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Introduccion a los saltamontes de Colombia - Orthoptera:Caelifera, Acridomorpha, Tetrigoidea &
Tridactyloidea
Book · July 2015
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2 authors:
Oscar J. Cadena-Castañeda
Universidad Distrital Francisco José de Caldas
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Juan Manuel Cardona Granda
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4

Introducción a los Saltamontes de Colombia
(Orthoptera: Caelifera: Acrididea: Acridomorpha,
Tetrigoidea & Tridactyloidea)
Introduction to the Grasshoppers of Colombia
(Orthoptera: Caelifera: Acrididea: Acridomorpha
Tetrigoidea & Tridactyloidea)
(in Spanish, with bilingual Spanish-English keys)

OSCAR J. CADENA-CASTAÑEDA
JUAN MANUEL CARDONA-GRANDA

con la colaboración de la Dra.
ALBA BENTOS-PEREIRA (capítulo de PROSCOPIIDAE)

Introducción a los Saltamontes de Colombia (Orthoptera: Caelifera:
Acrididea: Acridomorpha, Tetrigoidea & Tridactyloidea)

Oscar J. Cadena-Castañeda
Juan Manuel Cardona Granda
Alba Bentos-Pereira (colaboración especial, capítulo de PROSCOPIIDAE)
Ilustraciones de Amedegnatomastax colombiensis y Cardonamastax colorata por Daniel Cardona

Prohibida la reproducción total o parcial de esta publicación sin permiso escrito de los autores.
ISBN 978-1-329-39264-9

Colombia, Julio 2015

DEDICACIÓN

A Malena, mi esposa, y a Luz María, mi madre; la primera por su apoyo,
la segunda por inculcarme el amor a la naturaleza
Juan M. Cardona Granda

A mi familia: mi esposa Carolina Cortés-Torres, mi hijo David Cadena Cortés, mi madre Flor Marina
Castañeda Paéz, mi padre José Orlando Cadena Osorio, mis hermanos Nicolas Cadena Castañeda,
Angie Catherine Laytón Castañeda, Kelly Dayana Laytón Castañeda, mi sobrina Sara Sofia Laytón
Castañeda y mi cuñado Wilson Euclides Alfonso. A todos ellos por ser parte fundamental en mi vida,
amarme, educarme, apoyarme y creer en mí, además de saber llevar mi desmesurado amor por los
ortópteros. Tambien dedico este libro al profesor Alexander García García y a Holger Braun, por
brindarme sus valiosos conocimientos, amor por la Entomología, amistad, confianza y apoyo durante
mi formación academica.
Oscar J. Cadena-Castañeda

Contenido
CONTENIDO ................................................................................................................................................... 5
INTRODUCCIÓN ............................................................................................................................................. 9
SOBRE LOS AUTORES ................................................................................................................................... 10
GENERALIDADES DE BIOLOGÍA ..................................................................................................................... 11
MORFOLOGÍA Y GLOSARIO .......................................................................................................................... 13
SISTEMÁTICA ............................................................................................................................................... 25
ESTUDIOS DE ACRIDOMORPHA, TRIDACTYLOIDEA Y TETRIGOIDEA EN COLOMBIA ........................................ 30
CLAVE PARA LAS SUPERFAMILIAS Y FAMILIAS DEL INFRAORDEN ACRIDIDEA - KEY TO FAMILIES AND
SUPERFAMILIES OF THE INFRAORDER ACRIDIDEA ......................................................................................... 34
CLAVE ARTIFICIAL PARA LOS GRUPOS MÁS FRECUENTEMENTE ENCONTRADOS DE SALTAMONTES DE
COLOMBIA - ARTIFICIAL KEY TO THE MOST FREQUENTLY ENCOUNTERED GRASSHOPPER GROUPS IN
COLOMBIA ................................................................................................................................................... 37
FAMILIA EUMASTACIDAE ........................................................................................................................................... 45
Subfamilia EUMASTACINAE ............................................................................................................................. 48
Subfamilia PAREPISACTINAE............................................................................................................................ 73
Subfamilia PSEUDOMASTACINAE ..................................................................................................................... 78
Subfamilia PARAMASTACINAE .......................................................................................................................... 80
Subfamilia Temnomastacinae ........................................................................................................................ 88
FAMILIA PROSCOPIIDAE ............................................................................................................................................95
FAMILIA OMMEXECHIDAE ....................................................................................................................................... 142
FAMILIA ROMALEIDAE ............................................................................................................................................ 144
Subfamilia BACTROPHORINAE ....................................................................................................................... 145
Tribu Taeniophorini ................................................................................................................................................... 147
Tribu Bactrophorini ................................................................................................................................................... 165
Tribu Ophthalmolampini ........................................................................................................................................... 170
Subtribu Helicopacrina ......................................................................................................................................... 171
Subtribu Lagoralampina ....................................................................................................................................... 172
Subtribu Nautiina ................................................................................................................................................. 178
Subtribu Ophthalmolampina ................................................................................................................................ 188
Subfamilia ROMALEINAE ............................................................................................................................... 196
Tribu Leguini .............................................................................................................................................................. 198
Tribu Chariacrini reinst. stat. ..................................................................................................................................... 200
Tribu Romaleini ......................................................................................................................................................... 203
Grupo Chromacrae .................................................................................................................................................... 204
Tribu Elaeochlorini .................................................................................................................................................... 208
Tribu Tropidacrini ...................................................................................................................................................... 214
Tribu Hisychiini .......................................................................................................................................................... 222
Tribu Phaeopariini ..................................................................................................................................................... 226
Tribu Procolpini ......................................................................................................................................................... 243
Géneros por clasificar ................................................................................................................................................ 253
FAMILIA ACRIDIDAE ............................................................................................................................................... 255
Subfamilia PAULINIINAE................................................................................................................................ 257
Subfamilia ACRIDINAE .................................................................................................................................. 258
6

Tribu Hyalopterygini .................................................................................................................................................. 258
Subfamilia COPIOCERINAE ............................................................................................................................ 259
Tribu Copiocerini ....................................................................................................................................................... 259
Subfamilia GOMPHOCERINAE ........................................................................................................................ 265
Tribu Amblytropidiini ................................................................................................................................................ 266
Tribu Compsacrini ..................................................................................................................................................... 269
Tribu Orphulellini ...................................................................................................................................................... 272
Tribu Scyllinini ........................................................................................................................................................... 275
Subfamilia OEDIPODINAE ............................................................................................................................. 279
Subfamilia LEPTYSMINAE .............................................................................................................................. 282
Tribu Leptysmini ........................................................................................................................................................ 282
Tribu Chloropseustini ................................................................................................................................................ 288
Tribu Tetrataeniini .................................................................................................................................................... 289
Subfamilia CYRTACANTHACRIDINAE .............................................................................................................. 299
Subfamilia MELANOPLINAE ........................................................................................................................... 302
Tribu Dichroplini........................................................................................................................................................ 304
Tribu Jivarini .............................................................................................................................................................. 312
Melanoplinae no clasificados .................................................................................................................................... 317
Subfamilia OMMATOLAMPIDINAE .................................................................................................................. 318
Tribu Abracrini .......................................................................................................................................................... 321
Tribu Aspidophymini ................................................................................................................................................. 332
Tribu Clematodinini ................................................................................................................................................... 338
Tribu Ommatolampidini ............................................................................................................................................ 340
Subtribu Ommatolampina ....................................................................................................................................344
Subtribu Oulenotacrina ........................................................................................................................................ 354
Subtribu Vilernina ................................................................................................................................................ 362
Grupo de los Nicarchae ........................................................................................................................................ 374
Tribu Pauracrini ......................................................................................................................................................... 381
Tribu Syntomacrini .................................................................................................................................................... 383
Subtribu Caloscirtina ............................................................................................................................................ 384
Subtribu Syntomacrina ......................................................................................................................................... 392
Subfamilia PROCTOLABINAE .......................................................................................................................... 395
Tribu Proctolabini ...................................................................................................................................................... 410
Subtribu Lithoscirtina ........................................................................................................................................... 410
Subtribu Proctolabina .......................................................................................................................................... 410
Subtribu Saltonacrina ........................................................................................................................................... 423
Subtribu Eucephalacrina ...................................................................................................................................... 425
Tribu Coscineutini ..................................................................................................................................................... 426
Subfamilia RHYTIDOCHROTINAE .................................................................................................................... 428
FAMILIA PYRGOMORPHIIDAE ................................................................................................................................... 450
SUPERFAMILIA TETRIGOIDEA ........................................................................................................................... 451
Subfamilia LOPHOTETTIGINAE ...................................................................................................................... 452
Subfamilia BATRACHIDEINAE ........................................................................................................................ 453
Subfamilia TETRIGINAE ................................................................................................................................. 461
Subfamilia METRODORINAE .......................................................................................................................... 464
Miriatrini n. trib. ........................................................................................................................................................ 466
Tribu Amorphopini Günther, 1939 n. stat. ................................................................................................................ 471
METRODORINAE no clasificados .................................................................................................................... 473
SUPERFAMILIA TRIDACTYLOIDEA ..................................................................................................................... 483
FAMILIA TRIDACTYLIDAE ......................................................................................................................................... 485
FAMILIA RIPIPTERYGIDAE ........................................................................................................................................ 495
7

