 
2 70:30 20 
3 30:70 40 
4 70:30 40 
 
La extracción se realizó con 2 etapas, al finalizar cada etapa las muestras se centrifugaron 
por 20 min. Posteriormente se midió el volumen de cada una de las fases formadas y se 
calculó el peso del extracto. Siguiente a esto se midió el contenido de polifenoles de cada 
fase, la acuosa y la de acetato de etilo. Para ello, a la fase acuosa se tuvo que adicionar agua, 
ya que esta estaba muy concentrada, el factor de dilución de 10. Se analizaron los resultados 
del contenido de polifenoles y por último se calcula la concentración polifenoles (mg/g) que 
hay en cada muestra. Para ello el peso de ácido gálico en las muestras de cada fase se 
multiplicó por el peso inicial del bagazo en cada muestra previo a la extracción. 
 
Después de la extracción, los datos de la absorbancia tomados de cada una las fases de las 
muestras 1, 2, 3 y 4 se usaron para calcular la cantidad de ácido gálico que había en cada una 
de esas muestras. Para calcular esto, se utilizó la ecuación de la curva de calibración de 
polifenoles, la cual se encuentra en anexos. Luego de obtener el factor de dilución, la 
concentración de ácido gálico de las muestras en la fase acuosa se multiplicó por este. 
Siguiente a esto se calcularon los miligramos de extracto que hay en cada fase multiplicando 
 18 
la concentración por el volumen de cada fase al final de la extracción. El volumen final de 
cada fase se midió en una probeta. Esto se utilizó para calcular los gramos de ácido gálico 
que fueron extraídos por cada una de las fases. Los miligramos de ácido gálico se dividieron 
por los gramos de muestra seca para reportar los resultados. 
 
3.4 Prueba de vitamina C 
Para esta prueba se utilizó una solución de yodato de potasio (0.002 M), una solución de 
yoduro de potasio (0.6 M), una solución indicadora de almidón soluble (0.5%), solución de 
HCL (1 M) y la solución estándar. La solución estándar corresponde a la muestra de la fruta 
molida, se preparó pesando aproximadamente 3 g de cada una de las muestras y se diluyó en 
50ml de agua destilada, luego de varias horas la muestra se filtró. La segunda solución es la 
de yodato de potasio. Para la preparación de esta se pesó 1 g de yodato de potasio y se secó 
en un horno de vacío por 2 horas. En el horno la bomba de vacío succiona todo el aire dentro 
del horno, este llega a -0.06 Mpa. La presión de Bogotá es 74,660 Pa menos 60.000 Pa del 
horno es la presión a la cual trabaja el equipo (14.660 Pa). Luego del secado, se pesan 0.43g 
aproximadamente y se diluyen en 1L de agua destilada. 
 
La tercera solución es la indicadora, se pesaron 0.25 g aproximadamente de almidón soluble 
y se diluye en 50 ml de agua destilada caliente. La última solución es la de yoduro de potasio. 
Para esta solución se pesaron 10 g aproximadamente de yoduro de potasio sólido y se disolvió 
en 50 ml de agua destilada en un balón aforado de 100 ml, luego se diluyó hasta100 ml. Para 
la titulación se realizó una muestra con lo siguiente. 20 ml de la muestra de fruta, 150 ml de 
agua destilada, 5 ml de solución de yoduro de potasio, 5 ml de ácido clorhídrico, 1 ml de 
solución indicadora. La muestra se valoró con el volumen de la solución de yodato de potasio 
y se obtuvo el punto en un azul oscuro para cada una de las muestras. Se realizó una réplica 
por muestra. Cabe adicionar que la muestra 4, la cual corresponde a la pretratada con ácido 
ascórbico, no se evaluó para este caso. 
 
La curva de calibración de la vitamina C se realizó con ácido ascórbico (ver anexos) con 
rango (0 ppm - 200 ppm) Para realizar la curva se utilizó el procedimiento nombrado 
anteriormente, con la diferencia de que en vez de agregar 20 ml de la muestra de fruta, se 
 19 
agregaron 20 ml de la solución de ácido ascórbico. Para la solución se agregaron 20 mg de 
ácido ascórbico y se agregaron 100 ml de agua destilada. 
 
3.5 Prueba de polifenoles 
Para esta prueba primero se realizó la curva de calibración (ver anexos) con un rango (0 ppm 
- 300 ppm). Con la ecuación de la curva se encontraron los valores de concentración de ácido 
gálico, que corresponden a los polifenoles hidrolizados que se encuentran en la muestra de 
fruta. Inicialmente se pesó 7.5 g de Na2CO3 (7.5%) para preparar la muestra en 100 ml de 
agua. Posteriormente se pesaron 0.03 g de ácido gálico (>95%) para preparar la solución 
estandár en 100 ml de agua destilada, se prepararon los puntos. 
 
A la muestra se le extrajo 50 µl de fruta, se agregaron 450 µl del reactivo Folin-Ciocalteu 
(2N) y 500 µl de Na2CO3. Se agitó y se dejó a temperatura ambiente y protegida de la luz por 
una hora aproximadamente. Posterior a esto se midió la absorbancia en un espectrofotómetro 
UV-VIS de una celda a 765 nm. Para la curva de calibración se usó el ácido gálico como 
estándar referencia. La muestra en blanco fue etanol analítico (96%). El contenido de 
polifenoles fue expresado en (µg de ácido gálico equivalente (AGE) / g fruto). 
 
3.6 Prueba de capacidad antioxidante 
Para la prueba se tomaron 50 µl de la muestra de la fruta y se agregaron 950 µl de solución 
DPPH (36 ppm). Se agitó y se dejó a temperatura ambiente por una hora aproximadamente 
protegida de luz. Posterior a esto se midió la absorbancia en un espectrofotómetro UV-VIS 
de una celda a 517 nm. Para la curva de calibración se usó Trolox como estándar de referencia 
con rango (0 ppm - 250 ppm). La solución de trolox se preparó con 0.1 g de trolox en 100 ml 
de etanol absoluto. La muestra en blanco también fue etanol analítico. El contenido de 
antioxidantes se expresó en (µg Trolox equivalentes /g fruto). 
 
3.7 Revisión de literatura de extracciones 
Para las extracciones se realizaron dos búsquedas, la primera haciendo referencia solo a las 
extracciones de biocompuestos, tales como flavonoides, carotenoides, polifenoles y vitamina 
C, de la manzana del marañón sin importar el método. Para esto se utilizaron las siguientes 
 20 
palabras clave “extraction´2 AND "(cashew apple)" AND "polyphenols" y también 
"extraction" AND "(cashew apple)" AND "polyphenols" AND “Solid-Liquid”, se revisaron 
74 informes de los cuales se utilizaron 14. La segunda búsqueda se hizo para investigar a 
cerca de las extracciones sólido-líquido con los solventes que se utilizaron en la extracción 
de polifenoles del punto 2.3. En esta búsqueda se tuvieron en cuenta el agua, el acetato de 
etilo y la comparación de estos con otros solventes, además de los biocompuestos extraíbles 
que se quieren analizar. Para la segunda búsqueda se tuvieron en cuenta las palabras clave 
“extraction” AND "antioxidants" AND "ethyl acetate" AND "solid-liquid" y además con 
“Extraction” AND “ethyl acetate" AND "water" AND “Solid-Liquid” y extraction AND 
"polyphenols" AND "ethyl acetate" AND "solid-liquid", se revisaron 103 informes de los 
cuales se utilizaron 16 para este proyecto. Luego de recopilar la información, el paso 
siguiente fue analizar. 
 
