ACT02_EQUIPO4

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1 
 
 
UNIVERSIDAD VERACRUZANA 
 
 
FACULTAD DE BIOANÁLISIS 
REGIÓN XALAPA 
 
EXPERIENCIA EDUCATIVA 
TOXICOLOGÍA 
 
 
 
 
MANUAL DE PRÁCTICAS 
 
 
 
 
EQUIPO 4: 
− HERNÁNDEZ BAUTISTA DAYRA ELIZABETH 
− LABOURDETTE CALDERÓN ARACELI 
− ZAMUDIO SÁNCHEZ ALICIA DE LOS ANGELES 
 
ACADÉMICO 
ISELA SANTIAGO ROQUE 
 
 
12 DE DICIEMBRE DE 2022 
 
 
2 
INDICE 
 
MANEJO DE ANIMALES EN EL LABORATORIO DE TOXICOLOGÍA. ............... 3 
TOMA DE MUESTRAS BIOLÓGICAS. .................................................................. 6 
VÍAS DE ADMINISTRACIÓN. ............................................................................... 11 
SINERGISMO ....................................................................................................... 14 
VALIDAR UN MÉTODO PARA LA DETERMINACIÓN DE ÁCIDO 
ACETILSALICÍLICO EN ORINA. .......................................................................... 17 
DETERMINACIÓN DE ETANOL EN ORINA. ....................................................... 22 
TERATOGÉNESIS ................................................................................................ 24 
3 
PRÁCTICA # 1. MANEJO DE ANIMALES EN EL LABORATORIO DE 
TOXICOLOGÍA. 
Resultados 
 
Hoja de control 
 
 Talla Edad Género Especie Peso 
Rata 5 14 1 mes Macho Wistar 184.7 g 
Rata 6 12 1 mes Macho Wistar 157.1 g 
 
 
 
 
Discusión 
 
El manejo de los roedores en todo el proceso de la práctica fue sujeto a mucha 
responsabilidad con previo conocimiento de las herramientas a utilizar, como la 
balanza analítica. Se hizo uso de dos pedazos de tela, uno para sujetarlos y otro 
para cubrir sus ojos, evitando así que se estresaran de más y previniendo posibles 
mordidas. 
Evaluación 
 
1. ¿A qué se refiere el término Knockout? 
 
Un ratón knockout es modificado por ingeniería genética para que uno o más de sus 
genes estén inactivados mediante una técnica llamada bloqueo de genes. Su 
propósito es comprender el papel de un gen que ha sido secuenciado, pero del que 
se desconoce su función o se conoce de forma incompleta. 
2. ¿Qué aspectos de la NOM-062-ZOO-1999 se aplican en el Bioterio? 
 
El que al ser una institución que utiliza animales de laboratorios con fines de 
investigación científica, pruebas de laboratorio y enseñanza debe dar aviso de 
4 
funcionamiento a la secretaria a través de la CONASAG, además de que cuente 
con personal capacitado y certificado para cumplir con las necesidades del bioterio. 
También que todas las técnicas de manipulación e inmovilización que se realicen 
estén acordes con los principios humanitarios internacionales aceptados. En 
general, en todo el bioterio se cuenta con sectores básicos que aseguran el 
alojamiento del animal de manera óptima. 
3. ¿Cuáles son las practicas utilizadas en el bioterio de la facultad que 
garantizan el bienestar animal? 
Se practican los aspectos que mencionan sobre la designación de personas a cargo 
de garantizar la salud y bienestar de los animales, ya que se encuentran alumnos o 
maestros siempre supervisando el bioterio. 
En lo observado, también se cumple el hecho de que se mantengan sus jaulas 
limpias, con sistemas de aislamiento y además cuentan con un horario estricto de 
luz y comida. 
Referencias 
 