ACTOS NOMENCLATURALES REALIZADOS EN ESTE LIBRO ........................................................................... 511
REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS – REFERENCES ............................................................................................ 515
ÍNDICE ALFABÉTICO – ALPHABETICAL INDEX ............................................................................................... 522
AGRADECIMIENTOS – ACKNOWLEDGEMENTS ............................................................................................ 533
LÁMINAS – PLATES ..................................................................................................................................... 534

Introducción
A primera vista, parece increíble que uno de los grupos más desconocidos entre nosotros sean los saltamontes,
sobre todo los saltamontes de antenas cortas o CAELIFERA, cuando suelen contarse entre los insectos más
comunes y algunos de ellos se pueden encontrar incluso en el césped de cualquier metrópoli. Pero como cualquiera
que haya tratado de identificar un saltamontes en el pasado sabe, si no se tienen los recursos adecuados (acceso a
museos entomológicos y bibliografía altamente especializada) se trata de una tarea bastante difícil, debido primero
que todo a la extrema biodiversidad de la fauna de Acridomorpha en el país, a la escasez de ejemplares de museo
identificados, al hecho que para distinguir a no pocos géneros y especies aparentemente idénticas en su apariencia
externa, hacen falta complicadas disecciones e interpretaciones de las estructuras de la genitalia, a la aparentemente
escasa bibliografía referente a la fauna colombiana de saltamontes (prácticamente no hay nada sobre ellos además
en el Sistema de Información Sobre Biodiversidad SiB) y al innegable poco interés o esfuerzo de muchos
entomólogos colombianos por cambiar este panorama (con honrosas excepciones) .
Siendo más justos, hay que admitir que hasta el advenimiento del internet y en especial maravillosas herramientas
como la World Wide Web y Google Scholar, se hacía bastante difícil buscar artículos de revistas científicas excepto
las más comunes y prestigiosas que se encuentran en el acervo de las bibliotecas de las universidades e institutos
de investigación, Corporaciones Autónomás Regionales, etc. En el caso de los saltamontes, no ayuda el hecho de
que muchos de los artículos relativos a ellos provienen de un puñado de taxónomos que publicaron hace más de
tres décadas en revistas con poca difusión de este lado del Atlántico, como Acrida, Revue Française d'Entomologie,
Bulletin de la Société Entomologique de France, Bulletin du Muséum National d'Histoire Naturelle, Annales de la
Société Entomologique de France, etc., siempre en francés, lo que impidió que fueran incluidas en muchas
bibliotecas del país, cuyos magros presupuestos se enfocaban siempre hacia revistas en inglés, que se consideraban
y siguen considerando prioritarias, pues el francés no es un idioma que muchos dominen (en nuestro medio). Más
aún hoy, cuando ya desaparecieron dos de los gigantes francófonos de la Acridología: Marius Descamps y
Christiane Amedegnato, resulta caro y complicado hacerse a sus obras, ya descontinuadas y no fácilmente
descargables de internet, si no se sabe dónde buscar. Hoy en día, esfuerzos encomiables como la Biodiversity
Heritage Library y el Orthoptera Species File ponen a disposición de todos literatura clásica como la de Morgan
Hebard que ya cumple casi el siglo, y a menudo la única fuente de información para ciertos grupos (como
TETRIGIDAE, Colpolopha,etc.) que Descamps y Amedegnato no alcanzaron a cubrir en sus oficiosas vidas.
Es por eso que para suplir aunque sea parcialmente esta lamentable omisión, hemos acometido la tarea de hacer
una breve reseña del estado de la taxonomía y conocimiento de la biología de los saltamontes del orden
CAELIFERA en Colombia, reconociendo siempre que lo hacemos subidos sobre los hombros de gigantes como
los franceses ya mencionados, además del uruguayo Carlos Carbonell, Alba Bentos-Pereira, María Marta Cigliano,
Ricardo Ronderos, y los norteamericanos Dan Otte, Charles Hugh Fraser Rowell y Howard Radclyffe Roberts,
entre otros, sin el trabajo de los cuales el desconocimiento de nuestra fauna de saltamontes sería aún más crítico.
Esperamos que este esfuerzo, que incluye un glosario ilustrado trilingüe (español, inglés, francés) sobre morfología
de estos insectos anime a muchos jóvenes investigadores a dedicar más tiempo a estos fascinantes insectos tan
desdeñados por los entomólogos colombianos hasta ahora; a ellos está orientada esta obra, por lo que se decidió
desde un principio redactarla en español; excepto el glosario mencionado, y las claves (bilingües español-inglés).
Se incluyen además referencias a fotografías de algunas de las especies, de las obras Saltamontes de Colombia 1
(Cardona 2012) y 2 (Cardona 2015). Otras especies saldrán en Saltamontes de Colombia 3 (posiblemente 2017).
OSCAR J. CADENA-CASTAÑEDA
JUAN MANUEL CARDONA GRANDA

Sobre los Autores
Oscar Javier Cadena Castañeda
ojccorthoptera@gmail.com
Licenciado en Biología de la Universidad Distrital Francisco José de Caldas,
Bogotá, Colombia. Ha publicado numerosos artículos sobre taxonomía, ecología
y filogenia de ortópteros neotropicales, no sólo de Caelifera, sino sobre todo de
Ensifera (catídidos y grillos). Ha revisado y determinado colecciones de ortópteros
en Colombia y colaborado con diversos expertos en Orthoptera del mundo. En la
actualidad se encuentra de investigador en México.

Juan Manuel Cardona Granda
juanmanuel.cardonagranda@gmail.com
Ingeniero forestal, MSc., de Medellín, Colombia. Se desempeña como consultor
forestal, labor en la cual ha trabajado por toda Colombia y varios otros países de
Latinoamérica y Asia en inventarios de flora, fauna y recursos forestales, así como
en el desarrollo de software orientado a ciencias forestales. Es autor de varios
libros y artículos en ciencias forestales, lingüística y fotografía, de los cuales el
más reciente para el cual ha recorrido buena parte del país, y del cual espera
publicar una trilogía, es la serie Saltamontes de Colombia, Guía Fotográfica (con
ediciones paralelas en español e inglés, ya dos volúmenes publicados); sus
fotografías han figurado en varias publicaciones como The world’s rarests birds,
así como en diversos websites dedicados a la conservación de la biodiversidad.

