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Posgrado en Ciencias Biológicas Opción Bioquímica y Biología Molecular Tópicos selectos: Auxinas. El estudio de su función y mecanismo de acción Curso optativo Coordinador e Instructor: Dr. Víctor M. Loyola Vargas Semestre II, agosto-noviembre; lunes y miércoles de 8:00 a 10:00 h I. Justificación Los reguladores del crecimiento vegetal (RCV) conforman un grupo de sustancias, que a diferencia de las hormonas que se encuentran presentes en los animales, interactúan entre sí y se regulan unas a otras para producir una respuesta fisiológica. Entre los RCV, las auxinas son el grupo de estos compuestos que participa en el mayor número de procesos biológicos que se conocen. También, es el RCV que interacciona más con los otros RCV. Su estudio, desde los aspectos históricos de su descubrimiento, hasta el conocimiento actual sobre su modo de acción, es una pieza básica en la formación de cualquier futuro investigador que vaya a usar plantas como modelo de estudio. II. Ubicación de la materia Conocimientos previos Biología, Fisiología y Anatomía vegetal, Biología celular. Áreas de aplicación Biotecnología, Bioquímica, Biología molecular. III. Objetivo general El objetivo general de este curso es el de que el alumno adquiera el conocimiento básico y las herramientas necesarias sobre los mecanismos de acción de las auxinas y de los procesos fisiológicos que se encuentran bajo su control con el fin de que los aplique en la generación de nuevas biotecnologías o en la generación de nuevos modelos para el estudio del desarrollo de las plantas. 1 IV. Metodología El curso de auxinas constará de 48 horas, impartidas en sesiones de dos horas, equivalentes a 3 créditos. Las sesiones serán tanto del tipo seminario para el análisis y discusión de artículos, como del tipo conferencia. V. Contenido programático (Sujeto a revisión bienal) Introducción. 1. Historia del descubrimiento de las auxinas. a. El papel de Charles Darwin. b. La contribución de Kenneth V. Thimann. c. La prueba de la curvatura del coleoptilo. d. Más de una auxina. Objetivo específico. Que el alumno conozca los antecedentes que sentaron las bases del conocimiento sobre las auxinas y el hecho de que como se sentaron las bases de la acción primaria de las auxinas. Unidad I. La estructura química de las auxinas. 1. Las auxinas naturales. a. Ácido indolacético. b. Ácido indolbutírico. c. Ácido fenolacético. d. Ácido 4-cloro indolacético. 2. Los análogos de auxinas. a. Ácido 2,4-diclorofenoxiacético. b. Ácido 2,4,5-triclorofenoxiacético c. Ácido naftalenacético. d. Ácido 3,6-dicloro-2-metoxibenzoico (Dicamba). e. Ácido 4-amino-3,5,6- tricloropiconílico. (Picloram) f. Otros compuestos con actividad auxínica. 3. ¿Qué hace a un compuesto una auxina? a. Similitudes y diferencias entre las auxinas. Objetivos específicos. Que el alumno conozca la estructura química y pueda ser capaz de predecir si un nuevo compuesto puede o no tener actividad auxínica. 2 Unidad II. Herramientas para el estudio de las auxinas. 1. Métodos para determinar el contenido de auxinas. a. Métodos cromatográficos. b. El uso de la espectrometría de masas en la determinación de auxinas. c. Métodos inmunológicos para la localización y cuantificación de auxinas. 2. Contenido de auxinas en diferentes tejidos y procesos fisiológicos. a. Durante el desarrollo de una planta. b. Durante la embriogénesis cigótica. c. Durante la embriogénesis somática. 3. Expresión de genes inducidos por auxinas. 