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UNIVERSIDAD NACIONAL AUTÓNOMA DE MÉXICO FACULTAD DE MEDICINA DIVISIÓN DE ESTUDIOS DE POSGRADO HOSPITAL GENERAL “DR. MANUEL GEA GONZÁLEZ” División Dermatología TÍTULO CUANTIFICACIÓN DE CÉLULAS DE LANGERHANS Y DETERMINACIÓN DE FACTORES DE ACTIVACIÓN- MADURACIÓN EN PIEL NORMOPIGMENTADA Y DESPIGMENTADA EN PACIENTES CON VITILIGO DISEMINADO TESIS QUE PARA OBTENER EL GRADO DE LA ESPECIALIDAD DE DERMATOLOGÍA PRESENTA DRA. HILAYALI AGUILAR MOLINA DIRECTOR DE TESIS DRA. ROSA MARÍA LACY NIEBLA MÉXICO, D. F. JULIO 2015 UNAM – Dirección General de Bibliotecas Tesis Digitales Restricciones de uso DERECHOS RESERVADOS © PROHIBIDA SU REPRODUCCIÓN TOTAL O PARCIAL Todo el material contenido en esta tesis esta protegido por la Ley Federal del Derecho de Autor (LFDA) de los Estados Unidos Mexicanos (México). El uso de imágenes, fragmentos de videos, y demás material que sea objeto de protección de los derechos de autor, será exclusivamente para fines educativos e informativos y deberá citar la fuente donde la obtuvo mencionando el autor o autores. Cualquier uso distinto como el lucro, reproducción, edición o modificación, será perseguido y sancionado por el respectivo titular de los Derechos de Autor. Autorizaciones Dr. Octavio Sierra Martínez HOSPITAL GENERAL "DR. MANUEL GEA GONZÁLEZ" DIRECCiÓN DE ENSEÑANZA E INVESTIGACiÓN Dra. María Elisa Vega Memije /.~ __ _ ._ .. _ .• Subdirección de Investigación DR .~¡ • TAL GfNr.'f,./jL . 'Y¡Alvur=t .... ... ~ .', Hospital General "Dr. Manuel Gea Gonzá ez" -, - (JEt. GON1.Al.t'~1 ,~ 4-!l~:.;::~~~IO~ Dra. Rosa María Lacy Niebla Médico Adscrito al Servicio de Dermatología. Hospital General "Dr. Manuel Gea González" '""W;'7¿:~ . -----....:.. "'~¡CION CUANTIFICACiÓN DE CÉLULAS DE LANGERHANS y DETERMINACIÓN DE FACTORES DE ACTIVACIÓN- MADURACiÓN EN PIEL NORMOPIGMENTADA y DESPIGMENTADA EN PACIENTES CON VITILlGO DISEMINADO COLABORADORES: Firma: 7>'''9:*6~L...!.~--- Nombre: Dra. Rosa María Lacy Niebla Firma: -----'-*'~-'-flI"'- Nombre: Dra. Lorena Lammoglia Ordiales Este trabajo de tesis con No. PROT 06-93-2013, presentado por el alumno Hilayali Aguilar Molina se presenta en forma con visto bueno por el Tutor principal de la Tesis Dra. Rosa María Lacy Niebla, con fecha de Julio 2015 para su Impresión final. j./44J Subdirector de Investigación Dra. María Elisa Vega Memije Dra. Rosa María Lacy Niebla Este trabajo fue realizado en el Hospital General “Dr. Manuel Gea González” en el servicio de Dermatología bajo la dirección de la Dra. Rosa María Lacy Niebla Agradecimientos A mi hijo y esposo, quien me inspira a ser mejor cada día. A mis padres, quienes me han apoyado en todo momento. A los maestros que me han inspirado a seguir por el camino correcto. Al director y asesores de tesis que han permitido concretar el esfuerzo. INDICE GENERAL RESUMEN INTRODUCCIÓN METODOLOGÍA ANALISÍS ESTADÍSTICO RESULTADOS DISCUSIÓN CONCLUSIONES AGRADECIMIENTOS REFERENCIAS “Cuantificación de Células de Langerhans y determinación de factores de activación-maduración en piel normopigmentada y despigmentada en pacientes con vitiligo diseminado” Aguilar-Molina H1, Lacy-Niebla RM2, Lammoglia-Ordiales L2, 1Residente de 3er año de Dermatología, Hospital General Dr Manuel Gea Gonzalez, Distrito Federal, México 2Dermatólogo. Adscrito del Servicio de Dermatología, Hospital General Dr. Manuel Gea González, Distrito Federal, México. RESUMEN Introducción: El vitiligo es una enfermedad adquirida caracterizada por la pérdida progresiva de melanocitos, es la enfermedad hipopigmentaria más común. Poco se sabe acerca de la patogenia, la cual todavía es desconocida y considerada multifactorial. El objetivo del estudio es comparar la cantidad de células de Langerhans en la piel despigmentada con la piel normopigmentada así como los factores de