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UNIVERSIDAD NACIONAL AUTÓNOMA DE MÉXICO FACULTAD DE ESTUDIOS SUPERIORES “ZARAGOZA” Evaluación de material didáctico de Parasitología como apoyo al Laboratorio del programa de Microbiología General II de la Carrera de QFB en la FES Zaragoza UNAM. Tesis para obtener el Título de Químico Farmacéutico Biólogo Presenta Luis Gerardo Vázquez Miranda Director de Tesis Q.F.B. Manuel Orduña Sánchez Asesor de Tesis Q.F.B. Alicia Cabrera Aguilar Ciudad de México, 2018 UNAM – Dirección General de Bibliotecas Tesis Digitales Restricciones de uso DERECHOS RESERVADOS © PROHIBIDA SU REPRODUCCIÓN TOTAL O PARCIAL Todo el material contenido en esta tesis esta protegido por la Ley Federal del Derecho de Autor (LFDA) de los Estados Unidos Mexicanos (México). El uso de imágenes, fragmentos de videos, y demás material que sea objeto de protección de los derechos de autor, será exclusivamente para fines educativos e informativos y deberá citar la fuente donde la obtuvo mencionando el autor o autores. Cualquier uso distinto como el lucro, reproducción, edición o modificación, será perseguido y sancionado por el respectivo titular de los Derechos de Autor. No lo intentes, Hazlo o No lo Hagas, pero no lo intentes. Maestro Yoda, Star Wars: El Imperio Contraataca, 1980. La Presente Tesis está dedicada A Mis Padres Betty y Gerardo Por su eterno apoyo, amor y comprensión durante todo mi trayecto como estudiante, por sus consejos que me brindaron, por los sacrificios que realizaron para que yo lograra realizar este sueño, por sus regaños, por acompañarme en desvelos cuando las tareas y los estudios eran interminables, por cuidarme en la salud y enfermedad, sobre todo les Agradezco Que Siempre Creyeron en Mi. Mamá y Papá los amo. A Mis Abuelos Porque, aunque ya no estén físicamente conmigo, sé que me cuidan y que están orgullosos de mí, así como yo lo estoy de ser su nieto. Estela, Luisa, Rafael y Rutilio los quiero y los extraño. A Mis Tíos y Primos Por siempre preocuparse e interesarse en mi desarrollo estudiantil y por crecer conmigo brindándome siempre su apoyo, cariño y consejos. A Mi Mejor Amigo Por ser mi hermano, ese hermano que no tuve, por ser siempre leal y brindarme tu amistad durante todos estos años que llevamos siendo hermanos, por vivir cosas increíbles, geniales y graciosas, sé que siempre contaré contigo y con tu familia que siempre me ha tratado como un hijo más, Gracias. Roberto, Te quiero Hermano. A Mis Profesores Por compartir conmigo toda su sabiduría, instruirme y guiarme por un camino de conocimiento y formación profesional y académica, gracias por su paciencia, su tolerancia y respeto. Soy muy afortunado por tenerlos como Maestros durante mi formación Universitaria. A los Alumnos Porque sin ellos no podría haber logrado realizar este trabajo, y sobre todo por que conocí a la mujer que se volvió mi mejor Amiga y que conquisto mi Corazón. Vianey Te Amo. Índice Introducción ....................................................................................................................... 1 Marco Teórico .................................................................................................................... 2 1. Material Didáctico .......................................................................................................... 2 2. Parasitología .................................................................................................................. 4 2.1 Examen Coproparasitoscópico (CPS) ................................................................................ 4 2.2 Espécimen de Estudio y Método. ........................................................................................ 4 2.3 Fundamento ............................................................................................................................ 4 3. Control de Calidad y seguridad en el Laboratorio (Parasitología). .................................. 5 4. Preparación Biológica .................................................................................................... 8 4.1 Preparación Permanente ...................................................................................................... 8 4.2 Preparación Temporal ........................................................................................................... 9 Planteamiento del Problema ............................................................................................ 10 Hipótesis .......................................................................................................................... 11 Objetivo General .............................................................................................................. 12 Objetivos Particulares ...................................................................................................... 12 Metodología ..................................................................................................................... 13 Material y Reactivos......................................................................................................... 13 A) Procedimiento para obtención y preparación de huevos de helmintos. ................. 13 a) Diagrama de flujo para obtención y preparación de huevos de helmintos. .................. 14 B) Elaboración de fichas digitales y evaluación de las mismas. ................................. 15 b) Diagrama de flujo Elaboración de fichas digitales y evaluación de las mismas. ......... 16 Resultados ....................................................................................................................... 17 A) Tabla 1. ................................................................................................................................... 