Generalidades de Biología
Los saltamontes, insectos del orden
ORTHOPTERA, hacen parte de lo que conoce la
gente como grillos, al menos en Colombia;
también hay quien les llama chapulines o chapules.
Se trata de insectos predominantemente saltadores,
muchos de los cuales pueden también volar. Su
característica general es el mayor desarrollo de las
patas traseras, fortalecidas para el salto. Aunque la
imagen popular de los saltamontes los pinta de
café o verde, en nuestro entorno neotropical se los
encuentra de todos los tonos, azules, rojos e
incluso con todos los colores añadiendo además
tonos irisados y metalizados. Antes de proseguir,
aclararemos que en este texto se tratará de los
“saltamontes de antenas cortas”, pertenecientes al
suborden CAELIFERA, pues los “saltamontes de
antenas largas”, que pueden tenerlas más largas
que el cuerpo entero en muchos casos, pertenecen
al suborden ENSIFERA, que contiene a los
verdaderos grillos (conocidos a veces como
“chicharras”, diferentes de las cigarras), de hábitos
sobre todo terrestres, y a lo que en otros países se
conoce como Esperanzas, que no son más que la
famosa y muy numerosa familia TETTIGONIDAE
(katydids o bush crickets en inglés).
Parece que fue Ander (1939) quien primero
dividió los Orthoptera en subordenes
CAELIFERA y ENSIFERA. CAELIFERA viene
aparentemente del latín caelare (pron. caelatura)
grabar en relieve, tallar, más el sufijo -fer (que
tiene o porta). Esto aparentemente se refiere al
integumento de muchos de este grupo que tienen
una textura en relieve. ENSIFERA se refiere al
oviscapto en forma de espada.
Además de las antenas, otra diferencia clave entre
ENSIFERA y CAELIFERA es que los primeros
tienen el tímpano en las patas delanteras, mientras
que los segundos tienen (si lo tienen) el tímpano
en el abdomen, detrás de las patas traseras; la
mayoría de los CAELIFERA son además diurnos,
con la posible excepción de algunos como
aparentemente Adrolampis colombiae y varios
PROCTOLABINAE, (Riede 1987) mientras que no
pocos ENSIFERA son nocturnos. Como todos los
ortópteros, los saltamontes pasan por una
metamorfosis “incompleta” (paurometábolos), lo
cual quiere decir que los juveniles son muy
parecidos en forma a los insectos adultos,
diferenciándose en el tamaño, color (a veces
dramáticamente como los EUMASTACIDAE, y por
ejemplo los géneros Chromacris spp. y Coscineuta
spp.) y el hecho de que las alas en los juveniles son
más cortas; añadiremos que no pocos carecen de
alas o las poseen atrofiadas y vestigiales incluso
como adultos (RHYTIDOCHROTINAE,
LAGAROLAMPAE, OMMATOLAMPAE, varios
EUMASTACIDAE).
Los saltamontes de CAELIFERA se presentan en
todos los tamaños, desde muchos diminutos
TETRIGIDAE de incluso menos de un centímetro de
longitud cuando adultos hasta gigantes
Tropidacris y Titanacris del tamaño de un pájaro.
Con tal variedad de tamaños, era de esperarse que
además su dieta y hábitats fueran también diversos,
aunque en general son herbívoros (a diferencia de
ciertos TETTIGONIIDAE que pueden ser
depredadores u omnívoros), y en épocas pasadas
los enjambres de langostas (Rhammatocerus
schistocercoides) causaban bastantes estragos,
sobre todo en el oriente del país. Muchos
saltamontes (como los muy comunes Orphulella
spp.) viven en los pastizales y rastrojos con
arbustos bajos, pero no pocos de ellos viven en el
sotobosque y en helechos (como muchos
EUMASTACIDAE que se encuentran
frecuentemente posados sobre helechos como
Thelypteris spp.), y un número no despreciable
vive en el dosel de los montes como muchos
coloridos BACTROPHORINAE, o se alimentan sobre
todo de las frondas de altas palmás como los
Copiocerini, e incluso viven entre la hojarasca del
suelo del bosque, como Colpolopha spp.. Algunos
son inclusive semiacúaticos (como ciertos
TETRIGIDAE y LEPTYSMINAE). Aunque no existen
12

muchos estudios al respecto, generalmente los
saltamontes no son venenosos (algunas personas
los consumen incluso, generalmente asados o
fritos, como los chapulines en Méjico),
limitándose varios de ellos a morder o a patear
cuando se sienten amenazados, o a escupir gotas
de un líquido marrón y maloliente al verse
atrapados. Una notable excepción la constituyen
los saltamontes de la familia EUMASTACIDAE y la
subfamilia RHYTIDOCHROTINAE, así como el
género Chromacris spp. (ROMALEIDAE) entre
otras, que con sus vivos colores aposemáticos y las
plantas venenosas de las que se alimentan
seguramente anuncian a posibles depredadores
que su sabor es horrible, o que en verdad son
venenosos.
Muchos saltamontes son semigregarios,
especialmente cuando jóvenes, y algunas especies,
como las langostas, pueden formar enjambres y ser
un verdadero perjuicio para la agricultura si sus
eternos enemigos, los pájaros, ranas y lagartijas,
no están presentes para controlar el desmesurado
crecimiento de sus poblaciones. Hay que aclarar
que no obstante la mayoría de ellos nunca alcanzan
el nivel de plaga, viviendo en pequeñas
comunidades en hábitats adecuados, a veces
bastante dispersasy muchas veces relacionados
con una o varias especies vegetales de las que se
alimentan, pues no pocos taxones son bastante
selectivos en su dieta, rehusándose a comer nada
más.
Morfología y Glosario
Además del inglés, la mayor parte de la literatura sobre Acrididea está en francés (Descamps 1970;1971,
Descamps y Amédégnato 1971a;b;1972a;b, Descamps 1973a;c, Amédégnato 1974, Descamps
1974;1976a;b;c;1978b;1979a;c;1980b;1982;1983a;b;c;1984, Descamps y Carbonell 1985, Amédégnato
y Poulain 1986;1987, Descamps y Amédégnato 1989a;b, Amédégnato y Poulain 1994), por lo que el
siguiente glosario se ha hecho trilingüe (español –inglés –francés), con definiciones en español.
La morfología de Acrididea es fácil de reconocer, siendo la figura típica del saltamontes la que viene a
la cabeza, e incluso en esta época en que la mayor parte de la población es urbana, se trata de una silueta
que hasta los niños conocen y distinguen de otros artrópodos, con las patas traseras notablemente más
desarrolladas que las otras. Como se menciona antes, los CAELIFERA se diferencian porque sus antenas
son (generalmente) más cortas que el cuerpo. A continuación se relacionan los caracteres morfológicos
más importantes en estos insectos.
ESPAÑOL INGLÉS FRANCÉS DEFINICIÓN
apodema apodeme apodème Invaginación de la cutícula donde se
anclan
los músculos
ancorae ancora (ancorae) ancora (ancorae) Par de apófisis prominentes en la parte
anterior del epifalo
apófisis process,
apophysis
processus,
apophyse
Hinchazón, protuberancia o
proyección de un órgano
áptero apterous,
wingless
aptère Desprovisto de alas
arbustícola bush-dwelling thamnophile Que vive en los arbustos
braquíptero brachypterous brachyptère De alas cortas
cerco(s) cercus, cerci cerques Apéndices pareados al final del
abdomen
cíngulo cingulum cingulum Compuesto de las apodemás, el
zigoma y las valvas del pene
clípeo (epistoma). clypeus clypéus Área de la cabeza situada entre la
sutura frontoclipeal y el labro. En
ausencia de sutura frontoclipeal,
corresponde al área atrás del labro y
entre los ojos. También se le llama
epistoma
disco del pronoto disc (disk) of
pronotum
pronotal disk
(disc)
disque du pronotum Parte central superior del pronoto, a
los lados de la quilla media, en vista
dorsal
tégmenes tegmina élytre(s) Según algunos autores, principalmente
franceses, se le daba este nombre al
primer par de alas, que en realidad son
los tégmenes.
en v v-shape chevrons externes
du fémurs
Emarginacion o invaginación de
manera obtusa en forma de "v"
ensiforme ensiform ensiforme Aplanado, ancho en la base y
ahusándose (adelgazando) hacia la
punta
epifalo epiphallus épiphalle Esclerito aislado y fuertemente
esclerotizado, situado en la parte
dorsal del órgano fálico.
15