4. Detección in situ de auxinas mediante anticuerpos. Objetivos específicos. Que el alumno conozca los diferentes métodos para cuantificar, identificar y analizar las pozas metabólicas de estos compuestos en diferentes procesos del desarrollo vegetal. Así como también para determinar su localización dentro de tejidos y células de forma específica. Unidad III. La biosíntesis de las auxinas. 1. Las diferentes rutas de biosíntesis de las auxinas. a. Biosíntesis dependiente de triptofano. b. Biosíntesis no dependiente de triptófano. 2. Genes que codifican para las enzimas de la biosíntesis de las auxinas. a. Biosíntesis dependiente de triptofano. b. Biosíntesis no dependiente de triptofano. 3. Regulación de la biosíntesis de las auxinas. 4. Compartamentalización de la biosíntesis de las auxinas. a. Biosíntesis dependiente de triptofano. b. Biosíntesis no dependiente de triptofano. Objetivos específicos Que el alumno conozca las diferentes rutas de biosíntesis de las auxinas y sea capaz de establecer las diferencias entre ellas, y sea capaz de desarrollar protocolos de investigación que permitan estudiar los mecanismos bioquímicos y moleculares que las regulan. Unidad IV. El transporte de las auxinas. 1. Los transportadores involucrados en la movilización de las auxinas. a. Difusión pasiva. 3 b. Transportadores PIN. c. Transportadores ABC. d. Transportadores AUX1/LAX. e. La fosforilación de los transportadores PIN. f. La participación de las citocininas en el transporte de las auxinas. 2. El trasporte como base fundamental de los procesos de desarrollo de una planta. a. Embriogénesis cigótica. b. El desarrollo de las yemas axilares. c. La inclinación de las hojas. d. El desarrollo de la raíz. Objetivos específicos Que el alumno conozca los diferentes sistemas de transporte de las auxinas y las implicaciones fisiológicas de dicho transporte. Unidad V. La conjugación de las auxinas. 1. Reacciones químicas que llevan a la conjugación de las auxinas con otras moléculas. a. Aminoácidos. b. Carbohidratos. c. Coenzima A. d. Péptidos. 2. Los genes GH3. 3. Las acil-ácido amido sintetasas. 4. Los genes ILR1, IAR3, ILL1 e ILL2. 5. Las amino ácido hidrolasas. 6. Función de la conjugación de las auxinas. a. Almacenamiento. b. Degradación. Objetivos específicos Que el alumno conozca los diferentes tipos de conjugación de las auxinas y su función, así como los genes que codifican para las enzimas que llevan a cabo las reacciones de conjugación e hidrólisis. Unidad VI. La homeostasis de las auxinas. 1. Establecimiento de la homeostasis de las auxinas. a. Biosíntesis. b. Degradación. c. Transporte. 4 d. Almacenamiento. Objetivos específicos Que el alumno conozca los diferentes factores que llevan a que una región de un tejido obtenga una concentración de auxina (homeostasis) que es la que finalmente produce el efecto fisiológico. Unidad VII. La señalización por auxinas. 1. El mecanismo de señalización de las auxinas. a. El receptor. b. El mecanismo. c. El apagado de la señal. Objetivos específicos Que el alumno sea capaz de establecer como los tejidos son capaces de mantener una determinada concentración de auxinas al interior de sus células. Unidad VIII. La interacción de las auxinas y otros reguladores del crecimiento. a. La interacción de las auxinas con las citocininas. b. Las citocininas regulan el transporte polar de las auxinas. c. Las auxinas y las citocininas actúan antagónicamente. d. Las auxinas y el etileno actúan sinérgicamente. e. Las auxinas y las giberelinas una nueva