3.8 Revisión de literatura de formulaciones de cremas 
Por último, se realizó una revisión de literatura la cual consiste en búsqueda de formulaciones 
de una emulsión para la piel grasa, o anti acné. Para elegir la información, se tuvo en cuenta 
que la formulación encontrada cumpliera una función para el tipo de piel ya especificado. 
Los componentes usados en cada formulación se anexaron a unas tablas y se agregó la 
función que cumple cada componente en la crema. Con esta información se continuó a 
realizar la propuesta de la formulación. Esta consiste en los componentes que más se 
repitieron en las formulaciones encontradas y su cantidad también depende de lo revisado en 
la literatura. 
4. ANÁLISIS DE RESULTADOS 
4.1 Prueba de Vitamina C en muestras deshidratadas 
Para los cálculos de la concentración y de la cantidad de miligramos de vitamina C que tienen 
cada una de las muestras, se utilizó la curva de calibración y los cálculos de estequiometría. 
 21 
Para los datos se utilizó el volumen gastado del yodato de potasio, este se obtuvo al alcanzar 
un color azul oscuro en la muestra. 
 
De la curva de calibración se utilizó la ecuación de la recta para calcular el valor de X, el cual 
corresponde a la concentración de ácido ascórbico y Y corresponde al volumen gastado de 
yodato de potasio. Los valores de concentración de ácido correspondientes a cada una de las 
muestras, utilizando la ecuación 1, se muestran en la siguiente gráfica. 
 
Por otro lado, se realizaron los cálculos de la cantidad de miligramos de ácido ascórbico en 
100 ml. Para esto se utilizaron los cálculos de estequiometría que se muestran a continuación. 
Primero se tomaron los mililitros de yodato de potasio gastados en la titulación y se 
encontraron los moles de yodato presentes con la ecuación 2. Posteriormente, teniendo en 
cuenta la relación de yodato de potasio y ácido ascórbico dadas por las ecuaciones que 
ocurren (ecuación 3 y 4), se calculan los moles de vitamina C presentes en toda la muestra 
(ecuación 5). 
 
𝑛	𝐾𝐼 = 0.002𝑀!" ∗ 𝐿!" 	(𝑒𝑐𝑢𝑎𝑐𝑖ó𝑛	2) 
 
IO3− + 5 I− + 6 H+ → 3 I2 + 3 H2O (ecuación 3) 
 
 Ácido ascórbico + I2 → 2 I− + ácido dehydroascorbic (ecuación 4) 
 
𝑛	𝑉𝑖𝑡𝑎𝑚𝑖𝑛𝑎	𝐶 =
𝑛	𝐾𝐼 ∗ 3
1 	(𝑒𝑐𝑢𝑎𝑐𝑖ó𝑛	5) 
Posterior a esto, se calculan los moles de ácido ascórbico presentes en la muestra de 20 ml, 
la cuál es la cantidad de muestra de fruta que se usó para el análisis y con esto se calculan 
los gramos de ácido presentes en los 20 ml de muestra (ecuación 6 y 7). 
 
𝑛	𝑉𝐶#$%& =
𝑛	𝑉𝑖𝑡𝑎𝑚𝑖𝑛𝑎	𝐶 ∗ 𝑉'(')*
20𝑚𝑙 	(𝑒𝑐𝑢𝑎𝑐𝑖ó𝑛	6) 
 
𝑚𝑔+, = 𝑛	𝑉𝐶#$%& ∗ 	176,12 !
"#$
∗ 1000 (ecuación 7) 
 22 
 
Finalmente se calculan los mg/100ml de ácido ascórbico de la muestra como en la 
ecuación 8. 
𝑚𝑔
100𝑚𝑙+,
=
𝑚𝑔+, ∗ 100𝑚𝑙
20𝑚𝑙 	
(𝑒𝑐𝑢𝑎𝑐𝑖ó𝑛	8) 
 
Los resultados de ácido ascórbico obtenidos para cada una de las muestras evaluadas se 
pueden observar en la gráfica de a continuación. 
 
 
Gráfica 1. Concentración de vitamina C 
De los datos observados en la gráfica 1, se puede notar que la muestra que contiene más ácido 
ascórbico es la muestra 1, la secada por el método de liofilización, esto se puede deber a que 
las muestras se secan a partir de la sublimación del hielo del producto que se congeló 
previamente. En este proceso no se está trabajando a altas temperaturas, por lo tanto, se 
preserva mejor el fruto. La muestra 3, la cual fue secada en el horno a 30 ºC, es la segunda 
muestra con mayor cantidad de vitamina C al finalizar el proceso. Adicionalmente, la muestra 
2, la cual fue secada en horno a 40 °C es la que contiene la menos cantidad de vitamina C. 
Con lo anterior se puede decir que el aumento de la temperatura afecta negativamente a la 
concentración de vitamina C en el fruto. Por último, se puede decir que los valores reportados 
152.33
56.07
138.37
0.00
20.00
40.0060.00
80.00
100.00
120.00
140.00
160.00
180.00
1 2 3
Liofilizada 42°C 32°C
Ác
id
o 
as
có
rb
ic
o 
[p
pm
]
Muestras
 23 
en las muestras anteriores son más bajos que los reportados en la tabla composicional. Por lo 
que el proceso de deshidratación afecta el contenido de esta vitamina. 
 
Gráfica 2. Prueba Tukey para vitamina C 
Según el análisis de varianza realizado en Minitab, con un p-value de 0.004, menor a la 
significancia, se puede decir que el proceso de deshidratación afecta el contenido de vitamina 
C en el fruto. Además, la Gráfica 2, indica la diferencia entre las medias de cada muestra 
evaluada. De esta gráfica podemos decir que los valores de vitamina c de las muestras 3 y 1 
no son significativamente diferentes, por lo que cualquiera de los dos procesos usados nos 
dará un valor alto de la vitamina C en la manzana del marañón. 
 
4.2 Prueba de polifenoles de muestras deshidratadas 
En la gráfica de a continuación se puede observar el contenido de polifenoles de cada una 
de las muestras de los diferentes procesos de deshidratación del fruto. En este caso se pudo 
medir también para la muestra 4. 
 
 24 
 
Gráfica 3. Concentración de polifenoles 
AA: Ácido ascórbico 
De la gráfica podemos observar que, una vez más la muestra liofilizada es la que más contiene 
polifenoles. Por otro lado, la muestra 3 y la 4, que fueron secadas a la misma temperatura, 
tienen concentraciones parecidas, lo que pudo afectar que la muestra pretratada tuviera un 
poco menos de concentración es que estuvo más tiempo dentro del horno, ya que no se logró 
secar en el mismo tiempo que la otra. Se puede decir que nuevamente la temperatura, es el 
factor que afecta la concentración de polifenoles en el fruto. Esto ya que el proceso de 
liofilización trabaja a bajas temperaturas para que se cumpla la sublimación del agua que se 
encuentra en el bagazo y la muestra 2, la cual fue secada a mayor temperatura, es la que 
menos concentración tiene. En relación con lo reportado por la literatura, los datos obtenidos 
después del proceso de deshidratación muestran una disminución en la concentración de 
polifenoles en el fruto. En este caso el valor más alto fue de 74.156 mg/100 ml para la muestra 
liofilizada y el rango en la literatura está por encima de los 215 mg/100 ml. 
741.56
571.18
686.08 679.60
0.00
100.00
200.00
300.00
400.00
500.00
600.00
700.00
800.00
900.00
1 2 3 4
Liofilizada 42°C 32°C 32°C (AA)
Co
nc
en
tr
ac
ió
n 
de
 á
ci
do
 g
ál
ic
o 
[p
pm
]
Muestras
 25 
 
