Descarga la aplicación para disfrutar aún más
Vista previa del material en texto
Revista Iberoamericana de Tecnología Postcosecha ISSN: 1665-0204 rebasa@hmo.megared.net.mx Asociación Iberoamericana de Tecnología Postcosecha, S.C. México Rubinstein, Alejandra J; Jagus, Rosa J; Agüero, M Victoria LAVADO Y DESINFECCIÓN DE ESPINACA (Spinacia oleracea L.): EVALUACIÓN DE DESINFECTANTES ALTERNATIVOS AL HIPOCLORITO DE SODIO Revista Iberoamericana de Tecnología Postcosecha, vol. 14, núm. 1, 2013, pp. 71-79 Asociación Iberoamericana de Tecnología Postcosecha, S.C. Hermosillo, México Disponible en: http://www.redalyc.org/articulo.oa?id=81327871013 Cómo citar el artículo Número completo Más información del artículo Página de la revista en redalyc.org Sistema de Información Científica Red de Revistas Científicas de América Latina, el Caribe, España y Portugal Proyecto académico sin fines de lucro, desarrollado bajo la iniciativa de acceso abierto http://www.redalyc.org/revista.oa?id=813 http://www.redalyc.org/articulo.oa?id=81327871013 http://www.redalyc.org/comocitar.oa?id=81327871013 http://www.redalyc.org/fasciculo.oa?id=813&numero=27871 http://www.redalyc.org/articulo.oa?id=81327871013 http://www.redalyc.org/revista.oa?id=813 http://www.redalyc.org Lavado y desinfección de espinaca (Spinacia oleracea l.) … Rubinstein, Alejandra y Cols. (2013) Rev. Iber. Tecnología Postcosecha Vol 14(1):71-79 71 LAVADO Y DESINFECCIÓN DE ESPINACA (Spinacia oleracea L.): EVALUACIÓN DE DESINFECTANTES ALTERNATIVOS AL HIPOCLORITO DE SODIO Rubinstein, Alejandra J1, Jagus, Rosa J1, Agüero, M Victoria1,2 1Laboratorio de Microbiología Industrial: Tecnología de Alimentos, Fac. Ingeniería, UBA. Pabellón de Industrias, Ciudad Universitaria, (1428) C.A.B.A., Argentina; 2Consejo Nacional de Investigaciones Científicas y Técnicas (CONICET), Argentina; E-‐mail: mvaguero@di.fcen.uba.ar Palabras claves: hortalizas, calidad microbiológica, calidad organoléptica, antimicrobianos naturales. RESUMEN El objetivo del trabajo fue evaluar la eficiencia del lavado y desinfección reemplazando el hipoclorito de sodio por productos más naturales y seguros. Los tratamientos propuestos fueron: lavado con agua de red en una etapa (A) y lavados en dos etapas realizando un primer lavado en agua de red y un segundo lavado en: agua de red (A+A), hipoclorito de sodio (200ppm, A+H), ácido cítrico (2%, A+C), natamicina (0,2%, A+N), té verde (0,25%, A+T). Finalmente se ensayó un segundo lavado con ultrasonido (A+U). Los lavados se realizaron por inmersión de 5min, con agitación manual, y escurrido de 30seg en centrífuga manual. La relación mproducto:Vsolución fue 1:20. Se evaluó la carga microbiana de bacterias mesófilas aeróbias (MA), los recuentos de hongos y levaduras (HyL), y la calidad organoléptica (textura con un texturómetro y calidad visual general) antes y después de aplicado el tratamiento. El primer lavado produjo redujo 1,16 ciclos log en los recuentos iniciales de MA (5,75 logUFC/ml), pero no redujo los recuentos iniciales de HyL (4,14 logUFC/ml). El segundo lavado provocó mayores reducciones de la carga microbiana respecto al recuento inicial, con la mayor eficiencia en el caso de A+C para MA, y A+N para HyL (3,19 y 1,39 ciclos log, respectivamente). El primer lavado con agua mejora el brillo de las hojas (por la eliminación de tierra); sin embargo, afecta la textura: aparecen roturas en el tejido debido al daño mecánico que produce la agitación. El segundo lavado incrementa el daño mecánico. Estos resultados correlacionaron con los valores medidos en el texturómetro (disminución de la Fmax de corte luego de los lavados), sin diferencias entre las soluciones ensayadas. Estos resultados sugieren que es posible reemplazar el hipoclorito de sodio en la desinfección de espinaca, logrando reducciones mayores de carga microbiana inicial, con igual calidad organoléptica final. WASHING AND SANITIZING OF SPINACH (Spinacea oleracea L.): EVALUATIONS OF SANITIZANTS ALTERNATIVES TO SODIUM