Determinación de Aloína en Aloe Vera

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Multiciencias
ISSN: 1317-2255
revistamulticiencias@gmail.com
Universidad del Zulia
Venezuela
Molero, Tamara; Ettiene, Gretty; Viloria, Maribel
Determinación de aloína en poblaciones de Aloe vera L. (=Aloe barbadensis M.) del
occidente de Venezuela
Multiciencias, vol. 16, núm. 2, 2016, pp. 143-152
Universidad del Zulia
Punto Fijo, Venezuela
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Determinación de aloína en poblaciones de Aloe vera L.
(= Aloe barbadensis M.) del occidente de Venezuela
MULTICIENCIAS, Vol.16, Nº 2, 2016 (143-152)
ISSN: 1317-2255 (IMPRESO) / Dep. Legal pp 20002FA828
ISSN: 2477-9636 (DIGITAL) Dep. Legal ppi 201502ZU4642
Tamara Molero1, Gretty Ettiene2 y Maribel Viloria1
1Facultad de Humanidades y Educación. Universidad del Zulia. Venezuela
2Facultad de Agronomía. Universidad del Zulia. Venezuela
tamimol@hotmail.com; gettiene@fa.luz.edu.ve ; mari.viloria@gmail.com
Resumen
Las propiedades medicinales del Aloe vera se deben a la presencia de metabolitos se-
cundarios, como la aloína. El objetivo de este trabajo fue determinar el contenido de aloína 
en poblaciones de Aloe vera del occidente de Venezuela. Se recolectaron plantas de Tamare, 
los Mayales y los Puertos de Altagracia del estado Zulia y de Caramón, Adaure, Cumarebo y 
Carazao del estado Falcón. La determinación se realizó empleando Cromatografía líquida de 
alta resolución (HPLC) en fase reversa con detección ultra violeta (UV) y la extracción con 
etanol asistida con ultrasonido. Las plantas de los Puertos de Altagracia, presentaron mayor 
contenido y producción de aloína (44,37 %) (3,03g.100g-1), siendo estos valores estadísti-
camente signi cativos (p<0,01). Los valores de aloína de las plantas de Caramón (42,36%) 
(1,23 g.100g-1), Cumarebo (40,05%) (1,23 g.100g-1), Adaure (36,17%) (1,47 g.100g-1) y 
Carazao (30,84%) (1,01 g.100g-1), fueron altos en comparación con los reportados en otros 
países. El contenido de aloína de estas plantas resultan atractivos para programas de mejora-
miento genético y para nes comerciales. 
Palabras clave: Producción de aloína, Aloe, Venezuela
Recibido: 04-03-2016/ Aceptado: 02-06-2016
Ciencias Básicas Integradas
MOLERO et al. / DETERMINACIÓN DE ALOÍNA EN POBLACIONES DE ALOE VERA L. (= ALOE BARBADENSIS M.) DEL OCCIDENTE DE VENEZUELA
Aloin´s Determination in Populations of Aloe Vera L. (=Aloe barbadensis M.) 
In the Western Venezuela 
Abstract
The medicinal properties of Aloe vera are due to the presence of secondary metabolites, 
such as aloin. The objective of this study was to determine the production of aloin in Aloe vera in 
the western Venezuela. Plants were collected from Tamare, Mayales and Puertos de Altagracia 
of Zulia state and Caramon, Adaure, Cumarebo and Carazao of Falcon state. The determination 
of aloin is carrier by using High performance liquid chromatography (HPLC) in reverse phase 
with UV detection and ultrasonic extraction with ethanol. The results indicated that plants from 
the Puertos de Altagracia, are presented higher concentration and production of aloin (44.37 %) 
(3.03g.100g-1); these values being statistically signi cant (p<0,01).The values found in plants 
of Caramon (42.36%) (1.23 g.100g-1), Cumarebo (40.05%) (1.23g.100g-1), Adaure (36.17%) 
(1.47g.100g-1) and Carazao (30.84%) (1.01g.100g-1), were also high in comparison with data 
from other countries. The content of aloin found in this plants are attractive for genetic impro-
vement and commercial purposes. 
Key words: aloin’s production; Aloe; Venezuela
Introducción
Diferentes especies del género Aloe se han utiliza-
do durante tiempos inmemorables en el área médica para el 
tratamiento del estreñimiento, quemaduras, infecciones y 
dermatitis debido a que, tanto en las hojas como en el acíbar 
de la planta, se encuentran compuestos químicos deriva-
dos de los procesos metabólicos primarios y secundarios 
que tienen propiedades medicinales. El principal com-
puesto químico producido por Aloe vera L. es la aloína, 
el cual es considerado como el principio activo de la 
planta, de la cual deriva el nombre del género Aloe y ha 
sido empleado como un marcador taxonómico para las 
especies de este género [31]. 
