PN-AVI-PV-04 V10 Protocolo Vigilancia Epidemiológica Salmonella Aves Reproductoras

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1. Objetivo 
 
Establecer las directrices para la vigilancia epidemiológica oficial de Salmonella Enteritidis, 
Salmonella Pullorum y Salmonella Gallinarum en granjas de aves reproductoras. 
 
2. Alcance 
 
El alcance del presente protocolo es para todas las granjas registradas ante el SENASA con un 
Certificado Veterinario de Operación que incluya las actividades de levante de reproductoras y/o 
producción de huevo fértil. 
 
El programa también está orientado a realizar diagnósticos en casos de denuncia por clínica y 
mortalidad en aves de corral (vigilancia pasiva) con sintomatología compatible a Salmonella. 
 
3. Ejecutores del Programa 
En la siguiente tabla se resume el responsable de ejecución según la actividad involucrada. 
Tabla Nº 1 Ejecutores del programa según actividad y responsable de la ejecución 
ACTIVIDAD RESPONSABLE DE EJECUSION 
1. Elaboración y actualización del protocolo de 
vigilancia. 
Programa Nacional de Salud Aviar y el 
Departamento de Epidemiología 
2. Recepción de denuncias de casos con 
sintomatología compatible (Vigilancia Pasiva) 
Direcciones Regionales del SENASA y 
Programa Nacional de Salud Aviar. 
3. Investigación y seguimiento de casos 
sospechosos (Vigilancia Pasiva) 
Direcciones Regionales y Médicos 
Veterinarios Oficializados. 
4. Toma de muestras 
 
Vigilancia activa: 
• Médicos Veterinarios Oficiales. 
• Médicos Veterinarios Oficializados en 
el Programa Nacional de Salud Aviar. 
• Técnicos del SENASA. 
• Técnicos en salud animal a cargo del 
médico veterinario oficializado de la 
granja. 
 
Vigilancia pasiva: 
• Médicos Veterinarios Oficiales 
• Médicos Veterinarios Oficializados en 
el Programa Nacional de Salud Aviar. 
 
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• Médicos veterinarios privados. 
• Técnicos del SENASA. 
• Técnicos en salud animal. 
 
5. Diagnóstico de Laboratorio • Vigilancia activa de Salmonella 
Gallinarum-Pullorum: Laboratorio 
Nacional de Servicios Veterinarios 
LANASEVE. 
• Vigilancia activa Salmonella Enteritidis: 
Laboratorio Nacional de Servicios 
Veterinarios LANASEVE y Laboratorio 
de Bacteriología de la Escuela de 
Medicina Veterinaria de la U.N.A. 
• Vigilancia pasiva: Laboratorio Nacional 
de Servicios Veterinarios LANASEVE y 
Laboratorio de Bacteriología de la 
Escuela de Medicina Veterinaria de la 
U.N.A. 
• Tipificación: Laboratorio Nacional de 
Servicios Veterinarios LANASEVE o en 
el Instituto Costarricense de 
Investigación y Enseñanza en Nutrición 
y en Salud (INCIENSA). 
6. Seguimiento de casos probables de la 
vigilancia activa. 
Médicos veterinarios oficializados en el 
Programa Nacional de Salud Aviar, médicos 
veterinarios oficiales y técnicos oficiales. 
7. Seguimiento de casos positivos. Director SENASA, Coordinador PNSA, 
Departamento de Epidemiología, Dirección de 
Operaciones, Direcciones Regionales. 
 
3.1 Elaboración del protocolo de vigilancia. 
Es responsabilidad del Coordinador del Programa Nacional de Salud Aviar junto con el jefe del 
Departamento de Epidemiología, analizar y actualizar de ser necesario este protocolo cada año. 
3.2 Recepción de denuncias de casos sospechosos por salmonella. 
Es responsabilidad de los funcionarios de las Direcciones Regionales, recibir las denuncias de los 
casos con sintomatología sospechosa de Salmonella. 
 
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Cuando el PNSA recibe una denuncia se lo comunicará a la Dirección Regional correspondiente 
para su pronta atención. 
Las denuncias recibidas deben ser notificadas al Médico Veterinario Oficial encargado del sector, 
para su análisis y seguimiento. 
3.3 Investigación y seguimiento de casos sospechosos con sintomatología compatible 
con SLM (vigilancia pasiva). 
Los médicos veterinarios oficiales, deben analizar la información de la denuncia de los casos con 
sintomatología compatible con Salmonella y clasificarla según corresponda, si la denuncia clasifica 
para atención de caso, deberá darle seguimiento inmediato a la misma dentro de las próximas 48 
horas. 
En los establecimientos que cuentan con veterinario oficializado, este deberá comunicar y coordinar 
con el veterinario oficial el seguimiento del caso, la toma y envío de las muestras y las medidas 
sanitarias y de cuarentena impuestas. 
El Médico Veterinario durante la visita para la atención del caso, debe proceder a realizar el examen 
clínico de las aves y tomar las muestras indicadas en el numeral 10.2 (Vigilancia Pasiva) del 
presente protocolo. Si las aves presentan sintomatología compatible con SLM y califica como un 
caso sospechoso, deben establecer y notificar al titular o propietario del establecimiento, las 
medidas sanitarias y de cuarentena impuestas. 
Durante la visita el Médico Veterinario Oficial deberá seguir los lineamientos establecidos en la Guía 
de Vigilancia Pasiva EPI-PG-004-IN-001, completando la información epidemiológica y las medidas 
sanitarias a instaurar en la Hoja de Visita / Orden Sanitaria. 
Es responsabilidad del Médico Veterinario Oficial que le da seguimiento al caso sospechoso, 
incorporar los datos al sistema oficial de vigilancia epidemiológica vigente. 
3.4 Toma y remisión de muestras. 
Los Médicos Veterinarios Oficializados en el Programa Nacional de Salud Aviar, serán los 
responsables de la toma y remisión de muestras en los establecimientos bajo su responsabilidad. 
 