Gráfica 4. Prueba Tukey para polifenoles 
Según el análisis de varianza realizado en Minitab, con un p-value de 0.000, el cual es menor 
a la significancia, el proceso de deshidratación afecta el contenido de polifenoles del fruto 
evaluado. En adición, se puede decir que las muestras 4 y 3 no son significativamente 
diferentes entre ellas al igual que las muestras 4 y 1, y 3 y 1. Esto significa que los valores 
del contenido de polifenoles entre estos pares de muestras no difieren entre sí. Profundizando 
lo anterior, vemos que la muestra 3 aunque no tiene un valor similar del contenido de 
polifenoles al de la muestra 1, es la que más se acerca al contenido de esta. La muestra 3 y la 
muestra 4 son procedimientos similares y muestran una concentración de polifenoles 
semejante. Entonces la muestra 4 y la muestra 1 también van a tener una diferencia de 
concentración que no es relevante en comparación a las otras relaciones. Por ende, con lo 
analizado anteriormente se puede decir que la muestra 2 es la más afectada por el proceso de 
deshidratación, en este caso por el incremento de temperatura. Los procesos de 
deshidratación que se recomiendan usar para la conservación del contenido de polifenoles en 
el fruto es la liofilización y el secado en horno a temperatura ambiente. 
 
4.3 Prueba de capacidad antioxidante de muestras deshidratadas 
Con la curva de calibración (ver anexos) se calcularon los valores de la capacidad 
antioxidante de cada muestra. En la gráfica siguiente se pueden observar los valores para 
cada una de las muestras evaluadas. 
 26 
 
 
Gráfica 5. Capacidad antioxidante 
AA: Ácido ascórbico 
De los resultados obtenidos se puede observar que la muestra 4 la cual equivale a la muestra 
tratada con ácido ascórbico a 32 ºC, es la que posee el mayor número de concentración 
de trolox, esto quiere decir que contiene mayor cantidad de antioxidantes que las otras 
muestras evaluadas. Siguiente a esto, tenemos la muestra liofilizada y por último las muestras 
secadas en el horno sin tratamiento. Con lo anterior se puede decir que el pretratamiento con 
ácido ascórbico influyó en el aumento de la capacidad antioxidante de la muestra, ya que la 
muestra 3, que fue deshidratada a las mismas condiciones, tiene una concentración menor. 
La razón por la que la muestra 4 tiene mayor capacidad antioxidante y menos contenido de 
polifenoles que la muestra 1 es porque entre los antioxidantes se encuentran el ácido 
ascórbico (vitamina C) y los polifenoles, por lo que esta muestra tiene más contenido de ácido 
ascórbico que de polifenoles. Esto se puede concluir, ya que la muestra fue tratada 
previamente con ácido ascórbico lo que elevó su contenido dentro del fruto, y si bien vemos 
en la gráfica de vitamina C, la muestra a 32 °C muestra un alto contenido de esta vitamina. 
144.21
78.70
128.75
160.89
0.00
20.00
40.00
60.00
80.00
100.00
120.00
140.00
160.00
180.00
1 2 3 4
Liofilizada 42°C 32°C 32°C (AA)
Co
nc
en
tr
ac
ió
n 
de
 T
ro
lo
x 
[p
m
]
Muestras
 27 
 
Gráfica 6.Prueba Tukey para la capacidad antioxidante 
Por otro lado, según el análisis de varianza realizado en Minitab, se puede decir que con un 
p-value de menor a la significancia (0.000), el proceso de deshidratación afecta el contenido 
de polifenoles del fruto evaluado. Adicionalmente de la Gráfica 6, se puede decir que las 
medias correspondientes son significativamente diferentes entre sí. Lo anterior quiere decir 
que los valores de la capacidad antioxidante de cada una de las muestras son diferentes entre 
sí. De acuerdo con este análisis, se observa que la temperatura de deshidratación del fruto 
afecta la capacidad antioxidante. De acuerdo con (Acevedo, Montiel, & Avanza, 2004) en su 
estudio de la degradación de la capacidad antioxidante se puede observar que la capacidad 
antioxidante es inversamente proporcional a la temperatura. Por último, se escoge la muestra 
4 para realizar la extracción de biocompuestos, ya que esta muestra nos muestra valores altos 
de capacidad antioxidante y polifenoles. El proceso de liofilización y el sacado en el horno 
de convección forzada a 30 °C con pretratamiento de ácido ascórbico mostraron mejores 
resultados en el contenido de vitamina C, polifenoles y capacidad antioxidante. Se escoge la 
muestra 4 para la realización de las extracciones, la del pretratamiento, ya que a nivel 
industrial el proceso de liofilización es muy costoso. 
 
4.4 Extracción de polifenoles 
Al finalizar la extracción se pudo observar que en cada una de las muestras los solventes se 
separaron, ya que el acetato de etilo no es soluble en agua, por ende se obtuvieron dos fases, 
 28 
la liviana y la pesada como se observa en la Ilustración 1. En la fase liviana se notó una 
coloración amarilla, a diferencia de la fase pesada la cual no tuvo coloración. Por esta razón 
se decidió analizar cada fase de las 4 muestras por separado. De la coloración que tuvo la 
fase de arriba se puede decir que según (Palomino, 2019) los flavonoides del pseudofruto del 
marañón, son de coloración amarilla, específicamente las flavonas, con un contenido 
promedio de 60 mg/100 g. Con lo anterior se podría decir que en la fase liviana, la cual tuvo 
una coloración al final de la extracción, tiene un alto contenido de flavonas a comparación 
con la otra fase. 
 
 
 
 
 
 
Enla Tabla 4 se muestra el peso de cada muestra del pseudofruto del marañón molida de 
previo a la extracción, la cuál se utilizó para realizar los cálculos del contenido de polifenoles 
de las gráficas que vienen posteriormente. 
 
Tabla 5. Peso de las muestras a extraer 
Muestra Peso [g] 
1 3.99 
2 4.12 
3 4.08 
4 4.00 
 
En la gráfica 7 se encuentra la concentración de polifenoles que fueron extraídos por cada 
solvente de cada muestra evaluada. Por otro lado, segunda gráfica muestra la cantidad de 
polifenoles que están presentes en cada fase de cada muestra. 
 
Fase liviana: 
Acetato de etilo 
Fase pesada: Agua 
Ilustración 1. fases formadas 
 29 
 
Gráfica 7. Polifenoles extraídos en fase pesada 
La gráfica anterior indica la cantidad de polifenoles que fueron extraídos por la fase pesada, 
el agua. Podemos observar que las muestras que contienen más cantidad de agua fueron las 
que extrajeron mayor cantidad de este compuesto. Esto se debe a en las muestras que tienen 
menor volumen de solvente, el sistema va a llegar a un punto de saturación del compuesto y 
no se va a seguir extrayendo. También se puede observar que la temperatura es un factor que 
afecta la extracción de los polifenoles. En este caso, a menor temperatura, se va a lograr una 
mejor extracción, ya que las altas temperaturas van degradando estos compuestos. Cabe 
aclarar que los resultados de la muestra 2 no son los esperados por lo que durante el proceso 
de experimentación ocurrieron errores durante el procedimiento. 
 