La aloína (10-C-ß-glucopiranósido de Aloe-emo-
din-antrona) es un metabolito considerado como un 
C-heterósido (o también llamado glicósido antraquinó-
nico) producto de la combinación de una antraquinona 
simple (genina) con un azúcar (glucosa). La aloína se 
extrae de fuentes naturales como una mezcla de dos 
diastereoisómeros, llamados aloína-A (también conoci-
da como barbaloína) y aloína-B (o isobarbaloína) [4]. 
La principal función de la aloína en las plantas es 
servir como defensa para alejar a posibles depredadores 
por su olor y sabor desagradable. También parece inter-
venir en el proceso de control de la evapotranspiración 
en condiciones de elevada insolación y sequía [33]
Existen más de 200 especies del género Aloe, 
pero solo tres de ellas son comercialmente importantes 
por su producción de compuestos químicos: Aloe ferox 
M., Aloe perryi B. y Aloe vera L., conocida, ésta última 
como la sábila. En orden creciente, Aloe ferox contiene 
menor cantidad de aloína en un rango que va de 4,5 a 
9%; seguidamente, Aloe perryi con 5,5 a 10% y nal-
mente, Aloe vera con un contenido de aloína de 20 a 
24%, por lo cual es la más cultivada en Venezuela y el 
mundo (Lugo et al., 2005). Sin embargo, la concentra-
ción de aloína en los tejidos de la planta puede variar se-
gún la época de recolección y edad de las hojas [11], así 
como también por las condiciones agroclimáticas de la 
zona [28] y por la estructura genética de la planta [35]. 
La cromatografía líquida de alta resolución 
(HPLC) se ha empleado frecuentemente para medir la 
concentración de aloína en el polvo del gel o en el ací-
bar. Estos métodos permiten la separación simultánea de 
varios tipos de aloína. Independiente del tipo de estudio 
y objetivo de la investigación, se debe considerar que la 
concentración de estos compuestos es mucho mayor en 
el acíbar que en el gel [2]. En este sentido, Park et al. 
(1998) [24] aislaron 13 compuestos fenólicos de A. vera
y A. arborescens por HPLC en fase reversa. De igual 
manera, Wan et al. (2010), publicaron una técnica para 
separar rápidamente los metabolitos isoaloeresina D y 
aloína a partir del extracto seco y crudo (gel) de A. vera. 
Se logró una pureza del 98,6% para isoaloeresina D y 
99,5%, para aloína. 
Diferentes estudios han permitido detectar varios 
tipos de antraquinonas de A. vera en muestras secas 
[37]; [26] o en productos procesados como alimentos, 
bebidas, cosméticos y medicamentos a través de HPLC 
MULTICIENCIAS VOL.  N   (  ) / NCLEO PUNTO IO  UNIVERSIDAD DEL ZULIA 
[41]; [5]; [14]. De igual manera, se han probado distin-
tas modalidades de cromatografía para la detección de 
estos compuestos en el género Aloe, como es el caso 
de [17], quienes determinaron aloenina, barbaloina e 
isobarbaloina en A. vera y A. arborescens por croma-
tografía electrocinética micelar (MEKC) y Verma et al
(2005) [39], los cuales propusieron la cromatografía en 
contracorriente de alta velocidad (HSCCC), electrofo-
resis capilar de zona y cromatografía de capa na de 
alto rendimiento (HPTLC).
Antes de la separación cromatográca, se requie-
re la extracción del contenido de aloína de las muestras 
de sábila. En este sentido, los métodos de extracción con 
solventes orgánicos constituyen los procedimientos más 
empleados para la extracción de aloína. Con el n de 
disminuir el volumen de solventes y aumentar la e cien-
cia de extracción en matrices complejas, como la sábila, 
se ha incorporado la energía ultrasónica, la cual, acelera 
los procesos osmóticos y de difusión de las sustancias 
desde las matrices sólidas a las fases líquidas de extrac-
ción [36]. Los solventes comúnmente empleados para la 
extracción de metabolitos secundarios como aloína son 
acetona, metanol y etanol [24]; [10]. 