La toma de muestras durante la vigilancia pasiva, podrá ser realizada por funcionarios de las 
direcciones regionales del SENASA, por Veterinarios Oficializados ante el SENASA, por médicos 
veterinarios no oficializados y por técnicos en salud animal. 
Para la toma de muestras se utilizará el Instructivo PN-AVI-PV-04-IN-01. 
3.5 Diagnóstico laboratorial. 
Es responsabilidad del Laboratorio Nacional de Servicios Veterinarios LANASEVE y demás 
laboratorios autorizados, recibir las muestras según corresponda y asignarles un número de 
identificación (protocolo) para su procesamiento lo más pronto posible. 
 
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3.6 Seguimiento de casos probables y casos positivos a SLM. 
Los casos probables de SLM, se deben notificar al PNSA y a la Dirección Regional respectiva para 
la instauración de las medidas sanitarias y de cuarentena pertinente, mientras se obtiene un 
diagnóstico positivo confirmatorio. 
El seguimiento de los casos probables y positivos será llevado a cabo por el médico veterinario 
oficial, coordinando las medidas sanitarias con el médico veterinario del establecimiento. 
Cuando un caso sospechoso o probable es reportado por el laboratorio, como un caso positivo a 
SLM, el Médico Veterinario Oficialy el Oficializado responsables del caso, deben verificar el 
cumplimiento de las medidas cuarentenarias instauradas y tomar las acciones correctivas en caso 
de ser necesario. 
 
4. Definiciones 
4.1 Aves de corral: designa todas las aves domesticadas, incluidas las de traspatio, que se 
utilizan para la producción de carne y huevos destinados al consumo, la producción de otros 
productos comerciales, la repoblación de aves de caza o la reproducción de todas estas 
categorías de aves, independientemente de los fines para los que se utilicen. 
 
Las aves mantenidas en cautividad por motivos distintos de los enumerados en el párrafo 
anterior, por ejemplo, las aves criadas para espectáculos, carreras, exposiciones o 
concursos, o para la reproducción o la venta de todas estas categorías de aves, así como 
las aves de compañía, no se consideran aves de corral. 
 
4.2 Cuarentena: Conjunto de medidas sanitarias basadas en el aislamiento y restricción de la 
movilización de animales, insumos, materiales, equipos, productos y subproductos, en una 
o varias explotaciones sospechosas o afectadas por una enfermedad de declaración 
obligatoria, aplicable durante un período variable dependiendo de la transmisibilidad de la 
enfermedad de que se trate, así como también de la magnitud y riesgo de transmisión de la 
enfermedad en la zona. 
 
4.3 Médico Veterinario Oficial: Veterinario facultado por el Servicio Nacional de Salud Animal 
para realizar determinadas tareas que se le designan, relacionadas con la salud animal, 
salud pública, inspecciones de mercancías y la emisión de certificados oficiales de salud 
animal. 
 
4.4 Médico Veterinario oficializado: Veterinario autorizado por el Servicio Nacional de Salud 
Animal, que presta sus servicios en empresas avícolas a fin de asesorar a sus propietarios 
y representantes para cumplir con los preceptos estipulados en los lineamientos del 
Programa Nacional de Salud Aviar. 
 
 
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4.5 Medida Sanitaria: Toda la medida aplicada para proteger la salud o la vida de los animales 
y de las personas en todo el territorio nacional, contra la entrada, radicación o propagación 
de un peligro. 
 
4.6 Notificación: Comunicación formal escrita, verbal o electrónica a las autoridades 
zoosanitarias competentes, sobre la sospecha o existencia de la enfermedad, señalando los 
datos epidemiológicos relevantes en forma suficiente y necesaria para su identificación, 
localización y atención correspondiente. 
 
4.7 Parvada: designa varias aves de la misma especie que se crían juntos bajo control humano 
para una misma finalidad zootécnica. Se considera que una parvada constituye una unidad 
epidemiológica. 
 
4.8 Propietario o Titular: Persona natural o jurídica responsable de la actividad productiva 
avícola. 
 
4.9 Reproductoras: designa todas las aves Gallus Gallus que se utilizan para la producción de 
huevos fértiles destinados a los procesos de la incubación artificial. Para efectos del 
presente protocolo de vigilancia se considera aves reproductoras tanto a las aves de las 
líneas comerciales de carne como para la producción de huevo de consumo. 
 