HYPOCHLORIDE Keywords: vegetables, microbiological quality, organoleptical quality, natural antimicrobials. ABSTRACT The objective of this work was to evaluate the efficiency of washing and disinfection replacing sodium hypochlorite with natural and safe products. The treatments were: washing with tap water in a single step (A) and washing in two stages by performing a first washing in tap water and a second washing in: tap water (A + A), sodium hypochlorite (200ppm, A + H), citric acid (2%, A + C), natamycin (0.2%, A + N), green tea (0.25% A + T). Finally, we tested a second wash with ultrasound (A + U). The washings were performed by immersion during 5min, with manual stirring, and drained in a manual centrifuge during 30sec. The relationship mproduct:Vsolution was 1:20. We evaluated the microbial load of mesophilic aerobic bacteria (MA), counts of yeasts and molds (YM), and the organoleptical quality (texture with a texturometer and overall visual quality) before and after treatments. The first washing introduced a reduction of 1.16 log cycles in the initial counts of MA (5.75 logCFU/ml), but did not reduce the initial counts of YM (4.14 logCFU/ml). The second washing caused greater reductions in initial microbial loads, with the highest efficiency in the case of A+C for MA, and A+N for YM (3.19 and 1.39 log cycles, respectively). The first washing improved the leaves brightness (removal of soil), but affected the texture: cracks appearing in the tissue due to mechanical damage by stirring. The second washing increased the mechanical damage. These results correlated with the values obtained in texturometer (decreased Fmax after washing) with no difference among the tested solutions. These results suggest that it is Lavado y desinfección de espinaca (Spinacia oleracea l.) … Rubinstein, Alejandra y Cols. (2013) Rev. Iber. Tecnología Postcosecha Vol 14(1):71-7972 possible to replace sodium hypochlorite in spinach disinfection, achieving greater reductions in microbial load, with the same final organoleptical quality. INTRODUCCIÓN El consumo de hortalizas refrigeradas mínimamente procesadas (RMP) se ha incrementado dramáticamente en las últimas décadas (Olaimat y Holley, 2012; São José y Vanetti, 2012; Sagong y col., 2011) debido principalmente al interés de los consumidores en incorporar vegetales a su dieta y la conveniencia que estos productos ofrecen debido a su rápida y sencilla preparación (Gupta y col., 2012; Sagong y col., 2011; Rico y col., 2007). Acompañando estos cambios, se ha registrado un notable aumento de enfermedades transmitidas por alimentos asociados al consumo de productos frescos y mínimamente procesados (Olaimat y Holley, 2012; Taban y Halkman, 2011; Warriner y col., 2009). La producción de hortalizas RMP incluye diversas etapas: lavado y desinfección, pelado y reducción de tamaño, empaque (con o sin atmósferas modificadas o controladas) y almacenamiento refrigerado. El lavado y desinfección tienen una importancia relevante debido a que son las únicas etapas donde la carga microbiana inicial puede ser reducida (Neal y col., 2012; São José y Vanetti, 2012; Allende y col., 2006). El hipoclorito de sodio (NaClO) es el producto más utilizado en la desinfección industrial (Ilic y col., 2012). A nivel mundial, numerosos estudios han cuestionado su uso en productos vegetales debido a la formación de productos carcinógenos y mutagénicos (Cobo-‐Molinos y col., 2008; Martín Diana y col., 2008). Esto ha impulsado la investigación y el desarrollo de nuevas estrategias de desinfección. Las tendencias actuales buscan reemplazar los aditivos químicos por otros más naturales que logren un efecto sanitario similar. Una de las propuestas más naturales para el reemplazo del hipoclorito en el lavado y desinfección de hortalizas, es el uso de ácidos orgánicos (Gupta y col., 2012; Neal y col., 2012; Allende y col., 2008). Estos compuestos inhiben el crecimiento de microorganismos a través de las siguientes acciones: