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manuscrito aceptado Desinfección Ambiental automática con peróxido de hidrógeno y de iones de plata versus Desinfección Ambiental manual con hipoclorito de sodio; Un multicéntrico aleatorizado Antes y después del juicio D. Mosci, GW Marmo, L. Sciolino, C. Zaccaro, R. Antonellini, L. Accogli, T. Lazzarotto, M. Mongardi, MP Landini PII: S0195-6701 (17) 30331-6 DOI: 10.1016 / j.jhin.2017.06.010 Referencia: YJHIN 5133 Aparecer en: Journal of Hospital Infection Fecha de recepción 3 de marzo 2017 Fecha aceptado: 6 Junio 2017 Por favor citar este artículo como: Mosci D, Marmo GW, Sciolino L, Zaccaro C, Antonellini R, Accogli L, Lazzarotto T, Mongardi M, Landini MP, automático de desinfección ambiental con peróxido de hidrógeno y de iones de plata versus Desinfección Ambiental manual con hipoclorito de sodio; Un multicéntrico aleatorizado Antes y después del juicio, Journal of Hospital Infection ( 2017), doi: 10.1016 / con hipoclorito de sodio; Un multicéntrico aleatorizado Antes y después del juicio, Journal of Hospital Infection ( 2017), doi: 10.1016 / con hipoclorito de sodio; Un multicéntrico aleatorizado Antes y después del juicio, Journal of Hospital Infection ( 2017), doi: 10.1016 / j.jhin.2017.06.010 . Este es un archivo PDF de un manuscrito inédito que ha sido aceptado para su publicación. Como un servicio a nuestros clientes estamos proporcionando esta primera versión del manuscrito. El manuscrito será sometido a la corrección de estilo, composición y revisión de la prueba resultante antes de que se publique en su forma final. Tenga en cuenta que durante los errores en el proceso de producción se pueden descubrir lo que podría afectar el contenido, y todos los avisos legales que se aplican a la revista pertenecen. MANUSCRITO ACEPTADO 1 DESINFECCIÓN AMBIENTAL AUTOMÁTICO con peróxido de hidrógeno y el ion de plata versus DESINFECCIÓN AMBIENTAL MANUAL con hipoclorito de sodio; Un multicéntrico y aleatorizado ANTES Y DESPUÉS DE LA PRUEBA Autores: D. Mosci *, GW Marmo *, L. Sciolino *, C. Zaccaro °, R. Antonellini °, L. Accogli °, T. Lazzarotto ^, M. Mongardi *, MP Landini ^^ * ANIPIO - Sociedad Científica de enfermeras de control de infecciones - Italia ° ARPA-E-ER - Agencia de Prevención, Medio Ambiente y Energía de la Región Emilia-Romagna - Italia ^ Microbiología Ward, Hospital Universitario Sant'Orsola-Malpighi - Bolonia, Italia ^^ Instituto Científico Ortopédico Rizzoli - Bolonia, Italia Objetivos: 1. Comparar la eficacia de un sistema de desinfección automatizado con peróxido de hidrógeno <8% y el ion de plata versus un método manual con solución de hipoclorito de sodio al 0,5% para evaluar la reducción de la contaminación microbiana y mesófila Clostridium método manual con solución de hipoclorito de sodio al 0,5% para evaluar la reducción de la contaminación microbiana y mesófila Clostridium difficile ( CD) presencia; 2. Evaluar el impacto en la organización de estas dos tecnologías en términos de tiempo necesarios para el proceso.difficile ( CD) presencia; 2. Evaluar el impacto en la organización de estas dos tecnologías en términos de tiempo necesarios para el proceso. Métodos: En un ensayo multicéntrico aleatorizado realizado en cuatro centros de salud públicos y privados de la región EmiliaRomagna, en diferentes salas, incluyendo la medicina, ortopedia, cuidado a largo plazo, la recuperación y rehabilitación funcional, que antes estaban ocupadas por pacientes con Clostridium difficile Infección (CDI). Cuando los pacientes fueron dados de alta sus habitaciones donde asignados al azar a 1 de por pacientes con Clostridium difficile Infección (CDI). Cuando los pacientes fueron dados de alta sus habitaciones donde asignados al azar a 1 de por pacientes con Clostridium difficile Infección (CDI). Cuando los pacientes fueron dados de alta sus habitaciones donde asignados al azar a 1 de 2 Desintoxicaciones brazos. Las superficies donde muestreados utilizando hisopos, antes y después de la desinfección. muestras de frotis