4.10 Unidad epidemiológica: designa a un grupo de aves de una o más edades, con una 
determinada relación epidemiológica y aproximadamente la misma probabilidad de 
exposición a un agente patógeno porque pertenecen a un mismo establecimiento; estando 
las aves alojadas dentro del perímetro interno (área limpia) del establecimiento, tienen la 
misma administración, comparten infraestructura (cerca perimetral, duchas sanitarias, 
accesos, etc.), cuentan con el mismo personal y además cumplen con la misma gestión de 
bioseguridad y buenas prácticas de manejo. 
 
5. Acrónimos 
5.1 EMV: Escuela de Medicina Veterinaria de la Universidad Nacional. 
5.2 INCIENSA: Instituto Costarricense de Investigación y Enseñanza en Nutrición y Salud 
5.3 LANASEVE: Laboratorio Nacional de Servicios Veterinarios 
5.4 MAG: Ministerio de Agricultura y Ganadería. 
5.5 OIE: Organización Mundial de Sanidad Animal 
5.6 PCR: Reacción en cadena de la polimerasa 
5.7 PNSA: Programa Nacional de Salud Aviar 
5.8 SENASA: Servicio Nacional de Salud Animal 
5.9 SLM: Salmonella bajo vigilancia oficial. 
5.10 SIVE: Sistema de Vigilancia Epidemiológica 
 
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6. Referencias o bibliografía 
1. FAO. Caracterización del riesgo de Salmonella spp. en huevos y pollos para asar y de Listeria 
monocytogenes en alimentos listos para el consume. 2001. FAO Food and Nutrition Papers. 
(http://www.fao.org/docrep/008/y1332s/y1332s00.htm) 
2. Grimont, P. and Weill, F. Antigenic formulae of the Salmonella serovars, 9th edition. Paris, France: 
WHO Collaborating Centre for Reference and Research on Salmonella, Institute Pasteur, 2007 
3. H.L. Shivaprasad. Fowl typhoid and pullorum disease. 2000. Diseases of poultry: world trade 
and public health implications. Scientific and technical review. OIE Vol.19 (2) 405-424. 
4. Jordan F. 2008. Poultry diseases (sixth edition, Saunders Elsevier. 110-125) 
5. OIE. Código Sanitario para los Animales Terrestres. 
6. OIE. Manual de las Pruebas de Diagnóstico y de las Vacunas para los Animales Terrestres. 
7. P.A. Barrow. The paratyphoid salmonellae. 2000. Diseases of poultry: world trade and public 
health implications. Scientific and technical review. OIE Vol.19 (2) 351-375. 
8. Decreto Ejecutivo No. 34669-MAG Listado de enfermedades animales de declaración obligatoria 
9. Guía de Vigilancia Pasiva EPI-PG-004-IN-001 
10. Muestreos de la Vigilancia de Salmonella en Aves Reproductoras PN-AVI-PV-04-ANEXO-01 
11. Muestreos de la Vigilancia Epidemiológica de Importaciones Avícolas PN-AVI-PV-01-ANEXO-
03 
12. Toma y Envío de Muestras Avícolas para la Vigilancia de Salmonella PN-AVI-PV-04-IN-01. 
 
7. Introducción: 
 
7.1 Antecedentes 
En el año 2009 el SENASA implementó el Programa Nacional de Salmonella (PROSAL) con la 
finalidad de proteger la salud del patrimonio avícola nacional, procurar la seguridad e inocuidad 
alimentaria del consumidor y fortalecer el comercio pecuario de Costa Rica, estableciéndose 
protocolos de vigilancia en incubadoras y aves reproductoras, pollos de engorde y aves de postura 
comercial. 
 
En el 2013, la vigilancia de Salmonella en producción primaria de las aves (granjas e incubadoras) 
fue asumida por el Programa Nacional de Salud Aviar estableciéndose nuevos protocolos a partir 
de los protocolos establecidos por la PROSAL. 
 
http://www.fao.org/docrep/008/y1332s/y1332s00.htm
 
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7.2 Justificación 
La avicultura constituye una de las actividades más relevantes para la economía costarricense, 
lo que se evidencia con el aporte de 0.73% del producto interno bruto (PIB), con un valor agregado 
del 10.9% de las actividades primarias del sector agropecuario (8.2% pollo y 2.7% huevo, según el 
Boletín Estadístico Agropecuario N°24 de la Secretaría Ejecutiva dePlanificación sectorial 
Agropecuaria, serie cronológica 2010-2013), generando empleo directo para 12500 personas y 
empleo indirecto para 100000 personas. El valor aproximado de la industria avícola es de 
$176.873.144. 
La industria avícola se compone de una integración vertical de sus procesos productivos, en 
alguna de las siguientes maneras: 
• Reproductoras livianas + huevo fértil + incubadora + pollita ponedora + gallinas ponedoras + 
huevo comercial + huevo líquido. 
 
• Reproductoras pesadas + huevo fértil + incubadora + pollo de engorde + procesamiento de 
aves + proceso posterior + aprovechamiento subproductos. 
 
