27 -MANUAL-DE-PARASITOLOGIA-NUEVO

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MANUAL DE PARASITOLOGIA 
Vigencia:2019 
 
Cód.: 
Versión: 1 
EMPRESA SOCIAL DEL ESTADO HOSPITAL DE LA 
VEGA – PUESTO DE SALUD DE NOCAIMA 
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Elaborado Por : 
Francia Contreras 
Revisado Por : Molchizu Arango 
 
Aprobado Por : 
Hernando Duran 
Cargo: Lider Laboratorio clinico Cargo: Asesora Calidad- planeacion Cargo: Gerente 
Fecha: 24/01/2019 Fecha: 21/01/2019 Fecha: 21/01/2019 
 
ESE HOSPITAL DE LA VEGA 
 
 
 
 
 
 
MANUAL DE PARASITOLOGIA 
 
 
 
 
 
 
 
LABORATORIO CLINICO 
 
 
 
 
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Fecha: 24/01/2019 Fecha: 21/01/2019 Fecha: 21/01/2019 
 
1. OBJETIVO: 
Dar a conocer como se realizan los exámenes que se ejecutan en el área de parasitología en 
el laboratorio clínico de la ESE Hospital de la Vega 
 
2. DEFINICIONES: 
Dentro de los análisis que se realizan en el laboratorio encontramos las pruebas 
parasitológicas que como su nombre lo indica se usa para la búsqueda de parásitos; en el 
laboratorio clínico estas son las que nos permiten identificar parasitos causantes de 
gastroenteritis o EDAS en la población de la Vega, dentro de las cuales encontramos el 
coprológico y el coproscopico que a diferencia del coprológico incluye azucares reductores y 
sangre oculta en materia fecal 
 
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3. MATERIALES Y EQUIPOS 
-Solución salina. 
-Lugol. 
-Palillos. 
-Laminas portaobjetos. 
-Laminillas. 
-Tiras para pH. 
-Microscopio. 
-Sangre oculta: BIOTECH 
-Azúcares reductores: BENEDICT 
 
4. ORIENTACIÓN: 
4.1. COPROLOGICO 
4.1.1. EXAMEN MACROSCOPICO 
Es importante observar: 
Consistencia de las heces y clasificarlas en: 
� Líquidas. 
� Blandas. 
� Duras. 
-Color. 
 
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-Presencia de moco. 
-Presencia de sangre. 
-Presencia de parásitos adultos. 
 
4.1.2. EXAMEN MICROSCOPICO 
 
� En un portaobjetos se coloca separadamente una gota de solución salina (0.85%) y otra 
gota de Lugol. 
� Con un palillo se toma una pequeña porción de materia fecal realizando una 
suspensión primero en la gota de solución salina y luego se repite este procedimiento 
en la gota de Lugol 
� Se cubren con laminillas y se lee en 1Ox y luego en 40x. 
� Los parásitos móviles (trofozoitos) se observan en solución salina, el Lugol hace resaltar los 
núcleos de los protozoos y da color café a los huevos y larvas. 
� Además de las formas parasitarias se deben observar otros como: 
� Leucocitos: se informa el número de leucocitos/campo de 40x. 
� Hematíes: se informa número de Hematíes/campo de 40x. 
� Flora bacteriana: se informa disminuida, normal o aumentada. 
� También es importante reportar la presencia de: 
� Cristales de Charcot-Leyden. 
� Almidones. 
� Ácidos grasos. 
� Fibras musculares 
 
Observaciones: 
 
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� Si la muestra contiene sangre o moco se debe tomar de esta parte para realizar el 
montaje. 
� La muestra una vez montada en solución salina y Lugol debe examinarse en el 
menor tiempo posible para tener mayor posibilidad de observar los trofozoitos con 
todas sus características de movilidad y morfología nuclear. 
� Si esto no es posible se deben colocar en una cámara húmeda hasta el momento 
del análisis. 
 