A pesar de la utilidad del A. vera para la industria 
farmacéutica, cosmetológica y alimenticia basado en 
las propiedades que tienen sus metabolitos secundarios 
(MS), en Venezuela son muy escasos los estudios sobre 
su identi cación y cuanti cación en plantaciones silves-
tres o comerciales y las pocas investigaciones realizadas 
sólo reportan la cantidad de aloína producida en cultivos 
comerciales del estado Falcón [20], [19]. Hasta la fecha 
no existe ningún otro registro a nivel nacional que infor-
me acerca de la producción de aloína en otras zonas del 
país y menos aún comparaciones entre ellas, por lo que 
se hace necesario determinar el contenido de aloína en 
diferentes plantaciones del país. Por ello, en este trabajo 
se determinó la producción de aloína en poblaciones de 
Aloe vera L. del occidente del Venezuela.
Metodología
1. Obtención del material
Se recolectaron diez plantas completas de la es-
pecie A. vera en siete poblaciones de dos estados de Ve-
nezuela ubicados en el occidente del país. En el estado 
Zulia se seleccionaron plantas de las poblaciones Tama-
re (10°51′34″N 71°45′44″W), los Mayales (10°54′56″N 
71°49′38″W) y Puertos de Altagracia (10°40′14″N 
71°31′36″W), mientras que en el estado Falcón, las 
plantas se seleccionaron de las poblaciones de Cara-
món (11°03′13″N69°45′07″W), Adaure (11°52′22″N 
69°59′18″W), Cumarebo (11°29′16″N 69°21′08″W) y 
Carazao (11°14′26″N 70°06′08″W). La recolección se 
realizó entre los meses de enero a marzo del año 2014. 
En ambas zonas se eligieron plantas con buen vigor y 
estado sanitario, que tuviesen un mínimo de 15 hojas 
y una altura entre 35 a 40 cm. Estas plantas fueron lle-
vadas al vivero de la Facultad de Humanidades de la 
Universidad del Zulia, estado Zulia, Venezuela, donde 
fueron sembradas en bolsas plásticas de 1 kg que con-
tenían arena y abono orgánico en iguales proporcio-
nes previamente desinfectado, con el objeto de lograr 
la propagación vegetativa.
2. Determinación de la producción de 
materia fresca, seca, concentración y 
producción de aloína
Cada una de las plantas sembradas fue clonada 
y se tomaron tres hijuelos de cada una para un total de 
30 plantas por cada población. Cuando estos hijuelos se 
convirtieron en plantas con 10 meses de edad, se pro-
cedió a la determinación de la masa fresca, masa seca, 
concentración y producción de aloína.
Para la determinación de la masa fresca, las plan-
tas se limpiaron, retirando todos los materiales secos o 
marchitos y se pesaron en una balanza comercial (marca 
Caston). Seguidamente, toda la planta fue homogenei-
zada en una licuadora (marca Halminton) y el contenido 
fue almacenado en bolsas herméticas en un congelador. 
De esta manera se midió la cantidad de antraquinonas 
producidas tanto en el gel como en el acíbar. El material 
fue llevado a lio lización (Labconco Lyph-Lock 6), du-
rante 72 horas hasta lograr su completa deshidratación 
y la obtención del polvo o extracto de la planta. Este ex-
tracto fue pesado para obtener el valor del masa seca y 
se empleó para la determinación del contenido de aloína. 
3. Extracción de aloína
La extracción de aloína de las muestras de sábi-
la se realizó empleando extracción con solventes orgá-
nicos asistida con ultrasonido según la metodología de 
Park et al., 1998. Para ello se tomó 0,5 g del material 
lio lizado, se agregó 15 mL de etanol (MERCK) y se 
llevó al ultrasonido (Elma LC 130 H) por 1 hora a 65°C, 
luego la suspensión se centrifugó (Sorvall GLC-2) por 
10 min a una velocidad de 60 rpm. El sobrenadante se 
ltró y se concentró hasta un volumen de 2 mL, bajo 
ujo de N2, de la cual se tomó una alícuota de 20 µL para 
el análisis por HPLC. 
4. Separación cromatográ ca de aloína
La separación cromatográ ca de aloína en las 
muestras de sábila se realizó en un cromatógrafo líquido 
de alta resolución (SHIMADZU modelo 10A), equipa-
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do con un detector UV (SPD-10A), operado a 293 nm. 
Como fase móvil se empleó metanol/agua (50:50% v/v) 
a un ujo de 1,0 mL.min-1 y como fase estacionaria 
una columna ZORBAX SB-C18 (250 mm x 4,60 mm x 
µm de octadesilsilano). En la etapa de optimización, se 
evaluaron diferentes proporciones de metanol en agua 
(70:30%v/v, 35:65%v/v, 60:40%v/v y 50:50%v/v).