interacción. Objetivos específicos Que el alumno sea capaz de determinar cómo funciona la compleja red de interacción entre diferentes reguladores del crecimiento. Unidad VIII. El papel de las auxinas en la diferenciación celular. a. El papel de las auxinas en la inducción de la embriogénesis somática. b. El uso de diferentes auxinas en la inducción de la embriogénesis somática. c. La función de las auxinas en la formación de la raíz. Objetivos específicos Que el alumno sea capaz de diseñar experimentos que le permitan inducir diferenciación celular a partir de diferentes tejidos de una manera menos aleatoria. 5 VII. Acciones para la actualización del contenido Las acciones de actualización incluyen el uso de bibliografía reciente relacionada con los temas del contenidoprogramático. También incluye un análisis del desarrollo del tema del curso, con el fin de incluir los aspectos más actualizados en la currícula del curso. Esto se ve reflejado en la bibliografía que acompaña este programa. Actividades de aprendizaje Revisión y discusión de los artículos en los que se describen los antecedentes que llevaron al descubrimiento de las auxinas. Análisis de las diferentes técnicas para la determinación del contenido de auxinas y su identificación. Análisis de los factores que afectan la homeostasis de las auxinas como el factor determinante de su efecto fisiológico. Diseño de experimentos para determinar el papel de las auxinas en la diferenciación celular. Criterios y procedimientos de evaluación y acreditación El alumno será evaluado de acuerdo con los siguientes parámetros: La calificación para acreditar el curso será de 80 puntos. Para tener derecho a acreditar el curso es requisito el entregar todos los trabajos oportunamente. ACTIVIDAD PORCENTAJE Investigación bibliográfica, escritura de un tema por alumno para una publicación. 100 Bibliografía La bibliografía para un tema como el de este curso debe ser dinámica, por ello la bibliografía que se enlista a continuación cambiará conforme se vaya generando nueva información. 6 Muestra de artículos de revisión (2016-2020) Bhatla S. C., Auxins, en: Plant Physiology, Development and Metabolism, (Bhatla S. C. y A. Lal, eds.), Springer, Singapore, 569-601, (2018). DOI: https://doi.org/10.1007/978-981-13-2023-1_15. Cook S. D., An historical review of phenylacetic acid, Plant Cell Physiol., 60(2):243-254, (2019). DOI: https://doi.org/10.1093/pcp/pcz004. De-la-Peña C., G. I. Nic-Can, J. R. Avilez-Montalvo, J. E. Cetz-Chel y V. M. Loyola-Vargas, The role of miRNAs in auxin signaling and regulation during plant development., en: Plant Epigenetics, (Barciszewski J., ed.), Springer, Cham, 23-48, (2017). DOI: https://doi.org/10.1007/978-3-319-55520-1_2. Dindas J., D. Becker, M. R. Roelfsema, S. Scherzer, M. Bennett y R. Hedrich, Pitfalls in auxin pharmacology, New Phytol., 227(2):286-292, (2020). DOI: https://doi.org/10.1111/nph.16491. Dobrev P. I., K. Hoyerová y J. Petrášek, Analytical determination of auxins and cytokinins, en: Auxins and Cytokinins in Plant Biology: Methods and Protocols, (Dandekar T. y M. Naseem, eds.), Springer, New York, 31-39, (2017). DOI: https://doi.org/10.1007/978-1-4939-6831-2_2. Frick E. M. y L. C. Strader, Roles for IBA-derived auxin in plant development, J. Exp. Bot., 69(2):169-177, (2018). DOI: https://doi.org/10.1093/jxb/erx298. Gallei M., C. Luschnig y J. Friml, Auxin signalling in growth: Schrödinger's cat out of the bag, Curr. Opin. Plant Biol., 5343-49, (2020). DOI: https://doi.org/10.1016/j.pbi.2019.10.003. Ikeuchi M., D. S. Favero, Y. Sakamoto, A. Iwase, D. Coleman, B. Rymen y K. Sugimoto, Molecular mechanisms of plant regeneration, Annu. Rev. Plant Biol., 70(1):377-406, (2019). DOI: https://doi.org/10.1146/annurev- arplant-050718-100434. Jing H. y L. C. Strader, Structural biology of auxin signal transduction, en: Plant Structural Biology: Hormonal Regulations, (Heátko J. y T. Hakoshima, eds.), Springer, Cham, 49-66, (2018). DOI: https://doi.org/10.1007/978-3- 319-91352-0_4. Kubeš M. y R. Napier, Non-canonical auxin signalling: fast and curious, J. Exp. Bot., 70(10):2609-2614, (2019). DOI: https://doi.org/10.1093/jxb/erz111. Kumari S. y K. C. Panigrahi, Light and auxin signaling cross-talk programme root development in plants, J. Biosci., 44(1):26, (2019). DOI: https://doi.org/10.1007/s12038-018-9838-2. Larson E. R., A fresh look at the role of auxin in PIN trafficking, Plant Physiol., 172(2):821-822, (2016). DOI: 10.1104/pp.16.01296. 7 Leyser O., Auxin signaling, Plant Physiol., 176(1):465-479, (2018). DOI: https://doi.org/10.1104/pp.17.00765. Li S.-B., Z. Z. Xie, C. G. Hu y J. Z. Zhang, A review of auxin response factors (ARF) in plants, Front. Plant Sci., 747, (2016). DOI: https://doi.org/10.3389/fpls.2016.00047. Liu J. y M. Geisler, Cooperation between auxin and actin during the process of plant polar growth, en: The Cytoskeleton: Diverse Roles in a Plant - Life, (Sahi V. P. y F. Baluška, eds.), Springer, Cham, 101-123, (2019). DOI: https://doi.org/10.1007/978-3-030-33528-1_7. Lv B., Z. Yan, H. Tian, X. Zhang y Z. Ding, Local auxin biosynthesis mediates plant growth and development, Trends Plant Sci., 246-9, (2019). DOI: https://doi.org/10.1016/j.tplants.2018.10.014. Ma Q., P. Grones y S. Robert, Auxin signaling: a big question to be addressed by small molecules, J. Exp. Bot., 69(2):313-328, (2018). DOI: https://doi.org/10.1093/jxb/erx375. Martin-Arevalillo R., E. Thévenon, F. Jégu, T. Vinos-Poyo, T. Vernoux, F. Parcy y R. Dumas, Evolution of the auxin response factors from charophyte ancestors, Plos Gen., 15(9):e1008400, (2019). DOI: https://doi.org/10.1371/journal.pgen.1008400 . Mironova V., W. Teale, M. Shahriari, J. Dawson y K. Palme, The systems biology of auxin in developing embryos, Trends Plant Sci., 22(3):225-235, (2017). DOI: http://dx.doi.org/10.1016/j.tplants.2016.11.010. Morffy N. y L. C. Strader, Old town roads: routes of auxin biosynthesis across kingdoms, Curr. Opin. Plant Biol., 5521-27, (2020). DOI: https://doi.org/10.1016/j.pbi.2020.02.002. Paque S. y D. Weijers, Auxin: the plant molecule that influences almost anything, BMC Biology, 14(1):1-5, (2016). DOI: 10.1186/s12915-016-0291- 0. Porfírio S., M. D. R. Gomes da Silva, A. Peixe, M. J. Cabrita y P. Azadi, Current analytical methods for plant auxin quantification - A review, Anal. Chim. Acta, 9028-21, (2016). DOI: http://dx.doi.org/10.1016/j.aca.2015.10.035. Powers S. K. y L. C. Strader, Regulation of auxin transcriptional responses, Dev. Dyn., 249(4):483-495, (2019). DOI: https://doi.org/10.1002/dvdy.139. Raggi S., S. M. Doyle y S. Robert, Auxin: At the crossroads between chemistry and biology, en: The Chemical Biology of Plant Biostimulants, (Geelen D. y L. Xu, eds.), John Wiley & Sons, New York, 123-154, (2020). DOI: https://doi.org/10.1002/9781119357254.ch5 Singh S., V. Kumar, D. S. Dhanjal y J. Singh, Herbicides and plant growth regulators: Current developments and future challenges, en: Natural 8 Bioactive Products in Sustainable Agriculture, (Singh