La actividad avícola (carne y huevo) representa un rubro importante entre las principales 
actividades pecuarias de nuestro país, con una producción reportada en el año 2013 de 101.463 
toneladas métricas en carne y 60.450 toneladas métricas en huevo. 
 
El pollo de engorde es producido por un número importante de productores, integrados a las 
cinco principales empresas avícolas, quienes producen aproximadamente más del 90% de pollo en 
pie. La producción de pollo de engorde es de 59.552.182 unidades por año, para una producción 
anual de carne de pollo de 101.463 toneladas métricas y un consumo percápita de 23 kilos. El valor 
de la producción de carne de pollo es de $117.913.144. 
La producción de huevos es de aproximadamente 2.395.000 unidades diarias, para un 
consumo per cápita de 200 huevos. Este sector está compuesto por una gran variedad de 
productores, que van desde los pequeños e independientes que venden su producto a nivel local, 
a productores medianos y grandes, que pueden ser independientes o integrados a una empresa 
 
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avícola, con mayor capacidad de comercializar su producto a nivel nacional. El valor de la 
producción de huevo comercial es de aproximadamente $ 58.959.823. 
El censo agropecuario del 2014 del INEC estableció que Costa Rica cuenta con una 
población total de más de 18 millones de aves de corral, de las cuales existe una importante 
población avícola de traspatio estimada en 829.958 aves, principalmente en las zonas rurales, 
cuyos productos (huevo y carne) sirven como unas de las principales fuentes de proteína animal en 
la dieta. 
 
La avicultura consolida la seguridad alimentaria que como país debe garantizarse, aportando 
productos de calidad con alto contenido proteínico, a bajo costo para las familias costarricenses, 
haciéndolos accesibles a la dieta alimenticia de aproximadamente 4.458.215 habitantes. 
 
 
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En los últimos años se ha dado un incremento en las exportaciones de productos avícolas 
costarricenses, principalmente en la exportación de huevo fértil, con una participación del 6,8% en 
el valor de los principales productos exportados del sector agropecuario para el año 2013 y con una 
tendencia a incrementarse para el año 2014. 
 
 
7.3 Enfermedad a vigilar 
 
Salmonella Enteritidis, Salmonella Pullorum y Salmonella Gallinarum. 
7.3.1 Historia natural de la enfermedad 
Infecciones causadas por serovares mótiles de Salmonella han sido reportadas en avicultura desde 
1899 y han sido extensamente investigados al ser importantes zoonosis y agentes de enfermedad 
clínica (6). 
 
Históricamente, se ha manejado el término tifosis aviar a la enfermedad en gallinas y pavos adultos 
y en la etapa de crecimiento, mientras que la pulorosis es una enfermedad de pollitos y pavitos (3). 
 
La tifosis aviar fue reconocida por primera vez por Klein en 1988 y la pulorosis en 1899 por Rettger. 
Antes de 1929, la pulorosis era llamada diarrea bacilar blanquecina. Estas dos enfermedades 
amenazaban seriamente la industria avícola a inicios del siglo 20, debido a la amplia diseminación 
de brotes acompañado por altas mortalidades. Pese a la amplia distribución mundial de la tifosis y 
pulorosis, estas enfermedades han sido erradicadas de la avicultura comercial en países 
industrializados como los Estados Unidos de América, Canadá, Japón y muchos países de Europa 
Occidental, principalmente por contar con programas de control (3). 
 
7.3.2 Agente etiológico 
En muchos países la salmonelosis es una causa predominante de enfermedad transmitida por los 
alimentos siendo importantes vehículos de transmisión los huevos y las aves de corral. En los 
 
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últimos dos decenios, Salmonella Enteritidis ha llegado a ser una variante sérica causante de 
infecciones en seres humanos, siendo la fuente principal del patógeno los huevos de las gallinas. 
En muchos países, se atribuyó la aparición de Salmonella Enteritidis como causa principal de la 
salmonelosis en seres humanos a la capacidad excepcional de esta variante sérica de colonizar el 
tejido ovárico de las gallinas y estar presente en el contenido de los huevos con cáscara intacta (7). 
La tifosis y la pulorosis (S. Gallinarum y S. Pullorum, respectivamente) son enfermedades 
septicémicas de las aves causadas por bacterias gran negativas, no esporogénicos, no mótiles y 
anaerobios facultativos, que afectan sobre todo a pollos y pavos. Ambas son miembros de la familia 
Enterobacteriaceae y son altamente adaptadas al huésped (3). S. Gallinarum y S. Pullorum 
pertenecen al serogrupo D según la clasificación de kauffmann-White. 
Entre los signos clínicos de esas infecciones en pollitos y pavitos cabe citar anorexia, diarrea, 
deshidratación, decaimiento y elevada mortalidad. En aves adultas las principales manifestaciones 
clínicas son, además de la anorexia y el aumento de la mortalidad, la pérdida de fertilidad y el 
descenso de las tasas de producción de huevos y la eclosión (3). 
Las lesiones macro y microscópicas que ambas enfermedades provocan en pollitos y pavitos son 
hepatitis, esplenitis, tiflitis, onfalitis, miocarditis, ventriculitis, neumonía, sinovitis, peritonitis y 
oftalmitis. Las aves adultas pueden presentar ooforitis, salpingitis, orquitis, peritonitis y perihepatitis 
(3). 
La mortalidad puede variar de 0% a 100%, especialmente en pollitos y pavitos. La mayor mortalidad 
ocurre durante la segunda semana después de la eclosión, con un rápido descenso entre la tercera 
y cuartas semana de edad. La morbilidad es mayor a la mortalidad (3). 
7.3.3 Huéspedes, vectores y reservorios. 
Infecciones, generalmente subclínicas, por serovares motiles de Salmonella son comunes en todas 
las especies de aves domésticas y aves de juego en la mayor parte del mundo y también han sido 
reportados en muchas especies de aves silvestres. En países donde la mayor parte de la avicultura 
industrial está concentrada en un número pequeño de grandes empresas, los problemas de 
Salmonella en sus parvadas de reproductoras o plantas de alimentos balanceados pueden tener un 
efecto sustancial en las cepas prevalentes de Salmonella a nivel nacional (6). 
 