ESPAÑOL INGLÉS FRANCÉS DEFINICIÓN
lofi, lophi lophus (lophi) lophus (lofi) Par de apófisis prominentes en la parte
posterior del epifalo
macróptero macropterous macroptère Individuos con las alas que sobrepasan
ampliamente el ápice del abdomen.
mejilla gena joue Placa lateral del rostro en la cabeza.
mesonoto mesonotum mesonotum Segundo terguito del tórax, el cual
origina el primer par de alas.
metanoto metanotum metanotum Tercer terguito del tórax, el cual
origina el Segundo par de alas.
micróptero micropterous microptère Tégmenes poco desarrollados, alas
membranosas ausentes.
ocelos medios median ocellus
(ocelli)
ocelle médian Ojo simple, el cual no forma
imagénes, ubicado generalmente en el
medio de las antenas y debajo del
fastigio.
opistognato opisthognathous

opisthognathe Dícese de cuando el eje cefálico forma
un ángulo agudo con el eje del cuerpo
(frente echada hacia adelante, boca
hacia abajo y atrás)
oviscapto ovipositor oviscapte Estructura por el cual las hembras
pueden poner los huevos (ovipositar),
usando las valvas para abrir madera o
suelo.
palio pallium
(abdomen)
pallium Membrana eréctil que cierra
parcialmente la cavidad abierta
formada por los muros de la lámina
sub-genital
paranotos (lóbulos
laterales del pronoto)
pronotum lateral
lobes
lobes latéraux du
pronotum
Placas laterales del pronoto, las cuales
se delimitan del disco pronotal por las
carinas laterales.
paraprocto paraproct paraproct Segmento ubicado bajo el epiprocto
que rodea el ano.
pronoto pronotum pronotum Primer terguito toracico el cual es bien
desarrollado y presenta gran utilidad
taxonomica.
prosterno prosternum prosternum La superficie ventral del protórax, del
cual se origina el primer par de patas.
proyección del
prosterno
prosternal
projection
saillie prosternale Túberculo o espolón entre las patas
centrales en algunos Caelifera
prozona prozone prozone Segmento anterior del pronoto.
quilla carínulae of hind
femora
carènes des fémurs
postérieurs
Evaginación de la cuticula, que
delimita algunas de las regiones del
cuerpo, también alberga órganos
mecanoreceptores.
quilla dorso-medial en
los fémures posteriores
dorso-median
carina in hind
femora
carène dorso
médiane des fémurs
postérieurs
Evaginación de la cuticula, unbicada
en la región superior de la cara externa
del fémur.
quilla frontal frontal costa côte frontale La cresta vertical en el frente de la
cabeza
quillas, carina carínulae, keel carinules Elevación, cresta de la cutícula
rami ramus (rami) ramus (rami) Partes laterales del cíngulo
subáptero subapterous subaptère Alas anteriores en forma de escama,
alas posteriores ausentes.
sulco sulcus sulcus Se le atribuye generalmente a la línea
media del disco pronotal.
16

ESPAÑOL INGLÉS FRANCÉS DEFINICIÓN
surco fastigial fastigial furrows sillons du
fastigium, sillon
fastigial
Invaginación de la cutícula sobre el
fastigio del vértex. Presente
principalmente en Pyrgomorphidae.
sutura frontoclipeal clypeal suture suture clypéale Sutura que delimita a la frente del
clípeo.
tégmen tegmina tegmina Primer par de alas, de textura
pergaminosa.
terguito, tergito
(urómero)
tergites tergites Placa dorsal del cuerpo, ubicada en el
tórax y abdomen.
terminalia terminalia terminalia Ultimos segmentos abdominales,
donde se ubican las estructuras
copulatorias externas como:
ovipositor, cercos y placa subgenital.
tímpano(s) tympanum,
tympani
tympan(s) Organo membranoso, que permite la
recepcion acustica. De estar presente
se ubica en el primer terguito
abdominal.
valva dorsal del
oviscapto
ovipositor dorsal
valve
valve supérieure de
l’oviscapte
Valva superior y más prominente del
ovipositor de las hembras.
valva ventral ventral valve valve inférieure de
l’oviscapte
Valva inferior y menos desarrollada
que la valva superior.
vértex o vértice vertex vertex La punta de la cabeza, entre los ojos
zigoma zygoma of
cingulum
zygoma du
cingulum
Parte dorsal transversa del cíngulo que
conecta las apodemás y al mismo
cíngulo con las valvas apicales del
pene.

Figura 1. Partes del saltamontes; vista lateral (Capinera et al. 2001)

Figura 2. Partes de un saltamontes; vista dorsal (Capinera et al. 2001)
Pronoto
Fémur trasero
Cabeza
Lóbulo lateral del
pronoto
Espina
Tibia
Tórax Abdomen
Tarso
Vertex
Frente
Surco pronotal
Tegmen
Ala
Abdomen
Cerco
Tarso
Tibia
Fémur
Quilla media
del pronoto
Quilla lateral del pronoto
Antena
Borde anterior
del tegmen
Punta del
Ala
25

Sistemática
INFRAORDEN ACRIDIDEA
GRUPO DE FAMILIAS ACRIDOMORPHA
A 2007 (Carbonell 2007), se contaban más de 470 especies de CAELIFERA, sin contar los Tetrigoidea
ni Tridactyloidea, en Colombia. Desde entonces, se han descubierto y continúan descubriéndose
numerosas especies e incluso nuevos géneros, como Zeromastax (EUMASTACIDAE) (Porras 2007) y
varios que se describen en la presente obra. A continuación se listan las familias y géneros reportados
para Colombia.
INFRAORDEN ACRIDIDEA
GRUPO DE FAMILIAS ACRIDOMORPHA
Super
familia
Familia SubfamiliaTribu Subtribu Género

EU
M
A
ST
A
C
O
ID
EA

EUMASTACIDAE
EUMASTACINAE Eumastacini
Amedegnatomastax
Caenomastax
Cardonamastax
Descampsmastax
Erythromastax
Eumastax
Hebardomastax
Homeomastax
Phryganomastax
Santanderia
Zeromastax
TEMNOMASTACINAE Eumastacopini
Maripa
Malenamastax
Pareumastacops
Pseudeumastacops
Tachiramastax
Eumastacops
PARAMASTACINAE Paramastax
PAREPISACTINAE Parepisactus
PSEUDOMASTACINAE Pseudomastax
PR
O
SC
O
PI
O
ID
EA

PROSCOPIIDAE PROSCOPINAE
Proscopiini
Albascopia
Apioscelis
Epigrypa
Prosarthria
Paraproscopia
Proscopia
Pseudoproscopia
Tetanorhynchini