disrupción de membrana celular, inhibición de reacciones metabólicas esenciales, estrés en la homeostasis de pH celular y acumulación de aniones tóxicos (Huang y Chen, 2011). Otros compuestos antimicrobianos alternativos que podrían utilizarse para reducir la carga microbiana de la materia prima y estabilizar los productos son las bateriocinas. Entre ellas, la natamicina (piramicina) es un antifúngico producido por Streptomyces natalensis y considerado como un compuesto GRAS (Generally recognized as safe) por la FDA (Koontz y Marcy, 2003). Es efectiva contra hongos y levaduras y actúa bloqueando el crecimiento de estos microorganismos a través de su unión con el ergosterol (Welscher y col., 2008). Otras soluciones posibles están asociadas al uso de extractos de polifenoles, tales como los extractos de té verde que constituye una excelente fuente de antioxidantes y, a su vez, ha mostrado capacidad antimicrobiana en distintas matrices alimentarias (von Staszewski y col., 2011; Martín-‐Diana y col., 2008). Un aspecto adicional a tener en cuenta es que la reducción microbiana que se obtiene con un lavado en solución de sanitizante comercial (NaClO) se encuentra en el rango de 1 a 2 ciclos log. La dificultad de alcanzar mayores reducciones es atribuida a adherencia de la microflora a la superficie con la frecuente formación de biofilms (Mandrell y col., 2006). El tratamiento de lavado con ultrasonido, puede aumentar la eficiencia de la desinfección, ya que disminuye la adherencia de los microorganismos a la superficie de las hojas (Sagong y col., 2011). El objetivo del presente trabajo fue evaluar la eficiencia del lavado y desinfección de hojas de espinaca en una o dos etapas, Lavado y desinfección de espinaca (Spinacia oleracea l.) … Rubinstein, Alejandra y Cols. (2013) Rev. Iber. Tecnología Postcosecha Vol 14(1):71-79 73 reemplazando el NaClO por productos más naturales y seguros, como ácidos orgánicos, bacteriocinas y extracto de té verde. Además se evaluó el beneficio de utilizar ultrasonido en la operación de desinfección. MATERIALES Y MÉTODOS Materia prima y preparación de muestras. Los estudios se realizaron utilizando espinaca (Spinacea oleracea L.) como materia prima. Los atados de espinaca fueron obtenidos en comercios minoristas de Capital Federal y transportados al laboratorio. Los atados de espinaca fueron cortados para descartar las raíces y la porción inferior del tallo. Las hojas fueron mezcladas para lograr muestras homogéneas. Una parte de la materia prima fue analizada en la primera hora luego de su arribo al laboratorio (muestras sin lavar) para caracterizar la calidad de la materia prima inicial. El resto del material, fue sometido a los tratamientos de lavado y desinfección propuestos. Las muestras fueron analizadas nuevamente luego de aplicado el tratamiento para determinar el efecto del mismo sobre la calidad de la materia prima. Lavado y desinfección. Se ensayaron lavados por inmersión de 5 minutos en diferentes soluciones y etapas (Tabla 1). En todoslos casos, la relación masa de producto a volumen de solución se mantuvo en 1:20 (Sagong y col., 2012). Durante la inmersión se agitó manualmente utilizando una cuchara. Luego del tratamiento, las muestras fueron retiradas de la solución, escurridas y centrifugadas en una centrífuga manual de cocina durante 30 segundos. Los compuestos desinfectantes utilizados y sus concentraciones fueron seleccionados teniendo en cuenta estudios previos de otros autores (Neal y col., 2012, Randazzo y col., 2009; Hondrodimou y col., 2011; Martín-‐Diana y col., 2008; Sagong y col., 2011). Los reactivos que se utilizaron en la preparación de las soluciones desinfectantes fueron: Hipoclorito de sodio concentrado (55 g Cl/L) comercial (Ayudín®, Argentina), ácido cítrico anhidro (Anedra, Argentina), Delvocid® Salt (DSM, Holanda), té verde comercial (Chinese Good Shan Good Shui, China). El extracto de té verde se preparó siguiendo la metodología descripta por von Staszewski y