17 Tabla 2. ........................................................................................................................................ 19 Tabla 3. ........................................................................................................................................ 20 B) Resultado de Evaluación de Alumnos (Estadísticos y Gráficos) ................................... 21 Gráfico 1. ..................................................................................................................................... 23 Gráfico 2. ..................................................................................................................................... 26 C) Comparación entre Grupos 1702 y 1752 .......................................................................... 27 Grafico 3. ..................................................................................................................................... 28 Discusión de Resultados ................................................................................................. 29 Conclusión ....................................................................................................................... 32 Referencias ..................................................................................................................... 33 Anexos ............................................................................................................................ 38 Anexo 1. ....................................................................................................................................... 38 Anexo 2 ........................................................................................................................................ 391 Introducción Por años un material didáctico se le conoce al conjunto de medios materiales que intervienen y facilitan el proceso de enseñanza-aprendizaje, este recurso permite a cualquier estudiante comprender de mejor manera algún tema en específico. Es por esto que, la presente Tesis presenta la Evaluación de la eficacia de fichas digitales con preparaciones permanentes de Huevos de Helmintos, usadas como material didáctico como apoyo al Laboratorio del Programa de Microbiología General II en Parasitología, mediante pruebas estadísticas realizadas a dos grupos de 39 alumnos del curso de séptimo semestre, analizando los resultados obtenidos (antes, durante y al final) comprobando así la eficacia de estas fichas mediante las pruebas aplicadas a los alumnos notándose la mejoría en cada uno de ellos durante estas tres etapas. 2 Marco Teórico 1. Material Didáctico A través del tiempo, el significado de material didáctico se le ha llamado de diversos modos, como es: apoyos didácticos, recursos didácticos, medios educativos, sólo por mencionar algunos; pero dentro de éstos, el más utilizado es el material didáctico. Se entiende por material didáctico al conjunto de medios materiales que intervienen y facilitan el proceso de enseñanza-aprendizaje. Estos materiales pueden ser tanto físicos como virtuales, asumen como condición, despertar el interés de los estudiantes. FUNCIONES: Al momento de realizar los materiales didácticos es muy importante tomar en cuenta al público al que va dirigido con la finalidad que ese recurso realmente sea de utilidad; entre las funciones que tienen los materiales didácticos se encuentran las siguientes: Proporcionar información: Un material didáctico tiene como función ofrecer información a una o varias personas, está información que brinda debe ser de relevancia para el receptor, que principalmente se encuentra en un contexto educativo, el motivo de brindar la información por conducto de este medio es para que el receptor pueda comprenderla con mayor facilidad. Cumplir con un objetivo: Antes de realizar un material didáctico es primordial tener en claro el objetivo que se desea cumplir con éste, para que una vez que ya se haya 3 determinado, se proceda a la realización de un material que cumpla con las características deseadas para satisfacer al objetivo. Guiar el proceso de E-A (enseñanza-aprendizaje): Como bien se menciona en el punto anterior acerca de la importancia de los objetivos; los materiales didácticos ayudan a que el proceso de E-A no pierda su camino, es decir delimita los contenidos para no confundir a los estudiantes con información que no sea tan relevante. Factibilizar la comunicación entre el docente y los estudiantes: Los materiales didácticos deben estar creados a tal grado que cualquier persona pueda entenderlos; además, los materiales didácticos han manifestado cambios a través del tiempo en comparación con la educación tradicionalista, han generado estímulos en las relaciones entre los profesores y los alumnos, porque los primeros toman en cuenta las características de las personas a quienes va dirigido el material, y eso le permite a los estudiantes aportar ideas al momento de la explicación. La evaluación del material didáctico La evaluación, que se concibe como un proceso sistemático, presente a lo largo de todo el transcurso de conocimiento, es la que retroalimenta en forma permanente al maestro sobre su quehacer docente y le permite continuar de acuerdo con lo planeado, o enmendar rumbos conforme los resultados que va obteniendo.11 Es importante subrayar el hecho de que el material didáctico es necesario para tener una mejor oportunidad de aprendizaje.12 4 2. Parasitología La Parasitología es una rama de la Biología que estudia el fenómeno del parasitismo. Por un lado, estudia a los organismos vivos parásitos, y la relación de ellos con sus hospederos y el medio ambiente. Convencionalmente, se ocupa solo de los parásitos eucariotas como son los protozoos, helmintos (trematodos, cestodos, nematodos) y artrópodos; el resto de los organismos parásitos (virus, procariotas y hongos) tradicionalmente se consideran una materia propia de la microbiología. Por otro lado, estudia la parasitosis o enfermedades causadas por el hombre, animales y plantas por los organismos parásitos. 