Cephalocoema
Orienoscopia
Wattenwylscopia
por clasificar Corynorhynchus

Super
familia
Familia Subfamilia Tribu Subtribu Género
Helicopacrina Helicopacris

ACRIDIDAE
PAULINIINAE Paulinia
MELANOPLINAE
Dichroplini
Baeacris
Bogotacris
Chibchacris
Dichroplus
Jivarini Jivarus
Melanoplinae por clasificar Aidemona
PROCTOLABINAE
Coscineutini Coscineuta
Proctolabini
Proctolabina
Adelotettix
Azotocerus
Balachowskyacris
Dendrophilacris
Halticacris
Poecilocloeus
Witotacris
Zosperamerus
Lithoscirtina Leioscapheus
Saltonacrina
Eucephalacrina Eucephalacris
COPIOCERINAE

Copiocerini
Copiocerina
Bucephalacris
Copiocera
Copiotettix
Eumecacris
Hippacrina Hippacris
LEPTYSMINAE
Leptysmini
Carbonellacris
Cylindrotetix
Leptysma
Stenacris
Chloropseustini Chloropseustes
Tetrataeniini
Cornops
Nadiacris
Stenopola
Tetrataenia
Xenismacris
RHYTIDOCHROTINAE
Dryphilacris
Galidacris
Liparacris
Loepacris
Muyscacris
Oedalacris
Opaon
Opaonella
Parapiezops
Paropaon
Rhytidochrota
Trichopaon
OMMATOLAMPINAE
Clematodinini
Clematodina
Rehnuciera
Aspidophymini
Loepacris
Thamnacris
Ommatolampidi
ni
Ommatolampina
Dicaearchus
Ommatolampis
28

Super
familia
Familia Subfamilia Tribu Subtribu Género
Oulenotacrina
Anablysis
Eurybiacris
Vilernina
Agenacris
Aptoceras
Bryophilacris
Carbonelliella
Leticiacris
Locheuma
Lysacris
Machaeropeles
Pseudovilerna
Rhabdophilacris
Sciaphilacris
Sclerophilacris
Vilerna
Pauracrini
Pauracris

Syntomacrini
Syntomacrina
Pseudococama
Syntomacris
Caloscirtina
Calohippus
Eugenacris
Ortalacris
Ociotettix
Pseudanniceris
Stigacris
Abracrini
Abracris
Agesander
Arimacris
Eusitalces
Jodacris
Omalotettix
Psiloscirtus
Sitalces
CYRTACANTHA-
CRIDINAE
Schistocerca
ACRIDINAE Hyalopterygini
Eutryxalis
Metaleptea
Orphula
OEDIPODINAE
Arphiini Lactista
Hippiscini Heliastus
GOMPHOCERINAE
Amblytropidini

Amblytropidia
Peruviae

Peruvia
Apolobamba
Compsacrini
Compsacris
Silvitettix
Staurorhectus
Orphulellini
Orphulella
Orphulina
Scyllinini
Alota
Rhammatocerus

Super
familia
Familia Subfamilia Tribu
Subtrib
u
Género
TE
TR
IG
O
ID
EA
/T
ET
R
IG
ID
EA

TETRIGIDAE

BATRACHIDEINAE

Tettigidea
Scaria
Paurotarsus
Halmatettix
Batrachaidea
TETRIGINAE

Paratettix
Tetrix
Micronotus
LOPHOTETTIGINAE Lophotettix
METRODORINAE
Miriatrini Metopomystrum
Amorphopini
Amorphopus
Eomorphopus
No clasificados
Allotettix
Metrodora
Chiriquia
Scabrotettix
Otumba
Plesiotettix
Hancockiella

INFRAORDEN TRIDACTYLIDEA
Super
familia
Familia Subfamilia Tribu Subtribu Género
TRIDACTYLOIDEA
TRIDACTYLIDAE TRIDACTYLINAE
Ellipes
Neotridactylus
RIPIPTERYGIDAE RIPIPTERYGINAE
Ripipterix
Mirhipipterix

Clave artificial para los grupos más frecuentemente
encontrados de Saltamontes de Colombia - Artificial key to the most frequently
encountered grasshopper groups in Colombia

1 Saltamontes con las patas posteriores muy abiertas
(rodillas separadas), en típica pose “de avión” [1],
frecuentemente de muy vistosos colores azules,
verdes, amarillos, rojos. Con alas o sin ellas.
….….….….….….….….….….EUMASTACIDAE

[1] Eumástácido típico

1’ Saltamontes de cuerpo muy alargado (nótese en
particular la cabeza) semejante a un fásmido, o un
“insecto palo”, generalmente ápteros [2]
….….….….….….….….….….PROSCOPIIDAE

[2] Proscópido típico

2 Saltamontes rechonchos, sin el menor vestigio de
alas o con ellas muy atrofiadas; machos
frecuentemente de colores muy vivos azules,
verdes, rojos; hembras a veces regordetas, jorobadas
y de colores apagados;
2a Especies de zonas de montaña sobre todo. Cercos
cónicos en los machos.
….….…….…ACRIDIDAE:RHYTIDOCHROTINAE [3]

1 Grasshoppers with spread hind legs in the typical
“airplane” pose [1], usually of very showy metallic
blue, green, red or yellow colors. Winged or not.
….….….….….….….….….….EUMASTACIDAE

[1] Typical eumastacid

1’ Stick-like grasshoppers with very elongated
bodies, particurlarly the head, similar to phasmids
but usualy with no wings [2]
….….….….….….….….….….PROSCOPIIDAE

[2] Typical proscopiid

2 Squat-looking grasshoppers, with no signs of
wings o with very underdeveloped ones. Males in
blue, blackish, green or reddish hues; females often
even more robust and humped and drab-colored;
2a Mostly montane species. Male cerci conical.
….….….….…ACRIDIDAE:RHYTIDOCHROTINAE [3]

Etimología: Dedicado a mi estimado coautor y gran colaborador Juan Manuel Cardona Granda,
quien ha hecho posible en gran parte la escritura de este libro y descripción de nuevos taxones.
Especie tipo: Cardonamastax colorata n. sp.
Cardonamastax colorata Cadena-Castañeda n. sp.
(Lámina 4)
http://lsid.speciesfile.org/urn:lsid:Orthoptera.speciesfile.org:TaxonName:470300
Holotipo: ♂. Colombia, Antioquia, Caramanta-Valparaíso (Río Conde). 2000m. J. Cardona
leg. (MUD). Aparentemente observado también en la vereda Galicia de Bugalagrande, Valle del
Cauca.
Alotipo: ♀ mismos datos que el holotipo.
Paratipos: 4♂.mismos datos que el holotipo.
Descripción
Coloración en vida, cápsula cefálica azul, franja postocular azul obscuro presente. Disco
pronotal negro con dos franjas verdes, lóbulos laterales del pronoto y pleuras tóraxicas de color
naraja, terguitos abdominales con el mismo patrón de coloración que el disco pronotal, excepto
el octavo y noveno terguito que con los márgenes ventrales de los terguitos son azul claro.
Tegmina y alas opacas pero no completamente negras como en sucede en algunos Paramastax,
vena subcostal y medial de los tégmenes verde en gran parte de su recorrido. Cabeza. Antenas
negras con 14 segmentos, escapo y pedicelo de color azul blanquecino. Fastigio no pronunciado,
ojos completamente negros. Tórax. Pronoto con las regiones pronotales ligeramente
delimitadas sobre el disco pronotal, disco pronotal con un sulcus medial que atravieza desde la
región posterior a la anterio, borde posterior cóncavo. En vista lateral el pronoto con el margen
anterior del lóbulo lateral curvándose uniformemente hacia el margen inferior, porción distal
expandiéndose ligeramente hacia abajo, el margen que confluye entre el borde inferior y
posterior del lóbulo lateral redondeado. Patas. Fémur posterior provisto de espina en la base,
tibia posterior armada en el margen dorsal con 22 espinas exteranas de similar tamaño, margen
interno con 18 espinas, aumentando en tamaño desde la primera a la octava de allí en adelante
se mantiene una espina larga y una mediana alternadose en ubicación. Abdomen. Línea media
de los terguitos proyectada ligeramente hasta el sexto terguito. Placa subgenital en vista axial
redondeada con el ápice convexo, permitiendo ver el pallium emergiendo de la cavidad genital,
epiprocto triangular casi tan largo como ancho, ápice aguzado. Cercos cónicos, rectos y
sobrepasando levemente el epiprocto. Complejo fálico. Placa basal del epifalo ancha, no muy
esclerosada y bien emarginada sobre el margen posterior, proyectándose haciael margen
posterior en dos brazos tan largos como el ancho de la misma placa, margen anterior recto, lofi
esclerotizado en forma de garfio, curvándose rapidamente desde la base al ápice en vista lateral,
repliegue dorsal prominente, membranoso, cubriendo la base de las valvas ectofálicas, varillas
58