Las fuentes de alimento y las proteínas de origen animal han sido reconocidos por muchos años 
como una de lasprincipales fuentes de contaminación de Salmonellas paratifoideas. También son 
fuentes de infección las instalaciones contaminadas, roedores, aves silvestres, gatos con accesos 
a las galeras, fuentes de agua y las personas a través de calzado y la vestimenta (1). 
 
Las gallinas son los huéspedes naturales tanto para S. Gallinarum como para S. Pullorum. Sin 
embargo, se han descrito brotes naturales en pavos, gallinas de guinea, codornices, faisanes, 
gorriones y loros. También se han reportado brotes de tifosis aviar en avestruces y pavo reales, 
 
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así como casos de pulorosis en canarios. La susceptibilidad a S. Gallinarum varía en patos, gansos 
y palomas, pero todas estas aves en general aparentan ser resistentes (3). 
 
7.3.4 Mecanismos de transmisión. 
En las Salmonellas paratifoideas (S. Enteritidis) la transmisión de la infección, generalmente se 
considera que es por vía oral, ocurriendo luego, una masiva multiplicación bacteriana dentro del 
tracto digestivo y una rápida invasión de tejidos (1). 
En aves en el período de postura, ciertas cepas de S. Enteritidis pueden invadir el tracto 
reproductivo, particularmente el ovario y oviducto. Esto puede ser importante en permitir la 
transmisión de la infección a través del huevo con consecuencias asociadas a la salud pública y a 
la diseminación vertical a la progenie. La contaminación del huevo también puede ocurrir por 
contaminación fecal de la superficie de la cáscara al momento de la postura (1). 
El curso exacto de los eventos durante la incubación de huevos infectados es desconocido, pero 
inmediatamente después de la eclosión, la ingestión oral de los pollitos resulta en grandes 
cantidades de Salmonella en el tracto digestivo y una extensa diseminación en las heces. Por lo 
tanto, es muy alta la capacidad de transmisión horizontal en las incubadoras. Ingestión de plumón 
contaminado, cáscaras u otros polvos pueden resultar en infección de la incubadora. Esto puede 
resultar en una extensa y prolongada contaminación de la planta de incubación (1). 
La tifosis y la pulorosis pueden ser transmitidas por una variedad de formas. El ave infectada, como 
portador o vector, es por mucho la forma más importante de perpetuar y diseminar la bacteria. La 
infección transovárica, que provoca la infección de los huevos y después de los polluelos, es uno 
de los principales mecanismos de transmisión de S. Gallinarum y S. Pullorum. Otros métodos de 
transmisión incluyen penetración de la cáscara, alimento contaminado, por contacto en la nacedora, 
en la criadora, jaula o piso, canibalismo de aves infectadas, consumo de huevos infectados y por 
heridas en la piel. Las heces de aves infectadas son una fuente importante de contaminación para 
otras aves. Alimento, agua y camas contaminadas también pueden ser fuentes de S. Gallinarum y 
S Pullorum. Las personas, vehículos y equipos que se movilizan entre granjas y entre casetas 
pueden diseminar la enfermedad a menos que se tomen medidas de bioseguridad. Las aves 
silvestres, mamíferos, moscas e insectos pueden ser importantes en la diseminación mecánica del 
organismo (3). 
S. Gallinarum y S. Pullorum pueden sobrevivir por varios años bajo condiciones ambientales 
favorables, pero son menos resistentes al calor, químicos y factores ambientales adversos que las 
salmonellas paratífoideas. S. Gallinarum puede sobrevivir en las heces de gallinas infectadas hasta 
por 10,9 días cuando están encasetadas y dos días menos si no están encasetadas. 
 
 
 
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7.3.5 Salud Pública 
La salmonelosis es una de las enfermedades bacterianas transmitidas por los alimentos más 
comunes en el mundo. La inmensa mayoría de las infecciones humanas por Salmonella son 
transmitidas por los alimentos y se deben, en la mayor parte de los casos, a Salmonella Enteritidis 
(4). 
Tanto Salmonella Gallinarum como Salmonella Pullorum están muy adaptadas a sus especies 
huéspedes, por lo que revisten escasa importancia en términos de salud pública (3). 
 