4.1.3. INFORME 
� Si es positivo para parásitos se debe anotar: 
-Forma de vida del parásito observado (quiste, trofozoito, larva, adulto). 
-Género y especie al cual pertenece la forma parasitaria observada (No se 
realiza cuantificación). 
� Si es negativo para parásitos se debe informar 
No se observan parásitos intestinales en la muestra examinada. 
 
La presencia o no de parásitos debe ir acompañada del reporte de Cristales de Charcot-
Leyden, Almidones, Ácidos grasos, Fibras musculares si están presentes. 
 
 
 
4.2. COPROSCOPICO 
 
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Este examen se utiliza para la investigación de parásitos y/o otras causas de diarrea. 
Incluye: 
Examen directo para investigación de parásitos. 
2.- pH y azucares reductores. 
3.- Leucocitos. 
4.- Hematíes. 
5.- Levaduras. 
6.- Sangre oculta a solicitud expresa del médico. 
• Para la realización de éste examen se debe solicitar en el laboratorio una caja para la muestra 
de materia fecal o un frasco plástico en caso de muestras muy diarreicas. 
• Cuando se requiera investigar parásitos en muestras no diarreicas se debe enviar materia fecal para 
procesar Coprológico corriente considerándose este examen no urgente. 
 
4.2.1. EXAMEN DIRECTO PARA INVESTIGACIÓN DE PARASITOS 
Se sigue la misma técnica de montaje realizada para el coprológico. En el examen 
microscópico se buscan formas de trofozoitos, quistes, huevos o larvas. El informe es igual que el 
utilizado para el Coprológico. 
 
4.2.2. PH Y AZUCARES REDUCTORES 
 
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PH 
Muestra: Materia fecal a la cual se le realiza una dilución así:Materia fecal (tamaño de una lenteja) Agua destilada 1 ml 
Introducir una pequeña tira de papel indicador de pH en la dilución hecha anteriormente y leer según la 
carta de colores de la casa comercial. 
Comentario: 
En diarrea por bacterias invasivas, generalmente el pH observado es alcalino. En diarreas de origen 
tóxico el pH es neutro. En diarrea de tipo viral el pH es ácido. 
 
AZUCARES REDUCTORES 
• Método: Benedict-Cualitativo : 
• Fundamento del Método: El método cualitativo con reactivo de Benedict, contiene 
ión cúprico formando un complejo con citrato en solución alcalina caliente. La glucosa 
y otras sustancias reductoras reducen el sulfato cúprico, de color azul a sulfato 
cuproso formando hidróxido cuproso amarillo o de óxido cuproso rojo que es 
insoluble. Que es un azúcar reductor Cualquier azúcar que forme un aldehído en 
presencia de una solución alcalina es un azúcar reductor. Los tipos de azúcares 
reductores son glucosa, fructosa, lactosa, maltosa, galactosa., 
• Utilidad clínica: Tiene importancia clínica para detectar deficiencia de enzimas 
intestinales como la lactosa debido a una deficiencia congénita o daños inespecíficos 
 
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a la mucosa. Los azúcares son rápidamente absorbidos por la porción superior del 
intestino delgado. Sin embargo pueden permanecer en el intestino y causar diarreas, 
ocasionadas por la presión osmótica de los azúcares no absorbidos en el intestino. 
Esta prueba se realiza en pacientes que se sospecha son intolerantes a la lactosa. 
La intolerancia a la lactosa se produce cuando el intestino delgado no produce 
suficiente lactasa. Ventajas del método: 
• Muestra: Materia fecal fresca 
• Contraindicaciones: Muestras contaminadas con orina. Muestras recolectadas en 
pañales o superficies absorbentes. 
• estabilidad de la muestra: 
Congelada Refrigerada Ambiente 
 (0°C) (2-8°C) (15-25°C) 
 Materia fecal Materia fecal Materia fecal 
 No almacenar Hasta 24 horas No almacenar 
• Características de los reactivos suministrados: Reactivo de Benedict: Listo para 
usar. Almacenar refrigerado de 15-25°C. 
• Control positivo: dextrosa en polvo. 
 