 
1. NORMA Oficial Mexicana NOM-062-ZOO-1999. (2001). Secretaría de 
Agricultura, Ganadería, Desarrollo Rural, Pesca y Alimentación. 
https://www.gob.mx/cms/uploads/attachment/file/203498/NOM-062-
ZOO-1999_220801.pdf 
2. Márquez, H. L. (2022). La evolución de la reproducción animal. 
Redalyc.org. https://www.redalyc.org/articulo.oa?id=407672259001 
3. Aqueveque, L. T. (2021, 1 febrero). Animales Cínicos | Griot : Revista 
de Filosofia. 
https://www3.ufrb.edu.br/seer/index.php/griot/article/view/2155 
5 
4. Botero, L., & Gómez, R. M. (2013). USO DE ANIMALES DE 
LABORATORIO EN COLOMBIA: REFLEXIONES SOBRE ASPECTOS 
NORMATIVOS Y ÉTICOS. Revista de la Facultad de Medicina 
Veterinaria y de Zootecnia, 60(III), 213-219. 
5. El estatus ontológico, epistemológico y ético de los animales de 
laboratorio. Del especismo a la biofilia y la bioética. (s. f.-b). 
http://www.revistatabularasa.org/numero32/el-estatus-ontologico-
epistemologico-y-etico-de-los-animales-de-laboratorio-del-especismo-a-
la-biofilia-y-la-bioetica/ 
 
6 
PRÁCTICA # 2. TOMA DE MUESTRAS BIOLÓGICAS. 
Resultados 
 
 Peso 
Rata 7 184.7 g 
Rata 8 157.1 g 
 
 
Rata 7 Rata 8 
Ketamina 
100 mg – 1000g 
X – 184.7g 
X= 18.47 mg 
100 mg- 1000 g 
X – 157.1g 
X= 15.72 mg 
100 mg - 1ml 
18.47 mg – x 
X= 0.18 ml 
100 mg- 1ml 
15.72mg – x 
X= 0.15 ml 
Xilacina 
8 mg - 1000 g 
X -184.7 g 
X= 1.47 mg 
20 mg – 1 ml 
1.47 mg – x 
X= 0.07 ml 
20 mg - 1ml 
1.47 mg – x 
X= 0.07 ml 
20 mg – 1 ml 
1.25 mg – X 
X= 0.06 ml 
 
 
Ketamina y Xilacina: Rata 7= 0.25ml Rata 8= 0.21 ml 
 
 
 
Discusión 
 
Primeramente, se sedaron a las ratas bajo supervisión del docente, con las dosis 
adecuadas y material previamente preparado para generar la inconsciencia en las 
ratas y evitar el dolor que les provocaría la intervención. 
7 
Posteriormente, se hizo la toma de muestra sanguínea en las venas laterales de la 
cola, desinfectando la zona y usando un pedazo de tela que fue calentado (a una 
temperatura tolerable) con antelación para generar vasodilatación y se nos 
permitiera una mejor visualización de las venas. 
 
Evaluación 
 
1. ¿Cuáles son los parámetros que incluyen el perfil de lípidos, examen 
general de orina, glucosa sanguínea, citología acorde al ciclo hormonal 
de los roedores? 
 
 
 
 
8 
 
 
Fotomicrografías ópticas 
representativas de las fases y 
los estados de transición del 
ciclo estral que pueden 
observarse en la citología 
vaginal directa de ratas 
A: proestro. 
 
B: transición proestro-estro. 
 
C: estro. 
 
D: metestro. 
 
E: diestro. 
 
F: transición diestro-proestro. 
 
CN: célula epitelial nucleada. 
 