se cultivaron para la detección cuantitativa de la contaminación microbiana y mesófila detección cualitativa de CD. Hallazgos: antes de la desinfección, el 13% de las superficies descontaminadas con peróxido y plata iones de hidrógeno y superficies 20% descontaminados con hipoclorito de sodio mostraron presencia de esporas de CD. Después de la desinfección, las muestras que contienen CDs fueron del 0% (p <0,001) en el grupo descontaminado con iones de peróxido de hidrógeno y plata, mientras que 3% (p <0,001) en el grupo descontaminado con hipoclorito de sodio. La diferencia no fue estadísticamente significativa (p = 0,267). La diferencia en la reducción de la contaminación microbiana mesófila no fue estadísticamente significativa (p = 0,193). Conclusiones: Las diferencias entre los grupos no fueron estadísticamente significativas; sin embargo, la desinfección con iones de peróxido de hidrógeno y de la plata es preferible debido a la reducida dependencia de los operadores. Palabras clave: desinfección,, Clostridium difficile, peróxido de hidrógeno, hipoclorito de sodio del medio ambiente, M A N U S C R I T O A C E P T A D O MANUSCRITO ACEPTADO 2 INTRODUCCIÓN infecciones nosocomiales son infecciones adquiridas durante la hospitalización incluyendo los que surgen en los primeros días después de la descarga; y Clostridium difficile ( CD) es particularmente importante (Dubberke ER, descarga; y Clostridium difficile ( CD) es particularmente importante (Dubberke ER, descarga; y Clostridium difficile ( CD) es particularmente importante (Dubberke ER, 2014). CD tiene características epidemiológicas comparables a otros microorganismos gram positivas resistentes a los antibióticos. Se propaga a partir de pacientes con el medio ambiente y puede sobrevivir hasta cinco meses en forma de esporas (Kramer et al, 2006). Además, se transmite a otros pacientes a través de las manos de los trabajadores de la salud y a través de superficies inanimadas (Curti, 2013; Falagas et al, 2011;. Donskey, 2013). Varios estudios han demostrado que la limpieza al final de la hospitalización de habitaciones de los pacientes infectados puede reducir el riesgo de adquirir patógenos de las superficies contaminadas (Donskey, 2013). Las directrices internacionales exhortan el uso de agentes esporicidas activos en CD, preferiblemente derivados de cloro con una concentración no inferior al 1,000 ppm (SIMPIOS, 2011). Los procedimientos de limpieza para desinfectantes de contacto a menudo no alcanzan los resultados esperados. La complejidad de las superficies ambientales en los centros de salud ha aumentado y la limpieza es muy dependiente del operador. En la última década, las nuevas tecnologías para la desinfección automatizado se han desarrollado que tienen beneficios de eficacia, fiabilidad y seguridad, pero con algunos aspectos negativos. Por ejemplo, estas tecnologías pueden solamente ser usados solamente en habitaciones desocupadas sin gente. (Curti, 2013). Una de estas tecnologías es el uso de peróxido de hidrógeno atomizado por el equipo específico, con compuestos de plata asociados (Falagas et al., 2011); especialmente después de la reciente aparición de las nanotecnologías, que han permitido la producción de agentes desinfectantes compuestos (Tolaymat et al., 2010). Este estudio pretende comparar la eficacia de un sistema de desinfección habitación automatizado con solución de peróxido de hidrógeno y vapor de iones de plata a la práctica convencional de una solución desinfectante a base de cloro. Evaluación del estudio propuesto se llevó a cabo para calcular la reducción de la CD y la contaminación bacteriana total. M A N U S C R I T O A C E P T A D OMANUSCRITO ACEPTADO 3 MÉTODOS Un ensayo multicéntrico aleatorizado se llevó a cabo en cuatro centros de salud públicos y privados de la región EmiliaRomagna identificados como A, B, C, D (para mantener el anonimato). En toda la limpieza instalaciones de salud pública se subcontrata a una empresa de servicios, mientras que los centros de salud privados utiliza los