Inicialmente, se preparó por pesada una solución 
stock de aloína en etanol, a partir de un estándar puro 
(SIGMA 97% de pureza) a una concentración de 1377,4 
mg L-1. A partir de esta solución se prepararon por di-
lución soluciones de aloína para construir la curva de 
calibración de aloína (10-10mgL-1), a partir de la cual 
se determinaron las concentraciones de aloína de las 
muestras de sábila. 
Se realizó un estudio de precisión del método en 
términos de repetibilidad y reproducibilidad. Para ello 
se realizaron cinco inyecciones consecutivas de solu-
ciones de aloína a dos niveles de concentración (25 y 
50 mg·L–1), el mismo día (repetibilidad) y en días dife-
rentes (reproducibilidad), la precisión se expresó como 
desviación estándar relativa (RSD) de las áreas y los 
tiempos de retención de aloína. 
Para obtener el valor de la producción de aloína 
por planta se aplicó la siguiente fórmula: producción de 
aloína = concentración de aloína x masa seca/100.
5. Diseño experimental
Los resultados obtenidos se evaluaron aplican-
do las técnicas de la estadística inferencial mediante 
análisis de varianza (ANOVA) y pruebas de medias de 
Tukey empleando el paquete estadístico SPSS versión 
20 bajo ambiente Windows.
Resultados y Discusión
1.- Optimización de la técnica
Pese a que todos los procedimientos cromatográ-
cos para separar los componentes de una muestras tien-
den a ser complementarios y a auxiliarse unos a otros, 
la cromatografía líquida de alta resolución (HPLC), se 
destaca por ser un método sensible, especí co, selectivo 
y reproducible, que se adapta fácilmente a las determi-
naciones cuantitativas, con tiempos de análisis cortos, 
idóneo para la separación de especies no volátiles, de 
alto peso molecular, orgánicos e inorgánicos, iónicos 
o covalentes y, sobre todo, se aplica a sustancias que 
son de primordial interés en la industria. Por lo tanto, 
se le considera como una alternativa útil para el estudio 
y cuanti cación de las antraquinonas presentes en las 
plantas del género Aloe [38]. 
La extracción de aloína con solventes orgánicos 
asistida por ultrasonido ha sido reportada por otros auto-
res tales como Sánchez y Santa, (2009) [32] y Henwimol 
et al., (2006) [13] demostrando ser mucho más simple, 
rápida y e caz que otros métodos convencionales (sox-
hlet, re ujo y maceración) para extraer los compuestos 
orgánicos de los vegetales. 
En la Tabla 1 se muestran los resultados de la 
optimización del ujo de corrida para las diferentes pro-
porciones de metanol/agua.
Tabla 1: Optimización de separación de 
patrón de aloína
Fase móvil: metanol/
agua (%v/v)
Flujo 
mL.min-1
Tiempo de retención 
(tR min)
35:65 0,700 Sin señal
35:65 1 Sin señal
50:50 0,700 ≈ 30
50:50 1 ≈ 30
60:40 0,700 ≈ 13
60:40 1 ≈ 13
70:30 0,700 ≈ 8
70:30 1 ≈ 8
Fuente: Propia
Se realizaron modi caciones a la composición 
inicial de la fase móvil con la nalidad de obtener la 
selectividad adecuada. Conlas tres primeras fases mó-
viles evaluadas, no se obtuvo una separación óptima. 
Con la proporción de metanol/agua 50:50% v/v, a pesar 
de tener un tiempo de retención mayor (≈ 30 min) con 
respecto a las restantes fases móviles, se observaron pi-
cos simétricos (pico gausiano) de mejor resolución en el 
tiempo correspondiente a la aloína, ya con las otras fases 
móviles, el pico que correspondía a la aloína se solapaba 
con picos desconocidos. 
Este mismo método fue utilizado por Zonta et al. 
(1995)[41], sin embargo, Himesd et al. [14] (2011) y 
Wan et al. (2010) [40] emplearon como fase móvil me-
tanol-ácido acético, sin encontrarse alguna diferencia en 
la corrida cromatográ ca. 
En la Figura 1 se muestra un cromatograma típico 
de la separación de un estándar de aloína por HPLC en 
fase reversa empleando como fase móvil metanol/agua 
(50:50% v/v). 
MULTICIENCIAS VOL.  N   (  ) / NCLEO PUNTO IO  UNIVERSIDAD DEL ZULIA 
Figura 1. Cromatograma típico de la separación de un estándar de 
aloína por HPLC en fase reversa y metanol/agua 50:50% v/v como 
fase móvil. 