1,2 2.1 Examen Coproparasitoscópico (CPS) El examen Coproparasitoscópico (CPS) es uno de los análisis clínicos más antiguo, ya que es un estudio prescrito de materia fecal, para la búsqueda e identificación de formas parasitarias intestinales (huevos o larvas de diferentes géneros de helmintos y protozoos).21 2.2 Espécimen de Estudio y Método. Muestra de materia fecal y su observación microscópica de formas parasitarias obtenidas, por concentración – flotación, a partir de muestras de materia fecal (método coproparasitoscópico de Faust en serie de tres).21 2.3 Fundamento El procedimiento de flotación permite la separación de quistes de protozoarios y de algunos huevos de helmintos mediante el uso de Sulfato de Zinc con una gravedad 5 específica alta (δ= 1.18). Las formas parasitarias son recuperadas de una muestra de materia fecal, en la superficie de la solución de Sulfato de Zinc, mientras que los desechos celulares de la muestra se localizan en la parte inferior del tubo. Las formas parasitarias son teñidas con Lugol y observadas al microscopio para su identificación; el análisis se llevará a cabo en muestras de materia fecal de pacientes con signos y síntomas clínicos presuntivos de parasitosis intestinal.21 3. Control de Calidad y seguridad en el Laboratorio (Parasitología). Experiencia del personal Los organismos estatales y federales pueden exigir la evaluación continua del desempeño del laboratorio, y es la responsabilidad consciente del director y de su personal asegurar la ejecución cabal de las tareas requeridas. La aplicación de los procedimientos de control de calidad para el diagnóstico parasitológico y no suele ser tan exigente o tan compleja como en otras áreas de microbiología y otras clases de laboratorios de diagnóstico clínico. Sin embargo, pueden aplicarse aspectos del control de calidad al laboratorio de parasitología diagnóstica en áreas como la destreza del personal, la utilización de recursos y la educación continua a través del desarrollo de materiales de referencia y una biblioteca de consulta. Las precauciones de seguridad son un elemento integral e importante de las actividades en cualquier laboratorio. En el laboratorio de parasitología, los procedimientos de una seguridad adecuada requieren que el personal sea consciente de la higiene personal apropiada; el manejo y la disposición cuidadosa 6 de las muestras remitidas para el examen; la preparación, la manipulación y la disposición correctas de las sustancias químicas tóxicas y de los solventes inflamables; y el uso y el cuidado convenientes del equipo y materiales. El personal que trabaja en el campo de parasitología diagnóstica debe tener educación suficiente, entrenamiento especializado y experiencia práctica estrictamente supervisada en un laboratorio que realice diagnóstico parasitológico, además de la capacidad de reconocer e identificar los estadios diagnósticos de los parásitos humanos comunes, el personal debe estar familiarizado con los procedimientos técnicos de recolección y fijación y los métodos de examen de las muestras que se remiten habitualmente en el laboratorio. Los protocolos para la fijación y el almacenamiento de las muestras fecales deben ser expuestos en el laboratorio para estas ocasiones. Cada laboratorio debe crear una colección de material de referencia, en la forma de frotis fecales teñidos, heces conservadas en formol y frotis de sangre, que esté disponiblepara su estudio y para propósitos de evaluación. Los libros de texto, los atlas, los manuales de laboratorio clínico y las colecciones de diapositivas deben estar al alcance para estudio y consulta complementados con recursos como el Internet, que proporciona información sobre el diagnóstico de los parásitos y fotomicrografías de los organismos. Reactivo, colorantes y otras soluciones La calidad y la seguridad de los colorantes, los fijadores y otros reactivos utilizados son de gran importancia en el laboratorio diagnóstico. Todas las soluciones deben estar rotuladas de manera correcta con una descripción clara del contenido, la fecha 7 de preparación (o si se la adquirió comercialmente, la fecha de recepción) y la fecha de vencimiento. Equipo El equipo que suele utilizarse en el diagnóstico parasitológico consiste en microscopios, centrífugas, baños de agua, refrigeradores, congeladores y hornos. Es importante que todos funcionen adecuadamente. Los laboratorios deben adoptar programas de mantenimiento habituales para que el equipo permanezca limpio y se lo revise en forma periódica de acuerdo con las recomendaciones del fabricante. Higiene Personal En el laboratorio se deben cumplir las prácticas adecuadas de higiene. Es preciso lavarse las manos con frecuencia, en especial después de la manipulación de muestras, se deben usar batas o delantales de laboratorio protectores, guantes para evitar el contacto directo de las manos con las muestras trabajadas, así como lentes de seguridad para evitar que los ojos sean dañados por si algún reactivo o muestra llegase a salpicar al analista y las mesas que se usaron deben ser aseadas cuidadosamente. No se debe comer, beber o fumar en el laboratorio.5 Sustancias químicas y solventes peligrosos Se debe trabajar bajo una campana para la emanación de vapores cuando se usan ácidos, bases y otras sustancias corrosivas que pueden causar quemaduras graves y daño tisular. No se debe encender fuego en el mismo lugar donde se usan líquidos peligrosos, solventes o sustancias químicas. 