J. y A. N. Yadav, eds.), Springer, Singapore, 67-81, (2020). DOI: https://doi.org/10.1007/978- 981-15-3024-1_5. Vosolsobe S., R. Skokan y J. Petrásek, The evolutionary origins of auxin transport: what we know and what we need to know, J. Exp. Bot., 71(11):3287-3295, (2020). DOI: https://doi.org/10.1093/jxb/eraa169. Weijers D. y D. Wagner, Transcriptional responses to the auxin hormone, Annu. Rev. Plant Biol., 67(1):539-574, (2016). DOI: http://dx.doi.org/10.1146/annurev-arplant-043015-112122. Weijers D., J. Nemhauser y Z. Yang, Auxin: small molecule, big impact, J. Exp. Bot., (69):2-133, (2018). DOI: https://doi.org/10.1093/jxb/erx463. Wójcik A. M., B. Wójcikowska y M. D. Gaj, Current perspectives on the auxin-mediated genetic network that controls the induction of somatic embryogenesis in plants, Int. J. Mol. Sci., 21(4):1333, (2020). DOI: https://doi.org/10.3390/ijms21041333. Zhang J. y W. A. Peer, Auxin homeostasis: the DAO of catabolism, J. Exp. Bot., 68(12):3145-3154, (2017). DOI: https://doi.org/10.1093/jxb/erx221. Zhao Y., Essential roles of local auxin biosynthesis in plant development and in adaptation to environmental changes, Annu. Rev. Plant Biol., 69417- 435, (2018). DOI: https://doi.org/10.1146/annurev-arplant-042817- 040226. Muestra de artículos para leer (2016-2020) Andújar I., D. Gómez, L. Pérez, O. Vicente y J. C. Lorenzo, Auxins, auxin transport inhibitors, and competitors for auxin receptors do not show statistically significant differences in 212 molecular descriptors, Romanian Biotechnological Letters, 24(3):407-411, (2019). DOI: https://doi.org/10.25083/rbl/24.3/407.411.Banasiak A., M. Biedro+ä, A. Dolzblasz y M. Berezowski, Ontogenetic changes in auxin biosynthesis and distribution determine the organogenic activity of the shoot apical meristem in pin1 mutants, Int. J. Mol. Sci., 20(1):180, (2019). DOI: https://doi.org/10.3390/ijms20010180. Bernales M., L. Monsalve, A. Ayala-Raso, M. Valdenegro, J. P. Martínez, D. Travisany, B. Defilippi, M. González-Agüero, S. Cherian y L. Fuentes, Expression of two indole-3-acetic acid (IAA)-amido synthetase (GH3) genes during fruit development of raspberry (Rubus idaeus Heritage), Sci. Hortic., 246:168-175, (2019). DOI: https://doi.org/10.1016/j.scienta.2018.09.077. Bernardi J., R. Battaglia, P. Bagnaresi, L. Lucini y A. Marocco, Transcriptomic and metabolomic analysis of ZmYUC1 mutant reveals the role of auxin during early endosperm formation in maize, Plant Sci., 9 281:133-145, (2019). DOI: https://doi.org/10.1016/j.plantsci.2019.01.027. Blakeslee J. J., T. Spatola Rossi y V. Kriechbaumer, Auxin biosynthesis: spatial regulation and adaptation to stress, J. Exp. Bot., 70(19): 5041-5049 (2019). DOI: https://doi.org/10.1093/jxb/erz283. Cancino-García V. J., J. H. Ramírez-Prado y C. De-la-Peña, Auxin perception in Agave is dependent on the species´ auxin response factors, Sci. Rep. -UK, 10(1):3860, (2020). DOI: https://doi.org/10.1038/s41598- 020-60865-y. Damodaran S. y L. C. Strader, Indole 3-butyric acid metabolism and transport in Arabidopsis thaliana, Front. Plant Sci., 10:851, (2019). DOI: https://doi.org/10.3389/fpls.2019.00851. Fu X., Z. Shi, Y. Jiang, L. Jiang, M. Qi, T. Xu y T. Li, A family of auxin conjugate hydrolases from Solanum lycopersicum and analysis of their roles in flower pedicel abscission, BMC Plant Biol., 19(1):233, (2019). DOI: https://doi.org/10.1186/s12870-019-1840-9. Hazubska-Przybyl T., E. Ratajczak, A. Obarska y E. Pers-Kamczyc, Different roles of auxins in somatic