activación- maduración de pacientes con vitiligo diseminado. Material y métodos: Se realizó un estudio comparativo, abierto, observacional, prolectivo, transversal, del 1 de enero de 2014 al 1 de enero de 2015; se incluyeron 20 pacientes con diagnóstico de vitiligo diseminado. A todos los participantes se les realizó toma de biopsia de piel sana y piel afectada, que fueron inmunomarcados con CD1a, CD80 y CD83 Resultados: El inmunomarcaje evidenció un marcaje mayor de CD1a en biopsias cutáneas de piel con vitiligo comparada con piel normopigmentada (20.2 vs 15.7, p=0.006). El marcaje de activación (CD80) y maduración (CD83) fueron negativos en ambos grupos (piel con vitiligo vs normopigmentada, p=1.0) Conclusiones: En este estudio se corrobora el incremento en el número de células de Langerhans en piel despigmentada de pacientes con vitiligo diseminado, comparada con la piel pigmentada, con significancia estadística; sin embargo, no se pudo evidenciar ni activación ni maduración. Palabras clave: Vitiligo, Células de Langerhans, activación-maduración ABSTRACT Introduction: Vitiligo is an acquired disease characterized by progressive loss of melanocytes, is the most common hipopigmentary disease. Little is known about the pathogenesis, which is still unknown and considered multifactorial. The aim of the study is to compare the number of Langerhans cells and factors of activation-maturation in lesional vs non lesional skin in patients with disseminated vitiligo. Materials and methods: An open, observational, prospective, transversal comparative study was performed, from January 1, 2014 to January 1, 2015; we included a total of 20 patients with a diagnosis of disseminated vitiligo. All participants underwent biopsy of lesional and non lesional skin and performed immunochemistry staining CD1a, CD80 and CD83. Results: The immunochemistry staining showed increased CD1a in lesional skin compared with non lesional skin (20.2 vs 15.7, p = 0.006). Activation (CD80) and maturation (CD83) immunochemistry were negative in both groups (lesional vs non lesional skin, p = 1.0) Conclusions: This study confirms the increase in the number of Langerhans cells in lesional skin in patients with vitiligo compared to non lesional skin; however, we could not demonstrate activation or maturation. Keywords: Vitiligo, Langerhans Cells, activation-maturation INTRODUCCIÓN El vitiligo es una enfermedad adquirida caracterizada por la pérdida progresiva de melanocitos, es la enfermedad hipopigmentaria más común. Se caracteriza por la presencia de máculas acrómicas. 1. Su prevalencia a nivel mundial es 0.5%-1%. Inicia generalmente antes de los 20 años (50%), sin predominio de género. 2 Poco se sabe acerca de la patogenia, la cual todavía es desconocida y considerada multifactorial.3 Se ha asociado con múltiples enfermedades endócrinas y autoinmunes.4,5 El curso de la enfermedad es impredecible, pero generalmente es progresiva, con fases de estabilización.6 La despigmentación puede ser la causa de trastornos psicológicos, disminución de la calidad de vida, e incremento en la morbilidad psiquiátrica.7 Células de Langerhans Las células de Langerhans (CL) se encuentran en la epidermis por arriba de la capa basal. 9 Son células del sistema inmune (provienen de células precursoras de la médula ósea) cuyas funciones principales son la captación y procesamiento de antígenos por medio del complejo mayor de histocompatibilidad (MHC) clase II (MHC-II); así como migración y transporte de los mismos de la piel a los ganglios linfáticos y ser células presentadoras de antígenos.10 Pueden ser visualizadas en forma selectiva con el microscopio óptico, mediante técnicas de inmunohistoquímica y de inmunomarcación, además de ser identificadas con el microscopio electrónico a travésde sus marcadores únicos: los gránulos