Fuente: Propia
Los valores de desviación estándar relativa (RSD) 
de los tiempos de retención variaron entre 1,31 y 2,40% 
para la repetibilidad y entre 2,72 y 4,75% para la re-
producibilidad. Asimismo, los valores de RSD para las 
áreas de pico variaron entre 5,71 y 6,26% para la repe-
tibilidad y entre 5,44 y 6,48% para la reproducibilidad.
Se presenta en la Figura 2 la curva de calibración 
de aloína, mostrando un alto coe ciente de determina-
ción (R2) de 0,9967, para n=4 y una expresión de la 
línea recta: y=18105x-91958, indicando una alta corre-
lación lineal, lo que permitió cuanti car adecuadamente 
el contenido de aloína en las plantas de sábila. 
Una vez establecidas las condiciones de separa-
ción con estándares puros se procedió a la determina-
ción de aloína en las plantas de sábila. En la Figura 3 
se muestra un cromatograma de la separación de aloína 
en un extracto etanólico, de una planta de sábila de la 
localidad de los Puertos de Altagracia, las cuales fueron 
las que presentaron mayores valores de concentración y 
producción de aloína.
Figura 2. Curva de calibración de aloína. 
Fuente: Propia
Figura 3. Cromatograma HPLC en fase reversa del extrac-
to etanólico de una muestra de Aloe vera de la localidad de los 
Puertos de Altagracia.
Fuente: Propia
2.- Determinación de aloína
En la Tabla 2 se muestran los resultados del análi-
sis de varianza para la producción de masa fresca y seca, 
concentración y cantidad de aloína en plantas Aloe vera
en las siete localidades en estudio. 
Tabla 2. Producción de masa fresca y seca, concentración y producción de aloína en las plantas Aloe vera L. 
de diferentes localidades.
Localidad Masa fresca (g) Masa seca (g) Concentración de aloína (%) Producción de aloína (Masa seca x concentración-g)
Cumarebo 190,56c 3,02c 40,05abc 1,23bc
Carazao 193,45c 3,41c 30,84cd 1,01c
Adaure 204,90c 4,01c 36,17bc 1,47bc
Tamare 252,11b 5,22b 20,19de 1,04c
Caramón 252,93b 4,03c 42,36a 1,73b
Mayales 276,56b 7,20a 14,06e 1,00c
Puertos de 
Altagracia 368,42a 6,85a 44,97a 3,03a
Valores con distintas letras en cada característica indican diferencias signi cativas según prueba de Tukey (p<0,01). 
Fuente: Propia
MOLERO et al. / DETERMINACIÓN DE ALOÍNA EN POBLACIONES DE ALOE VERA L. (= ALOE BARBADENSIS M.) DEL OCCIDENTE DE VENEZUELA
El análisis estadístico de varianza para la masa 
fresca, mostró la formación de tres grupos, en la cual 
el primero de ellos (a) está integrado por las plantas de 
la localidad de los Puertos de Altagracia (368,42 g) que 
fueron las que presentaron mayores valores y en último 
lugar las plantas del grupo c correspondiente a la pobla-
ciones de Cumarebo (190,56g), Carazao (193,45 g) y 
Adaure (204,90 g), que produjeron menor cantidad de 
materia fresca (Tabla 2). 
En cuanto a producción de masa seca, se aprecia 
que, al igual que para masa fresca, existen tres grupos, 
donde el primero (a) está integrado por las plantas de las 
localidades de Los Puertos de Altagracia (6,85g) y los 
Mayales (7,20g); posteriormente, se observa el segundo 
grupo (b) integrado por las plantas de la localidad de 
Tamare (5,22 g) y por último el tercer grupo (c) inte-
grado por las plantas provenientes de las localidades de 
Cumarebo (3,02 g), Carazao (3,41 g), Adaure (4,01g) y 
Caramón (4,03) (Tabla 2). Los resultados permiten in-
dicar que las plantas provenientes de la localidad de los 
Mayales son las que poseen mayor promedio de masa 
seca, mientras que las plantas provenientes de Cumare-
bo son las que poseen el menor valor.