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• Estabilidad de los reactivos: El reactivo de Benedict es estable por más de 1 año 
almacenado a la temperatura recomendada (Ver fecha de expiración en el respectivo 
rótulo). 
• Procedimiento 
- Observaciones: Antes de iniciar cualquier procedimiento, por favor lea 
cuidadosamente el inserto. 
- TECNICA: En un tubo marcado problema pipetee: 5 ml de reactivo de Benedict, 
agregue 3 gotas de materia fecal si la consistencia es líquida, en caso de ser 
sólida tome una porción con un asa y mézclela completamente en el tubo marcado 
problema. En otro tubo marcado control pipetee 5 ml de reactivo de benedict y 
adicione una pequeña cantidad de control positivo en polvo, aprox 40 mgs (una 
pizca con punta de cucharita). Calentar durante 1 minuto el mechero o en un 
recipiente con agua hirviendo durante 3 minutos. Dejar enfriar. 
- Examinar inmediatamente para saber si hay cambios de color o precipitados. 
 
 
 
 
- Interpretación de los Resultados: 
 
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Se informa desde cero hasta cuatro cruces con el siguiente criterio: 
Color-Aspecto Resultado Concentración 
 (Presencia de Glucosa) aprox. de mmol/l 
Azul transparente Negativo 0 
Azul o enturbiamiento Huellas 14 
Verde no precipitado Huellas 14 
Verde precipitado Amarillo 1 + (+) 28 
Desde Amarillo hasta Verde Oliva (oscuro) 2+ (++) 56 
Castaño a Marrón 3+ (+++) 83 
Naranja o Rojo Ladrillo 4 + (++++) 111 o más 
Valores normales: Prueba de Benedict cualitativa = Negativa 
 
 
 
4.2.3 LEUCOCITOS 
 
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• Estas células en materia fecal, generalmente se encuentran asociadas a moco y se 
observan en diferentes enfermedades intestinales. 
• Se cuenta el número de leucocitos observados por campo de 40X y se informa: 
• Negativo: 0-5 leucocitos por campo. 
• Positivo: Más de 5 leucocitos por campo (en por lo menos 5 campos) 
• Si el resultado es positivo se realiza un extendido delgado de materia fecal y se colorea 
con Azul de metileno de Loeffler, se cuentan 100 células y se diferencian entre polimorfo 
nucleares y mononucleares. 
Interpretación: 
Los polimorfos nucleares predominan en: 
• Shigelosis 
• Colitis invasiva por E. coli 
• Colitis ulcerativa. 
Los mononucleares se encuentran con mayor frecuencia en fiebre tifoidea y E. 
histolytica. Los leucocitos están ausentes en diarreas por virus, giardias y coccidias 
4.2.4.. HEMATIES 
Se informan por campo de 40X, se observan en hemorragias del colon, hemorroides y fisuras 
sangrantes. 
4.2.5. LEVADURAS 
Pueden observarse en condiciones normales, pero aumentan notoriamente cuando existe 
desequilibrio de la flora bacteriana, especialmente en la terapia con antibióticos. 
 
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4.2.6. SANGRE OCULTA 
Principio de la prueba: 
La hemoglobina tiene una actividad semejante a las peroxidadas produciendo 
oxidación del ácido alfaguayacónico por medio del peróxido de hidrógeno, a una quinona 
de color azul. 
Interferencias: 
� Algunos medicamentos como aspirina, hierro, fenilbutazona, indometacina, pueden 
causar irritación de la mucosa gastrointestinal y por tanto sangrado intestinal en algunos 
pacientes. 
Otras circunstancias como hemorroides, periodo menstrual o lavado dental pueden igualmente 
producir resultados falsos positivos. 
� Algunos alimentos como rábanos y los nabos poseen actividad semejante a las 
peroxidasas por tanto deben suprimirse de la dieta antes de realizar la prueba. 
� Si el paciente tiene uno o varios resultados positivos se debe repetir la prueba después 
de una dieta libre de carnes y rica en, consumiendo vegetales crudos o cocidos como 
lechugas, espinacas,mazorcas; frutas como manzanas, uvas, ciruelas pasas, maní, etc. 
� Esta dieta no solo ayuda a reducir resultados falsos positivos sino también a descubrir 
lesiones que producen sangrado intermitente o esporádico. 
 