endofálicas en forma de “U”, alargadas y conectándose con las valvas ectofálicas, margen de
las varillas esclerotizado, invaginación ventro-medial incospicua, valvas ectofálicas ligeramente
esclerosadas y cónicas en vista lateral.
Hembra: con similar forma y coloración al macho, aunque algunas hembras tienen el disco
pronotal naranja y el borde lateral del disco pronotal con una franja negra. Cercos cónicos y
delgados. Valvas desarrolladas y serradas en el margen dorsal de las valvas superiores con diez
dentículos que aumentan en tamaño desde el más proximal al distal y en el margen ventral de
las valvas inferiores con once dentículos aumentando en tamaño desde el basal al apical, ultimo
dentículo de la valva inferior curvado fuertemente hacia abajo. Placa subgenital triangular,
elongada y con denticulaciones en los borde meso-apicales. Ángulo latero-posterior del tercero
y cuarto terguitos abdominales espiniformes y proyectándose hacia atrás.
Etimología: hace referencia a la coloración estridente de los individuos tanto machos como
hembras.
Medidas (mm.) ♂/♀: LT:14-15/16. P:2.3-2.5/3. T:9/12. FP:11/13. TP:12/14. Ov:3.
Comentarios: Ilustrado en Cardona (2015:26-27), la figura de abajo y las láminas 4-5.

Figura 18. Cardonamastax colorata, macho

371

Figura 128. Sciponacris trichilae (Descamps 1978a) .

Vilerna Stål, 1873
Tegumento más o menos rugoso, de coloración apagada, con la cara interna de los fémures roja.
Macrópteros a ligeramente braquípteros. Extremidad de los tégmenes sobrepasa las rodillas posteriores.
Perfil de la cara más o menos curvado hacia adentro. Antenas ensiformes con segmentos cada vez más
pequeños hacia la punta. Pronoto sin quillas laterales y con una quilla media fina, muy ligeramente
ondulada si se la ve de perfil. Proyección prosternal vertical, subcilíndrica a cónica. Quilla superior de
los fémures posteriores lisa. Cercos cortos en los machos, subtriangulares de perfil, con una gran apófisis
interna. Placa supra-anal en machos triangular, con gránulos negros.

Se trata de saltamontes de terrenos enmalezados, donde prefieren el borde del bosque o de arbustales,
frecuentemente a poca altura, cerca de la hojarasca o ramazón caída, con las cuales se camuflan muy
bien.

Clave para las especies de Vilerna reportadas para
Colombia
(Descamps y Amédégnato 1989a)

1. Borde posterior del disco del pronoto anguloso o con
un pequeño lóbulo medio protuberante hacia atrás;
escleritos superiores del edeago divergentes a la
extremidad [1] Extremidad de los tégmenes pasan las
rodillas posteriores; borde superior del último tergito
en machos con numerosas pequeñas protuberancias
negras con una en posición media [2] Edeago como en
[1,3]
........................ V. aeneooculata (Norte de Santander)

Key to species of Vilerna recorded for Colombia
(Descamps y Amédégnato 1989a)

1. Hind margin of the pronotal disc angled or with a
small mid-lobe protruding backwards; upper edeagus
sclerites diverge towards the tip [1] Tegmina tip go
beyond hind knees; fore margin of last abdominal
tergite in males with numerous small black
protuberances and one in the middle [2] Edeagus as in
[1,3]
......................V. aeneooculata (Norte de Santander)

372

[1] Extremidad del complejo fálico de V.
aeneooculata (vista dorsal, izq.), vista ventral del
edeago (der.)
[2]
[3]

1’. Borde posterior del disco del pronoto no o poco
anguloso; escleritos superiores del edeago no
divergentes en la extremidad.
........................................2
2. Extremidad de las valvas superiores del oviscapto
subbífidas [4]; espacio mesoesternal longitudinal en
las hembras; fastigio del vértice notablemente más
largo y redondeado [5] Cardona 2015:126-127)

........................................V. elongata (Llanos, La
Macarena, Vaupés)

[4]

[5]

2’. Extremidad de las válvulas del oviscapto simples;
espacio mesoesternal en las hembras transversal a
subcuadrado.
........................................3

[1] End of phallic complex of V. aeneooculata
(dorsal view to the left), ventral view of edeagus
(right)

[2]
[3]
1’. Hind margin of Pronotal disc not angled or little
so; upper edeagus sclerites do not diverge at the tip.
........................................2
2. Tip of the upper ovipositor valves subbifid [4];
mesosternal space longitudinal in females; fastigium
of vertex noticeably longer and rounded [5] Cardona
2015:126-127)
...........................V. elongata (Llanos, La Macarena,
Vaupés)

[4]

[5]

2’. Extreme of ovipositor valves simple; mesosternal
space in females transverse to subsquare.
........................................3
3. Pronotal disc almost smooth, full of small cupules
but with no wrinkles nor tubercles. Sheath covering the
extremity of the inferior sclerites of edeagus is short,
with hind margin curved inwards [6] Cardona
2015:130-131)

428

Subfamilia RHYTIDOCHROTINAE
Los RHYTIDOCHROTINAE conforman una subfamilia de Centro y Sur América, que tiene la mayor parte
de sus géneros en la costa Pacífica y la cordillera Occidental de Colombia y Ecuador (Amedegnato 1977).
Constituyen una subfamilia poco conocida de la acridofauna americana; se han descrito 20 géneros y 47
especies, algunas de las cuales únicamente se conocen por el macho o la hembra. En Colombia se han
registrado 11 géneros. Son saltamontes muy similares entre sí morfológicamente, casi todos ápteros (sólo
un género subáptero: Driphilacris, con características muy uniformes a nivel de genitalia, resultando ésta
ineficiente para distinguir las especies al interior de los ritidocrotinos (Descamps y Amédégnato 1972b).
Son acrídidos que viven casi exclusivamente sobre arbustos, observándoseles desde unos pocos
centímetros por encima del suelo hasta alrededor de 1.5 m de altura, aunque ocasionalmente también se
encuentran en árboles. Se ubican en bordes de ríos o caídas de agua, o en los bosques, preferentemente
en claros y áreas abiertas del interior o el borde (Varón 2001).
Es muy posible que algunos de los géneros pertenezcan a Aspidophymini, dada la gran semejanza con
RHYTIDOCHROTINAE. Loepacris, por ejemplo, antes en RHYTIDOCHROTINAE, se considera ahora que
pertenece a Aspidophymini. Driphilacris y Muyscacris tienen semejanzas sospechosas a Loepacris. Por
otro lado, los Hisychini son muy parecidos también externamente a RHYTIDOCHROTINAE, sobre todo a
Rhytidochrota, diferenciándose en la genitalia y en el hecho de que este es un género montano, mientras
que los Hysichiini son sobre todo de tierras bajas.
Clave para los géneros de RHYTIDOCHROTINAE
(Descamps y Amédégnato 1972b)