col. (2011). Brevemente, se pesaron 3,0 g de hojas de té, se molieron en molinillo de café doméstico y se agregaron a 100 mL de agua destilada caliente (95ºC) para lograr un extracto soluble al agua al 3% p/v. Esta infusión se mantuvo en un baño térmico a 95ºC durante 20 minutos y luego se enfrió hasta temperatura de refrigeración. Se mantuvo en frío hasta su utilización, momento en el que se diluyó hasta una concentración final de 0,25% p/v. En el caso del lavado con ultrasonido se utilizó un equipo lavador ultrasónico TB02 (TESTLAB, Argentina) con capacidad para 2 L de agua, potencia ultrasónica de 80W y frecuencia 40 kHz. Tabla 1. Tratamientos de limpieza y desinfección de espinaca Número Código Descripción del tratamiento 1 SL Muestras sin lavar. Tratamiento control. 2 A Lavado en una etapa con agua de red. 3 A+A Lavado en dos etapas con agua de red. 4 A+H Lavado en dos etapas: primero con agua de red, segundo con solución de hipoclorito de sodio (200 ppm). 5 A+C Lavado en dos etapas: primero con agua de red, segundo con solución de ácido cítrico (2%). 6 A+N Lavado en dos etapas: primero con agua de red, segundo con solución de natamicina (0.2%). 7 A+T Lavado en dos etapas: primero con agua de red, segundo con solución de extracto de té verde (0.25%). 8 A+U Lavado en dos etapas: primero con agua de red, segundo con agua de red y ultrasonido. Lavado y desinfección de espinaca (Spinacia oleracea l.) … Rubinstein, Alejandra y Cols. (2013) Rev. Iber. Tecnología Postcosecha Vol 14(1):71-79 74 Indicadores de calidad. Para determinar la eficiencia de la operación de lavado y desinfección se utilizaron los siguientes indicadores de calidad: Calidad microbiológica Se caracterizó la calidad microbiológica a través de los recuentos de bacterias aerobias mesófilas totales (MA) y hongos y levaduras (HyL). Se utilizó la metodología descripta por Agüero y col. (2011). Brevemente, 10 g de hojas fueron maceradas y homogenizadas en agua peptonada. Los recuentos microbianos de MA fueron llevados a cabo utilizando plate count agar(PCA, Biokar Diagnostics, Francia) para recuento total, incubando a 32-‐35ºC durante 48-‐72 h (ICMSF, 1983). Los recuentos de HyL se llevaron a cabo utilizando como medio de cultivo cloranfenicol glucosa agar (YGC, Biokar Diagnostics, Francia), incubando a 25ºC durante 5 días (ICMSF, 1983). Los recuentos se expresaron como logUFC/ml. Los ensayos se realizaron por triplicado para cada tratamiento. Calidad organoléptica La calidad organoléptica se cuantificó sobre las muestras a las que se aplicaron los tratamientos que resultaron en mejoras significativas de la calidad microbiológica. Se determinó la calidad visual general (OVQ) de las muestras antes y después del tratamiento siguiendo la metodología descripta por Kader (2002). Las muestras fueron evaluadas por 3 jueces que puntuaron la calidad visual de la espinaca teniendo en cuenta los siguientes atributos: color, textura y rotura de hojas. Se utilizó una escala de 9 puntos donde 9= excelente; 1=pobre; 5=límite de aceptación. Adicionalmente, se determinó la textura de las hojas de espinaca utilizando un ensayo de corte con un texturómetro TA.TX.Plus (Stable Micro Systems, Reino Unido), utilizando una adaptación del ensayo descripto por Sagong y col. (2011). Para ello se cortaron porciones rectangulares de 3 x 5 cm de las hojas en sentido longitudinal evitando la nervadura central. Tres porciones fueron utilizadas en cada ensayo para determinar la fuerza máxima de corte. Los ensayos se realizaron por quintuplicado para cada trata-‐miento. Se utilizó una celda de carga de 5 N, una velocidad de pre-‐ y post-‐ensayo de 5 mm/s, velocidad de ensayo 1 mm/s avance. Los resultados se expresaron como Fmax por unidad de masa (N/g). Análisis estadístico. Los resultados son expresados como valores medios obtenidos por el método de mínimos cuadrados, junto con sus desviaciones estándar (Kuehl, 2001). Los resultados fueron analizados utilizando el software SAS, versión 9.0 (SAS Inc., 