6512.09
1033.02
5604.01
3794.72
0.00
1000.00
2000.00
3000.00
4000.00
5000.00
6000.00
7000.00
8000.00
Temperatura [ºC] 20°C 20°C 40°C
Acetato de etilo
agua [ml]
30 [ml] 70 [ml] 30 [ml]
Ác
id
o 
gá
lic
o 
(m
g/
10
0g
)
Muestras
 30 
 
Gráfica 8. Polifenoles extraídos en fase liviana 
En la Gráfica 8 se puede observar el contenido de polifenoles extraídos por la fase liviana. 
En ella se puede observar que las muestras que contienen mayor contenido de polifenoles 
son las que tienen mayor volumen del solvente en la muestra, lo mismo que se evidencia en 
la gráfica anterior. Por otro lado se puede observar que el contenido de polifenoles que se 
extrajeron con este solvente es mucho menor al contenido extraído por el agua. Esto se debe 
a que el acetato de etilo no es tan polar como el agua y por lo tanto va a atraer otros 
compuestos menos polares que los polifenoles, es decir que esta fase no es rica en contenido 
de polifenoles. Por último, se evidencia en los datos reportados, que el volumen de la muestra 
1 es menor que el de la muestra 4, cuando debería ser al contrario por el efecto de la 
temperatura en las otras muestras. Esto puede ser consecuencia de un error en el montaje de 
la extracción. 
 
4.5 Revisión de literatura de la manzana del marañón 
Para analizar con más profundidad sobre la extracción de biocompuestos de la manzana del 
marañón, se realizó la búsqueda de extracciones de la manzana del marañón, los resultados 
de la búsqueda se pueden ver en la siguiente tabla. 
 
 
190.23
610.03
254.03
564.55
0.00
100.00
200.00
300.00
400.00
500.00
600.00
700.00
Temperatura [ºC] 20°C 20°C 40°C
Acetato de etilo
agua [ml]
30 [ml] 70 [ml] 30 [ml]
Ác
id
o 
gá
lic
o 
(m
g/
10
0g
)
Muestras
 31 
Tabla 6. Extracciones de la manzana del marañón 
Solventes Resultados Referencia 
Hidrometanólico 
50% (30ºC) 
30minPT: 498.93 (µg/ml) 
90minPT: 513.470(µg/ml) 
(Milanez, Sucupira, 
Pinheiro, & Melo, 
2015) Hidroacetona 50% 
(30min) 
30ºC PT: 1304.60 (µg/ml) 
45ºC PT: 1,286.72 (µg/ml) 
Metanol-agua (60:40) FT: 0.2847 (mg/g) (Sousa de Brito, 
Pessanha de Arajúo, 
Lin, & Harnly, 2007) 
Metanol-agua (50:50) (2ºC) 
PT: 14.46 (mg AGE/100g) 
CA: 143.3 (mg AA/100g) 
(Queiroz, Lopes, 
Fialho, & Valente, 
2011) 
(27ºC) 
PT: 17 (mg AGE/100g) 
CA: 100.5 (mg AA/100g) 
(40ºC) 
PT: 10.52 (mg AGE/100g) 
CA: 10.52 (mg AA/100g) 
Acetato de etilo, 
redisuelto con 
metanol 
PT(2ºC): 2.81 % (Queiroz, Ribeiro, 
Mendes, Fialho, & 
Valente, 2010) PT(27ºC): 2.79 % 
PT(40ºC): 2.78 % 
Etanol- agua (50:50) 
y luego acetona agua 
(70:30) 
PT (pulpa):5,286.49 (mg 
AGE/100g) 
(Ribeiro da Silva, y 
otros, 2013) 
PT (cáscara): 6,588.41 (mg 
AGE/100g) 
Metanol-agua (60:40) PT: 830 (mg AGE/100g) 
CA: 79.4 (µg trolox/100g) 
(Rufino, y otros, 2010) 
Metanol: agua (50:50 
v / v) y 40 ml de 
acetona: agua (70:30 
v / v) 
Vitamina C: 190 (mg AA/100g) 
PT:118 (mg AGE/100g) 
(Rufino, Fernandes, 
Alves, & Brito, 2008) 
Agua Vitamina C: 1.41 (mg AA/g 
seco) 
PT: 27.1 (mgAGE/g seco) 
CT: 23 (µg caroteno/g seco) 
CA: 41.14 (mg trolox/g seco) 
(Eca, Machado, 
Hubinger, & 
Menegalli, 2015) 
Etanol-agua (95:5) Vitamina C: 0.56 (mg AA/g 
seco) 
PT: 12,30 (mgAGE/g seco) 
CT: NO 
CA: 17.00(mg trolox/g seco) 
 32 
Metanol agua (1:1) (Marañón rojo) 
PT: 295 (mg AGE/100g) 
CT: 1,686 (mg/100g) 
(Morales, Sánches, & 
Merlin, 2018) 
(Marañón amarillo) 
PT: 267 (mg AGE/100g) 
CT: 699 (mg/100g) 
Etanol- agua (70:30) (Marañón rojo) 
PT: 867 (mg AGE/100g) 
FT: 594 (mgQE/100g) 
(Marañón amarillo) 
PT: 745.56 (mg AGE/100g) 
FT: 586.67 (mg QE/100g) 
(Palomino, 2019) 
(Madurez fisiológica) 
PT: 1,234.00 (mg AGE/100g) 
(Madurez commercial) 
PT: 756.67 (mg AGE/100g) 
(Sobremadurez) 
PT: 428.50 (mg AGE/100g) 
Metanol al 50% y 
luego Acetona al 
70% 
(5días) 
PT: 131.39 (mg AGE/100g) 
(Souza, Melo, Oliveira, 
Herbster, & Alcântara, 
2016) (10días) 
PT: 121.49 (mg AGE/100g) 
(15días) 
PT: 103.84 (mg AGE/100g) 
(20días) 
PT: 67.13 (mg AGE/100g) 
Tratamientos de 
plasma frío con 
nitrógeno 
(5min) 
Vitamina C: 100-125 (%) 
(Rodríguez, Gomes, 
Rodrigues, & 
Fernandes, 2017) (10min) 
Vitamina C: 100-125 (%) 
(15min) 
Vitamina C: 80-100(%) 
Metanol-agua (50:50, 
v / v) y luego 
acetona-agua (70:30, 
v / v) 
(1:2) 
Vitamina C: 109.11(mg/100g) 
PT: 768.51(mg/100g) 
(Vidal, Ferreira, 
Araújo, Narciso, & 
Rodrigues, 2017) 
(1:3) 
Vitamina C: 118.25(mg/100g) 
PT: 792.68(mg/100g) 
(1:4) 
Vitamina C: 135.78(mg/100g) 
PT: 817.21(mg/100g) 
PT : polifenoles totales. FT : flavonoides totales. CT : carotenoides totales. CA : capacidad antioxidante. AA: ácido 
ascórbico. AGE: ácido gálico equivalente. QE: quercentina equivalente. 
De acuerdo a los resultados obtenidos en la extracción con acetato de etilo y agua se puede 
decir que comparando los resultados en la fase de agua con la literatura, especialmente en el 
 33 
estudio de (Eca, Machado, Hubinger, & Menegalli, 2015), los valores obtenidos de cantidad 
de polifenoles en el extracto es mayor al reportado en el estudio. Esto se puede deber a las 
diferencias en las condiciones de extracción de cada uno de los estudios. En otro orden de 
cosas, se puede decir que se encontraron componentes de interés en la revisión de la manzana 
del marañón, tales como polifenoles, flavonoides, carotenoides y vitamina C. 
 