Como puede notarse, las plantas de los Puertos de 
Altagracia son las que poseen mayor valor de masa fres-
ca, sin embargo, no son las plantas que poseen el mayor 
valor de masa seca, sino las plantas de la localidad de los 
Mayales (municipio Guajira). [23] indican que cuando 
las plantas de sábila crecen a plena luz solar, producen 
mayor cantidad de masa seca total que los cultivados 
bajo sombra parcial o completamente sombreado. Por 
el contrario, las plantas que se desarrollan bajo luz solar 
parcial o completamente sombreado, aumentan el nú-
mero y longitud de las hojas, pero la masa seca se reduce 
en más del 50%. Esta a rmación se ajusta a las condi-
ciones de las localidades antes nombradas, debido a que 
en los Puertos de Altagracia se encuentra parcialmente 
sombreadas por otros arbustos y árboles de mayor tama-
ño como las de los géneros Poponax, Capparis, Proso-
pis, Platymiscium, Pithecolobium, entre otras [6]; [8], 
las cuales se ubican en los alrededores y dentro de plan-
taciones de sábila, por lo que pudieran retener mayor 
cantidad de agua y por lo tanto presentar mayor masa 
fresca. En el caso de los Mayales, las plantas se encuen-
tran expuestas a plena luz solar y la vegetación es baja y 
abierta caracterizada por cujíes, cactáceas columnares y 
tunas [6]; [8]. Esto explicaría la mayor cantidad de masa 
seca que acumulan estas plantas. La misma situación se 
aplica a las plantas de la localidad de Tamare. 
Para los valores de concentración de aloína, los 
resultados estadísticos de nieron cinco grupos, en el 
cual el primer grupo (a), son las que presenta mayor con-
centración de aloína, integrado por las plantas de la lo-
calidad de Los Puertos de Altagracia (44,37 %), seguido 
de las plantas provenientes de Caramón (42,36%) y de 
Cumarebo (40,05%). El último grupo (e) está formado 
por las plantas de la localidad de los Mayales (14,06%) 
que poseen la menor concentración de aloína (Tabla 2). 
En la Tabla 2 también se aprecia el análisis de va-
rianza para la producción de aloína en las plantas de A. 
vera en las diferentes localidades en estudio. Este análi-
sis señala que las plantas que produjeron la mayor can-
tidad de aloína fueron las provenientes de la localidad 
de los Puertos de Altagracia (3,03 g/100g) y la menor 
cantidad correspondió a las plantas provenientes de la 
localidad de los Mayales (1 g/100g). 
De acuerdo a los resultados expuestos en la Tabla 2 
se puede a rmar que no existe una relación directa entre 
el peso de la planta y la cantidad de aloína producida, ya 
que las plantas de la localidad de los Puertos de Altagra-
cia presentaron el mayor valor de masa fresca (368,42g) 
y concentración de aloína (44,97%), en las plantas pro-
cedentes de Cumarebo ocurrió todo lo contrario, es de-
cir, presentaron el menor valor de masa fresca (190,56g) 
pero una concentración alta de aloína (40,05%). 
Se han realizado numerosos estudios para cono-
cer las causas que favorecen la producción de antraqui-
nonas en A. vera. [15] indica que el estrés ambiental de 
las zonas áridas producido por las altas temperaturas, la 
elevada radiación solar y la escasez de humedad induce 
a la producción de estos compuestos fenólicos. De igual 
manera, Martínez et al. (2013) [21] a rmaron que la ca-
lidad de los nutrientes y el pH del suelo, la intensidad 
de luz UV, el fotoperíodo y presenciade patógenos en 
el acíbar puede afectar la producción de antraquinonas. 
Por su lado, Fuentes et al. (2006) [9] y Hazrati et al. 
(2012) [12] demostraron que la baja disponibilidad de 
nitrógeno, fosforo y potasio en los suelos áridos, afecta 
la obtención de estas sustancias. Finalmente, Sing et al. 
(2009) [35] y Jayakrishna et al. (2011) [16] indican que 
la propiedad de las plantas de sábila de producir sus me-
tabolitos secundarios (MS) está determinada por su ge-
noma, lo que hace que una planta pueda producir mayor 
cantidad y variedad de productos que otra.
En consecuencia, para analizar los resultados de 
este estudio, conviene considerar tres factores que son 
de importancia: las características climáticas de las zo-
nas en estudio, los suelos de cada región y la estructura 
genética de las plantas.
Para abarcar el primer y segundo aspecto, se con-
siderará los trabajos de Ewel y Madrid (1976) [6 ] y 
Silva (2010) [34], donde se describen las características 
ecológicas y climáticas de cada una de las localidades de 
muestreo, el primer autor basado en la vegetación repre-
sentativa y el segundo basado en las temperaturas y las 
precipitaciones anuales. De esta manera, las poblaciones 
de Adaure y Carazao corresponden a un monte espinoso 
tropical con clima cálido y seco, debido a que presenta 
MULTICIENCIAS VOL.  N   (  ) / NCLEO PUNTO IO  UNIVERSIDAD DEL ZULIA 
suelos desérticos y erosionados que se extienden desde 
el nivel de mar hasta 200m. Las temperaturas medias 
anuales son superiores a 24°C y con precipitaciones que 
oscilan entre 250 y 500 mm anuales, con nueve meses 
secos y tres de estación lluviosa. Juegan un importante 
papel los vientos alisios que cruzan estas localidades de 
manera directa, desecando la humedad del ambiente. 