servicios de limpieza de la casa. Todo el personal empleado fue consciente del estudio que se llevó a cabo. Entre diciembre de 2014 y septiembre de 2015, se incluyeron 28 habitaciones del hospital (medicina, ortopedia, cuidado a largo plazo, recuperación y rehabilitación funcional). Estas fueron todas las habitaciones individuales con dimensiones similares y tiempos de descarga. La edad media de los pacientes que ocuparon las 28 habitaciones fue de 84 años (rango 62-99) y el 85% no eran independientes durante la hospitalización. Para ser incluidos en el estudio las habitaciones tenía que tener: • pacientes infectados con CD alojados durante al menos 48 horas • estar disponible para la descontaminación en el momento de la descarga CD pacientes infectados fueron definidos como aquellos con diarrea o megacolon tóxico, y con una prueba de laboratorio positiva para la toxina A y / o B o una cepa CD toxogenic, así como los pacientes que en el curso de la endoscopia, cirugía o examen histopatológico, tenía pseudomembranosa colitis. Al momento del alta de los pacientes con CDI, la disponibilidad de la habitación se determinó a través de un sistema de correo electrónico. Después de ser incluidos en el estudio, las habitaciones fueron asignados al azar a la desinfección con peróxido de hidrógeno y de iones de plata 99 ms sistema o para la desinfección terminal con una solución de desinfectante con hipoclorito de sodio al 0,5%. La lista de aleatorización fue generada por www.randomization.com, y 14 salas fueron asignados a cada grupo de desinfección. aleatorización fue generada por www.randomization.com, y 14 salas fueron asignados a cada grupo de desinfección. aleatorización fue generada por www.randomization.com, y 14 salas fueron asignados a cada grupo de desinfección. Antes de la desinfección, las habitaciones se sometieron a un procedimiento de limpieza estándar de haya que eliminar la suciedad visible (vaciar la basura, barrer electrostática, etc.) y una fase de limpieza (muebles, paredes, piso y baño). Después de esto, una fase de desinfección tuvo lugar. Para las habitaciones asignadas a la descontaminación con iones de peróxido de hidrógeno y de la plata, la solución 99S se atomiza en micro partículas de submicrons, estableciendo el 99M modulador a una velocidad de 1,5 ml / m 3, con el fin de distribuir uniformemente la solución micro partículas de submicrons, estableciendo el 99M modulador a una velocidad de 1,5 ml / m 3, con el fin de distribuir uniformemente la solución micro partículas de submicrons, estableciendo el 99M modulador a una velocidad de 1,5 ml / m 3, con el fin de distribuir uniformemente la solución en el medio ambiente. Después de esperar durante el período de descarga (20 minutos) y la disminución de peróxido de hidrógeno (35 minutos), la habitación estaba listo para ser utilizado. En las habitaciones asignadas a la descontaminación de hipoclorito de sodio, el personal de limpieza se procedió a la preparación manual de la solución y para la desinfección de muebles y superficies utilizando paños desechables, y mopas de suelo. Colección de bacterias viables se logró utilizando una técnica de hisopado específica. El uso de hisopos humedecidos es conveniente para el muestreo de grandes superficies, no absorbentes, irregulares o empotradas no accesibles a ponerse en contacto con los dispositivos. Ellos fueron utilizados para determinar la presencia y / o el número de microbios viables en las superficies; con el fin de estimar el nivel de contaminación o la eficacia de la limpieza y desinfección de protocolos. (13,14) Se recogieron muestras antes y después de la desinfección. El protocolo de muestreo se definió según UNI EN ISO 14698-1: 2004 Anexo C. (13) M A N U S C R I T O A C E P T A D O MANUSCRITO ACEPTADO 4 En cada habitación, se tomaron muestras de las siguientes áreas superficiales ambientales: 100 cm 2 áreas de superficie de fricción de mesa de noche y lavabo En cada habitación, se tomaron muestras de las siguientes áreas superficiales ambientales: 100 cm 