Por otro lado, de los datos podemos observar que en (Rodríguez, Gomes, Rodrigues, & 
Fernandes, 2017) se muestra una medición de compuestos fenólicos realizando un 
tratamiento de plasma con nitrógeno, el cual es utilizado para la preservación de las 
características cualitativas de los frutos recién cortadas y para la inactivación de 
microorganismos, este tratamiento es una forma de obtener los extractos del fruto y así 
realizar análisis de vitamina C y otros compuestos. Con respecto a las muestras analizadas al 
principio de este informe, en el proceso de liofilización estas se ultra congelaron por varias 
horas antes de la deshidratación y el valor obtenido de la vitamina C fue el mayor a 
comparación de los otros métodos. Pero al no realizar el proceso de ultracongelación de las 
muestras antes de la extracción se pudo degradar el contenido de la vitamina, por lo que sería 
recomendable utilizar este proceso, o el de plasma con nitrógeno, para la preservación de los 
componentes que se quieren extraer. 
 
En cuanto a la parte de lamatriz vegetal, dependiendo de que parte se elija para realizar la 
extracción el contenido de biocompuestos va a varias. En este caso analizan la cáscara y la 
pulpa del fruto, como conclusión se llega a que de la cáscara del fruto se logra extraer más 
polifenoles. Analizando el tipo de marañón, entre el rojo y el amarillo, el marañón rojo se 
extraen más flavonoides, carotenoides y polifenoles. Para el estado de maduración se puede 
observar que la madurez fisiológica, es el estado donde más se extrajeron polifenoles, este 
estado es el no comestible. Por ende, se puede decir que entre más maduro esté el fruto, 
menos cantidad de biocompuestos se logra encontrar. 
 
Adicionalmente, se tienen otros factores que afectan la extracción de biocompuestos como 
la temperatura y el tiempo. Para la temperatura, primero se puede decir que la mayoría de los 
procesos de extracción que se muestran en la literatura utiliza una temperatura ambiente para 
 34 
llevar a cabo el procedimiento. Según (Milanez, Sucupira, Pinheiro, & Melo, 2015) se logra 
extraer más polifenoles a una menor temperatura. Además, de los datos puestos en la Tabla 
6 se puede observar el efecto de la temperatura de almacenamiento por 24 horas de 
las muestras previo a la extracción. Entre estas se encuentran (Sousa de Brito, Pessanha de 
Arajúo, Lin, & Harnly, 2007) y (Queiroz, Lopes, Fialho, & Valente, 2011) en donde se 
evalúan temperatura fría (2 ºC), ambiente (27 ºC) y caliente (40 ºC). De lo anterior se puede 
decir que, el contenido de polifanoles se ve afectado de forma negativa por el incremento de 
temperatura. 
 
Para el tiempo, en la primera referencia podemos observar que, al aumentar el tiempo de 
extracción, se incrementa la extracción de polifenoles. No sucede lo mismo al elevarse el 
tiempo a días de almacenamiento del fruto previo a la extracción, ya que se puede observar 
que estos compuestos se van degradando, en especial la vitamina C. Además según (Paulino, 
Kesseler, Ochoa, & De Michels, 2013), se ha observado que las temperaturas altas de 
extracción afectan la estabilidad de los compuestos fenólicos, a causa de la degradación 
enzimática y química. Para finalizar propone que el tiempo de operación óptimo para la 
extracción de polifenoles es de 50 a 60 minutos. Por otro lado, según (Vidal, Ferreira, Araújo, 
Narciso, & Rodrigues, 2017) cuando mayor es la relación (g/g) entre el bagazo y el agua en 
el proceso de sonicación, mayor es la extracción, en este caso de vitamina C. 
 
Luego de analizar las condiciones de extracción por separado, se revisaron los resultados 
reportados del contenido de biocompuestos de los extractos de la manzana del marañón y se 
escogieron los valores con mayor cantidad especialmente de polifenoles que es el de mayor 
interés. Lo anterior para observar las condiciones de extracción conjuntas que conllevan a 
obtener unos resultados de extracción superiores con respecto a otros. Para el caso del 
contenido de polifenoles (Ribeiro da Silva, y otros, 2013) reportaron el mayor contenido de 
estos con respecto a las otras referencias reportadas en la tabla anterior. Las condiciones de 
extracción para este caso fueron las siguientes. En la primera etapa se tiene una temperatura 
ambiente, tiempo de 1 hora de extracción, 40 ml de solvente etanol agua v/v (50:50) y 10 g 
de muestra. Para la segunda etapa se tienen las mismas condiciones excepto que el solvente 
es 40 ml de acetona-agua v/v (70:30). Estas condicones semejantes las utilizaron por (Rufino, 
 35 
y otros, 2010) para la extracción de polifenoles. Con respecto a las condiciones de las 
extracciones de la sección 4.4, se puede decir que las condiciones utilizadas en la primera 
muestra, las cuales reportan valores similares a los de la literatura de contenido de polifenoles 
en la fase acuosa, fueron 30 minutos, temperatura de ambiente (20 ºC), 4 g de muestra y un 
volumen de 100 ml de solvente acetato de etilo agua v/v (30:70). 
 
De lo anterior se puede decir que las dos condiciones de extracción, de la parte experimental 
y las propuestas por la literatura, son adecuadas para lograr una alta extracción de polifenoles 
de la manzana del marañón. Por otra parte, se observa que estas condiciones no son similares, 
ya que el tiempo de extracción utilizado, los solventes y la relación muestra-solvente 
varían entre los dos procesos, pero que en conjunto con las otras condiciones que se 
utilizan se logra obtener un gran contenido del biocompuesto. En un caso se tiene mayor 
tiempo de extracción que, como dicho anteriormente, es el más utilizado en la literatura, y en 
el otro caso se tiene un mayor volumen de solvente en comparación al peso de la muestra a 
extraer. Esto último es bueno para que el sistema no llegue a la saturación tan rápido y así 
lograr extraer la mayor cantidad del compuesto deseado. En resumen, se puede decir que, 
aunque las condiciones utilizadas en la sección 4.4 arrojan un gran contenido de polifenoles 
en el extracto, no se pueden considerar como las mejores condiciones de extracción, ya que 
no se realizó el diseño de experimentos completo. Para ello toca reevaluar el diseño de 
experimentos con condiciones que faltan analizar tal como a temperatura (30 ºC) con tiempo 
de 45 min y una relación v/v (50:50), y las mismas condiciones utilizadas en la sección 
anterior, pero con un tiempo de una hora. Se espera que al estudiar todas las condiciones en 
un futuro obteniendo resultados favorables sobre la extracción de biocompuestos de la 
manzana del marañón. 
 
4.6 Revisión de literatura de matrices vegetales 
Dado que no hay mucha información en las extracciones del marañón, especialmente en el 
análisis de solventes, y que se tuviera en cuenta el agua y el acetato de etilo, se realizó una 
búsqueda más abierta sobre las extracciones de biocompuestos de otras matrices vegetales. 
En la tabla de a continuación se puede evidenciar la información encontrada. 
 