8 Uso del Equipo El personal debe estar totalmente familiarizado con el equipo que utiliza en el laboratorio. El uso descuidado de las centrífugas, elementos de calentamiento, placas calientes y material de vidrio y otros suministros frágiles puede contribuir a las lesiones. Es responsabilidad del director o supervisor del laboratorio que se establezcan y sigan las prácticas correctivas de seguridad. 4. Preparación Biológica Con el objeto de lograr mejor observación microscópica de los microorganismos, células o tejidos que se han teñido y aclarado es necesarios montarlos temporal o permanentemente durante periodos más o menos prolongados en medios especiales para evitar que se deformen o se destruyan. En toda preparación biológica el material por observar se coloca sobre el portaobjetos, se extiende o se acomoda convenientemente, se le agrega el medio de montaje y sobre este se le coloca el cubreobjetos, que es mucho más delgado que el primero, de manera que la distancia que lo separa del material biológico es mínima y permite observaciones al microscopio a grandes aumentos. Las preparaciones pueden ser de 2 tipos: temporales o permanentes. 4.1 Preparación Permanente Las preparaciones permanentes son aquellas que se han sometido a un proceso largo de preparación, el que permite que se mantengan en buenas condiciones para su observación por periodos prolongados de tiempo. La preparación de estas 9 muestras incluye etapas de fijación del material, deshidratación, inclusión en parafina, corte de la muestra en capas muy finas, colocación de estas capas que contienen la muestra en un portaobjetos. 4.2 Preparación Temporal Los preparados temporales se realizan generalmente con agua destilada, glicerina o simplemente agua corriente (un medio liquido), la utilidad es simple, observar alguna estructura u organismo "in vivo", por ejemplo, para observar los protozoos que habitan en cuerpos de agua dulce se utiliza estos preparados; solo se toma una gota de agua de ese cuerpo de agua, se la coloca entre porta y cubreobjetos y se la mira al microscopio, tienen una duración limitada. Las preparaciones temporales corresponden a cortes frescos del material a observar, los que se realizan en el momento y tienen una corta duración. Una vez realizados los cortes, se coloca una gota de agua en un portaobjetos, y en ella se ubica un trozo del material a observar, el que debe quedar completamente cubierto por el agua. Sobre esta preparación se coloca cuidadosamente un cubreobjetos, evitando la formación de burbujas que interfieren en la observación microscópica. Finalmente, se elimina exceso de agua, y la preparación puede teñirse para ser observada. 10 Planteamiento del Problema Es de gran importancia la utilización de preparaciones permanentes de huevos de helmintos, para instruir a los alumnos de séptimo semestre y así cumplir con el objetivo general del programa de Microbiología General II de la Carrera de Química- Farmacéutico-Biológica, impartida en la Facultad de Estudios Superiores Zaragoza; que es Analizar los aspectos generales, la morfología y fisiología de los parásitos. Esto ayuda a desarrollar una mejor habilidad en la observación e identificación de los distintos géneros de helmintos. Debido a esto, es necesario realizar y evaluar un material didáctico, que identifique el estadio, género y especie de huevos de helmintos, para así colocarlos en fichas digitales de información con sus respectivas características generales, evaluar su eficacia y utilidad de este material. Por lo que se plantean las siguientes preguntas: • ¿Estas preparaciones permanentes ayudarán a los alumnos a identificar con mayor facilidad, el estadio, género y especie de los helmintos? • ¿Es de utilidad este material a los alumnos del Módulo de Microbiología General II en el laboratorio, antes de que el profesor les dé a conocer el tema completo? • ¿Habrá una mejoría en los resultados de los alumnos, luego de aplicarles una prueba, antes y después de brindarles el material didáctico elaborado? 11 Hipótesis Las preparaciones permanentes de huevos de helmintos son un estándar de oro para el estudio de las patologías causadas por estos, es importante tener una gama amplia de muestras montadas, en este caso se cuentan con siete géneros diferentes de huevos de helmintos previamente identificados. En cumplimiento de una parte del objetivo general del programa de estudio de Microbiología General II se evaluarán aspectos generales, morfológicos y fisiológicos de los diferentes parásitos en el material didáctico en diferentes momentos (antes y después de proporcionarles el material) realizando una evaluación a los alumnos esperando una mejoría de más del 80% en los resultados de las pruebas de los alumnos evaluados. 12 Objetivo General • Evaluar la eficacia de un material didáctico digital en preparaciones de huevos de helmintos, realizando pruebas a los alumnos del Módulo de Microbiología General II Laboratorio, antes y después de proporcionarles este material como apoyo. Objetivos Particulares • Evaluar el material didáctico elaborado en fichas digitales con información de huevos de helmintos. • Realizar pruebas a los alumnos de séptimo semestre antes y después de proporcionarles el material. • Comprobar la eficiencia de este material mediante un análisis observacional- prospectivo-longitudinal-comparativo de los datos arrojados por las evaluaciones realizadas a dos grupos de aproximadamente cuarenta alumnos comparando los resultados de ambos grupos. 13 Metodología Material y Reactivos • Muestras de huevos de helmintos proporcionadas por el Dr. Jaime VargasArzola, Universidad Autónoma Benito Juárez Oaxaca (UABJO) Ciencias Químicas. • Entelan. • Mechero. • Pipetas Pasteur. • Guantes. • Cubrebocas. • Microscopio. A) Procedimiento para obtención y preparación de huevos de helmintos. 