CQ: célula epitelial anucleada 
queratinizada. 
L: leucocito. 
Aumento 100x. 
9 
 
10 
2. ¿Qué criterios aplican para considerar a una muestra de calidad 
analítica? 
Las mediciones analíticas deben hacerse utilizando métodos y equipo que han sido 
probados para asegurar que son adecuados para el propósito buscado. Entre los 
atributos a considerar en la calidad de un método se deben mencionar aquellas 
características que son básicas: confiabilidad, aplicabilidad, especificad, exactitud, 
precisión, detectabilidad y sensibilidad. 
Referencias 
 
• Fernández Romero T, Suárez Román G, Clapés Hernández S. Protocolo 
para la citología vaginal directa de ratas de laboratorio. Rev haban cienc méd 
[Internet]. 2021 [citado 26 Nov 2022]; 20(3): [aprox. 0 p.]. Disponible en: 
http://www.revhabanera.sld.cu/index.php/rhab/article/view/4086 
• Lozano Márquez H, La evolución de la reproducción animal. Revista de la 
Facultad de Medicina Veterinaria y de Zootecnia [Internet]. 2022;69(2):119- 
120. Recuperado de: https://www.redalyc.org/articulo.oa?id=407672259001 
• Cajigas-Rotundo J. C, Montenegro Martínez L, Martínez Medina S. Zoo 
antropologías: la cuestión del animal. Tabula Rasa [Internet]. 2019; (31):11- 
22. Recuperado de: https://www.redalyc.org/articulo.oa?id=39660441001 
• Guidance on the Operation of the Animals (Scientific Procedures) Act 2021. 
(2000). Disponible en http://www.archive.officiaI- 
documents.co.uk/document/hoc/321/321.html 
http://www.revhabanera.sld.cu/index.php/rhab/article/view/4086
http://www.redalyc.org/articulo.oa?id=407672259001
http://www.redalyc.org/articulo.oa?id=407672259001
http://www.redalyc.org/articulo.oa?id=39660441001
http://www.archive.officiai-/
11 
PRÁCTICA # 3. VÍAS DE ADMINISTRACIÓN. 
Resultados 
 
 Peso 
Rata 7 184.7 g 
Rata 8 157.1 g 
 
Dosis cálculos. 
 
Rata 7 Rata 8 
Ketamina 
100 mg – 1000g 
X – 184.7g 
X= 18.47 mg 
100 mg- 1000 g 
X – 157.1g 
X= 15.72 mg 
100 mg - 1ml 
18.47 mg – x 
X= 0.18 ml 
100 mg- 1ml 
15.72mg – xX= 0.15 ml 
Xilacina 
8 mg - 1000 g 
X -184.7 g 
X= 1.47 mg 
20 mg – 1 ml 
1.47 mg – x 
X= 0.07 ml 
20 mg - 1ml 
1.47 mg – x 
X= 0.07 ml 
20 mg – 1 ml 
1.25 mg – X 
X= 0.06 ml 
 
Ketamina y Xilacina: Rata 7= 0.25ml Rata 8= 0.21 ml 
 
 
12 
Discusión 
 
Los dos roedores fueron administrados con la preparación de Ketamina y Xilacina 
por vía intraperitoneal, que de igual manera que la practica anterior, fueron con el 
propósito de que el animal sufriera lo menos posible. 
Los dos roedores fueron sedados con éxito. 
Evaluación 
 
1. ¿Cuáles son los procedimientos utilizados para mantener vivo a un 
roedor al que se le requiere mantener vivo y obtener muestras 
sanguíneas cada 15 días por tres meses? 
Debe contar con un microambiente con condiciones estandarizadas y básicas 
según la Norma Oficial Mexicana-062-Z00-1999. Con jaulas diseñadas para facilitar 
su bienestar, con un espacio adecuado, con ventilación, seguro y protegido de 
amenazas externas. 
Además, los roedores deben ser correctamente alimentados para que puedan 
renovar sus tejidos y estructuras corporales, pues serán dañados constantemente 
durante las tomas de muestra. 
Referencias 
 