 36 
Tabla 7. Extracciones de matrices vegetales 
Nombre fruto Solvente Resultados Referencia 
Anisophyllea laurina 
Metanol TP: 4,329.66 (mg GAE/100) (Onivogui, Letsididi, 
Diaby, Wang, & 
Song, 2015) Etanol TP: 3,820.12 (mg GAE/100) 
Acetato de etilo TP: 1,858.53 (mg GAE/100) 
Agua TP: 2,018.85 (mg GAE/100) 
Semillas de uva Etanol 
TPartícula> 0.63 mm 
PT 25ºC: 14.7193 (mg 
AGE/g) 
TPartícula = (0.63-0.4)mm 
PT 25ºC: 22.0303 (mg 
AGE/g) 
 TPartícula =( 0.4-0.16)mm 
PT 25ºC: 52.6011 (mg 
AGE/g) 
(Bucić-Kojić, 
Planinić, Tomas, 
Bilić, & Velić, 2006) 
 
 
 
Alternanthera sesillis 
(hoja) 
Etanol 
PT: 77.29 (mg AGE/g 
extracto) 
FT: 131.59 (mg RE/g 
extracto) 
CT: 365.79 (mg BE/g 
extracto) 
(Mohd, Abdul-Aziz, 
Mat-Junit, Chee, & 
Kong, 2018) 
Hexano 
PT: 21.85 (mg AGE/g 
extracto) 
FT: 73.76 (mg RE/g 
extracto) 
CT: 311.18 (mg BE/g 
extracto) 
Acetato de etilo 
PT: 57.54 (mg AGE/g 
extracto) 
FT: 157.44 
(mgRE/g extracto) 
CT: 782.99 (mgBE/g 
extracto) 
Agua 
PT: 58.99 (mgGAE/g 
extracto) 
FT: 21.80 (mgRE/g extracto) 
CT: 97.86 (mgBE/g extracto) 
Dillenia indica 
Agua 
AT: 1.41 %(w/w) 
CA: 594.6 (µmoles/g of 
extract) 
(Abdille, Singh, 
Jayaprakasha, & Jena, 
2004) 
Acetato de etilo 
AT: 9.37 %(w/w) 
CA: 1,067.0 (µmoles/g de 
extracto) 
 37 
Metanol 
AT: 34.14 %(w/w) 
CA: 1,904.8 (µmoles/g de 
extracto) 
Piña 
Agua 
FT: 39.4 (mg QE/g) 
CA: 612.1 (%AA) 
(Hossain & Rahman, 
2010) 
Metanol 
FT: 55.2 (mg QE/g) 
CA: 1,933 (%AA) 
Acetato de etilo 
FT: 37.9 (mg QE/g) 
CA: 1,051.8 (%AA) 
Acacia 
auriculiformis 
Agua 
PT: 700 mg (g AGE/g 
extracto) 
(Singh, Singh, Kumar, 
& Arora, 2007) 
Acetato de etilo PT: 600(g AGE/g extracto) 
Grosella negra 
Agua (1h) PT: 3,219.2 (mg/L) (Lapornik, Prošek, & 
Golc, 2004) Etanol-Agua PT: 61,35.7 (mg/L) 
Metanol-Agua PT: 7,455.2 (mg/L) 
Moringa oleifera 
Metanol 
FT: 2.4 (mg/g equivalents) 
AF: 10.60 (mg/g 
equivalents) 
(Rocchett, y otros, 
2019) 
Metanol-agua 
FT: 4.93 (mg/gequivalents) 
AF: 6.23 (mg/g equivalents) 
Acetato de etilo 
FT: 0.53 (mg/g equivalents) 
AF: 5.77 (mg/g equivalents) 
Rumex abyssinicus 
Extracto de etanol 
PT: 185 (mgAGE/g extract) 
FT: 154 (mg catechin/g 
extracto) 
(Mohammed, Panda, 
Madhan, & Demessie, 
2017) 
Extracto acuoso 
PT: 134 (mgAGE/g extract) 
FT: 118 (mg catechin/g 
extracto) 
Coconut (Cocos 
nucifera L.) 
Agua 
TP: 34.9 (mgAGE) 
FT: 48.9 (mgQE) 
CA: 149(µmol trolox/g seco) 
(Arivalagan, y otros, 
2018) 
Metanol 
TP: 55.6 (mgAGE) 
FT: 78.1 (mgQE) 
CA: 173 (µmol trolox/g 
seco) 
Metanol-agua 
PT: 89.7 (mgAGE) 
FT: 115 (mgQE) 
CA: 215 (µmol trolox/g 
seco) 
 38 
Etanol 
PT: 22.7 (mgAGE) 
FT: 30.1 (mgQE) 
CA: 72.6 (µmol trolox/g 
seco) 
Etanol-agua 
PT: 72.7 (mgAGE) 
FT: 48.6 (mgQE) 
CA: 183 (µmol trolox/g 
seco) 
Acetona 
PT: 4.89 (mgAGE) 
FT: 8.84 (mgQE) 
CA: 20.3 (µmol trolox/g 
seco) 
Acetona-agua PT: 98.5 (mgAGE) 
FT: 74.2 (mgQE) 
CA: 396 (µmol trolox/g 
seco) 
Granos de café verde 
Acetona 
PT: 1,737.81 (mg AGE/100 
g) 
(Oliveira, Silva, 
Santos, & Queiroz, 
2019) 
Etanol PT: 4,048.34 (mg AGE/100 
g) 
Acetato de etilo PT: 313.84 (mg AGE/100 g) 
Hexano PT:785.42 (mg AGE/100 g) 
Isopropano PT:1,477.21 (mg AGE/100 
g) 
Éter de petróleo PT: 246.92 (mg AGE/100 g) 
 C. spiralois (hoja) 
Metanol 
AT: 17.6 (mg AT/G) 
FT: 8.5 (mg RE/g) 
(Chavan, Gaikwad, 
Kshirsagar, & Dixit, 
2013) 
Etanol 
AT: 12.2 (mg AT/g) 
 FT: 11.4 (mg RE/g) 
Acetona 
AT: 4.6 (mg ATE/g) 
FT: 2.7 (mg RE/g) 
Agua 
AT: 6.3 (mg ATE/g) 
FT: 2.2 (mg RE/g) 
Citrus reticulate L. 
Metanol PT: 22-24 (mg AGE/g) (Safdar, y otros, 2016) 
Etanol PT: 19-20 (mg AGE/g) 
Acetona PT: 12-14 (mg AGE/g) 
Acetato de etilo PT: 9-11 (mg AGE/g) 
Seed legumes (CES) 
Agua PT: 29-31 (mgAGE/g) (Diniyah, Alam, & 
Lee, 2020) Etanol-agua PT: 35- 40 (mgAGE/g) 
Etanol PT: 20-25 (mgAGE/g) 
Cáscaras de granada 
Agua doblemente 
destilada 
PT: 15-17 (%) (Selvakumar & 
Sivashanmugam, 
2019) Metanol PT: 13-15 (%) 
 39 
Agua doblemente 
destilada y 
Dimetilsulfóxido 
PT: 20-23 (%) 
Dimetilsulfóxido y 
metanol 
PT: 16-18 (%) 
 
PT : polifenoles totales. FT : flavonoides totales. CT : carotenoides totales. CA : capacidad antioxidante. AA: ácido 
ascórbico. AGE: ácido gálico equivalente. QE: quercentina equivalente. AT: ácido tánico. CF: contenido fenólico. AF: 
ácido fenólico. RE: rutina equivalente. 
A partir de los resultados con respecto al tamaño de partícula del polvo, se observa que, a 
menor tamaño de partícula, se va a obtener una mayor cantidad polifenoles. Esto ya que 
cuando menor es este parámetro, mayor es el área de contacto entre el sólido y el líquido, y 
esto hace que se incremente la velocidad de transferencia del material que se quiere extraer 
(J.M & J.F, 2009). Adicionalmente, menor va a ser la distancia que recorre el solvente por el 
interior del sólido. Sin embargo, según (Rivas, 2016) la existencia de partículas muy finas 
impide el proceso de extracción, ya que algunas veces al ser muy pequeñas se compactan y 
se forma una especie de pasta que hace que se filtre el extracto en la última etapa. 
 