de Birbeck.11, 12 Presentan en su superficie una serie de determinantes antigénicos; CD45 (antígeno leucocitario común), moléculas del MHC-II; la langerina o CD207 cuya función es la captura de antígenos y su envío a las vías de procesamiento; la CD1a, cuya función es la presentación de antígenos no peptídicos, y solo se expresa en CL.12 El CD 80 es una molécula expresada en la supercicie de las CL, la cual es un marcador de activación de las mismas e interactúa con el antígeno 4 del linfocito T citotóxico.13 Como marcador de maduración, las CL, expresan CD 83, el cual es una proteína transmembrana que pertenece a la familia Ig.14 Existe una disminución sustancial de células dendríticas (CL) en la piel de las personas de la tercera edad, que interfiere con la presentación de antígenos exógenos y activación de linfocitos. 15 Además se encuentran alteradas por la radiación ultravioleta. Una simple exposición de la piel humana a luz UV, tanto UVA como UVB, resultan en diferentes alteraciones de densidad y morfología de las CL, por lo que se altera la función de presentación de antígenos y conduce a alteración de la respuesta inmune.16 Vitiligo y Células de Langerhans En cuanto al papel de las CL en vitíligo existen pocos datos, los cuales son variables. Se ha relacionado con aumento de CL y alteraciones en su función. Esto sugiere que el vitiligo afecta la unidad melanocito-queratinocito-Langerhans.9 De acuerdo a los reportes de Brown y colaboradores, no existen diferencias significativas en la cantidad de células de CL entre la piel sana y la enferma.9 Le Poole y colaboradores reportaron que existe un incremento en CL en la piel con vitiligo comparados con la piel sana.16 Aslanian y colaboradores reportan resultados similares.17 Claudy estudió la cantidad de CL en piel normopigmentada y despigemantada en 10 pacientes con vitiligo y concluyó que el involucro de las CL en vitíligo no ocurre por un mecanismo de degeneración o variaciones en la densidad regional.18 Sin embargo, usando adenosin-trifosfatasa y microscopía electrónica, se ha demostrado que las CL, se encuentran más densamente distribuidas en la piel despigmentada comparada con la sana.19, 20 Riley concuerda con el incremento de las CL en la piel despigmentada en pacientes con vitíligo.21 El objetivo del estudio fue comparar la cantidad de células de Langerhans en la piel despigmentada con la piel normopigmentada de pacientes con vitiligo diseminado. Así como los factores de activación y maduración de las mismas. METODOLOGÍA Se realizó un estudio comparativo, abierto, observacional, prolectivo, transversal, del 1 de enero de 2014 al 1 de enero de 2015; en el que se incluyeron un total de 20 pacientes con diagnóstico de vitiligo diseminado del Departamento de Dermatología del Hospital General “Dr. Manuel Gea González”. Los criterios de inclusión fueron participantes de ambos sexos mayores de 18 años con vitiligo diseminado, que presentaran lesiones en áreas no fotoexpuestas. Se excluyeron a mujeres embarazadas, pacientes que se negaran a la realización de las biopsias de piel, pacientes aplicaron algún tratamiento un mes previo al periodo de reclutamiento y hasta el momento previo de tomar las biopsias de piel, pacientes que recibieron cualquier forma de fototerapia. Se eliminaron a los pacientes cuyas muestras fueran insuficientes, mal procesadas o no pudieran ser interpretadas. Todos los pacientes firmaron la carta de consentimiento informado. Se obtuvo información demográfica y clínica (edad, género, evolución de la enfermedad, superficie corporal afectada, topografía, tratamientos previos). Se realizó la toma de fotografías. A todos los participantes se les realizó toma de biopsia con un sacabocados de 4 mm de piel sana y otro de piel afectada que se incluyeron en 0.5 ml de solución fisiológica. Envío