2002). Se utilizó el procedimiento GLM (Modelos lineales generales)para realizar el análisis de varianza (ANOVA) en el que se empleó como factor de variación: TRAT (tratamiento). Las diferencias entre los tratamientos fueron determinadas mediante el test de comparaciones múltiples de Tukey-‐Kramer con un nivel de confianza del 5%. RESULTADOS Y DISCUSIÓN Los recuentos microbianos iniciales en hojas de espinaca sin lavar resultaron 5,75 ± 0,71 y 4,14 ± 0,39 logUFC/ml para MA y HyL, respectivamente. La Figura 1, presenta los resultados obtenidos al evaluar la calidad microbiológica de las muestras con los distintos tratamientos de lavado. El lavado con agua en una única etapa produce reducciones significativas de bacterias MA (1,16 ciclos log), pero no afecta los recuentos iniciales de HyL. La realización de un segundo lavado provocó mayores reducciones de la carga microbiana, inclusive en los casos en los que no se agregaron soluciones desinfectantes en el segundo lavado (A+A y A+U). Lavado y desinfección de espinaca (Spinacia oleracea l.) … Rubinstein, Alejandra y Cols. (2013) Rev. Iber. Tecnología Postcosecha Vol 14(1):71-79 75 Figura 1. Recuento de bacterias mesófilas aerobias totales (MA) y hongos y levaduras (HyL) en hojas de espinaca sin lavar (SL); lavadas en una etapa con agua (A); lavadas en dos etapas con agua (A+A), o con agua y otra solución desinfectante: hipoclorito (A+H), ácido cítrico (A+C), natamicina (A+N), té verde (A+T); o lavadas en dos etapas utilizando ultrasonido en la segunda (A+U). Es interesante observar que el agregado de NaClO o té verde en el segundo lavado no provoca mayores reducciones que en el caso de realizar el segundo lavado con agua de red sin sanitizante, obteniéndose reducciones de MA y HyL similares entre estos tratamientos. Estos resultados podrían estar sugiriendo que la reducción de carga microbiana nativa lograda por los tratamientos se debe a un arrastre de microorganismos por el lavado en sí, más que a un efecto antimicrobiano de la solución propuesta como desinfectante. El lavado en dos etapas utilizando ultrasonido como tratamiento físico genera una reducción adicional de bacterias MA respecto del tratamiento sin ultrasonido (A+A) aunque no se obtienen mejoras significativas en cuanto a los recuentos de HyL. Otros autores (Sagong y col., 2011; Seymur y col., 2002) han estudiado el impacto de tratamientos de ultrasonido sólo y en combinación con otros factores de estrés (ácidos orgánicos, NaClO) sobre la reducción de patógenos (Salmonella Typhimurium, Escherichia coli O157:H7 y Listeria monocytogenes) y han encontrado reducciones significativas al aplicar ultrasonido. Estos resultados se asocian al fenómeno de cavitación que facilita la remoción de células microbianas adheridas a la superficie del tejido fresco permitiendo una desinfección más eficiente del material. La mayor disminución (3,19 ciclos log) en los recuentos de bacterias MA se obtuvo para el tratamiento en el que se utilizó ácido cítrico en el segundo lavado. Existen referencias de numerosos estudios acerca del lavado y desinfección con ácidos orgánicos y su efecto sobre la calidad microbiológica de tejidos vegetales (Jiang y col., 2004). Entre ellos, Gómez y Artés (2004) y Roura y col. (2003) encontraron que la desinfección de apio y lechuga, respectivamente, con soluciones de hipoclorito (100 ppm) puede ser reemplazada por un lavado con una solución de ácido cítrico (0,1 M) y ácido ascórbico (0,5 M). La utilización de los ácidos orgánicos sobre productos hortícolas está ampliamente difundida para la prevención de pardeamiento enzimático y no-‐ enzimático, pero tiene también un efecto antimicrobiano siendo más eficiente contra bacterias que contra hongos y levaduras (Artés y col., 2009). Para los recuentos de hongos y levaduras, la máxima reducción (1,39 ciclos log) se obtuvo en el tratamiento con agregado de natamicina en el segundo lavado. Algunos estudios han probado la eficiencia de esta bacteriocina contra