Las condiciones climáticas de las poblaciones de 
los Puertos de Altagracia, Los Mayales, Tamare y Cuma-
rebo corresponden a bosque muy seco tropical con clima 
cálido y seco, caracterizado por presentar una tempera-
tura media anual entre 23°C y 29°C, humedad relativa 
promedio del 79% y una precipitación anual entre 500 y 
1000 mm. Las lluvias se presentan entre los meses de ju-
lio hasta noviembre. Finalmente el clima de la localidad 
de Caramón es clasi cado como un bosque seco pre-
montano, con precipitaciones anuales entre 550 a 1100 
mm año y una temperatura media entre 18 y 24°C. Las 
áreas de éste clima incluyen pequeñas montañas con 
elevaciones entre 500 a1500 m.s.n.m. y la estación seca 
se presenta en los seis primeros meses de año.
Los suelos en las zonas áridas y semiáridas, tí-
picamente, presentan un contenido bajo de materia or-
gánica, sin embargo, el contenido de agua es un factor 
dominante en la regulación de las actividades biológicas 
y consecuentemente en el contenido de materia orgánica 
en estas regiones, lo cual in uye sobre las caracterís-
ticas físicas, químicas y biológicas del suelo. En este 
trabajo se pudo observar que las plantas con mayor 
contenido de aloína provienen de zonas donde las pre-
cipitaciones son mayores (entre 500 a 1100 mm/año) en 
comparación con las otras zonas. La humedad relativa y 
la pluviosidad que caracteriza a las zonas de Caramón, 
Cumarebo y los Puertos de Altagracia, favorecen un ma-
yor desarrollo de la vegetación, lo que se traduce en la 
acumulación de material orgánica en el suelo [1] y con 
ello, mayor disponibilidad de nutrientes. Molero et al. 
(2013) [22] y Rodríguez et al. (2009) [29,] indicaron 
que estos suelos poseen un mayor porcentaje de materia 
orgánica (20 a 35%) con respecto a otras regiones áridas 
y semiáridas del país y este hecho hace que haya mayor 
retención de agua y mejore la cantidad y calidad de nu-
trientes que se encuentran disponibles para las plantas. 
Estudios han demostrado que cuando los suelos donde 
se siembra la sábila se fertilizan con nitrógeno, se logra 
aumentar la cantidad de aloína producida en la planta 
[12]. Por lo tanto, es posible que la mayor concentración 
y producción de aloína en las plantas de estas zonas, se 
deba a una mayor acumulación de nutrientes orgánicos 
en estos suelos.
La producción de aloína de las plantas provenien-
tes de las localidades de Adaure (36,17%) y Carazao 
(30,84%) también son signi cativas, pese a que sus sue-
los son pobres en nitrógeno, carbono y materia orgánica, 
pero poseen mayor concentración de hierro, manganeso 
y zinc en comparación a otros suelos áridos. Estos sue-
los son relativamente alcalinos y no tienen problemas de 
salinización con sodio y cloro [1]. 
En el caso de las plantas provenientes de los Ma-
yales y Tamare, Cuencas (1995) [3] comenta que estos 
suelos presentan una reacción ligeramente ácida (pH = 
4,6 - 6,6) y poseen problemas de acumulación de sales 
solubles que limitan la producción de cultivos no tole-
rantes. Más del 90% de los suelos presentan bajo con-
tenido de materia orgánica y su fertilidad se sitúa en las 
categorías baja y media. Como puede observarse, las ca-
racterísticas de estos suelos son contrarias a las encon-
tradas en las localidades antes mencionadas, lo que po-
dría limitar la producción de MS en estas plantas. Estos 
resultados coinciden con lo encontrado por Franco-Sa-
lazar et al. (2014) [7] y Rahami-Dehgolan et al. (2012) 
[27] quienes indicaron que el contenido de aloína en A. 
vera disminuye a medida que aumenta la concentración 
salina de Na+ y Cl- en el suelo. 