• Botero, L., & Gómez, R. M. (2013). USO DE ANIMALES DE 
LABORATORIO EN COLOMBIA: REFLEXIONES SOBRE ASPECTOS 
NORMATIVOS Y ÉTICOS. Revista de la Facultad de Medicina Veterinaria y 
de Zootecnia, 60(III), 213-219. 
• Branco, J. C., Batista, N. A., & Thomaz, S. M. (2022). Saúde 
Socioambiental na Atenção Básica: conhecimento, formação e prática. 
Saúde em Debate, 46(134), 734-749. https://doi.org/10.1590/0103-
1104202213410 
• Lopera-Medina, M., (2022). Retos éticos para los administradores en salud 
en la época contemporánea. Revista Facultad Nacional de Salud Pública, 
40(1), 1-12. https://doi.org/10.17533/udea.rfnsp.e341003 
• Vinardell, M., (2014). Alternativas a los animales de laboratorio en la 
docencia. Revista de Toxicología, 31(2), 124-129. 
13 
• Russell, W. M. y Burch, R. L. (2019). The Principles of Humane Experimental 
Technique. London: Methuen Plubishing. 
• Ribes Iñesta, E., (2016). LOS LABORATORIOS DE CONDUCTA ANIMAL 
EN MÉXICO: MEMORIA DE SUS INICIOS. Revista Mexicana de Análisis 
de la Conducta, 42(2), 145-152. 
 
14 
PRÁCTICA # 4. SINERGISMO. 
Resultados 
 
Peso 
Rata 7 184.7 g 
Rata 8 157.1 g 
 
Dosis cálculos. 
 
Rata 7 Rata 8 
Ketam ina 
100 mg – 1000g 
X – 184.7g 
X= 18.47 mg 
100 mg- 1000 g 
X – 157.1g 
X= 15.72 mg 
100 mg - 1ml 
18.47 mg – x 
X= 0.18 ml 
100 mg- 1ml 
15.72mg – x 
X= 0.15 ml 
Xilac ina 
8 mg - 1000 g 
X -184.7 g 
X= 1.47 mg 
20 mg – 1 ml 
1.47 mg – x 
X= 0.07 ml 
20 mg - 1ml 
1.47 mg – x 
X= 0.07 ml 
20 mg – 1 ml 
1.25 mg – X 
X= 0.06 ml 
 
Ketamina y Xilacina: Rata 7= 0.25ml Rata 8= 0.21 ml 
 
15 
Discusión 
 
Se hizo el conteo de las veces que el roedor dio vueltas antes de caer sedado: el 
roedor número 7 recorrió 22 cuadros y realizó 4 levantamientos, mientras que el 
roedor número 8 recorrió 48 cuadros y realizó 8 levantamientos. 
Con dicho conteo se pudo observar los efectos sinérgicos entre ambos fármacos, 
se comprobó su tiempo de y efecto anestésico de ambos fármacos y así mismo se 
apreció como la administración simultanea que se realizó en distintos mecanismos 
dieron la variación de tiempo de anestesia en dichos roedores. 
 
Evaluación 
 
1. Explica que tipo de conducta presenta el roedor cuando interaccionan las 
sustancias administradas. 
En el momento de administrar los medicamentos, casi instantáneamente se 
comenzó a observar los cambios, de estar inquieto e intranquilo, se volvió calmado, 
nervioso, respiración agitada, pero mareado o con movimientos lentos y erráticos 
hasta el punto de estar completamente inmóvil pero aun palpablemente despierto. 
Referencias 
 