1) Se recibió muestras de huevos de helmintos donadas por el Dr. Jaime Vargas Arzola. Universidad Autónoma Benito Juárez Oaxaca (UABJO) Ciencias Químicas. 2) Con una pipeta Pasteur se tomaron gotas de las muestras donadas suspendidas en una gelatina y se puso una gota de esta en diversos portaobjetos. 3) Una vez montadas las muestras en los portaobjetos con las muestras se puso una gota de Entellan como fijador de la preparación. 14 4) Sin dejar secar el Entellan, se colocó encima un cubreobjetos evitando la formación de burbujas, colocándolo de un lado para tener una buena distribución de Entellan sobre la muestra en el portaobjetos. 5) Se dejaron secar las preparaciones, y se procederá a observarlas y a identificar los distintos géneros entre estos huevos de helmintos encontrados. Una vez identificados, se clasificarán de acuerdo a su género y sus distintas características generales y morfofisiológicas. a) Diagrama de flujo para obtención y preparación de huevos de helmintos. Se recibió muestras de huevos de helmintos donadas por el Dr. Jaime Vargas Arzola. Universidad Autónoma Benito Juárez Oaxaca (UABJO) Ciencias Químicas. Con una pipeta Pasteur se tomaron gotas de las muestras donadas suspendidas en una gelatina y se puso una gota de esta en diversos portaobjetos. Una vez montadas las muestras en los portaobjetos con las muestras se puso una gota de Entellan como fijador de la preparación. Sin dejar secar el Entellan, se colocó encima un cubreobjetos evitando la formación de burbujas, colocándolo de un lado para tener una buena distribución de Entellan sobre la muestra en el portaobjetos. Se dejaron secar las preparaciones, y se procederá a observarlas y a identificar los distintos géneros entre estos huevos de helmintos encontrados. Una vez identificados, se clasificarán de acuerdo a su género y sus distintas características generales y morfofisiológicas. 15 B) Elaboración de fichas digitales y evaluación de las mismas. 6) Se elaborarán fichas digitales de las muestras, con todas sus características particulares, de manera que puedan visualizarse claramente. 7) Ya terminadas se les aplicará una evaluación a los alumnos de séptimo semestre sobre las muestras encontradas sin haberles proporcionado el material antes. 8) Al finalizar la prueba se les proporcionará el material con la información completa, para que los alumnos la analicen y estudien, antes de que la información sea dada por completo por el profesor. 9) A la siguiente semana se aplicará una segunda prueba a los alumnos para evaluar la eficacia del material y la disposición de los alumnos al proporcionarles un material de estudio, antes de que el tema sea brindado por el profesor. 10) Ya que el profesor haya abordado y explicado el tema correspondiente a los diferentes tipos de helmintos y que los alumnos estén familiarizados con los conceptos y ciclos de cada uno, se les aplicará una tercera prueba con el mismo material, y se evaluará su eficacia de este mediante una comparación estadística entre los resultados de las tres pruebas entre los dos grupos, esperando obtener una mejoría de en los resultados de los alumnos. 16 b) Diagrama de flujo Elaboración de fichas digitales y evaluación de las mismas. Se elaborarán fichas digitales de las muestras, con todas sus características particulares, de manera que puedan visualizarse claramente. Ya terminadas se les aplicará una evaluación a los alumnos de séptimo semestre sobre las muestras encontradas sin haberles proporcionado el material antes. Al finalizar la prueba se les proporcionará el material con la información completa, para que los alumnos la analicen y estudien, antes de que la información sea dada por completo por el profesor. A la siguiente semana se aplicará una segunda prueba a los alumnos para evaluar la eficacia del material y la disposición de los alumnos al proporcionarles un material de estudio, antes de que el tema sea brindado por el profesor Ya que el profesor haya abordado y explicado el tema correspondiente a los diferentes tipos de helmintos y que los alumnos estén familiarizados con los conceptos y ciclos de cada uno, se les aplicará una tercera prueba con el mismo material, y se evaluará su eficacia de este mediante una comparación estadística entre los resultados de las tres pruebas entre los dos grupos, esperando obtener una mejoría de en los resultados de los alumnos. 17 Resultados A) Tabla 1. Se muestran la gama de los huevos de helmintos encontrados de las muestras donadas y montadas permanentemente. Imágenes de Huevos de Helmintos 40X Género y Especie Ascaris lumbricoides Trichuris trichiura Hymenolepis nana Paragonimus mexicanus 18 Fasciola hepatica Taenia solium Toxocara canis Con los huevos de helmintos identificados previamente, se elaboró el material didáctico (fichas digitales) y se les proporcionó a los alumnos, después de realizarles la primera prueba. 19 Tabla 2. Fichas Digitales Elaboradas como Material Didáctico. 20 Tabla 3. Imágenes de la Prueba digital Aplicada. 21 B) Resultado de Evaluación de Alumnos (Estadísticos y Gráficos) Se realizó un estudio observacional-prospectivo-longitudinal-comparativo para evaluar la eficacia del material didáctico mediante datos estadísticos analizados por una prueba Paramétrica la cual fue mediante el método de ANOVA de un factor, comparando los resultados de los alumnos en las diferentes etapas de aplicación de las pruebas (al Inicio, a la Mitad y al Final) la cual nos arrojó lo siguiente: ➢ Para el grupo 1702 Ho: µ1=µ2=µ3: Sig ≥0.05 HI: µ1≠µ2≠µ3: Sig <0.05 Descriptivos CALIF1702 N Media Desviación típica Error típico Intervalo de confianza para la media al 95% Mínimo Máximo Límite inferior Límite superior AL INICIO 38 ,5221 ,55230 ,08960 ,3406 ,7036 ,00 2,13 EN LA MITAD 38 2,7729 2,29056 ,37158 2,0200 3,5258 ,10 8,09 AL FINAL 38 8,5579 1,55418 ,25212 8,0470 9,0687 3,60 10,00 Total 114 3,9510 