hongos y levaduras en diferentes sustratos alimenticios como quesos, suero de queso y embutidos (Gallo y col., 2006; Odds y col., 2003; Mann y Beuchat, 2008; Delves-‐Broughton y col., 2004; Suloff y col. 2003). En los últimos años ha crecido el interés sobre la aplicación de este antimicrobiano en sustratos de origen vegetal (Arroyo-‐López y col., 2012; Hondrodimou y col., 2011; Cong y col., 2007) pero no se registran antecedentes en el uso de natamicina como antimicrobiano en hortalizas de hoja. Teniendo en cuenta los resultados presentados, los tratamientos seleccionados para la cuantificación de la calidad Lavado y desinfección de espinaca (Spinacia oleracea l.) … Rubinstein, Alejandra y Cols. (2013) Rev. Iber. Tecnología Postcosecha Vol 14(1):71-79 76 organoléptica fueron: SL, A, A+A, A+C y A+N. La Figura 2 presenta los resultados obtenidos para los parámetros organolépticos (Fuerza máxima de corte por unidad de masa y calidad visual general) evaluados sobre las muestras a las que se aplicaron estos tratamientos. La calidad visual de la espinaca, mejora con el primer lavado con agua. Los jueces dieron un mayor puntaje a las muestras lavadas con agua que a las muestras sin lavar,debido a que aquellas presentaron una mejora en el brillo, posiblemente debido a la eliminación de la tierra que se produce durante el lavado. Sin embargo, el lavado afecta la textura ya que aparecieron tejidos dañados mecánicamente durante el lavado con agitación. Con el segundo lavado se incrementa el daño mecánico sobre la hoja. Estos resultados correlacionaron con los valores medidos en el texturómetro. En este ensayo se detectó una disminución en la fuerza máxima de corte por unidad de masa en las muestras lavadas con agua de red en una etapa. Además, las muestras lavadas en dos etapas presentaron una reducción mayor de este parámetro sin diferencias entre las distintas soluciones ensayadas. Este resultado podría sugerir que el efecto del lavado sobre la textura se debe al daño mecánico que se produce durante la agitación para llevar a cabo el proceso. No se ensayaron lavados por inmersión sin agitación para verificar esta hipótesis. Las comparaciones de los resultados de textura con valores informados por otros autores suelen ser dificultosas porque en los ensayos se utilizan diferentes parámetros (tipo de ensayo a aplicar, velocidad de ensayo, número de cuchillas, disposición del tejido para el corte, etc.) A pesar de esto, es interesante observar que Sagong y col. (2011), estudiando el lavado y desinfección de lechuga con ácidos orgánicos, tampoco encontró diferencias significativas en la fuerza máxima de corte entre hojas de lechuga lavadas con distintas soluciones sanitizantes (agua, ácido cítrico, ácido málico y ácido láctico) evaluadas, en este caso, luego del almacenamiento. Figura 2. Calidad organoléptica (textura y OVQ) de hojas de espinaca lavadas en una etapa con agua (A); lavadas en dos etapas con agua (A+A), o con agua y otra solución desinfectante: hipoclorito (A+H), ácido cítrico (A+C), natamicina (A+N), té verde (A+T); o lavadas en dos etapas utilizando ultrasonido en la segunda (A+U). CONCLUSIONES Se evaluó la eficiencia de la operación de lavado y desinfección de espinaca. Se estudió el impacto del lavado en una o dos etapas con agua de red sobre la calidad microbiológica de la materia prima. Se encontró que el lavado en dos etapas disminuye la carga microbiana, respecto del lavado en una única etapa, pero afecta significativamente la textura del tejido debido al daño mecánico que produce la agitación durante la operación. El lavado en dos etapas con soluciones sanitizantes demostró que pueden obtenerse mayores reducciones microbianas reemplazando el NaClO, producto utilizado tradicionalmente en esta operación, por otros compuestos más naturales y seguros como el ácido cítrico y la natamicina. Los efectos fueron evaluados inmediatamente después de aplicada la operación. Como futuro desafío se plantea caracterizar la evolución de los indicadores de calidad durante el almacenamiento refrigerado de la materia prima envasada y determinar el impacto de estos tratamientos sobre la vida útil del producto. Lavado y desinfección de espinaca (Spinacia oleracea l.) … Rubinstein, Alejandra y Cols. (2013) Rev. Iber. Tecnología Postcosecha Vol 14(1):71-79 77 AGRADECIMIENTO Este trabajo fue financiado por la Universidad de Buenos Aires y la Agencia Nacional de de Promoción Científica y Tecnológica. REFERENCIAS Agüero, M.V., A.G. Ponce, M.R. Moreira, and S.I. Roura. 