• Rojas-Valverde, D., Sánchez-Ureña, B., Ugalde-Ramírez, A., Gómez-
Carmona, C. D., Pino-Ortega, J., & Gutiérrez-Vargas, R. (2020). Speed and 
heart rate variation during marathon running in a hot environment. PENSAR 
EN MOVIMIENTO: Revista de Ciencias del Ejercicio y la Salud, 18(1), 1-15. 
https://doi.org/10.15517/pensarmov.v18i1.37602 
• Rodríguez Reyes, O., Noack, T. K., Patejdl, R., García Rodríguez, R. E., 
Fajardo Puig, M. E., & Ambruster Sánchez, N. L. (2021). Efecto del 4-
Clorofenol sobre el músculo liso vascular de aorta abdominal de ratas 
Wistar. Revista Habanera de Ciencias Médicas, 20(4), 
• Tobar, J., Ramos-Sarmiento, D., Tayupanta, D., Rodríguez, M., & Aguilar, 
F. (2021). Microscopic and molecular evaluation of Strongyloides 
venezuelensis in an experimental life cycle using Wistar rats. Biomédica, 
41(1), 35-46. https://doi.org/10.7705/biomedica.5650 
16 
• Quintero Corzo, J., Munévar Molina, R. A., & Munévar Quintero, F. I. 
(2008). El diálogo sinérgico entre disciplinas: Informática Educativa y 
Didáctica de las Ciencias. El Hombre y la Máquina, (30), 8-17. 
• Morrison, A. (2019). Ethical Principles Guiding the Use of Animals in 
Research. The American Biology Teacher, 65(2), 105-108. 
17 
PRÁCTICA # 5. VALIDAR UN MÉTODO PARA LA DETERMINACIÓN DE 
ÁCIDO ACETILSALICÍLICO EN ORINA. 
Resultados 
 
18 
 
 
 
Rango Sensibilidad Especificidad Linealidad 
2 – 80 mg/dl 2 mg/dl No específico -- 
19 
8 mg/dl 
16 mg/dl 
24 mg/dl 
32 mg/dl 
40 mg/dl 
48 mg/dl 
56 mg/dl 
64 mg/dl 
72 mg/dl 
80 mg/dl 
 
(200 𝑢𝑙 40 ) + (800 𝑢𝑙 𝑎𝑔𝑢𝑎 𝑑) 
1. 40 mg/dl 2:10 1ml → 
𝑚𝑔 
𝑑𝑙 
= 1𝑚𝑙 
Concentración 8 mg/dl 
300 ul*3 disolución 
+ 300 ul trinder = 
600 ul 
900 ul disolución 
Linealidad: 
 
10 mediciones. 500 mg/dl 
 
 
 
 
 
 
 Stock Agua destilada 
1 16 ul + 984 ul 
2 32 ul + 968 ul 
3 48 ul + 952 ul 
4 64 ul + 936 ul 
5 80 ul + 920 ul 
6 96 ul + 904 ul 
7 112 ul + 888 ul 
8 128 ul + 872 ul 
9 144 ul + 856 ul 
10 160 ul + 840 ul 
 
2. 80 mg/dl 2:10 1ml → 
200 𝑢𝑙 80 + 800 𝑢𝑙 𝑎𝑔𝑢𝑎 𝑑 = 1𝑚𝑙 
𝑚𝑔 
𝑑𝑙 
 
Concentración 16 mg/dl 
300 ul*3 disolución 
+ 300 ul trinder = 
600 ul 
900 ul disolución 
20 
LINEALIDAD 
0.16 
 
0.14 
 
0.12 
 
0.1 
 
0.08 
 
0.06 
 
0.04 
 
0.02 
 
0 
0 10 20 30 40 50 60 70 80 90 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
Repetibilidad (Concentración). 
 
Estándar, 2500 
60 mg/dl 
Problema= 0.168 
 Espectro 1 Espectro 2 
1 1.770 1.839 
2 1.830 1.893 
[] Pb= Hbs Pb/Abs St 40 mg/dl*40 
mg/dl 
[ ]𝑃𝑏 = 
0.168 
* 60 mg/dl = 4.032 
2500 
3 1.817 1.781 
4 1.815 1.777 
5 1.815 1.782 
6 1.826 1.794 
7 1.790 1.756 
8 1.822 1.780 
9 1.818 1.791 
10 1.830 1.805 
11 1.850 1.811 
12 2.020 2.055 
13 1.830 1.786 
14 1.844 1.781 
15 1.832 1.790 
16 1.837 1.792 
17 1.851 1.785 
18 1.822 1.770 
19 1.841 1.792 
20 1.823 1.776 
 