2 áreas de superficie de fricción de mesa de noche y lavabo En cada habitación, se tomaron muestras de las siguientes áreas superficiales ambientales: 100 cm 2 áreas de superficie de fricción de mesa de noche y lavabo (identificado como superficies planas), manija o de entrada de los dispositivos de cajón mesita de noche, la luz y de llamadas de enfermería, soporte de goteo, los pies tubulares cama, manija de la puerta interior de la habitación, la manija puerta del baño interior (identificado como superficies irregulares). Los lugares de muestreo se definen de acuerdo con la lista de verificación CDC para la evaluación de la contaminación ambiental (Guh A, 2010). Tabla I, se muestran los números de muestras recogidas para cada habitación. Tabla I Evaluación de la contaminación de la superficie microbiana de las superficies se realizó utilizando los hisopos estériles. Cada intercambio se sumergió en un tubo que contiene 10 ml de solución de Ringer (ThermoFischer - OXOID, código BR0048) formulado con tiosulfato de sodio como agente de neutralización. Para el muestreo, la punta de la permuta se presionó contra la pared del tubo para eliminar el exceso de solución, y luego se coloca en la superficie de muestreo. Para superficies planas, la punta de la permuta se sembró sobre un área delimitada por una plantilla esterilizado (longitud 10 cm, anchura de 2 cm), mientras que girando el hisopo entre el pulgar y el dedo índice; en dos direcciones perpendiculares entre sí. Este paso se repitió 5 veces en el mismo objeto de lograr un 100 cm 2 zona. objetos irregulares fueron muestreados a lo largo de toda la superficie.en el mismo objeto de lograr un 100 cm 2 zona. objetos irregulares fueron muestreados a lo largo de toda la superficie.en el mismo objeto de lograr un 100 cm 2 zona. objetos irregulares fueron muestreados a lo largo de toda la superficie. Después del muestreo, las muestras de frotis fueron almacenadas a 4-8 ° C y se entregan al laboratorio dentro de las 24 horas. Las muestras recogidas se procesan para detectar las colonias mesófilas microbianas (Bacterial recuento total a 36 ° C), y la presencia de CD. Los métodos microbiológicos utilizados se describen a continuación. recuento total de bacterias por el método de inclusión 1 ml de cada muestra de hisopo que contiene 10 ml de fluido, se colocó en la parte inferior de la placa de Petri y 15-20 ml de extracto de levadura Agar añadió - YEA - (Biolife Italiana). Esto se mezcló por rotación suave y después la placa se incubó a 36 ° C ± 1 ° C durante 44 horas ± 4 horas. Se contaron las colonias sobre toda la placa de agar. Los resultados se expresaron como UFC / 100 cm 2 para las áreas de superficie plana y como UFC / área de las colonias sobre toda la placa de agar. Los resultados se expresaron como UFC / 100 cm 2 para las áreas de superficie plana y como UFC / área de las colonias sobre toda la placa de agar. Los resultados se expresaron como UFC / 100 cm 2 para las áreas de superficie plana y como UFC / área de superficie total de las superficies irregulares. La detección de Clostridium Difficile El método consistía en pasos siguientes. Pre-enriquecimiento. Con el fin de revitalizar el CD presente en las superficies (utilizando los restantes 9 ml de fluido de muestra); después, dos Pre-enriquecimiento. Con el fin de revitalizar el CD presenteen las superficies (utilizando los restantes 9 ml de fluido de muestra); después, dos sub-muestras de 4,5 ml fueron cada filtran sobre una membrana de nylon estéril con un diámetro de 47 mm y la porosidad de 0,22 m (Merck - Millipore). Una membrana se colocó en un tubo desechable estéril que contiene 10 ml de Cerebro-Heart Infusion (BHI) (Biolife Italiana), y se incubó a 37 ° C ± 1 ° C durante 120 horas bajo condiciones anaeróbicas, para detectar la presencia de CD en forma vegetativa. La otra membrana se colocó en un tubo de ensayo estéril que contenía 10 ml de caldo BHI y se sometió a un tratamiento térmico (80 ° C ± 2 ° C durante 10 minutos se colocó en un tubo de ensayo estéril que