de muestras Después de tomar las biopsias, fueron puestas en viales con solución salina inyectable, con poco volumen (2-5 ml). Los viales fueron puestos en hielo para transportarse (4°C), las muestras fueron procesadas antes de tres horas para la cuantificación y determinación de factores de activación/maduración de las CL al Centro de Investigación y de Estudios Avanzados del Instituto Politécnico Nacional (CINVESTAV). Técnica de criocortes y preparación de las muestras para inmunohistoquímica Las muestras fueron puestas en Tissue Teck y orientadas para obtener secciones convencionales y congeladas en hielo seco, se obtuvieron cortes de 5 micrómetros y se fijaron en acetona fría 100% por 20 minutos, almacenadas a 20°C. Inmunohistoquímica Los marcajes se realizaron con CD1a, CD80 y CD83, para determinar la presencia y el estado de activación y maduración de las CL. Cada muestra recibió la siguiente técnica de inmunomarcación. 1. Se incubaron 1 hora a temperatura ambiente o 15 minutos a 37 ºC los cortes con peróxido de hidrógeno al 9 % en PBS 1X con 0.1 % de azida de sodio. 2. Se lavó al menos 3 veces con PBS 1X, cada lavado de al menos 3 minutos. En lo sucesivo los lavados se realizaron de manera idéntica. 3. Se incubó 1 hora a temperatura ambiente o 30 minutos a 37 ºC con suero humano al 1 % en BSA al 1 % en PBS 1X pH 7.4. 4. Se decantó y eliminó el exceso de la incubación anterior e incubó los anticuerpos primarios a las diluciones correspondientes en BSA 1% en PBS 1X pH 7.4 con suero humano al 1% 5. Se realizó lavado 6. Se incubó el anticuerpo secundario a la dilución correspondiente en BSA 1 % en PBS 1X pH 7.4 1 hora a temperatura ambiente o 30 minutos a 37 ºC. 7. Se realizó lavado 8. Se reveló al microscopio. 9. En color azul con Azul-gris (SG VECTOR # SK-4700) 10. Se adicionó 1 µl de cromógeno y 1 ul de H2O2 por cada 100 ul PBS 1X pH 7.4. ¿ul es µl? mejor poner µl 11. Las muestras se prepararon al momento de usarse y las muestras estuvieron listas para revelarse para evitar la formación rápida de precipitados que resultan difíciles de eliminar cuando se depositan en las muestras. 12. En color café con DAB. Se pesaron 2 mg de DAB (Sigma D5905) y se diluyeron en 5 ml de TRIS 0.1 M pH 7.4; se agregaron 5 ml de H2O2 30 %; se mezclaron y filtraron con una membrana de poro 0.22 o 0.45 mm; se colocaba hasta cubrir la muestra. 13. Se lavó con agua destilada y se dejó secar. 14. Se montó con Poly Mount. Técnica para la cuantificación y determinación de factores de activación/maduración Las laminillas ya marcadas por inmunohistoquímica, fueron visualizadas y analizadas mediante el programa Image-pro-plus (el cual se encuentra en el laboratrio 15 del Departamento de Biología Celular del CINVESTAV). ANÁLISIS ESTADÍSTICO El análisis estadístico se realizó mediante el programa estadístico STATA versión 12.0. Para la descripción de variables cuantitativas se utilizaron medidas de tendencia central (media± DE; mediana (rango intercuartilar) de acuerdo a distribución de las variables. Para las variables cualitativas se describió la frecuencia y porcentaje. Para la comparación entre las diferencias de la inmunoexpresión de CD1a, CD80 y CD83 en lesiones de vitiligo comparadas con controles de piel normopigmentada se utilizó la prueba T de Student. Se consideró como significancia estadística un valor de p menor o igual a 0.05. RESULTADOS 1. Características sociodemográficas En el periodo de estudio se identificaron 88 pacientes con vitiligo diseminado, de los cuales se eliminaron 68 por no cumplir los criterios de inclusión. Por lo que al final, se reclutaron un total de 20 pacientes con vitiligo diseminado; de los cuales 19 fueron pacientes de sexo femenino (95.0%), con una edad promedio de 46±12.3 años. 2. Características clínicas El tiempo de evolución medio de la dermatosis fue de 6.5 años, con una superficie corporal afectadapromedio del 15%. La topografía más frecuentemente involucrada por la enfermedad fue cabeza, tronco y extremidades en 10 de los 20 pacientes (50%), seguida de tronco y extremidades en 7 pacientes (35%). (Tabla 1). 