3,76382 ,35251 3,2526 4,6494 ,00 10,00 Prueba de homogeneidad de las varianzas CALIF1702 Estadístico de Levene gl1 gl2 Sig. 26,114 2 111 ,0001 22 ANOVA de un factor CALIF1702 Suma de cuadrados gl Media cuadrática F Sig. Inter-grupos 1306,012 2 653,006 245,886 ,0001 Intra-grupos 294,785 111 2,656 Total 1600,797 113 Comparaciones múltiples Variable dependiente: CALIF1702 HSD de Tukey (I) ETAPA (J) ETAPA Diferencia de medias (I-J) Error típico Sig. Intervalo de confianza al 95% Límite inferior Límite superior AL INICIO EN LA MITAD -2,25079* ,37386 ,0001 -3,1389 -1,3626 AL FINAL -8,03579* ,37386 ,0001 -8,9239 -7,1476 EN LA MITAD AL INICIO 2,25079* ,37386 ,0001 1,3626 3,1389 AL FINAL -5,78500* ,37386 ,0001 -6,6731 -4,8969 AL FINAL AL INICIO 8,03579* ,37386 ,0001 7,1476 8,9239 EN LA MITAD 5,78500* ,37386 ,0001 4,8969 6,6731 *. La diferencia de medias es significativa al nivel 0.05. 23 CALIF 1702 HSD de Tukeya ETAPA N Subconjunto para alfa = 0.05 1 2 3 AL INICIO 38 ,5221 EN LA MITAD 38 2,7729 AL FINAL 38 8,5579 Sig. 1,000 1,000 1,000 Se muestran las medias para los grupos en los subconjuntos homogéneos. a. Usa el tamaño muestral de la media armónica = 38.000. Gráfico 1. Representación gráfica de las evaluaciones por etapas del grupo1702. 24 ➢ Para el grupo 1752 Ho: µ1=µ2=µ3: Sig ≥0.05 HI: µ1≠µ2≠µ3: Sig <0.05 Descriptivos CALIF1752 N Media Desviación típica Error típico Intervalo de confianza para la media al 95% Mínimo Máximo Límite inferior Límite superior AL INICIO 39 ,0741 ,12719 ,02037 ,0329 ,1153 ,00 ,49 A LA MITAD 39 3,3818 2,84536 ,45562 2,4594 4,3042 ,00 9,10 AL FINAL 39 8,2436 2,02534 ,32431 7,5871 8,9001 3,00 10,00 Total 117 3,8998 3,91866 ,36228 3,1823 4,6174 ,00 10,00 ANOVA de un factor CALIF1752 Suma de cuadrados gl Media cuadrática F Sig. Inter-grupos 1317,139 2 658,570 161,754 ,0001 Intra-grupos 464,142 114 4,071 Total 1781,281 116 Prueba de homogeneidad de varianzas CALIF1752 Estadístico de Levene gl1 gl2 Sig. 46,481 2 114 ,0001 25 Comparaciones múltiples Variable dependiente: CALIF1752 HSD de Tukey (I) ETAPA2 (J) ETAPA2 Diferencia de medias (I-J) Error típico Sig. Intervalo de confianza al 95% Límite inferior Límite superior AL INICIO A LA MITAD -3,30769* ,45694 ,0001 -4,3928 -2,2226 AL FINAL -8,16949* ,45694 ,0001 -9,2546 -7,0844 A LA MITAD AL INICIO 3,30769* ,45694 ,0001 2,2226 4,3928 AL FINAL -4,86179* ,45694 ,0001 -5,9469 -3,7767 AL FINAL AL INICIO 8,16949* ,45694 ,0001 7,0844 9,2546 A LA MITAD 4,86179* ,45694 ,0001 3,7767 5,9469 *. La diferencia de medias es significativa al nivel 0.05. CALIF 1752 HSD de Tukeya ETAPA2 N Subconjunto para alfa = 0.05 1 2 3 AL INICIO 39 ,0741 A LA MITAD 39 3,3818 AL FINAL 39 8,2436 Sig. 1,000 1,000 1,000 Se muestran las medias para los grupos en los subconjuntos homogéneos. a. Usa el tamaño muestral de la media armónica = 39.000. 26 Gráfico 2. Representación gráfica de las evaluaciones por etapas del grupo 1752. 27 C) Comparación entre Grupos 1702 y 1752 La Comparación de desempeño final entre ambos grupos se realizó mediante el uso del método de análisis estadístico T de student para muestras independientes por lo cual: Ho: µ02=µ52 Sig: ≥0.05 HI: µ02≠µ52 Sig: <0.05 Estadísticos de grupo GRUPO N Alumnos Media Desviación típ. Error típ. de la media CALIFINAL 1702 39 8,2436 2,02534 ,32431 1752 38 8,5579 1,55418 ,25212 28 Grafico 3. Representación gráfica de los promedios finales comparados entre los dos grupos. 29 Discusión de Resultados Se obtuvieron e identificaron un total de 7 diferentes géneros (Tabla 1) de huevos de helmintos, los cuales fueron donados por el Dr. Jaime Vargas Arzola (UABJO), posteriormente se montaron con Entellan de forma permanente, para conservar mejor las estructuras de estos huevos. Al observar los huevos de helmintos de forma nítida, permite una identificación más fácil y rápida por lo que el alumno presenta una mejoría con la ayuda de preparaciones permanentes, se puede concluir con base a lo realizado, que el método de montaje permanente utilizado es muy eficiente y este nos permitirá conservar estas muestras de huevos de helmintos por un largo período de tiempo, esto favorecerá que los alumnos de las siguientes generaciones puedan utilizar este material, para que puedan adquirir destreza en la observación e identificación de estos huevos de helmintos. Posteriormente a esto, se elaboró el material didáctico (fichas digitales de información) con estas preparaciones, indicando todas sus características más importantes de cada uno de ellos, y fueron entregados a los alumnos de séptimo semestre. Se esperaba una mejoría notable de ambos grupos en las etapas, Mitad y Final comparadas con la etapa de Inicio y como se pudo apreciar, para ambos grupos se observó una mejoría significativa de las tres calificaciones de ambos grupos (1702,1752) notándose que fue de poco más del 80% esta mejoría utilizando las fichas digitales antes mencionadas. Se realizó una prueba estadística ANOVA de un factor la cual nos arrojó, para el grupo 1702 un valor de significancia de 0.0001 el cual se rechaza con respecto a la 30 hipótesis nula ya que debe ser mayor a 0.05, por lo tanto, esto nos indica que los resultados de las tres pruebas no son iguales y que si hubo una mejoría notable estadísticamente significativa (Gráfico 1) en el promedio de los alumnos en este grupo. En tanto en el grupo 1752 se realizó la misma prueba estadística para evaluar el desempeño, y se obtuvo un valor de significancia de 0.0001 al igual que el grupo anterior la hipótesis nula se rechaza y se acepta la hipótesis alterna la cual dice que el valor de significancia debe ser menor a 0.05 lo que nos indica que el promedio es diferente en las tres pruebas siendo esto estadísticamente significativo (Gráfico 2), de la misma forma que el grupo anterior este aumenta y nos indica que hubo una mejoría de