contenía 10 ml de caldo BHI y se sometió a un tratamiento térmico (80 ° C ± 2 ° C durante 10 minutos en un baño de agua) para detectar la presencia de esporas de CD. Esto también fue después se incubó a 37 ° C ± 1 ° C durante 120 horas bajo condiciones anaeróbicas. aislamiento selectivo. UN t final de la incubación de cada subcultivo, una alícuota de 200 l se sembró por duplicado en medio selectivo aislamiento selectivo. UN t final de la incubación de cada subcultivo, una alícuota de 200 l se sembró por duplicado en medio selectivo sólido chromID C. difficile agar - CDIF - (bioMérieux) y se incubaron en condiciones anaeróbicas a 37 ° C ± 1 ° C durante 44 horas ± 4 sólido chromID C. difficile agar - CDIF - (bioMérieux) y se incubaron en condiciones anaeróbicas a 37 ° C ± 1 ° C durante 44 horas ± 4 sólido chromID C. difficile agar - CDIF - (bioMérieux) y se incubaron en condiciones anaeróbicas a 37 ° C ± 1 ° C durante 44 horas ± 4 horas. M A N U S C R I T O A C E P T A D O MANUSCRITO ACEPTADO 5 Identificación. S uspect colonias se observaron mediante un microscopio y los que tienen una morfología típica de CD se sometieron a una prueba de Identificación. S uspect colonias se observaron mediante un microscopio y los que tienen una morfología típica de CD se sometieron a una prueba de confirmación bioquímica. La confirmación bioquímica de las colonias de CD se realizó mediante API 20A (bioMérieux) siguiendo las instrucciones del fabricante. Las proporciones de las muestras de CD contaminados se compararon antes y después del proceso de desinfección. Para evaluar el resultado secundario, se consideraron tres tiempos diferentes, como se indica en la siguiente: ● El tiempo total (minutos) = "La habitación estaba lista para un nuevo paciente" - "El paciente salió de la habitación" ● Tiempo de indisponibilidad habitación (minutos) = "La habitación estaba preparada para acoger un nuevo paciente" - "iniciar la preparación para el proceso de desinfección" ● Tiempo de proceso de desinfección (minutos) = "finalización de proceso de desinfección con peróxido / cloro" - "iniciar la preparación para el proceso de desinfección" Para la comparación resultado secundario, se utilizó la prueba exacta de Fisher. La prueba de suma de rangos de Wilcoxon y la prueba de los rangos con signos de Wilcoxon se utilizaron para comparar la reducción bacteriana. Todos los análisis estadísticos se realizaron con el software Stata 12.0. M A N U S C R I T O A C E P T A D O MANUSCRITO ACEPTADO 6 RESULTADOS Antes de la desinfección, la contaminación bacteriana se detectó 79% de las habitaciones en el grupo de hipoclorito de sodio, mientras que era 50% en el grupo de peróxido de hidrógeno. La diferencia no fue estadísticamente significativa (p = 0,236). La Tabla II ilustra la distribución de habitaciones contaminados en cada uno de los grupos de desinfección. Tabla II La diferencia en la reducción global de habitaciones contaminados debido a peróxido de hidrógeno y los iones de plata y el hipoclorito de sodio no fue estadísticamente significativa (p = 0,497), pero una reducción significativa después de la desinfección se observó en ambos grupos. CD permaneció detectable en 2 habitaciones en el grupo de hipoclorito de sodio (p = 0,002) y en 0 habitaciones en el grupo de peróxido de hidrógeno y los iones de plata (p = 0,006). 448 muestras se recogieron en total. Tabla III el número de muestras contaminadas antes y después de la desinfección se muestra para cada grupo. Tabla III Antes de la desinfección, se detectaron esporas de CD en 13% de las muestras del grupo de iones de peróxido de hidrógeno y plata y en 20% de las muestras en el grupo de hipoclorito de sodio. Esta diferencia no fue estadísticamente significativa (p = 0,146). Después de la desinfección, la disminución de los sitios contaminados fue significativa para los dos grupos (p <0,001). 