3. Toma de muestras e inmunomarcaje Se realizó la toma de 20 biopsias de piel normopigmentada y 20 muestras de piel despigmentada. En cuanto al inmunomarcaje se observó que existió un marcaje mayor de CD1a en biopsias cutáneas de piel con vitiligo comparada con piel normopigmentada (20.2 vs 15.7, p=0.006) (Tabla 2) (Gráfica 1). Sin embargo se observó que el marcaje de activación (CD80) y maduración (CD83) fueron negativos en ambos grupos (piel con vitiligo vs normopigmentada, p=1.0) (tabla 3) 4. Tratamiento Dieciocho pacientes habían usado previamente esteroides de alta potencia (90%). Quince pacientes (7.5%) habían usado inhibidores de la calcineurina un mes antes de la toma de la muestra. Una paciente (5%) no había recibido tratamiento previamente. 5. Evolución Durante el seguimiento realizado a 8 meses, ningún paciente presentó Fenómeno de Koebner. DISCUSION La etiopatogenia precisa del vitiligo sigue siendo desconocida, aunque existen varias teorías acerca de su origen. Entre ellas se incluyen: genética, muerte de los melanocitos mediada por apoptosis, estrés oxidativo y autoinmunidad. 22, 23, 24, 27 En las biopsias de los pacientes con vitiligo se puede observar una inflamación leve por linfocitos, a pesar de que clínicamente esta inflamación no se manifiesta ni es evidente.26 Dentro de la respuesta inflamatoria reportada en el vitiligo se encuentra la activación de linfocitos Th17. Estas células son activadas por antígenos, por lo que su desarrollo requiere presentación de antígenos por las células dendríticas, tanto dérmicas como epidérmicas (CL),21 por lo que su papel en la patogenia del vitiligo aún es controvertida.22 En este estudio encontramos que la expresión de Células de Langerhans se encuentra disminuida en la piel normopigmentada de los pacientes con vitiligo, a diferencia de la piel despigmentada, en donde su expresión es mayor (15.7 vs 20.2). Estos hallazgos son similares a los reportados por Wang y Riley 22, 27 Claudy reportó que el compromiso de las CL en vitíligo no ocurre por un mecanismo de degeneración o variaciones en la densidad regional.18 Sin embargo, usando adenosin-trifosfatasa y microscopía electrónica, se ha demostrado que las CL, se encuentran más densamente distribuidas en la piel despigmentada comparada con la sana. 19, 20 Las células de Langerhans acarrean antígenos (incluyendo autoantígenos), de la epidermis hacia los ganglios linfáticos regionales. En una piel donde existe mayor expresión de CL es probable que exista mayor presentación de antígenos aún no identificados que sean los iniciadores de montar la respuesta inmunitaria contra los melanocitos, que sumando a otros mecanismos patogénicos propuestos, llegue a una destrucción de los melanocitos. Al ser el número de células de Langerhans en piel normal aproximadamente del 3 al 6%; similar a lo encontrado a la piel despigmentada22, proponemos que exista migración de las mismas desde la piel normopigmentada hacia la despigmentada. Se puede evidenciar que en una gran proporción de pacientes con tiempo de evolución entre 1 a 25 años de evolución, se presentó un incremento en la expresión de CL en piel despigmentada comparada con la normopigmentada. Podemos observar que la expresión de factores de activación y maduración, marcados con CD80 y CD83 respectivamente, fue negativa en ambas muestras, esto nos traduce que las células en ambas situaciones clínicas (normopigmentada y despigmentada) se encuentran no solo inactivas sino también inmaduras desde el punto de vista de su función inmunológica principal que es la