embryogenesis efficiency in two Picea species, Int. J. Mol. Sci., 21(9):3394, (2020). DOI: https://doi.org/10.3390/ijms21093394. Hu S., M. Zhang, Y. Yang, W. Xuan, Z. Zou, E. Arkorful, Y. Chen, Q. Ma, A. Jeyaraj y X. Chen, A novel insight into nitrogen and auxin signaling in lateral root formation in tea plant [Camellia sinensis (L.) O. Kuntze], BMC Plant Biol., 201-17, (2020). DOI: https://doi.org/10.1186/s12870-020-02448-7. Hurny A., C. Cuesta, N. Cavallari, K. Ötvös, J. Duclercq, L. Dokládal, J. C. Montesinos, M. Gallemí, H. Semerádová, T. Rauter, I. Stenzel, G. Persiau, F. Benade, R. Bhalearo, E. Sykorová, A. Gorzsás, J. Sechet, G. Mouille, I. Heilmann, G. De Jaeger, J. Ludwig-Müller y E. Benková, Synergistic on auxins and cytokinin positively regulates growth and attenuates soil pathogen resistance, Nat. Commun., 11(1):2170, (2020). DOI: https://doi.org/10.1038/s41467-020-15895-5. Lehman T. A. y K. A. Sanguinet, Auxin and cell wall crosstalk as revealed by the Arabidopsis thaliana cellulose synthase mutant radially swollen 1, Plant Cell Physiol., 60(7):1487-1503, (2019). DOI: https://doi.org/10.1093/pcp/pcz055. Li J., Y. Yang, M. Chai, M. Ren, J. Yuan, W. Yang, Y. Dong, B. Liu, Q. Jian, S. Wang, B. Peng, H. Yuan y H. Fan, Gibberellins modulate local auxin biosynthesis and polar auxin transport by negatively affecting flavonoid biosynthesis in the root tips of rice, Plant Sci., (2020). DOI: https://doi.org/10.1016/j.plantsci.2020.110545. (En prensa). 10 Lynch J. H., Y. Qian, L. Guo, I. Maoz, X. Q. Huang, A. S. Garcia, G. Louie, M. E. Bowman, J. P. Noel, J. A. Morgan y N. Dudareva, Modulation of auxin formation by the cytosolic phenylalanine biosynthetic pathway, Nat. Chem. Biol., (2020). DOI: https://doi.org/10.1038/s41589-020-0519-8. (En prensa). Matilla A. J., Auxin: Hormonal signal required for seed development and dormancy, Plants, 9(6):705, (2020). DOI: https://doi.org/10.3390/plants9060705. Matthes M. S., N. B. Best, J. M. Robil, S. Malcomber, A. Gallavotti y P. McSteen, Auxin EvoDevo: Conservation and diversification of genes regulating auxin biosynthesis, transport, and signaling, Mol. Plant, 12(3):298-320, (2019). DOI: https://doi.org/10.1016/j.molp.2018.12.012. Miyamoto K., A. Inui, E. Uheda, M. Oka, M. Kamada, C. Yamazaki, T. Shimazu, H. Kasahara, H. Sano, T. Suzuki, A. Higashibata y J. Ueda, Polar auxin transport is essential to maintain growth and development of etiolated pea and maize seedlings grown under 1 g conditions: Relevance to the international space station experiment, Life Sci. Space Res., 201-11, (2019). DOI: https://doi.org/10.1016/j.lssr.2018.11.001. Piotrowska-Niczyporuk A., A. Bajguz, U. Kotowska, E. Zambrzycka-Szelewa y A. Sienkiewicz, Auxins and cytokinins regulate phytohormone homeostasis and thiol-mediated detoxification in the green alga Acutodesmus obliquus exposed to lead stress, Sci. Rep. -UK, 10:10193, (2020). DOI: https://doi.org/10.1038/s41598-020-67085-4. Sauer M. y J. Kleine-Vehn, PIN-FORMED and PIN-LIKES auxin transport facilitators, Development, 146(15):dev168088, (2019). DOI: https://doi.org/10.1242/dev.168088. Skokan R., E. Medvecká, T. Viaene, S. Vosolsobe, M. Zwiewka, K. Müller, P. Skupa, M. Karady, Y. Zhang, D. P. Janacek, U. Z. Hammes, K. Ljung, T. Nodzynski, J. Petrášek y J. Friml, PIN-driven auxin transport emerged early in streptophyte evolution, Nat. Plants, 5(11):1114-1119, (2019). DOI: https://doi.org/10.1038/s41477-019-0542-5. Smetana O., R. Mäkilä, M. Lyu, A. Amiryousefi, F. Sánchez