Por otro lado, se observó que en algunas referencias realizan una extracción acidificada. La 
mayoría de estos corresponden a las extracciones de la manzana del marañón como en (Sousa 
de Brito, Pessanha de Arajúo, Lin, & Harnly, 2007) y (Ribeiro da Silva, y otros, 2013). Algo 
en común que tienen es que la acidificación se realiza para la extracción o el análisis de 
flavonoides. La extracción con ácido establece que esta condición proporciona estabilidad 
sobre las moléculas de los compuestos que se quieren extraer (Calderón, y otros, 2016). 
Continuando con lo anterior, según (Arivalagan, y otros, 2018) la extracción acificada de 
Cocos nucifera L. aumentó significativamente la cantidad de extracción total de compuestos 
fenólicos en comparación con los solventes sin acidificación. La acidificación con HCl y 
ácido acético no solo mejoró la capacidad de extracción del disolvente, sino que también 
estabilizó las antocianinas (flavonoides) y aumentó su actividad antioxidante. 
 
A cerca de los solventes se observó que la fracción de agua tiene un mayor contenido fenólico 
en comparación con el acetato de etilo. Esto coincide con la información obtenida en la 
extracción del bagazo de la manzana del marañón, en donde se obtuvo más concentración de 
polifenoles en agua que en el acetato de etilo. Lo anterior se debe a que este biocompuesto se 
 40 
extrae mejor en solventes polares, tales como el agua. Con respecto a los componentes en la 
fase de acetato de etilo es espera encontrar mayor cantidad de flavonoides y carotenoides en 
el extracto. Lo anterior porque los flavonoides tales como la flavona no son tan polares, por 
ende son más solubles en solventes como ésteres (Cartaya & Reynaldo, 2014), y porque los 
carotenoides no son solubles en agua (García B. , 2015), pero lo son en solventes orgánicos 
como el etanol y la acetona. Otro punto que se puede observar es que los solventes cuando 
están disueltos en agua van a extraer más biocompuestos, que el solvente por sí solo. Esto 
sucede porque al adicionar el agua, aumenta la polaridad del solvente, y se incrementa la 
solubilidad de las matrices de muestra (Arivalagan, y otros, 2018), esto hace que aumente 
significativamente la capacidad de extracción. 
 
Por último, se puede observar que para cada componente que se quiere extraer, hay unos 
solventes que actúan mejor para ciertos biocompuesto. Por ejemplo, para la capacidad 
antioxidante el metanol es el solvente con el que se obtiene mayor cantidad, luego le sigue el 
etanol, el acetato de etilo, el agua y por último la acetona. Para los carotenoides, el acetato 
de etilo es el solvente mejor actúa para su extracción, le sigue el metanol, el hexano y por 
último el agua. En cuanto a los polifenoles, especialmente los taninos el metanol es el mejor 
solvente, le sigue el etanol, el agua y el isopropil, por último tenemos el hexano, acetato de 
etilo, acetona y éter de petróleo. Con respecto a los flavonoides los mejores solventes son el 
acetato de etilo, el etanol y el hexano. En la tabla 7, se puede apreciar los materiales extraíbles 
que mejor extrae cada solvente de acuerdo a la información reportada anteriormente. 
 
Tabla 8. Selectividad de extracción de biocompuestos según el solvente 
Solvente Biocompuestos 
Agua Taninos 
Metanol Taninos- carotenoides – 
Flavonoides 
Etanol Taninos- flavonoides 
Acetona Polifenoles 
Acetato de etilo Carotenoides - Flavonoides 
Hexano Flavonoides 
 
Po
la
ri
da
d 
 41 
Teniendo la posibilidad de extraer biocompuestos antioxidantes en un sistema bifásico como 
el que se usó experimentalmente, acetato de etilo y agua, se podría obtener dos fases ricas en 
compuestos antioxidantes que pueden tener aplicación en la industria cosmocéutica. Para este 
caso se tendría la fase de agua rica en taninos y la fase con acetato de etilo rica otros 
componentes como los carotenoides. Este tipo de solventes podrían ser muy útiles para 
utilizar los extractos en diferentes productos. De acuerdo a la Tabla 8, el metanol es el 
solvente que mayor cantidad de biocompuestos extrae, pero no es viable para usar en el caso 
de extracción de polifenoles para un fin cosmocéutico porque es considerado altamente 
tóxico para las personas. No obstante, se observa que el etanol también es un buen solvente 
para extraer tanto taninos como flavonides y como dicho anteriormente, al diluirlo con agua 
mejora el rendimiento de la extracción. Por añadidura, (Rivas, 2016) observó que el etanol y 
el agua, desde el punto de toxicidad, son más seguros para trabajar en la industria alimenticia 
que otros solventes orgánicos, esto quiere decir que igualmente estos solventes van a ser 
amigables para utilizarlos en un producto de la industria cosmoséutica. Por ende, se puede 
decir que el etanol disuelto en agua es el mejorsolvente para obtener un extracto de 
biocompuestos antioxidantes de la manzana del marañón con aplicación en producto 
cosmocéutico. 
 
Luego de la obtención del extracto, es mejor realizar la eliminación del solvente para obtener 
un extracto más concentrado. Un método que se podría utilizar para obtener el extracto es la 
concentración al vacío. Este es un procedimiento con el que se puede simultanear el proceso 
de separación y de concentración. Por un lado permite la evaporación del solvente, y por el 
otro la concentración del principio activo (Condorchem Ibérica). Además, todo el proceso se 
lleva a cabo a temperaturas entre los 25 ºC y 30 ºC para no alterar los extractos. 
 
4.7 Formulación emulsión para la piel grasa 
Las cremas son una mezcla de agua y sustancias aceitosas que se mezclan, esto sucede gracias 
a los emulsionantes. Hay dos tipos de cremas, las lipófilas y las hidrófilas. Las primeras son 
emulsiones de agua en aceite, donde el agua se evapora y el aceite es absorbido por la piel. 
Las segundas son emulsiones de aceite en agua, en ellas el agua se pierde. Su poca cantidad 
de grasa es perfecta para que la piel esté protegida de cualquier suciedad (García, Roig, & 
 42 
Rebollar, 2015). La piel grasa se caracteriza por tener un exceso de sebo, lo que es un aspecto 
brillante, con los poros de la piel dilatados y la presencia de espinillas y puntos negros. Esta 
piel es muy sensible y uno de los problemas más frecuentes de la piel grasa es la presencia 
de acné (Pharmablog , 2013). Para este tipo de pieles es mejor elegir una buena crema 
hidratante que sea libre de aceites, en otras palabras, que tenga mayor proporción de agua 
que de aceite (nuevatribuna.es, 2018). 
 
Por otro lado, existen las emulgeles que son una emulsión gelificada en la cual se encuentra 
una fase de agua y otra de aceite, pero en pequeña proporción, con un agente gelificante 
(Corredor, 2013). Los gelificantes son sustancias que son capaces de formar estructuras 
tridimensionales en un medio líquido, y esto hace que se forme una especie de gel en el 
producto (Juvé, Viscasillas, & Del Pozo, 2007). Algunos gelificantes que se utilizan en la 
formulación cosmética son Carbómeros, Poliacrilatos de glicerina, Alquil acrilatos 
reticulados, Poliacrilamidas, Polímeros acrílicos, Silice, Metil celulosa y Goma guar. 
 