3% de las muestras se mantuvo contaminada en el grupo de hipoclorito de sodio y 0% en los iones peróxido de hidrógeno y de plata. No hubo diferencia estadísticamente significativa (p = 0,267) en la reducción de las muestras contaminadas porcentuales entre los 2 métodos de desinfección. Para las reducciones mesófilas microbianas, la diferencia en los dos grupos no fue estadísticamente significativa (p = 0,193). Sin embargo, una diferencia significativa antes y después de la desinfección se registró en ambos grupos (p <0,001), indicando que ambos métodos de desinfección fueron eficaces en la reducción de la carga bacteriana total. Tabla IV, demuestra las diferencias en términos de tiempo necesario cada uno de los métodos de desinfección habitación. Tabla IV M A N U S C R I T O A C E P T A D O MANUSCRITO ACEPTADO 7 DISCUSIÓN CD se encontró en 36 muestras de cada 224 (16%), y en 18 habitaciones de los 28 (64%). Este nivel de contaminación es menor que los estudios anteriores. Barbut et al (2009) mostró la presencia de CD en 80 de las 374 superficies de la muestra (21%) y en 23 de los 31 cuartos (74%). Shapey et al (2008) encontraron que la presencia de CD en todas las habitaciones de la muestra (100%) y en 48 de 203 de las muestras (24%), mientras Boyce et al (2008) encontraron CD en 11 de las 43 muestras tomadas ( 26%). Los sitios más contaminados fueron los dispositivos de luz y de llamadas de enfermería y la superficie horizontal de la mesilla de noche. Sobre la base de los registros de estado funcional de los pacientes que ocupan las habitaciones, el 85% de los pacientes eran dependientes. Este resultado es coherente con Blakney et al. (2015), quienes encontraron que la contaminación ambiental de la EC en pacientes dependientes era por lo general en las superficies adyacentes a la cama, (dispositivos de llamada de enfermería y mesita de noche), mientras que en los pacientes autónomas / autosuficiente CD estaba también presente en las superficies más lejos (asiento del inodoro, mango del inodoro y botón de descarga). Este estudio no identificó una diferencia estadísticamente significativa para la reducción de CD y carga microbiana cuando se comparan peróxido de hidrógeno estabilizado <8% y los iones de plata, a hipoclorito de sodio. Sin embargo, se detectaron después de la desinfección con los niveles de hipoclorito de sodio más bajos de contaminación que los reportados en estudios anteriores. En particular, Barbut et al. (2009) encontraron contaminación en 12%, y Shapey et al. (2008) en 24%. Esta diferencia puede atribuirse al hecho de que el personal de limpieza puede haber sido consciente de la toma de muestras siguiendo los procedimientos de limpieza. En Barbut et al. (2009) no está claro si los que lleva a cabo el procedimiento de limpieza eran conscientes de la toma de muestras posterior, mientras que en Shapey et al. (2008), se dijo que el personal de limpieza no eran conscientes. Este elemento que pone de relieve la eficacia de la desinfección con un desinfectante de contacto tal como el cloro espotencialmente muy alto, pero depende del operador. Por esta razón, se ha sugerido que para garantizar la eficacia de los desinfectantes de contacto es necesario promover intervenciones específicas para los operadores, como la capacitación y supervisión (Siani H, 2015). Aparte de esto, los iones de peróxido de hidrógeno y plata desinfección reduce significativamente el impacto ambiental (sin consumo de agua, la reducción del riesgo químico y productos de desecho) y es capaz de acceder a cualquier superficie de asegurar el mismo resultado. Nuestros resultados demuestran que la desinfección con hipoclorito de sodio y peróxido de hidrógeno y los iones de plata son eficaces en la reducción de CD y la presencia microbiana mesófila. Las organizaciones de salud pueden evaluar la adopción de cualquiera de los enfoques de desinfección basado en características estructurales, tecnológicos y profesionales disponibles, pero se necesitan más estudios sobre las evaluaciones económicas. M A N U S C R I T O A C E P T A D O MANUSCRITO ACEPTADO 8 EXPRESIONES DE GRATITUD Este estudio ha sido realizado gracias a: MT Malaguti, K. Sponsano, (CDC Toniolo di