7.4 Definición de caso 
7.4.1 Caso sospechoso a Salmonella en aves reproductoras. 
 
A. Caso sospechoso por clínica y hallazgos post mortem: Aves que presenten signos de 
enfermedad septicémica con anorexia, deshidratación, diarrea, debilidad y muerte en aves 
jóvenes. Caídas en la producción de huevo, aumento de la mortalidad, bajas incubabilidades 
y pobre calidad de los pollitos eclosionados de huevos de aves adultas infectadas. 
 
Los signos post mortem de Salmonella Pullorum en pollitos recién eclosionados son 
peritonitis con congestión generalizada de tejidos y sacos vitelinos no absorbidos. La 
infección posteriormente desencadena en tiflitis con el desarrollo de necrosis cecal y 
pequeños focos necróticos en el hígado, los pulmones y otras vísceras. Las lesiones 
pequeñas en el hígado y el bazo de Salmonella Pullorum de aves infectadas pueden mostrar 
la apariencia de una "mancha blanca". Las aves adultas pueden desarrollar ovarios 
deformados. 
 
En Salmonella Gallinarum (tifosis aviar), como signos generalizados de septicemia, el hígado 
está generalmente agrandado, oscuro y friable con un brillo de bronce cobrizo distintivo que 
sólo puede desarrollarse después de la exposición al aire. La médula ósea también es a 
menudo de color marrón oscuro. 
 
B. Caso sospechoso de laboratorio. 
Resultados de laboratorio positivos a Salmonella Enteritidis, Salmonella Pullorum y 
Salmonella Gallinarum en pruebas de tamizaje no confirmatorias (aglutinación rápida en 
placa, micro aglutinación, ELISA, etc.). 
 
7.4.2 Caso probable a Salmonella en aves reproductoras. 
Se define como caso probable de Salmonella Enteritidis a un caso con o sin signos, síntomas o 
alteraciones de los parámetros zootécnicos compatible con SLM que en la vigilancia oficial 
presentan un primer aislamiento bacteriano con un resultado positivo a Salmonella Enteritidis en 
pruebas de serotipificación realizadas en el LANASEVE o INCIENSA. 
http://www.oie.int/index.php?id=169&L=2&htmfile=glossaire.htm#terme_maladie
http://www.oie.int/index.php?id=169&L=2&htmfile=glossaire.htm#terme_infection
 
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controlada. 
 
Se define como caso probable de Salmonella Pullorum o Salmonella Gallinarum a un caso con o 
sin signos, síntomas o alteraciones de los parámetros zootécnicos compatible con SLM que en la 
vigilancia oficial presentan un primer aislamiento bacteriano con un resultado positivo a Salmonella 
Pullorum o Salmonella Gallinarum en pruebas de serotipificación realizadas en el LANASEVE o 
INCIENSA. 
 
7.4.3 Caso positivo (confirmado) a Salmonella Enteritidis en aves reproductoras. 
Casos probables que presentan un segundo aislamiento bacteriano positivo a Salmonella Enteritidis 
en pruebas de serotipificación o PCR realizadas en el LANASEVE o INCIENSA, en las muestras 
que se tomaron en las reproductoras y su progenie, para la confirmación del caso probable. 
 
7.4.4 Casopositivo (confirmado) a Salmonella Gallinarum o Salmonella Pullroum en aves 
reproductoras. 
Casos probables que presentan un segundo aislamiento bacteriano positivo a Salmonella Pullorum 
o Salmonella Gallinarum, en pruebas de serotipificación o PCR realizadas en el LANASEVE o 
INCIENSA, en las muestras que se tomaron en las reproductoras y su progenie, para la 
confirmación del caso probable. 
7.4.5 Caso negativo a Salmonella Enteritidis, Salmonella Gallinarum o Salmonella 
Pullorum en aves reproductoras. 
Casos sospechosos o probables que no pudieron ser confirmados oficialmente. 
 
 
8. Estrategia para la vigilancia epidemiológica. 
 
8.1 Vigilancia Activa 
Para la vigilancia activa refiérase al documento PN-AVI-PV-04-ANEXO-01 Muestreos de la 
Vigilancia de Salmonella en Aves Reproductoras, disponible en la página web del SENASA. 
 
8.2 Vigilancia epidemiológica a las importaciones. 
Las importaciones ingresan al país con un certificado sanitario que acompaña el embarque. 
 
Para la vigilancia de las importaciones refiérase al documento PN-AVI-PV-01-ANEXO-03 
Muestreos de la Vigilancia Epidemiológica de Importaciones Avícolas, disponible en la página web 
del SENASA. 
 
La obtención de resultados negativos, además de la ausencia de signos clínicos de enfermedad 
compatible con SLM, 21 días posteriores a la importación de las aves, permitirán levantar la 
cuarentena domiciliar establecido al momento de ingresar al país. 
 
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controlada. 
 