La propuesta de realizar un producto cosmocéutico, en este caso una emulgel, para la piel 
grasa viene de las propiedades de los componentes de interés extraíbles de la manzana del 
marañón. El más importante, son los taninos, que como dicho anteriormente, tiene propiedad 
astringente la cual ayuda a controlar los niveles de grasa en la piel. La búsqueda de las 
formulaciones de crema fue hecha solo para pieles grasas, o acné. En ella se anotaron los 
componentes que se usan, su cantidad y la función que cumplen en la crema. Esto se puede 
ver en la tabla siguiente. 
Tabla 9. Formulaciones de cremas 
#Formulación Componentes %w/w Función Referencia 
1 
Parafina 16 Emoliente 
(Zaman & 
Akhtar, 2013) 
ABIL® EM 90: 3 Emulsionante 
Extracto 5 Propiedades 
Agua destilada 76 Solvente 
2 
Natrosol HHR 250 1 Espesante 
(McCook & 
Stephens, 2005) Etanol SD 40 50 Aditivo 
Alcanfor 0,4 Lipolítico hipertérmico 
 43 
Diphenhydramine 
HCl 2 Agente espesante 
Phenonip 1 Agente antimicrobiano 
Agua destilada 40.6 disolvente 
Extracto 5 Cashew apple 
3 
Diphenhydramine 
HCl 2 Agente astringente 
 
(McCook & 
Stephens, 2005) 
SYSTEM (glicoles 
y etanol) 20 
Agente 
antimicrobiano/emulsifican
te 
Natrosol HHR 250 
(1% solucion) 45 Espesante 
Metilsulfonilmetan
o 5 Controldor de viscosidad 
Dry Flo Starch 10 Modificador de estética 
Hidrolita-5 
(pentilenglicol) 5 Conservante 
Etanol SD 40 10 Emoliente 
Phenonip 0.3 Aditivo 
Fragancia 0.07 Conservante antimirobiano 
Agua destilada 2.63 Disolvente 
4 
Extracto 0.5 Propiedad astringente (flavonoides) 
(Camos, Cruz, & 
Fatima, 2020) 
Alcohol cetílico 17,32 Emoliente 
Ácido esteárico 6,66 Emulsificante 
Cutina 10 Emoliente 
Propil parabeno 0.2 Estabilizante 
Lauril Sulfato de 
Sodio 6.66 Surfractante 
Propilenglicol 6.66 Emulsificante 
 44 
5 
Alcohol cetílico 2.1 Emoliente 
(Flynn & Pitkin, 
1985) 
 
Propilenglicol 1 Emilsificante 
citrato de sodio 1 Buffer 
propilparabeno 0.25 Estabilizante 
Lauril Sulfato de 
Sodio 0.5 Surfractante 
 
Sílice pirógena 2 regulador de viscosidad 
Agua destilada 83.15 disolvente 
Peróxido de 
benzoilo 10 Bactericida 
 
6 
Divinyldimethicon
e 6.8 Matificante 
(Stork, Arif, & 
Mutti, 2006) 
 
Polisorbato 20 0.5 Emulsionante 
Lactato de sodio 10 Emoliente 
Agua 36.0674 Solvente 
Glicerina 41.499 Emoliente-Humectante 
Ácido cítrico 0.1666 Esfoliante 
Metilparabeno 0.2 Estabilizante 
Perfume 0.017 Sustancia aromatizante 
Cloruro de sodio 0.75 Conservante antimicroviano 
 
Porpilenglicol 4 Emulsificante 
7 
Fracción de 
taninos 1 Extracto (A.Vijayalakshm
i, Tripura, & 
Ravichandiran, 
2010) 
 
Aceite parafina 16 Emoliente 
ABIL- M 90 3.5 Surfractante 
Agua 79.5 Disolvente 
8 ácido esteárico 10 Emulsificante 
 45 
alcohol cetílico 4 Emoliente 
(Sekar & Abdul, 
2017) 
 
parafina líquida 4 Emoliente 
glicerina 5 Humectante 
metil parabeno 0.05 Conservante antimicrobiano 
 
thiethanolami 0.05 Espesante 
Agua destilada 71.9 Solvente 
Extracto 5 Propiedades 
9 
Nicotinato de 
metilo 1 Tonico 
(Scivoletto, 
2001) 
 
Niacina 1 Vitamina B3 
Aloe vera gel 45 Antiséptico 
Ácido glicólico 20 alfahidroxiácido 
Glicerina 1.8 disolvente 
DMDM hidantoína 0.25 Emoliente 
EDTA tetrasódico 0.15 Estabiliza viscosidad 
Vitamina E 0.1 "Antiarrugas" 
Polisorbato-20 1 emulsionante 
Aminoácidos de 
seda 0.1 Proteína 
 
Colágeno 
hidrolizado 0.1 Proteína 
 
Agua destilada 29.5 disolvente 
10 
Ácido esteárico 10 Emulsificante 
(Mohiuddin, 
2019) 
 
Aceite mineral 5 Emoliente 
Vaselita 2 Emoliente 
Alcohol 
cetoestearílico 1.5 Estabilizador 
 
Miristato de 
isopropilo 3 Emulsificante 
 
Monolaureato de 
sorbitano 2 Lubricante 
 
 46 
Glicerina 6,5 Emoliente 
Na-Lauryl SO4 5 Surfractante 
Trietanolamina 1.5 Espesante 
Polioxietileno 2 Estabilizador 
Agua 61.5 Solvente 
11 
Ácido esteárico 24.2 Emulsificante 
(Abbasi, y otros, 
2010) 
 
Alcohol cetílico 1.2 Emulsificante 
Amina de trietnol 1.32 Espesante 
Propilenglicol 0.95 Emulsificante 
Isopropil miristato 1.2 Emulsificante 
Glicerina 2 Emoliente 
Sulfur 1.9 Exfoliante 
Bórax 1.9 Fungicida 
Vitamina E 0.56 Antioxidante 
Miel 3.5 Emoliente 
Mentol 0.76 Proporciona frescura 
Agua destilada 49.95 Solvente 
Extractos 8.8 Emoliente 
Aloe vera 1.76 Antiséptico 
Fragancia qs - 
 
De las formulaciones anteriores, hay componentes que tienen propiedades que ayudan a 
controlar la grasa en la piel o que se utilizan para este tipo de piel. En la primera formulación 
se destaca la parafina líquida que es un aceite mineral refinado a partir del petróleo, es una 
especie de cera plástica que tapona los poros evitando la transpiración, también retiene la 
pérdida de la hidratación y deja una piel suave, tersa y uniforme. 
 
De la formulación #2 tenemos al Ancafor, que tiene una función de regular el exceso de 
secreción sebácea, es un antiséptico lo que hace que sea ideal para aquellas personas que 
tengan piel grasa, también actúa como antiinflamatorio natural, por lo que ayudará a reducir 
la inflamación del acné y el enrojecimiento (Muñoz, 2020). En esta formulación, también se 
tiene el componente Diphenhydramine HCL que cumple una función en este caso de tener 
actividad supresora de sebo, el cual es producido por las glándulas sebáceas y producen la 
grasa en la piel y en el cuero cabelludo. El octenilsuccinato de almidón de aluminio, este 
reduce la grasa percibida de las formulaciones. En la formulación #3 tenemos al 
 47 
Diphenhydramine HCL de la misma referencia