2011. Lettuce quality loss under conditions that favor the wilting phenomenon. Postharvest Biol. Technol. 59:124-‐131. Allende, A., A. Tomás-‐Barberán, and M.I. Gil. 2006. Minimal processing for healthy traditional foods. Trends in Food Sci. & Technol. 17:513-‐519. Allende, A., M.V. Selma, F. López-‐Gálvez, R. Villaescusa, and M.I. Gil. 2008. Role of commercial sanitizers and washing systems on epiphytic microorganisms and sensory quality of fresh-‐cut escarole and lettuce. Postharvest Biol. Technol. 49(1):155-‐163. Arroyo-‐López, F.N., J. Bautista-‐Gallego, V. Romero-‐Gil, F. Rodríguez-‐Gómez, and A. Garrido-‐Fernández. 2012. Growth/no growth interfaces of table olive related yeasts for natamycin, citric acid and sodium chloride. Int J. Food Microbiol. 155:257-‐262. Artés, F., P. Gómez, W. Aguayo, V. Escalona, and F. Artés-‐Hernández. 2009. Sustainable sanitation techniques for keeping quality and safety of fresh-‐cut plant commodities. Postharvest Biol. Technol. 51:287-‐296. Cobo Molinos, A., H. Abriouel, R. Lucas, N. Ben Omar, E. Valdivia, and A. Gálvez. 2008. Inhibition of Bacillus cereus and B. weihenstephanensis in raw vegetables by application of washing solutions containing enterocin AS-‐48 alone and incombination with other antimicrobials. Food Microbiol. 25(6):762-‐770. Cong, F., Y. Zhang, and W. Dong. 2007. Use of surface coatings with natamycin to improve the storability of Hami melon at ambient temperature. Postharvest Biol. Technol. 46:71-‐75. Delves-‐Broughton, J., L.V. Thomas, C.H. Doan, and P.M. Davidson. 2004. Natamycin. p. 275-‐289. In: Davidson, P.M., J.N. Sofos, and A.L. Branen (eds.). Antimicrobials in Food. Taylor & Francis, Boca Raton, Florida. Gallo, L.I., R.J. Jagus, and A.M.R. Pilosof. 2006. Modelling Saccharomyces cerevisiae Inactivation by natamycin in Liquid Cheese Whey. BrazilianJ. Food Technol. 9(4):311-‐316. Gómez, P., and F. Artés. 2004. Ascorbic and citric acids to preserve quality of minimally processed green celery. pp. 369-‐373. In: Proceedings of IV Postharvest Iberian Symposium, Oeiras, Portugal. Gupta, S., S. Chatterjee, J. Vaishnav, V. Kumar, P.S. Variyar, and A. Sharma. 2012. Hurdle technology for shelf stable minimally processed French beans (Phaseolus vulgaris): A response surface methodology approach. Lebensm. Wiss. Technol. 48(2):182-‐189. Hondrodimou, O., Y. Kourkoutas, and E.Z. Panagou. 2011. Efficacy of natamycin to control fungal growth in natural black olive fermentation. Food Microbiol. 28(3):621-‐627. Huang, Y., and H. Chen. 2011. Effect of organic acids, hydrogen peroxide and mild heat on inactivation of Escherichia coli O157:H7 on baby spinach. Food Control 22:1178-‐1183. ICMSF, 1983. Métodos recomendados para el análisis microbiológico en alimentos. P105-‐280. In: Microorganismos de los alimentos I. Técnicas de análisis microbio-‐ lógicos. Acribia SA, Zaragoza. Ilic, S., A. Raji, C.J. Britton, E. Grasso, W. Wilkins, S. Totton, B. Wilhelm, L. Waddell, and J.T. LeJune. 2012. A scoping study characterizing prevalence, risk factor and intervention research, Lavado y desinfección de espinaca (Spinacia oleracea l.) … Rubinstein, Alejandra y Cols. (2013) Rev. Iber. Tecnología Postcosecha Vol 14(1):71-79 78 published between 1990 and 2010, for microbial hazards in leafy green vegetables. Food Control 23:7-‐19. Jiang, Y., L. Pen, and J. Li. 2004. Use of citric acid for shelf life and quality maintenance of fresh-‐cut Chinese water chestnut. J. Food Eng. 63:325-‐328. Kader, A.A. 2002. Quality parameters of fresh-‐ cut fruit and vegetable products. p. 12-‐20. In: Lamikanra, O. (ed.). Fresh-‐cut fruits and vegetables. CRC Press, Nueva York. Koontz, J., and J.E. Marcy. 