En los casos sospechosos con evidencia clínica compatible con SLM, la parvada se mantendrá en 
cuarentena hasta que se descarte la enfermedad. 
 
8.3 Vigilancia pasiva (sistema de alerta inmediata) 
Los trabajadores y en general los propietarios de aves deben notificar cualquier sospecha de 
enfermedad de las aves compatible con Salmonelosis aviar y reportar los casos a los funcionarios 
de la Dirección Regional, técnicos del SENASA o al Programa Nacional de Salud Aviar, según el 
Decreto Ejecutivo No. 34669-MAG Listado de enfermedades animales de declaración obligatoria. 
Estos casos sospechosos deben ser investigados por el Médico Veterinario Oficial, para confirmar 
o descartar salmonella u otras enfermedades aviares de interés oficial. Todos los casos serán 
documentados incluyendo los resultados de las pruebas de laboratorio, así como las medidas de 
control implementadas. 
Para la vigilancia pasiva de enfermedades compatibles con salmonella, refiérase al documento PN-
AVI-PV-04-ANEXO-01 Muestreos de la Vigilancia de Salmonella en Aves Reproductoras y a la Guía 
de Vigilancia Pasiva EPI-PG-004-IN-001, disponible en la página web del SENASA. 
 
8.4 Tipo de muestreo 
• Muestreo de gamuza de arrastre: se pasa una gamuza humedecida por la cama de la galera. 
 
• Muestras fecales: muestras de heces frescas recogidas en diferentes puntos del gallinero o 
tomadas directamente del ave por hisopados cloacales. 
 
• Muestras de meconio: meconio de aves de 1 día de edad. 
 
• Muestras de órganos: muestras de corazón, hígado, bazo, ciegos, tonsilas cecales y 
fragmentos de ovarios. 
 
• Muestras de médula ósea: muestras de la médula ósea del hueso fémur. 
 
• Muestras de alimentos: muestreos de las fórmulas utilizadas para la alimentación de las aves 
en sus distintas fases. 
 
 
9. Diagnóstico laboratorial. 
OIE recomienda utilizar pruebas microbiológicas y no serológicas, por su mayor especificidad en el 
caso de parvadas de reproductoras y gallinas ponedoras. 
9.1 Lista de laboratorios 
http://www.oie.int/index.php?id=169&L=2&htmfile=glossaire.htm#terme_cheptela
 
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Además del laboratorio LANASEVE, para la vigilancia oficial de Salmonella en aves reproductoras 
están autorizados los siguientes laboratorios nacionales: 
• El laboratorio de Bacteriología de la Escuela de Medicina Veterinaria de la Universidad 
Nacional. 
• El Instituto Costarricense de Investigación y Enseñanza en Nutrición y Salud (INCIENSA). 
• Centro de Investigación en Nutrición Animal CINA de la Universidad de Costa Rica, bajo el 
convenio MAG-UCR. 
9.2 Muestras 
Para el detalle de los muestreos, refiérase al documento PN-AVI-PV-04-ANEXO-01 Muestreos de 
la Vigilancia de Salmonella en Aves Reproductoras, disponible en la página web del SENASA. 
 
Recolección, empaque y envío de muestras en la vigilancia pasiva. 
Como primera acción en los casos sospechosos y denuncias por sintomatología compatible a SLM 
(vigilancia pasiva), no se deben llevar aves enfermas o recientemente muertas al laboratorio de 
diagnóstico oficial o autorizado. La toma de muestras y la necropsia debe realizarse en el terreno 
o en un área biológicamente segura. Los restos y el material contaminado no deben sacarse del 
lugar y deben tomarse las medidas de bioseguridad y desinfección correspondientes para evitar la 
diseminación de la enfermedad. 
Los recipientes que contengan las muestras deben ser sellados y colocados en una bolsa plástica, 
sellada con un doblez, que será presionado con ligas (bandas elásticas). Tanto los recipientes como 
las bolsas deben estar bien identificadas. 
Las bolsas que contienen las muestras se colocarán dentro de una segunda bolsa con hielo. Esta 
bolsa se sellará de igual manera que la primera y luego se colocará dentro de una hielera para su 
envío al laboratorio. El espacio restante de la caja se rellena con papel periódico. La caja se debe 
sellar herméticamente con cinta adhesiva. 
El formulario de notificación de casos o el registro de denuncia sanitaria se puede enviar dentro de 
la caja o pegada con cinta adhesiva sobre la tapa de la caja (una copia del mismo debe quedar para 
el archivo local). 
En los casos sospechosos con clínica de compatible a SLM, al completar la información del SIVE, 
en el propósito de muestreo se debe indicar Denuncia y deben notificar el caso al Programa 
Nacional de Salud Aviar con la información correspondiente al artículo # 4 del decreto No. 34669-
MAG Listado de Enfermedades Animales de declaración Obligatoria, o completando el registro 
DNO-PG-002-RE-001 Denuncias Sanitarias, detallando claramente la información del 
establecimiento, la fecha de inicio de los síntomas, la población de aves expuesta, así como el 
número de aves enfermas, el número de aves muertas y una descripción de los síntomas 
observados. 
 