 
21 
Discusión 
En dicha práctica se usaron diferentes parámetros como la linealidad, la 
reproducibilidad, precisión y especificidad para la evaluación del método analítico 
en la cuantificación de Ácido acetilsalicílico, hoy en día es un reto para las industrias 
farmacéuticas lograr que su producto sea efectivo y que a la vez sus propiedades 
se mantengan a través del tiempo. 
Como resultado se vio que en el método de especificidad que el método de Trinder 
no es especifico a ácido acetilsalicílico, siendo que en la práctica se tomó la misma 
concentración de salicilato de sodio y de ácido acetilsalicílico, pero sin embargo se 
observó una coloración en el salicilato mientras que en el ac. Acetilsalicílico casi no 
hubo coloración. 
Referencias 
 
• Gutiérrez-Camacho, J. R., Aguilera-Galavíz, L. A., Sánchez-Balderas, G., 
Palestino, G., Zavala-Alonso, N. V., & Gaitán-Fonseca, C. (2022). In-Vitro 
Silanization of Dental Enamel to Prevent Demineralization. Odovtos - International 
Journal of Dental Sciences, 24(1), 76-86. 
https://doi.org/10.15517/IJDS.2021.46614 
• Sánchez R., J. F., Tejeda R., M. E., Koch, W., Mora G., J. L., Marroquín S., R., 
Hernández A., V., Islas P., V., SánchezG., E. G., & León V., A. D. (2010). 
Validación de métodos analíticos no cuantitativos. Revista Mexicana de Ciencias 
Farmacéuticas, 41(2), 15-24. 
• Ortega Ruipérez, B., (2022). The Role of Metacognitive Strategies in Blended 
Learning: Study Habits and Reading Comprehension. RIED. Revista 
Iberoamericana de Educación a Distancia, 25(2), 219-234. 
https://doi.org/10.5944/ried.25.2.32056 
• Ramírez González, W., Mateo Morejón, M., Cruz Jiménez, R., Macías Ochoa, E. 
B., García Freijó, A., Torralba Averoff, D., & Labrada Rosado, A. (2022). 
Validación interlaboratorio del método de SDS-PAGE para la determinación de la 
composición de proteínas en extractos alergénicos de ácaros. Revista CENIC. 
Ciencias Biológicas, 53(1), 1-13. 
• Witeck C. D, Schmitz A. C, Oliveira J. M, Porporatti A. L, Canto G. D, , Pires 
M. M. Lysosomal acid lipase deficiency in pediatric patients: a scoping review. 
Jornal de Pediatria. 2022;98(1):04-14. 
22 
PRÁCTICA # 6. DETERMINACIÓN DE ETANOL EN ORINA. 
Resultados 
 
Absorbancia Absorbancia para medir la actividad 
enzimática 
0.028 0.035 
0.142 0.045 
 0.094 
0.120 
0.138 (Último) 
Actividad alcohol-deshidrogenasa: 
 
∆450 = (𝐴450) 𝑓𝑖𝑛𝑎𝑙 − (𝐴450) 𝑖𝑛𝑖𝑐𝑖𝑎𝑙 
 
0.120 − 0.028 = 
 
Presencia de etanol en orina Problema 1= + (Positivo) 
 
 
La muestra de orina positiva en presencia de etanol, viró a un color azul verdoso. 
 