2003. Formation of natamycin: cyclodextrin inclusion complexes and their characterization. Journal of Agriculture and Food Chemistry. 51:7106-‐7110. Kuehl, R. 2001. Diseño de experimentos. Thompson Learning International, México. pp. 215-‐247. Mandrell, R.E., L. Gorski, and M.T. Brandl. 2006. Attachment of microorganisms to fresh produce. p. 33-‐75. In: Sapers, G.M., J.R. Gorny, and A.E. Yousef (eds.). Microbiology of fruits and vegetables. Tayor & Francis. Boca Raton, Florida. Mann, D.A., and L.R. Beuchat. 2008. Combinations of antimycotics to inhibit the growth of molds capable of producing 1,3-‐pentadiene. Food Microbiol. 25:144-‐ 153. Martín-‐Diana, A.B., D. Rico, and C. Barry-‐Ryan. 2008. Green tea extract as a natural antioxidant to extend the shelf-‐life of fresh-‐cut lettuce. Innovative Food Sci. Emerging Technol. 9:593-‐603. Neal, J.A., M. Márquez-‐González, E. Cabrera-‐ Díaz, L.M. Lucia, C.A. O’Bryan, P.G. Crandall, S.C. Ricke, and A. Castillo. 2012. Comparison of multiple chemical sanitizers for reducing Salmonella and Escherichia coli O157:H7 on spinach (Spinacia oleracea) leaves. Food Res. Int. 45:1123-‐1128. Randazzo, C.L., I. Pitino, G. Ombretta Scifò, and C. Caggia. 2009. Biopreservation of minimally processed iceberg lettuces using a bacteriocin produced by Lactococcus lactis wild strain. Food Control 20:756-‐763. Rico, D., A:B. Martín-‐Diana, J.M. Barat, and C. Barry-‐Ryan. 2007. Extending and measuring the quality of fresh-‐cut fruit and vegetables: a review. Trends in Food Sci. &Technol. 18:373-‐386. Roura, S.I., M.R. Moreira, A.G. Ponce, and C.E. del Valle. 2003. Dip treatments for fresh Romaine lettuce. Italian J. Food Sci. 2003, 15(3):405-‐415. Odds, F.C., A.J.P. Brown, and N.A.R Gow. 2003. Antifungal agents: mechanisms of action. Trends in Microbiology, 11(6):272-‐279. Olaimat, A., and R.A. Holley. 2012. Factors influencing the microbial safety of fresh produce: A review. Food Microbiol. 32(1):1-‐19. São José, J.F.B., and M.C.D. Vanetti. 2012. Effect of ultrasound and commercial sanitizers in removing natural contaminants and S. enterica typhimurium on cherry tomatoes. Food Control 24:95-‐99. Sagong, H.G., S.Y. Lee, P.S. Chang, S. Heu, S. Ryu, Y.J. Choi, and D.H. Kang. 2011. Combined effect of ultrasound and organic acids to reduce Escherichia coli O157:H7, Salmonella typhimurium, and Listeria monocytogenes on organic fresh lettuce. Int J. Food Microbiol. 145:287-‐ 292. Seymur, I.J., D. Burfoot, R.L. Smith, L.A. Cox, and A. Lockwood. 2002. Ultrasound decontamination of minimally processed fruits and vegetables. Int. J Food Sci. & Technol. 37:547-‐557. Suloff, E.C., J.E. Marcy, C.R. Hackney, S.S. Sumner, and J.R. Bishop. 2003. Comparative study of a semisynthetic derivative of natamycin and the parent antibiotic on the spoilage of shredded Cheddar cheese. J. Food Prot. 66:1499-‐ 1502. Lavado y desinfección de espinaca (Spinacia oleracea l.) … Rubinstein, Alejandra y Cols. (2013) Rev. Iber. Tecnología Postcosecha Vol 14(1):71-79 79 Taban, B.M., and A.K. Halkman. 2011. Do leafy green vegetables and their ready-‐to-‐eat [RTE] salads carry a risk of foodborne pathogens?. Anaerobe 17:286-‐287. Von Staszewski, M., A.M.R. Pilosof, and R.J. Jagus. 2011. Antioxidant and antimicrobial performance of different argentinean green tea varieties as affected by whey proteins. Food Chem. 125:186-‐192.Warriner, K., A. Huber, A. Namvar, W. Fan, and K. Dunfield. 2009. Recent advances in the microbial safety of fresh fruits and vegetables. Adv. Food Nutr. Res. 57:155-‐ 208. Welscher, Y.M., H.H. Napel, M.M. Balagué, C.M. Souza, H. Riezman, and B. Kruijff. 2008. Natamycin blocks fungal growth by binding specifically to ergosterol without permeabilizing the membrane. J. Biol. Chem. 283:6393-‐6401.
Compartir