 
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9.3 Pruebas de laboratorio 
9.3.1 Pruebas de tamizaje 
En la vigilancia de SLM se pueden utilizar pruebas de tamizaje no confirmatorias como la prueba 
de aglutinación rápida en placa, micro aglutinación o el ELISA (para la interpretación de los 
resultados es importante tomar en cuenta los programas vacúnales de las reproductoras). 
 
 
9.3.2 Prueba de confirmación 
Para el diagnóstico confirmatorio de Salmonella Enteritidis se utilizan el cultivo bacteriano siguiendo 
las normativas de USDA y las pruebas moleculares de PCR tiempo real. 
Para muestras de huevos se utiliza normativadel FDA. 
En el caso de Salmonella Gallinarum-Pullorum se trabaja con los procedimientos según OIE. 
Los aislamientos logrados con estas técnicas se les realiza tipificación bioquímica convencional y 
con el sistema automático de identificación (VITEK), así como la tipificación hasta serovariedad se 
hace de acuerdo al esquema del Institue Pasteur (2007) (2). 
 
9.3.3 Pruebas presuntivas 
Se podrán usar como pruebas presuntivas que ayuden en el diagnóstico de Salmonella Enteritidis 
el PCR isotérmico (ANSR). 
 
10. Actividades de control, evaluación y seguimiento 
 
10.1 Información y Notificación 
10.1.1 Reporte de denuncias de casos de enfermedades compatibles con SLM. 
Los funcionarios de las Direcciones Regionales reciben las denuncias de los casos sospechosos y 
coordinan con el Médico Veterinario Oficializado o en su defecto, envían a un funcionario oficial 
para su atención y análisis. 
 
10.1.2 Investigación y seguimiento de casos sospechosos, probables y positivos a SLM. 
En los establecimientos que cuentan con veterinario oficializado, este deberá comunicar y coordinar 
con el veterinario oficial de la Dirección Regional el seguimiento de los casos, así como las medidas 
sanitarias y de cuarentena impuestas. 
Cuando el Médico Veterinario Oficial atiende el caso, este deberá utilizar el formulario Hoja de Visita 
/ Orden Sanitaria para instaurar las medidas sanitarias y de cuarentena correspondientes. 
10.1.3 Toma y remisión de muestras al Laboratorio. 
Las muestras son enviadas al LANASEVE u a otro laboratorio autorizado, según corresponda, 
donde se le asignará un número de protocolo. 
 
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Para el envío de las muestras al LANASEVE, se debe completar el registro de recepción de 
muestras para diagnóstico en el sistema oficial de vigilancia epidemiológica vigente. 
 
10.1.4 Registro en el Sistema de Vigilancia Epidemiológica. 
El médico Veterinario Oficial que realizó la visita de atención y seguimiento de casos, debe 
incorporar los datos al sistema oficial de vigilancia epidemiológica vigente. 
 
10.2 Divulgación de la información 
10.2.1 Entrega de Resultados. 
El LANASEVE y demás laboratorios autorizados entregarán los resultados de la vigilancia activa de 
SLM al médico veterinario que remitió la muestra. Estos resultados deben estar disponibles en la 
granja para cuando se realicen las auditorías oficiales. 
 
Cuando haya un aislamiento bacteriano positivo a Salmonella spp, la EMV dará aviso a los 
funcionarios del LANASEVE, para que se realicen las pruebas de tipificación correspondientes a la 
Salmonella aislada y así, identificar si esta corresponde o no, a Salmonella Enteritidis, Salmonella 
Gallinarum o Salmonella Pullorum. 
De resultar un caso probable o caso positivo, el médico veterinario encargado de la Sección de 
Bacteriología Veterinaria del LANASEVE, comunica al Director del LANASEVE y esta a su vez lo 
comunica al Director General del SENASA, al jefe del Departamento de Epidemiología y al 
Coordinador del Programa Nacional de Salud Aviar, para que se instauren las medidas sanitarias 
pertinentes para aislar el brote. 
 
10.2.2 Informes de seguimiento de casos positivos. 
El Coordinador del PNSA y el jefe del Departamento de Epidemiología elaboran el informe de 
investigación y seguimiento de los casos probables y casos positivos de SLM. 
Es responsabilidad del representante del SENASA, quien funge como punto focal ante la OIE, la 
notificación internacional de los eventos relacionados a casos positivos de S. Gallinarum y S. 
Pullorum. 
 
10.3 Capacitación 
10.3.1 Capacitación al sector oficial. 
Anualmente el coordinador del Programa Nacional de Salud Aviar impartirá la capacitación del 
presente protocolo a los jefes de salud animal de las direcciones regionales del SENASA. 
10.3.2 Capacitación al sector productivo. 
El presente protocolo está contemplado dentro del programa de inducción y capacitación de los 
médicos veterinarios oficializados en el sector avícola. 
 
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10.4 Comunicación y educación. 
Dentro del programa de educación a los productores avícolas, el SENASA incluirá a la salmonella 
como una de las enfermedades que los productores deben conocer y reportar, así también educará 
a los productores en las medidas de bioseguridad y buenas prácticas avícolas para prevenir y 
controlar la enfermedad.