Bologna) S. Roti, O. Cassiani (CDC Villa Verde di Reggio Emilia) A. Donati, G. Licitra, L. Bagnoli, C. Brazioli (Ospedale di Sassuolo) A. Donati, A. Tazioli (Ospedale di Pavullo nel Frignano) G. Sanna, G. Rocchio, M. De Simei (Servicio Dussmann) M. Tonini, G. Agrimi, L. Labò (Sapio Life) DECLARACIÓN DE INTERÉS Este estudio se ha realizado gracias a la contribución de Servicio Dussmann y Sapio vida. M A N U S C R I T O A C E P T A D O MANUSCRITO ACEPTADO 9 Referencias [1] Dubberke ER. Las estrategias para prevenir las infecciones de CD en los hospitales de agudos: 2014 Actualizar. Control de la infección y el Hospital de 2014; 35 (6): 628-645. [2] Un Kramer, Schwebke I, lucha G. ¿Cuánto tiempo persisten los patógenos nosocomiales en las superficies inanimados? Una revisión sistemática. 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Muestreo ubicaciones en cada habitación, para todos los 28 habitaciones Los lugares de muestreo antes de la desinfección después de la desinfección Total Mesilla de noche 1 1 2 Lavabo 1 1 2 Mango o de entrada del cajón de la mesilla 1 1 2 dispositivos de llamada de la luz y de enfermería 1 1 2 Soporte de goteo 1 1 2 tubular plantilla 1 1 2 manija de la puerta interior de la sala 1 1 2 manija de puerta del baño interior 1 1 2 M A N U S C R I T O A C E P T A D O MANUSCRITO ACEPTADO Total 8 8 dieciséis M A N U S C R I T O A C E P T A D O MANUSCRITO ACEPTADO Tabla II: Distribución de habitaciones contaminadas en los dos grupos de desinfección. grupo peróxido de hidrógeno grupo hipoclorito de sodio Contaminada antes de la desinfección Contaminada después de la desinfección Contaminada antes de la desinfección Contaminada después de la desinfección Habitaciones 7/14 (50%) 0/14 (0%) 11/14 (79%) 2/14 (14%) M A N U S C R I T O A C E P T A D O MANUSCRITO ACEPTADO Tabla III: Distribución de muestras contaminadas antes y después de la desinfección en los dos grupos. superficies muestreadas grupo peróxido de hidrógeno grupo hipoclorito de sodio Contaminado antes de la desinfección Contaminado después de la desinfección Contaminado antes de la desinfección Contaminado después de la desinfección 100 cm 2 áreas de superficie de fricción de la cabecera 100 cm 2 áreas de superficie de fricción de la cabecera 100 cm 2 áreas de superficie de fricción de la cabecera mesa 2/14 0/14 4/14 1/14 100 cm 2 áreas de superficie de fricción de 100 cm 2 áreas de superficie de fricción de 100 cm 2 áreas de superficie de fricción de lavabo 1/14 0/14 3/14 0/14 Mango o de entrada del cajón de la mesilla 2/14 0/14 2/14 0/14 dispositivos de llamada de la luz y de enfermería 3/14 0/14 4/14 1/14 Soporte de goteo 2/14 0/14 3/14 0/14 tubular plantilla 1/14 0/14 3/14 1/14 manija de la puerta interior de la habitación 1/14 0/14 1/14 0/14 manija de puerta del baño interior 2/14 0/14 2/14 0/14 Total 14/112 (13%) 0/112(0%) 22/112 (20%) 3/112 (3%) M A N U S C R I T O A C E P T A D O MANUSCRITO ACEPTADO Tabla IV: Tiempo requerido para la desinfección habitación en los dos grupos de desinfección El tiempo total (minutos) = "La habitación estaba lista para un nuevo paciente" - "El paciente salió de la habitación" Tiempo de indisponibilidad habitación (minutos) = "La habitación estaba preparada para acoger un nuevo paciente" - "iniciar la preparación para el proceso de desinfección" Tiempo de proceso de desinfección (minutos) = "finalización de proceso de desinfección con peróxido / cloro" - "iniciar la preparación de proceso de desinfección" Estructura tiempo total promedio (minutos) Tiempo medio de indisponibilidad ambiente (minutos) Tiempo medio de desinfección proceso (minutos) Hipoclorito de sodio grupo grupo peróxido de hidrógeno Hipoclorito de sodio grupo grupo peróxido de hidrógeno Hipoclorito de sodio grupo grupo peróxido de hidrógeno UN 171 166 128 114 117 90 segundo 233 220 188 215 123 165 do 153 193 108 132 - 97 re Estructura “D” no registró los tiempos del proceso Media general 182 180 137 130 119 100 M A N U S C R I T O A C E P T A D O
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