Discusión 
 
En esta práctica se utilizó la orina de una persona que consumió alcohol 
recientemente en bebidas alcohólicas. Teniendo en cuenta los datos de la muestra 
se pudo determinar la presencia de etanol en la muestra y así mismo calcular 
mediante un método cuantitativo la concentración del etanol en la muestra. 
Evaluación 
 
1. Explica a qué se debe la presencia de un color verde azul en la prueba 
presuntiva positiva. 
Esto es porque los alcoholes primarios, tal como el etanol, frente al dicromato de 
potasio, generan aldehídos. Entonces, se observa la reacción mediante el cambio 
de color a verde debido a la reducción del cromo. 
0.092∆450 
23 
Referencias 
 
• Pérez, M. M., Martínez Torres, M. D., Pérez Cruz, N., Díaz Matos, I., & 
Alfonso Hidalgo, A. (2019). Intoxicación por barbitúricos, una mirada 
toxicológica. Horizonte Sanitario, 18(2), 111-118. 
https://doi.org/10.19136/hs.a18n2.2418 
• San Martín, C., Diaz, F., Cañete, A., Laborda, M. A., & Miguez, G. (2018). 
Readquisición de la tolerancia asociativa al etanol: el efecto de la extinción 
masiva. Avances en Psicología Latinoamericana, 36(2), 419-429. 
https://doi.org/10.12804/revistas.urosario.edu.co/apl/a.5727 
• Puttini M. A, Vuarant C. M, Fournier J, Lesa C, Huter C, Ruíz Díaz J, , Romero 
A. Determinación de ácidos oleico y linoleico del suero sanguíneo humano 
por HPLC de fase inversa. Ciencia, Docencia y Tecnología. 2019; XVI 
(30):179-192. 
• Rodríguez A., J. R., Hung A., M., & Garcés Lavaut, M. (2009). 
VALIDACIÓN DEL MÉTODO DE DETERMINACIÓN DE UNIFORMIDAD 
DE CONTENIDO EN TABLETAS DE DIPIRONA DE 300 mg EN EL 
LABORATORIO FARMACÉUTICO ORIENTE. Revista Cubana de Química, 
XXI(2), 66-69. 
• Ramírez González, W., Mateo Morejón, M., Cruz Jiménez, R., Macías 
Ochoa, E. B., García Freijó, A., Torralba Averoff, D., & Labrada Rosado, A. 
(2022). Validación interlaboratorio del método de SDS-PAGE para la 
determinación de la composición de proteínas en extractos alergénicos de 
ácaros. Revista CENIC. Ciencias Biológicas, 53(1), 1-13. 
24 
Práctica #7. Teratogénesis 
 
Resultados 
 
 
 
 
 
 
25 
 
 
 
 
 
 
 
 
• Cráneo 
• Cerebro 
• Hígado 
• 4 patas 
• 1 cola 
• 5 falanges en cada pata 
 
 
 
 
 
 
 
- 13 pares de costillas 
 
- 22 vertebras 
 
- Cadera completa 
 
- Tibia 
 
- Peroné 
 
 
 
 
 
 
 
Discusión 
Como se sabe los tóxicos influyen en la función celular a la hora de la reproducción 
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y al afectarse en grado celular a un individuo puede haber una mutación, dando así 
a una malformación. En esta práctica se vio la teratogénesis al probarse en ratones 
y como tuvo una consecuencia en sus células dando lugar a algunas 
malformaciones, cabe recalcar que no todos los fetos se lograron ver 
malformaciones siendo un hallazgo interesante, al ver que, al ser sometida la madre 
a este tóxico, no todos los hijos hubieran nacido con alguna malformación. 
 
Autoevaluación 
 
1. Indica cuál es la diferencia entre teratogénesis, carcinogénesis y 
mutagénesis. 
 
La “Carcinogenicidad” es el proceso de desarrollo de tumores, lo que significa que 
un carcinógeno es una sustancia que induce el desarrollo o la progresión del cáncer. 
La mutagenicidad, sin embargo, se refiere a la producción de alteraciones genéticas 
transmisibles permanentes. Y se define como teratogénesis o dismorfogénesis la 
alteración morfológica, bioquímica o funcional, inducida durante el embarazo que es 
detectada durante la gestación, en el nacimiento o con posterioridad. 
 