los alumnos. Finalmente se realizó una comparación entre las calificaciones finales entre los dos grupos mediante una prueba estadística T de Student para muestras independientes, para evaluar si existe alguna diferencia entre los grupos, estos valores nos indican que grupo obtuvo mejores resultados por lo que al analizar el valor de significancia arrojado que fue de 0.035 se acepta la hipótesis nula, esta nos indica que si el valor de significancia es mayor o igual a 0.05 esta se acepta y por lo tanto las medias son iguales, y efectivamente la media de promedio del grupo 1702 fue de 8.2436 y la media de promedio del grupo 1752 fue de 8.5579, la diferencia se debe a que en el grupo 1702 fueron 38 alumnos y en el 1752 fue de 39 alumnos y como se muestra en el Gráfico 3 existe un mayor aprovechamiento por parte del grupo 1702 ya que no presenta alumnos reprobados, a diferencia del grupo 1752 , el cual presentó solo dos casos de alumnos que reprobaron. 31 En cuanto al material didáctico realizado y los datos arrojados por los sujetos evaluados (alumnos de séptimo semestre) de los grupos 1702 y 1752, se observó que este material si cumple su objetivo como material didáctico, ya que al tenerlo los alumnos tuvieron esa inquietud, ganas de revisarlo y estudiarlo sin la necesidad de que el profesor se los pidiera, esto demuestra la voluntad de los alumnos por el estudio, y claramente se vio reflejado en los resultados de ambos grupos, claro que hubo excepciones de dos alumnos, habría que evaluar por qué estos dos alumnos no mejoraron, sin embargo se cumplió con lo esperado lo cual fue tener una mejoría de más del 80% de los promedios, esto se comprobó estadísticamente y si funciona como material de apoyo para el Laboratorio De Microbiología General II. Es importante señalar que se han realizado diversos tipos de estudio para evaluar material didáctico, sin embargo, la investigación y los resultados de este trabajo, son únicos ya que este estudio y la interpretación de los resultados arrojados por este, no han sido reportados en otro estudio en el pasado. Por lo que, este podría servir como pauta para algún otro estudio similar o con la misma temática. 32 Conclusión Con base a lo realizado y observado se puede concluir que el método de preparación permanente para elaborar el material didáctico (fichas digitales), utilizado es eficiente, ya que se pudieron observar las características morfofisiológicas con buena calidad, definición y toda su información general de estos huevos de helmintos; una vez proporcionado el material a los alumnos de los 2 grupos de séptimo semestre, se les aplicaron 3 pruebas en diferente periodo de tiempo (al inicio, al medio y al final), los datos concluyen que este material didáctico evaluado tiene una eficiencia de poco más del 80% entre ambos grupos, esto nos indica que efectivamente, este material si ayudó a los alumnosa identificar más fácilmente las características generales de estos huevos de helmintos. Por lo tanto, el material didáctico elaborado si cumplió con su objetivo principal al demostrar su eficacia, al observar mejoría notable entre ambos grupos durante las 3 pruebas aplicadas. 33 Referencias 1) Ash, Lawrence R. Atlas de Parasitología humana. 5ª ed. Buenos Aires: Editorial Panamericana: 2010. 2) Tay J, Velasco C, Gutíerrez M. Parasitología médica. 7ª ed. México: Méndez editores: 2002. 3) Aguirre, Pablo S. Manual de Prácticas de Microbiología General II. México: Facultad de Estudios Superiores Zaragoza, UNAM:2012. 4) Tortora, Gerard J. Fanke. Beidel R. Microbiology an Introduction. 5ª ed. The Benjamin/Cummings Publishing Company, Inc.1995. 5) Fernández E, Mazziotta D. Gestión de la calidad en el Laboratorio Clínico. Editorial Médica Panamericana; Buenos Aires:2010. 6) Haro A, Irene de. Diagnóstico Morfológico de las Parasitosis, Méndez Editores. 2ª ed. México: 1995 7) Becerril Flores, Marco Antonio. Parasitología médica, 4ª ed. McGraw-Hill Interamericana Editores, México, D.F. 2014. 8) Montoya Palacio, Martha N. Atlas de parasitología. Corporación para Investigaciones Biológicas, Medellín:2011 9) Romero Cabello, Raúl, Microbiología y parasitología humana: bases etiológicas de las enfermedades infecciosas y parasitarias. Editorial Médica Panamericana. México:2007 10) Rodríguez Pérez, Elba Guadalupe, autor Atlas de parasitología médica: Mc Graw Hill. México:2005 javascript:open_window(%22http://biblio66.zaragoza.unam.mx:8991/F/VPHXY7NCDK9RYC91AUTBGQCA7A789UNUSTBYDAN72A7CK3N19K-34501?func=service&doc_number=001253372&line_number=0010&service_type=TAG%22); javascript:open_window(%22http://biblio66.zaragoza.unam.mx:8991/F/VPHXY7NCDK9RYC91AUTBGQCA7A789UNUSTBYDAN72A7CK3N19K-34501?func=service&doc_number=001253372&line_number=0010&service_type=TAG%22); 34 11) Morales Muñoz, Pablo A. Elaboración de Material Didáctico, Viveros de Asís 96, Col. Viveros de la Loma, Tlalnepantla, C.P. 54080, Estado de México. 2012 12) Blázquez, F., Cabero, J., Loscertales, F., "Un estudio sobre la integración de los medios y recursos tecnológicos en la Escuela", en “Memoria de José Manuel López Arenas”. Sevilla, Alfar, 1994. 13) Quiroz H. Parasitología: enfermedades parasitarias de animales domésticos. México: Editorial Limusa; 2005: p. 117- 118. 14) Capuccino J, Sherman N. Microbiology: Laboratory manual. 5a ed. USA: Benjamín/Cuminngs Pub Co edition; 1998. 15) Rodríguez E. Manual ilustrado de parasitología médica. México: Editorial Cuellar; 1998. 16) Zaman V. Atlas de parasitología médica. 2ª ed. Argentina: editorial Médica Panamericana; 2004. 17) Greenberg A. Standard methods of the examination of water and wastewater. 18a ed. USA: ALPHA edition; 1992. 18) Biagi F. Enfermedades parasitarias. 3a ed. México: Ediciones el Manual Moderno; 2004. 19) Fleck L. Diagnostic techniques in medical parasitology. UK: Editorial Wright; 1989. 