 
 
 
 
 
 
 
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EXAMEN 
MACROSCOPICO 
EXAMEN 
MICROSCOPICO 
-Consistencia. 
-Color. 
-Presencia de moco. 
-Presencia de sangre. 
-Presencia de parásitos 
Se evalúa: 
Se realiza 
montaje 
-Flora bacteriana. 
-Leucocitos. 
-Hematies. 
-Almidones. 
-Acidos grasos. 
-Cristales. 
-Fibras musculares. 
-Solución salina: Trofozoitos. 
-Lugol: Quistes, larvas y huevos. 
 
Se observa: 
SE REALIZA 
 
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COPROSCOPICO 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
EXAMEN 
MACROSCOPICO 
Y EXAMEN 
MICROSCOPICO 
COMO SE 
REALIZA EN EL 
COPROLOGICO. 
pH AZUCARES 
REDUCTORES 
SANGRE OCULTA 
Se realiza 
dilución: 
1 mL solución 
salina + 
materia fecal 
(tamaño de 
una lenteja) 
Se introduce 
una tira de 
papel de pH y 
se lee según la 
carta de 
colores. 
 
Se realiza disolución: 
3 mL DE REACTIVO 
DENEDICTa) 
Agrera 1 gr mas o 
menos 
Calentar hasta 
ebullicion 
Color verde: 
Positivo. Color 
azul: Negativo. 
Desenrosque el tapón del 
tubo de muestras y retire el 
aplicador 
Aleatoriamente perfore el 
espécimen fecal en por lo 
menos cinco (5) puntos 
diferentes. 
Elimine el exceso de muestra del eje y 
ranuras exteriores. Asegúrese de que 
la muestra permanezca en el interior 
de las ranuras. Esta cantidad es 
suficiente para realizar la prueba. 
Vuelva a colocar el tubo dentro 
del contenedor de prueba y 
apriete bien.Agite el tubo de 
extracción enérgicamente. 
Mantenga el tubo boca arriba, gire la 
tapa. Vierta 2 gotas de la solución en 
la almohadilla de muestras en el 
dispositivo. No sobrecarge el 
dispositivo con muestra. 
Programe el cronómetro. Los 
resultados pueden leerse en el 
transcurso de 10 minutos. Los 
resultados positivos son visibles en 
un tiempo de 1 minuto. 
NEGATIVO 
POSITIVO 
 
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BiBLIOGRAFIA 
BOTERO D, RESTREPO M.: Parasitosis humana, 1992; 17:379. 
KONEMAN, ALLEN: Diagnóstico microbiología, 1992; 15:718. 
JAWETZ E: Microbiología Médica 1992; 31:359. 
MURRAY P: Microbiología Médica 1992; 32:349. 
VILLEGAS S: Manual de Parasitología 1989. 
PÉREZ D: Manual de técnicas de la sección de parasitología. 
HENRY BERNARD JOHN, “Diagnósticos y Tratamiento clínico por el laboratorio”. Masson- 
Salvat Medicina, 9ª edición, Barcelona 1993 páginas 417-420 
WINKELMAN J.W., CANNON Y HENRY R.J. “Química clínicaBases y Técnicas”. Editorial 
JIMS, 2ª edición Barcelona (España) 1980 páginas 1307-1313. 
NORBERT W. TIETZ, “Química Clínica Moderna”. Interamericana 1ra. Edición, México 1970 
páginas 168-69. 
 
 
 
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