1 (10) Sin tímpano abdominal
………………………………………………………..
2
2 (7) Pronoto sin proyecciones laterales entre los
surcos 2 y 3. [1, 2]
………………………………………………………..
3
[1]

[2]

3 (4) Fastigio del vertex subhorizontal o ligeramente
en declive; placa supra-anal en machos sin gránulos
negros [1 , 3]
………………………………………..Hylopedetes

Key to the genera of RHYTIDOCHROTINAE
(Descamps y Amédégnato 1972b)

1 (10) No abdominal tympani
………………………………………………………..
2
2 (7) Pronotum with no lateral projections between the
2nd and 3rd furrows [1, 2]
………………………………………………………..
3
[1]

[2]

3 (4) Fastigium of vertex sub horizontal or slightly
declivitous; supra-anal plate in males with no black
granulations [1 , 3]
…………………………………………..Hylopedetes

453

Figura 160. Lophotettix unicristatus Hancock, 1909 (Hebard, 1923)

Subfamilia BATRACHIDEINAESaltamontes pigmeos de tamaño mediano a pequeño. Antenas con 16 a 22 segmentos, fémur anterior con
la superficie dorsal claramente sulcado. Pronoto proyectado más o menos por encima de la cabeza,
margen antero-dorsal en forma de gancho, cuspidado, redondeado u obtuso angulado.
La distribución de este grupo es pantropical, con mayor presencia en el neotrópico con 12 géneros, de
los cuales 5 se encuentran en el territorio colombiano,.Sin duda varios géneros con distribuciones
circundantes pueden hallarse también en el país.
Clave para los géneros de BATRACHIDEINAE
presentes en Colombia

1. Margen anterior del vértex carinado, con
disposición oblicua o transversal. Costa frontal
comprimida y levemente
emarginada……….......................…Tettigidea.

Margen anterior del vértex levemente o no carinado,
con pequeños lóbulos junto a los ojos. Costa frontal
emarginada…………………………………...……
………2

2. Costa frontal muy estrecha y levemente
sulcada, margen anterior del pronoto
pronunciado………..………..3
Clave para los géneros de
BATRACHIDEINAE presentes en Colombia

1. Anterior margin of vertex keeled, with a
slanted or transversal arrangement. Frontal
costa compressed and slightly emarginate
……….......................…Tettigidea.

Anterior margin of vertex not or only slightly
keeled, with a slanted or transversal
arrangement. Frontal costa compressed and
slightly emarginate

…………………………………...…………
…2

485

Familia TRIDACTYLIDAE

Figura 176. Ellipes minutus histrionicus (Günther 1994)

Figura 177. Neotridactylus apicialis (Günther 1994)

Clave para los géneros (Günther 1994)
1 Tarsos de las patas traseras bien
desarrollados, tan largos como la espuela de la
tibia de las patas posteriores [Figura 175];
Tibia de las patas traseras con dientes en el
borde dorsal, y usualmente con lámina tibial.
........................................2
1' Tarsos de las patas traseras rudimentarios, si
mucho con vestigios. Tibia de las patas
traseras sin dientes [Figura 178]
........................................Ellipes
2. Tibias posteriores con 4 láminas tibiales en
el borde exterior dorsal y con 3 en el interior.
Tarsos de las patas traseras agudos simples
[Figura 175] Esternitos del pecho con una
protrusión en forma de aguja [1]; noveno
esternito abdominal en hembras sin una sutura
longitudinal
Key to Genera (Günther 1994)
1 Hind leg tarsi well developed, as long as the spur
of
hind tibia [Figura 175]; this with teeth in the dorsal
margin and usually with tibial plates
........................................2
1' Hind tarsi rudimentary or vestigial. Hind tibia
with no teeth [Figura 178]
........................................Ellipes
2. Hind tibia with four plates in the exterior dorsal
margin and 3 in inner margin. Hind tarsi pointy
and simple [Figura 175] Chest sternites with a
needle-shaped protrusión. [1]; ninth abdominal
sternite in females with no lengthwise seam
........................................Neotridactylus

511

Actos nomenclaturales realizados en este libro
Nuevas tribus
Miriatrini n. trib.

Nuevos géneros
Amedegnatomastax n. gen.
Cardonamastax n. gen.
Descampsmastax n. gen.
Malenamastax n. gen.
Wattenwylscopia n. gen.
Albascopia n. gen.
Pouplainiella n. gen.
Taeniophorella n. gen.
Hancockiella n. gen.

Nuevas especies
- EUMASTACIDAE
Amedegnatomastax colombiensis n. sp.
Amedegnatomastax rubris n. sp.
Cardonamastax colorata n. sp.
Eumastax oliveri n. sp.
Homeomastax capurganensis n. sp.
Santanderia rubris n. sp.
Santanderia caeruleus n. sp.
Parepisactus norcentralis n. sp.
Parepisactus chingazaensis n. sp.
Paramastax burri n. sp.
Paramastax nordestensis n. sp.
Malenamastax coperensis n. sp.
Malenamastax tobiensis n. sp.
Malenamastax orientalis n. sp.

- PROSCOPIIDAE
Wattenwylscopia longiepiproctus n. sp.
Orienscopia incognita n.sp.
Apioscelis davidcastañedai n. sp.
Prosarthria zambranae n.sp.
Prosarthria jagoi n. sp.
Prosarthria annalianae n. sp.
Prosarthria tayronae n. sp.
Prosarthria parvula n. sp.
Prosarthria guaviarensis n. sp.
Prosarthria alexanderi n. sp.
Prosarthria chucuriensis n. sp.
Prosarthria marlenae n. sp.
Prosarthria llanerensis n. sp.
512

Pseudoproscopia afroensis n. sp.
Pseudoproscopia caldensis n. sp.

- ROMALEIDAE
Pouplainiella nigra n. sp.
Taeniophorella andina n. sp.
Andeomezentia aberrans n. sp.
Nautia santanderensis n. sp.
Pseudonautia boyacensis n. sp.
Caenolampis magdalenensis n. sp.
Ampiacris rowelli n. sp.
Graciliparia andina n. sp.

- ACRIDIDAE
Peruvia jagoi n. sp.
Silvitettix ottei n. sp.
Alota carbonelli n. sp.
Arimacris matiottiae n. sp.
Loepacris septentrionalis n. sp.
Poecilocloeus portilloi n. sp.
Balachowskyacris songi n. sp.
Oedalacris chocoensis n. sp.
Parapiezops robertsi n. sp.
Trichopaon hyacinthus n. sp.

- TETRIGIDAE
Tettigidea skejoi n. sp.
Tettigidea parradae n. sp.
Metopomystrum brevifastigiata n. sp.
Metopomystrum lilianae n. sp.
Metopomystrum amazoniensis n. sp.
Plesiotettix katerinae n. sp.
Hancockiella armata n. sp.