Otro factor que podría estar in uyendo en la pro-
ducción de aloína, es la propia constitución genética de 
la planta. Como se ha visto, el clima y el suelo de cada 
zona muestreada presentan sus particularidades a las 
cuales tienen que adaptarse las plantas. Sepúlveda-Jimé-
nez et al. (2003) [33] indican que los cambios en genes 
especí cos que participan en la síntesis de las enzimas 
involucradas en la producción de los MS, donde se in-
cluye la aloína, pudieron llevarse a efecto en función 
al proceso de adaptación de las plantas a su medio. Al-
gunos estudios han evidenciado modi caciones en los 
genes que participan en la síntesis de MS implicados en 
la respuesta sistémica de la planta ante heridas y ataques 
de patógenos [30]. 
La concentración de aloína reportada para las 
plantaciones de sábila venezolanas oscilan entre 30 al 
40%, llegando a ser más alta de acuerdo a la época del 
año [19]. Maldonado (2000) determinó el contenido de 
aloína en plantaciones de Aloe de los municipios Sucre 
y Colina del estado Falcón que corresponden a las po-
blaciones de Caramón y Cumarebo respectivamente, y 
encontró que las concentraciones de aloína en el acíbar 
oscilaron entre 16,68 y 47,43%, siendo en los meses de 
abril y julio donde se observaron los mayores valores. 
Las concentraciones encontradas en las plantas de las 
localidades de los Puertos de Altagracia, Caramón y Cu-
marebo con 44,97%, 42,36% y 40,05%, respectivamen-
te, coinciden con estos datos. 
Se han publicado variadas concentraciones de 
aloína para los aloes de diferentes países y regiones del 
mundo, como es el caso de plantaciones de las islas del 
Caribe tales como Curazao, Aruba y Barbados, en las 
cuales la concentración varía entre 18% a 25% y en 
plantas procedentes de la Isla de Socotra (Yemen-Áfri-
MOLERO et al. / DETERMINACIÓN DE ALOÍNA EN POBLACIONES DE ALOE VERA L. (= ALOE BARBADENSIS M.) DEL OCCIDENTE DE VENEZUELA
ca) con valores que van entre 7,5% a 10% [25], siendo 
estas concentraciones inferiores a los aloes venezolanos.
Pese a que los estándares internacionales, como 
los establecidos por ASC (Aloe Science Council) y la 
Unión Europea (CEE Directiva del Consejo 88/388) ha 
jado un límite máximo para la concentración de aloína 
permitidos en alimentos y bebidas de 0,1 mg / kg [18], la 
selección de estas plantas con altas concentraciones de 
aloína, resulta atractivo tanto para programas de mejo-
ramiento genético,como para ser utilizadas comercial-
mente, cuando su uso es para la industria manufacturera 
de cosméticos y fármacos. 
Conclusiones
La determinación de aloína en plantas de Aloe 
vera provenientes del occidente de Venezuela se reali-
zó a través de HPLC en fase reversa con detección UV 
y la extracción con etanol asistida con ultrasonido, de-
mostrando ser simple, rápida y e caz. Como fase móvil 
se utilizó metanol/agua 50:50% v/v. Las plantas de los 
Puertos de Altagracia fueron las que presentaron mayor 
cantidad de masa fresca (368,42 g) y seca (6,85g); este 
último renglón lo comparte con las plantas de los Maya-
les (7,20g). Para los valores de concentración de aloína, 
las plantas de la localidad de Los Puertos de Altagracia 
(44,37 %), seguido de las plantas provenientes de Cara-
món (42,36%) y de Cumarebo (40,05%) fueron las que 
presentaron mayores datos. Las plantas que produjeron 
mayor cantidad de aloína fueron las provenientes de la 
localidad de los Puertos de Altagracia (3,03 g/100g) y 
la menor cantidad correspondió a las plantas provenien-
tes de la localidad de los Mayales (1 g/100g). De estos 
resultados se puede deducir que no existe una relación 
directa entre el peso de la planta y la cantidad de aloí-
na producida. Es posible que la mayor concentración y 
producción de aloína se deba a las altas precipitaciones, 
a la cantidad de materia orgánica del suelo y a la propia 
constitución genética de las plantas. Estos resultados re-
sultan atractivos para programas de mejoramiento gené-
tico y para nes comerciales.
Agradecimientos
Los autores expresan su agradecimiento el Con-
sejo de Desarrollo Cientí co y Humanístico de la 
Universidad del Zulia (CONDES-LUZ) por el nan-
ciamiento de esta investigación a través del proyecto 
CC-0622-10 y al Centro de Investigaciones Biológicas 
de la Universidad del Zulia.
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