Rodríguez, M. F. Wu, A. Solé-Gil, M. L. Gavarrón, R. Siligato y S. Miyashima, High levels of auxin signalling define the stem-cell organizer of the vascular cambium, Nature, 565(7740):485-489, (2019). DOI: https://doi.org/10.1038/s41586- 018-0837-0. Tang Q., P. Yu, M. Tillmann, J. D. Cohen y J. P. Slovin, Indole-3- acetylaspartate and indole-3-acetylglutamate, the IAA-amide conjugates in the diploid strawberry achene, are hydrolyzed in growing seedlings, Planta, 249(4):1073-1085, (2019). DOI: https://doi.org/10.1007/s00425-018- 3061-0. 11 Tuan P. A., Y. Yamasaki, Y. Kanno, M. Seo y B. T. Ayele, Transcriptomics of cytokinin and auxin metabolism and signaling genes during seed maturation in dormant and non-dormant wheat genotypes, Sci. Rep. -UK, 9(1):3983, (2019). DOI: https://doi.org/10.1038/s41598-019-40657-9. Uc-Chuc M. Á., C. A. Pérez-Hernández, R. M. Galaz-Ávalos, L. Brito-Argáez, V. Aguilar-Hernández y V. M. Loyola-Vargas, YUCCA-mediated biosynthesis of the auxin IAA is required during the somatic embryogenic induction process in Coffea canephora, Int. J. Mol. Sci., (2020). DOI: (En prensa). Vega A., J. A. O'Brien y R. A. Gutiérrez, Nitrate and hormonal signaling crosstalk for plant growth and development, Curr. Opin. Plant Biol., 52:155- 163, (2019). DOI: https://doi.org/10.1016/j.pbi.2019.10.001. Yang H., Y. Klopotek, M. R. Hajirezaei, S. Zerche, P. Franken y U. Druege, Role of auxin homeostasis and response in nitrogen limitation and dark stimulation of adventitious root formation in petunia cuttings, Ann. Bot., 124(6): 1053–1066, (2019). DOI: https://doi.org/10.1093/aob/mcz095. (En prensa). Yemelyanov V. V., V. V. Lastochkin, T. V. Chirkova, S. M. Lindberg y M. F. Shishova, Indoleacetic acid levels in wheat and rice seedlings under oxygen deficiency and subsequent reoxygenation, Biomolecules, 10(2):276, (2020). DOI: https://doi.org/10.3390/biom10020276. Zerrouk I. Z., B. Rahmoune, S. Auer, S. RóBler, T. Lin, F. Baluska, P. I. Dobrev, V. Motyka y J. Ludwig-Müller, Growth and aluminum tolerance of maize roots mediated by auxin- and cytokinin-producing Bacillus toyonensis requires polar auxin transport, Env. Exp. Bot., 176: 104064, (2020). DOI: https://doi.org/10.1016/j.envexpbot.2020.104064. 12 Posgrado en Ciencias Biológicas Opción Bioquímica y Biología Molecular Tópicos selectos: Auxinas. El estudio de su función y mecanismo de acción Curso optativo Coordinador e Instructor: Dr. Víctor M. Loyola Vargas I. JustificaciónII. Ubicación de la materia III. Objetivo general IV. Metodología V. Contenido programático (Sujeto a revisión bienal) Introducción. Objetivo específico. Unidad I. la estructura química de las auxinas. Objetivos específicos. Unidad II. Herramientas para el estudio de las auxinas. Objetivos específicos. Unidad III. La biosíntesis de las auxinas. Objetivos específicos Unidad IV. El transporte de las auxinas. Objetivos específicos Unidad V. La conjugación de las auxinas. Objetivos específicos Unidad VI. La homeostasis de las auxinas. Objetivos específicos Unidad VII. La señalización por auxinas. Objetivos específicos Unidad VIII. La interacción de las auxinas y otros reguladores del crecimiento. Objetivos específicos Unidad VIII. El papel de las auxinas en la diferenciación celular. Objetivos específicos VII. Acciones para la actualización del contenido Actividades de aprendizaje Criterios y procedimientos de evaluación y acreditación Bibliografía Muestra de artículos de revisión (2016-2020)
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