Descarga la aplicación para disfrutar aún más
Vista previa del material en texto
Hablemos de… TécnicasTécnicas BioquímicasBioquímicas Br. Yojan Monserrat Fraccionamiento Subcelular Conjunto de métodos y técnicas que tienen como objetivo obtener fracciones puras o enriquecidas de un determinado componente celular. Etapas: • Ruptura de las células o tejidos Fracción deseada • Separación de la fracción deseada del resto de los componentes celulares 1) Identificar el objetivo (célula, organela, molécula) 2) Fuente Facilidad de obtención Abundancia del tejido en la muestra 3) Definir método Condiciones (temperatura y pH) Homogenización Rompimiento de las células o el tejido del cual se pretende extraer la organela o molécula de interés. Ruptura de las estructuras que sostienen y unen las células, además de los mismos elementos subcelulares, liberándolos en suspensión con el mínimo daño funcional y estructural. Procedimientos de homogenización más comunes: ❖ Sonicación: ruptura celular mediante ultrasonido ❖ Detergentes: tensoactivos ❖ Filtro a presión ❖ Homogenizadores: por mortero o con embolo. Fuerza de fricción ❖ Licuadoras (disruptor de cuchillas de alta velocidad) Centrifugación: Conceptos Imprime un movimiento rotatorio con una fuerza mayor a la fuerza de gravedad, provocando la sedimentación de las partículas más densas. ❖ Fuerza centrífuga: fuerza que genera el eje ❖ Fuerza de resistencia del medio líquido a ser desplazado por la partícula: densidad del líquido ❖ Fuerza de fricción de la partícula con el medio liquido al moverse: depende de la velocidad y forma del cuerpo y de las propiedades del líquido. 𝑭𝒏 = 𝑭𝒄 – 𝑭𝒓 – 𝑭𝒇 Centrifugación: Conceptos Coeficiente de Sedimentación: Velocidad a la que se desplaza una partícula en el campo centrífugo. ❖ Rotor basculante: se mueve la muestra. ❖ Rotor fijo: posee cavidades para las muestras. Centrifugación diferencial: Separación por peso mediante ciclos cortos de velocidad. Centrifugación por gradiente de densidad: Separa sólidos de líquidos de diferente densidad mediante una fuerza centrífuga, la cual es impartida por una maquina centrifuga o centrifugadora. Cromatografía Proceso que se caracteriza por el paso uniforme de una mezcla diluida (fase móvil) a través de otra sustancia relativamente inmovilizada (fase estacionaria). Se utiliza para separar proteínas o moléculas pequeñas, mas no células. • Diferencia de carga. • Tamaño. • Afinidad de unión. • Fase móvil: líquido o gas que es arrastrado a través de la fase estacionaria. • Fase estacionaria (FE): solido o liquido fijado a un sólido por el cual pasa la fase móvil. Tipos de Cromatografía 1. Muestra depositada sobre el lecho cromatográfico. 2. Muestra penetra en el lecho. 3. Se añade fase móvil. 4. Comienza la separación de los componentes de la muestra. 5. Eluye el primer componente. 6. Eluye el segundo componente. PLANA EN COLUMNA ❑ En papel ❑ En capa fina ❑ Intercambio iónico. ❑ Por afinidad. ❑ Por exclusión molecular. Intercambio Iónico Aprovecha las diferencias en el signo y la magnitud de las cargas eléctricas netas de las proteínas a un pH determinado. las resinas cargadas negativamente fijan fuertemente los cationes y se denominan resinas de intercambio catiónico, mientras que las resinas cargadas positivamente fijan fuertemente los aniones y se denominan resinas de intercambio aniónico. ✓ Intercambio catiónico: resina negativa ✓ Intercambio aniónico: resina positiva Afinidad Separa las proteínas según su especificidad de unión. Utiliza una resina (FE) que tenga un grupo específico (prostético). Una proteína afín a este grupo específico se unirá a él, lo que retardará la migración. F.E: soporte inerte (microesferas de vidrio o plástico, gel de agarosa) al que se une covalentemente el ligando de afinidad. ✓ Ejemplos de este ligando: sustrato, inhibidor o cofactor de una enzima, anticuerpo, antígeno, hapteno, sustancia transportada, hormona, oligosacáridos, lectinas (proteínas con afinidad por oligosacáridos). Exclusión Molecular Separa las proteínas según su tamaño. La matriz de la columna (FE) está formada por un polímero entrecruzado con poros de tamaños determinados para el paso de moléculas pequeñas. Las proteínas pequeñas, se retrasan al atravesar los poros y su marcha a lo largo de la columna será más lenta. Como consecuencia, las moléculas de mayor peso molecular son eluidas antes que las de menor peso molecular. Electroforesis Es una técnica para la separación de moléculas que consiste en el desplazamiento proporcional de moléculas cargadas a través de un campo eléctrico. La electroforesis es muy útil como método analítico. Permite la determinación de propiedades importantes de una proteína tales como su punto isoeléctrico y su masa molecular aproximada Pero los métodos electroforéticos pueden afectar la estructura (y por tanto, la función) de las proteínas. Tipos de Electroforesis TIPOS DEFINICIÓN Gel de Poliacrilamida Separa a las proteínas según su peso molecular. Gel SDS Page Las muestras se desnaturalizan en presencia de agentes desnaturalizantes (beta- mercaptoetanol, que destruye los puentes disulfuro, SDS (dodecilsulfato sódico) que desnaturaliza y recubre a la proteína). Gel de Agarosa Solo para ácidos nucléicos de bajo peso molecular. Los ácidos nucléicos, ADN y ARN, tienen por naturaleza carga negativa. Isoelectroenfoque Procedimiento usado para determinar el pI de una proteína. Bidimensional Consiste en realizar dos separaciones electroforéticas consecutivas del mismo espécimen en dos direcciones distintas Espectrofotometría Técnica analítica que permite determinar la concentración de un compuesto en solución aprovechando su capacidad de absorber la luz. Las moléculas pueden absorber energía luminosa y almacenarla en forma de energía interna. Esto permite poner en funcionamiento ciclos vitales (como la fotosíntesis en plantas y bacterias). Cuando la luz (considerada como energía) es absorbida por una molécula, se origina un salto desde un estado energético basal o fundamental (E1) a un estado de mayor energía (estado excitado o E2). Elementos de la Espectrofotometría ❖ Transmitancia: fracción de potencia de luz que es transmitida por la cubeta una vez que el analito ha experimentado el proceso de absorción. ❖ Absorbancia: cantidad de potencia radiativa absorbida por el analito presente en la cubeta una vez que ha experimentado el proceso de absorción. Elementos de la Espectrofotometría ❑ Ley de Beer: la cantidad de luz absorbida por un cuerpo depende de la concentración en la solución. ❑ Ley de Lambert: la cantidad de luz absorbida por un cuerpo depende de la distancia recorrida por la luz. El fundamento del Espectrofotometría está basado en la Ley de Lambert-Beer, que relaciona la intensidad de luz incidente y la de la luz transmitida, cuando es atravesada una longitud de onda de un medio que absorbe Gracias por su Atención Recuerden dejar sus dudas, pregunten lo que gusten Diapositiva 1 Diapositiva 2 Diapositiva 3 Diapositiva 4 Diapositiva 5 Diapositiva 6 Diapositiva 7 Diapositiva 8 Diapositiva 9 Diapositiva 10 Diapositiva 11 Diapositiva 12 Diapositiva 13 Diapositiva 14 Diapositiva 15 Diapositiva 16 Diapositiva 17
Compartir