Nuevas combinaciones
Descampsmastax restrepoi (Descamps, 1971) n. comb. : antes Eumastax restrepoi
Albascopia columbica Brunner von Wattenwyl, 1890 n. comb. : antes Apioscelis
columbica
Taeniophorella pulchripes (Stål, 1878) n. comb. : antes Taeniophora pulchripes
Loepacris diaphana (Amedegnato & Poulain, 1998) n. comb. : antes Hyalinacris
diaphana
Loepacris merenbergensis (Varón, 2001) n. comb.: antes Hyalinacris merembergensis
Loepacris tolima (Amedegnato & Descamps, 1979) n. comb. : antes Alemacris tolima
Loepacris otonga (Amedegnato & Poulain, 1998) n. comb. : antes Hyalinacris otonga
Chiriquia turgida (Bolívar, 1887) n. comb. : antes Phelene turgida

515

Referencias Bibliográficas – References
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533

Agradecimientos – Acknowledgements
Les debemos bastante a las siguientes personas por su colaboración en cuanto a colecta de especímenes,
informaciones sobre localidades de especímenes, fotos, dibujos, literatura y consejos para llevar adelante
este aporte al conocimiento de los Caelifera de Colombia.

Carlos Carbonell (Universidad de la Republica, Uruguay)
Alba Bentos Pereira (Universidad de la Republica, Uruguay)
Hugh Rowell (Zoologisches Institut der Universitaet Basel, Suiza)
Holger Braun (Universidad de La Plata, Argentina)
Alexander García (Universidad Distrital Francisco José de Caldas, Colombia)
Hojun Song (Texas A&M University, E.E.U.U.)
Simon Poulain (Muséum national d’Histoire naturelle, Paris)
Daniel Otte (Academy of Natural Sciences of Philadelphia, E.E.U.U)
John Capinera (University of Florida, E.E.U.U)
David Eades (Illinois Natural History Survey, E.E.U.U)
Andrej V. Gorochov (Zoological Institute, Russian Academy of Sciences, Rusia)
Jason Weintraub (Academy of Natural Sciences of Philadelphia, E.E.U.U)
Katia Mattioti (Pontifícia Universidade Católica do Rio Grande do Sul, Brasil)
Josip Skejo (Institute for research and development of sustainable ecosystems, Croacia)
Daniela Santos (Universidad Federal de Viçosa, Brasil)
Renan Olivier (Universidade Federal de Mato Grosso do Sul, Brasil)
Mercedes París (Museo Nacional de Ciencias Naturales, España)
Filipo Buzetti (Università degli Studi di Padova)
Arthur Anker (Museu de Zoologia da USP, Brasil)
Sam Heads (Illinois Natural History Survey, E.E.U.U)
Andreas Kay (Ecuador Megadiverso, Ecuador)
Luis Fernando Serna Agudelo (Alejandría al Natural, Alejandría, Antioquia)
Erika Valentina Vergara (Universidad Nacional de Colombia, Colombia)
Fernando Fernandez (Instituto de Ciencias Naturales, Colombia)
Carlos Sarmiento (Instituto de Ciencias Naturales, Colombia)
Sebastián Ramírez (Universidad Nacional de Colombia, Sede Medellín, Colombia)
Julián Arias (Universidad Nacional de Colombia, Sede Medellín, Colombia)
Esteban Gallo Valencia (Forestry Consulting Group SAS)
Paulo Hernández (Forestry Consulting Group SAS)
John Alveiro Quiroz (Museo Entomológico Francisco Luis Gallego)
Esteban Alzate (Universidad CES – Museo Herpetológico Universidad de Antioquia)
Giovanni Alberto Chaves-Portilla (Fundación Ecodiversidad Colombia)
Wilmer Quiceno (Pulsatrix Producciones)
Diego Calderón (Colombia Birding)

También a todas aquellas personas que por alguna razón se nos pasan por mencionar pero de una u otra
forma nos colaboraron para lograr esta meta académica. El primer autor le agradece a Carolina Cortés-
Torres por su compañía y su apoyo incondicional haciendo que todo esto tenga gran valor, al Grupo de
Investigación en ártropodos “Kumangui” y a la Universidad Distrital Francisco José de Caldas, alma
mater y guía académica.

534

Láminas – Plates
1. Amedegnatomastax colombiensis
2. Amedegnatomastax rubris
3. Caenomastax insignis
4. Cardonamastax colorata
5. Eumastax luteiventris
6. Eumastax oliveri
7. Hebardomastax atopa
8. Homeomastax capurganensis
9. Santanderia lita
10. Santanderia rubris
11. Santanderia caerulus
12. Parepisactus norcentralis
13. Parepisactus chingazaensis
14. Pseudomastax personata
15. Paramastax aprilei
16. Paramastax burri
17. Paramastax lingulata
18. Paramastax nordestensis
19. Paramastax poecilosoma, P. duquei, P.
rosenbergi
20. Malenamastax orientalis, M. coperensis
M. tobiensis
21. Eumastacops caligo
22. Amedegnatomastax colombiensis &
Cardonamastax colorata (ilustraciones)
23. Wattenwylscopia longiepiproctus
24. Orienscopia incognita
25. Albascopia columbica
26. Apioscelis davidcastañedai & A.
compacta
27. Cabezas y terminalias de Prosarthria
(P.brevia, P. parvula, P. tayronae)
28. Genitalia de Prosarthria (P. annaliae, P.
brevia, P. parvua P. tayronae, P.
teretirostris, P. zambranae, P. caucencis,
P. jagoi.
29. Espermatecas de Prosarthria (P.
annalianae, P. caucencis, P. jagoi, P.
tayronae, P. teretirostris)
30. Cabezas de Prosarthria, machos (P.
caucensis, P. zambranae, P. jagoi, P.
annaliae, P. tayronae, P. alexanderi, P.
chucuriensis, P. marlenae, P.
llanerensis)
31. Prosarthria, machos (P. caucensis, P.
zambranae, P. jagoi, P. annaliae, P.
tayronae, P. alexanderi, P. chucuriensis,
P. marlenae, P. llanerensis)
32. Genitalia de Prosarthria, machos (P.
caucensis, P. zambranae, P. jagoi, P.
annaliae, P. tayronae, P. alexanderi, P.
chucuriensis, P. marlenae, P.
llanerensis)
33. Cabezas de Prosarthria, hembras (P.
zambranae, P. jagoi, P. annaliae, P.
guaviarensis, P. alexanderi, P.
chucuriensis, P. marlenae)
34. Terminalia de Prosarthria, hembras (P.
zambranae, P. jagoi, P. annaliae, P.
guaviarensis, P. alexanderi, P.
chucuriensis, P. marlenae)
35. Pseudoproscopia afroensis
36. Pseudoproscopia caldensis
37. Megacheilacris megacephala
38. Pouplainiella nigra
39. Taeniophorella pulchripes
40. Taeniophorella andina
41. Andeomezentia aberrans
42. Nautia santanderensis
43. Pseudonautia boyacensis
44. Caenolampis magdalenensis
45. Ampiacris roweli
46. Graciliparia andina
47. Colpolopha origami
48. Peruvia nigromarginata, P. jagoi
49. Silvitettix ottei & S. malasmonotus
50. Alota carbonelli
51. Arimacris mattiottiae
52. Eusitalces apolinari
53. Liebermannacris dorsualis
54. Loepacris septentrionalis
55. Dicaearchus cribellatus
56. Carbonelliella sciponacrisformis
57. Balachowskyacris songi
58. Poecilocloeus portilloi
59. Oedalacris chocoensis
60. Parapiezops robertsi
61. Trichopaon hyacinthus
62. Tetigidea skejoi, macho
63. Tettigidea skejoi, hembra
64. Tettigidea parradoi, macho
65. Cabeza y pronoto de Metopomystrum
brevifastigiata, M. lilianae, M.
amazoniensis
66. Habitus y rostro de Metopomystrum
brevifastigiata, M. lilianae, M.
amazoniensis67. Metrodora undulata
68. Plesiotettix katerinae
69. Hancockiella armata

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