20) Beaver P. Parasitología clínica. 2a ed. México: Salvat Editores; 1986. 21) Jiménez C. Enedina. Control de Calidad en Parasitología, 1a ed. México, Editorial Prado, 2006. 35 22) Bowman, D.D., 2011. Georgis. Parasitología Veterinaria. Novena edición. Elsevier Saunders. Barcelona, España. pp. 60-79. 23) Faust, E.C., A critical study of clinical laboratory techniques for the diagnosis of protozoan cyst and helminto eggs in feces. Am. J. Trop. Med. 1938.18, 169-183. 24) Aguilar Juárez, Irene, Ayala De la Vega, Joel, Lugo Espinosa, Oziel, & Zarco Hidalgo, Alfonso. (2014). Análisis de criterios de evaluación para la calidad de los materiales didácticos digitales. Revista iberoamericana de ciencia tecnología y sociedad, 9(25), 73-89. 25) Robinson Rodríguez Rosa Julia, Castellanos Martínez Rosa, Mariño Castellanos María Caridad, Ochoa Zaldívar Manuel, Deniz González María Isabel. Perfeccionamiento de la microbiología y parasitología médicas mediante un enfoque interdisciplinario. MEDISAN. 2014 dic.1736-1747. 26) Goic G Alejandro. Parasitología Humana. Rev. méd. Chile.2013. Ago; 141(8): 1087-1088. 27) Herrera N. Aprendizaje cooperativo, pilar de las prácticas de laboratorio. Grupo Editorial, Norma SA. 2007. 28) Santos Patrícia Honório Silva, Barros Rita de Cássia Santos, Gomes Kátia Virgínia Galvão, Nery Adriana Alves, Casotti Cezar Augusto. Prevalence of intestinal parasitosis and associated factors among the elderly. Rev. bras. geriatr. gerontol.2017. Apr; 20(2): 244-253. 29) Sá, Mariangela Facco de, Gonçalves, Ricardo Aymay, Marder, Cristiana, Baldissera, Matheus Dellamea, Oliveira, Camila Belmonte de, Noll, Jessica Caroline Gomes, Silva, Filipe, & Monteiro, Silvia Gonzalez. (2017). Adapted 36 Bailenger method improves the rate of Ascaris suum eggs recovery from liquid pig manure compost. Ciência Rural, 47(4), e20160837. Epub March 06, 2017. 30) Lucero-Garzón Tarín A, Álvarez-Motta Luís A, Chicue-Lopez Jeison F, López- Zapata Deyirley, Mendoza-Bergaño Cristian A. Parasitosis Intestinal y Factores de Riesgo en niños de los Asentamientos Subnormales, Florencia-Caquetá, Colombia. Rev. Fac. Nac. Salud Pública. 2015. Aug; 33(2): 171-180. 31) Vélez H, Rojas W, Borrero J, Restrepo J. Enfermedades Infecciosas. Fundamentos de Medicina. 6ta Ed. Corporación para Investigaciones Biológicas. 2008. 830. 32) Botero D, Restrepo M. Parasitosis Humanas. Corporación de Investigaciones Biológicas. 5ta Ed. 2012. 735. 33) Santillán Graciela, Bastin Vanesa, Céspedes Graciela, Monkiewicz Adriana. Evaluación de un antígeno purificado para el diagnóstico de toxocariosis. Rev. argent. microbiol. 2013 Jun; 45(2): 80-85. 34) Restrepo Von Schiller Isabel Cristina, Mazo Berrío Liliana Patricia, Salazar Giraldo Mary Luz, Montoya Palacio Martha Nelly, Botero Garcés Jorge Humberto. Evaluación de tres técnicas coproparasitoscópicas para el diagnóstico de geo helmintos intestinales. Iatreia. 2013 Jan; 26(1): 15-24. 35) Bachtiar Arian, Auer Herbert, Finsterer Josef. Parálisis de Bell y dolor facial asociados con infección por Toxocara sp. Rev. chil. infectol.2012 Oct; 29(5): 551- 553. 36) Bautista Garfias Carlos Ramón. Helmintos parásitos de importancia veterinaria: regulación de la respuesta inmunitaria del portador y su uso potencial para el 37 tratamiento de enfermedades inflamatorias. Vet. Méx [revista en la Internet]. 2009. Sep; 40(3): 283-291. 37) Giraldo María Isabel, García Nora Lizeth, Castaño Jhon Carlos. Prevalencia de helmintos intestinales en caninos del departamento del Quindío. Biomédica. 2005 Sep; 25(3): 346-352. 38) Luty T, Mizgajska H. Prevalence of Toxocara spp. And other intestinal parasites in dogs and cats. Vet Med 1999; 55: 759. 39) Fernández-Niño Julián A., Reyes-Harker Patricia, Moncada-Álvarez Ligia I, C. López Myriam, Cháves María del Pilar, Knudson Angélica et al. Tendencia y Prevalencia de las Geohelmintiasis en La Virgen, Colombia 1995-2005. Rev. salud pública. 2007 Apr; 9(2): 289-296. 40) Campos María Claudia, Beltrán Milena, Fuentes Nancy, Moreno Gerardo. Huevos de helmintos como indicadores de contaminación de origen fecal en aguas de riego agrícola, biosólidos, suelos y pastos. Biomédica. 2018; 38(1): 42- 53. 41) Vargas-Arzola, Segura-Salvador, Reyes-Velasco, Detection of Paragonimus mexicanus (Trematoda) metacercariae in crabs from Oaxaca, Mexico. 2014 Sep; 137:95-8. 42) Universidad Autónoma Benito Juárez de Oaxaca, Facultad de Ciencias Químicas, ficha Técnica, Laboratorio de Parasitología, UABJO, Oaxaca, 2016. 38 Anexos Anexo 1. Prueba Aplicada a los alumnos en tres etapas. 39 Anexo 2. Ingredientes y preparación de Gelatina de montaje para preservación de Helmintos. Líquido de Montaje con Gelatina Es útil para mantener material fijado,especialmente para docencia o para control de procedimientos especiales. Algunos autores lo recomiendan también para la preparación de cabellos destinados al examen directo. Sin embargo, solo lo recomendamos en casos de difícil identificación, o cuando el material debe ser refrigerado para otro día. • Glicerina 55 mL. • Fenol 1g. • Agua Destilada 44 mL. • Gelatina 10g. Disolver la gelatina en agua caliente. otra forma de disolver es tener el agua en un Beaker y verter suavemente y verter suavemente la gelatina, tapar con Parafilm y llevar a 37°c hasta que se disuelva. Luego agregar la gelatina y el fenol. Colorante de Contraste Azul de poirriers (Cotton blue) 0.05 g O También puede utilizarse fucsina ácida 0.1 g. Adicionar el colorante elegido sobre la solución A, y mezclar muy bien. Repartir en tubos tapa rosca más o menos 5 mL por tubo y guardar en nevera. Portada Índice Introducción Marco Teórico Planteamiento del Problema Hipótesis Objetivos Metodología Resultados Discusión de Resultados Conclusión Referencias Anexos
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