mar_microscopio

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Histología 
Microscopio em la medicina:
 patologias, observar lo que los ojos no pueden y aumento de resolución.
· Óptico (luz): bacteria, animal y vegatal. Más usado. Es el más común para analizar tejidos. Célula muerta y colorada, sin la tinción se ven transparentes. 
· Electrónico: virus y bacteria
Poder de resolución: capacidad de poder resolver dos imagens juntas o separadas.
resolver: capacidad de separar 
 (
%1000
)Límite de resolución: distancia entre dos objetos para que pueda ser visualizados como separados. (
0, 2 mm –
 
ojo humano 
 
0,2 
μ
m
 
– óptico 
 
0,2 
nm
 – electrónico 
)
	
Dificultades:
· Objetivo/ objeto de la investigación (elegir)
· Tamaño de la muestra
· Transparencia
Tecnica histológica ( paciente al microscopo)
Métodos histológicos
Existen 2 grandes tipos:
· Observación de tejidos y células muertas
· Análisis de material muerto o inanimado, la preparación para la investigación de esos
Tejidos muertos se realiza cortando secciones muy delgadas denominada cortes histológicos.
Tecnica Histológica (Paciente al microscopio) 
· Obtención del material
· Fijación
· Inclusión
· Corte o sección
· Coloración
· Montage
Métodos de obtención del material:
Biopsia: paciente vivo, fines diagnósticos y pedazo pequeño (2-3 mm)
Por punción o aspiración (AG o AF)
Incisional: Pedazo de lesión 
Excisional: sacar toda la lesión
AF: aguja fina, más profundo, aspirar células más sueltas
AG: aguja gruesa, saca un cilindro grueso
Bisturí o punch: externo y aguja es interno
Endoscopia: boca (orificios). Laparoscópia: abdomen
Resección: quirúrgico y pedazo grande. Saca órgano o pedazo de órganos directamente.
Frotis o extendido: menos invasivo, impronta y se raspa.
Autopsia: completo, resección interna. Se sacan todos lor orgános. 
Fijácion: Evitar la autolisis. Conservar la morfologia y composición química. Antisepsia. Generar un mínimo de consistencia.
Formol 10%. Alcohol 96 para la técnica de PAP.
Inclusión: quede adentro de la parafina sólida para poder cortar. Deshidratación con alcohol 70- 96 – 100, para eliminar el agua.
Aclaramiento: someter la muestra a un solvete (Xilol), para que la parafina penetre. Se pierde lípidos (disuelve la grasa).
Micrótomo: máquina. Parafina + muestra = cortes finos 
Coloración: se debe extraer la parafina del tejido e hidratarlo nuevamente ya que la mayoría de los colorantes son de base acuosa, volvemos a hidratarlo con etanol en condiciones decrecientes y agua destilada. Hacemos el tratamiento con xileno.
· Hematoxilina: violeta escuro. Basófilo. Grupo fostato GAGs, ADN y ARN.
· Eosina: rosado. Acidófilo/Eosófilo. Grupo amino, aminoácidos y proteínas. 
· Sudan: tiñe lípidos 
· PAS: tiñe hidratos de carbono 
· Tricómico de mallory: tiñe núcleos, citoplasma y fibras de colágeno
· Impregnacion argentica: tiñe fibras reticulares
Montaje: se deshidrata nuevamente con etanol y se monta el tejido, se cubre con una gota de medio montaje transparente. Despues, se coloca un cubreobjeto para proteger el preparado. 
Cliopsia: más rápido criostato y congela la muestra en -20, nos da un informe rápido y se suele realizar con pacientes en cirugías. Es muy utilizado cuando debemos ver lípidos ya que con la muestra anterior los lípidos no pueden observarse porque se disuelven con el tolueno (como todos los líquidos).
· Obtencion de la muestra. Congelamiento mediante un criostato. Corte y Tinción.
obs: no todos los quites se punzan. 
 
 
%100
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