2. Menciona tres tóxicos que promuevan teratogénesis, 
carcinogénesis ymutagénesis. 
• Rayos X 
• Contaminantes atmosféricos. 
• Plaguicidas 
 
3. Indica el mecanismo por el cual dichos tóxicos promueven sus 
efectosteratogénicos, carcinogénicos o mutagénicos. 
Los agentes físicos, como los rayos X, pueden lesionar los tejidos en desarrollo en 
mayor magnitud que los tejidos somáticos del adulto. Las malformaciones 
congénitas producidas por los rayos X representan uno de los primeros agentes 
implicados en la teratogénesis en el ser humano. Los compuestos químicos pueden 
alcanzar las células de los tejidos en desarrollo, en concentraciones que 
dependerán de la que tenga el organismo materno, considerando la homeostasis 
materna y el transporte de los metabolitos a través de la placenta. 
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Para que un fármaco alcance al embrión-feto debe atravesar la membrana 
placentaria, que es un tejido metabólicamente activo con enzimas implicadas en el 
metabolismo intermediario de diferentes xenobióticos. 
Cualquier agente adverso puede, en cualquier momento de la vida intrauterina, 
alterar el desarrollo de los tejidos del embrión o del feto. Los resultados pueden ser 
la muerte del organismo en desarrollo, las alteraciones estructurales 
(malformaciones congénitas), el retraso del crecimiento intrauterino y/o las 
alteraciones funcionales. Durante la organogénesis, la exposición a xenobióticos 
puede producir las dos primeras alteraciones y representan diferentes respuestas, 
de acuerdo con la magnitud de la exposición. Conforme el desarrollo del feto 
avanza, las posibilidades de retraso en el crecimiento fetal y las alteraciones 
funcionales se incrementan. 
Se han identificado varios tipos de cambios químicos en el ADN que pueden 
conducir a varios productos de genes mutados. Las mutaciones puntuales son las 
más frecuentes y éstas se producen por un cambio de un aminoácido, siendo una 
de las alteraciones más relevantes la mutación por corrimiento en el marco de 
lectura. Las puntuales pueden dividirse en cuatro clases principales, basándose en 
el cambio introducido en el ADN 
Estos agentes naturales o sintéticos pueden dañar la estructura del ADN y causarle 
una gran variedad de lesiones que pueden ser letales o mutagénicas; por ejemplo, 
las radiaciones ultravioletas causan foto degradación por excitación de moléculas, 
con aumento de la liberación de cito cininas como la interleucina 1, la interleucina 
10 y la molécula intrínseca de adherencia tipo 1 (ICAM-1). Cuando se liberan estas 
cininas producen edema, eritema y dolor, que a su vez se acompañan de la 
liberación de peróxido de hidrógeno y otras especies reactivas de oxígeno, las 
cuales interactúan con el ADN aumentando o disminuyendo su síntesis y la división 
celular. Esto puede inducir mutaciones puntuales o daño en cromosomas, con la 
consecuente transformación celular, inclusive se ha reportado que las radiaciones 
ultravioletas por sí mismas favorecen la formación de dímeros de timina quealteran 
la molécula de ADN. 
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Referencias 
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Genetics. Vol XXX Suppl. (1) 327-346; October 2019. 
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por retinoides. El caso de México. Revista Mexicana de Ciencias 
Farmacéuticas, 44(1), 24-32. 
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Electrónica de Veterinaria, 16(9), 1-16. 
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Mexico: Universidad Autónoma de Aguascalientes. Recuperado de 
https://elibro.net/es/ereader/bibliotecauv/75988?page=233. 
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Isabel Cristina Efecto genotóxico y mutagénico de contaminantes 
atmosféricos Medicina UPB, vol. 28, núm. 1, enero-junio, 2020, pp. 33- 
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• Repetto M. Y Repetto G (2021). Toxicología fundamental. 4ª. Madrid: 
EdicionesDíaz de Santos, S. A.