activación de los Linfocitos T. CONCLUSIONES En este estudio se corrobora el incremento en el número de células de Langerhans en piel despigmentada de pacientes con vitiligo diseminado, comparada con la piel pigmentada, con significancia estadística; sin embargo, no se pudo evidenciar ni activación ni maduración. Es posible que estos factores estén presentes antes de que aparezcan las lesiones o cuando acaban de aparecer, por lo que se requeriría medir estos factores en una mancha de reciente aparición. Se requieren estudios prospectivos que comparen las células de Langerhans en pacientes sin vitiligo, pareados por edad; y que respondan a las interrogantes en cuanto al cambio en la expresión de células de Langerhans posterior al uso de tratamiento tópico y su relación con la mejoría clínica. Las limitaciones del estudio son el tamaño de la muestra, así como la variabilidad en el porcentaje de superficie corporal afectada, y el tiempo de evolución. Al ser un estudio piloto sería interesante que la toma de las biopsias se realizara en la periferia de lesiones de reciente aparición. AGRADECIMIENTOS Agradecemos al CINVESTAV, por su apoyo en el procesamiento de las muestras. REFERENCIAS 1. Ongenae K, Van Geel N, Naeyaert JM. Evidence for an Autoimmune Pathogenesis of Vitiligo. Pigment Cell Res 2003;16:90-100. 2. Rezaei N, Gavalas NG, Weetman AP, Kemp EH. Autoimmunity as an aetiological factor in vitiligo. JEADV 2007;21:865-876. 3. Boissy RE, Manga P. On the etiology of contact/occupational vitiligo. Pigment Cell Res 2004;17:208-214. 4. Das PK, van dek Wijingaard RM, Wankowicz-Kalinska A, Le Poole IC. A symbiotic concept of autoimmunity and tumor immunity: lesions from vitiligo. Trends Immunol 2001;22:130- 136. 5. Contreras-Ferrer P, Noda-Cabrera A, Rodríguez-Martin M, Merino-de Paz N. Vitiligo and serologic markers: results from a case control study in a Spanish population. J Am Acad Dermatol 2011;64:AB142 6. Westerhof W, d’Ischia M. Vitiligo puzzle: the pieces fall in place. Pigment Cell Res 2007;20:345-359. 7. Borovicka JH, West DP, Kwasny M, Lu PD, Kundu RV. Development and validation of a vitiligo-specific health?-related quality of life instrument. J Am Acad Dermatol 2011;64:e1- e8. 8. Romani N, Brunner PM, Stingl G. Changing Views of the Role of Langerhans Cells. The Soc Invest Dermatol 2012;132:872-881. 9. Brown J, Winklemann RK, Wolf K. Langerhans Cells in Vitiligo. J Invest Dermatol 1967;49:386-390. 10. Setum CM, Serie JR, Hegre OP. Dendritic cell/lymphocyte clustering: morphologic analysis by transmission electron microscopy and distribution of gold-labeled MHC class antigens by high-resolution scanning electron microscopy. Anat Rec 1993;235:285-95. 11. Romani N, Holzmann S, Tripp C, Koch F, Stoitzner P. Langerhans cell-dendritic cells of the epidermis. APMIS 2003;11:725-740. 12. Vasu C, Wang A, Gorla SM, Kaithamana S, Prabhakar BS, Holterman MJ. CD80 and CD86C domains play an important role in receptor binding and co-stimulatory properties. Japan Soc Immunol 2003:23;167-175. 13. Fujimoto Y, Tedder TF. CD83: A regulatory molecule of the immune system with great potencial for therapeutic application. J Med Dent Sci 2006:53;85-91. 14. Langarica A F, Calderon-Amador J, Becerril-García M, Estrada-García I, Limón-Flores Y, Lacy- Niebla R, Hoyjo-Tomoka T, Vega-Memije E, Granados J, Domínguez-Soto L, Flores-Romo L. Decreased Frequency of Cutaneous Dendritic Cells in Elderly Subjects. Allergy Clin Immunol Int- J World Allergy Org 2005;17:1-4 15. Seité S, Zucchi H, Moyal D, Tison S, Compan D, Christiaens F, Gueniche A, Fourtanier A. Alterations in human epidermal Langerhans cells by ultraviolet radiation: quantitative and morphological study. Br J Dermatol 2003;148:291-299. 16. Le Poole I C, van de Wijngaard RMJGJ, Westerhof W, Das PK. Presence of T cells and Macrophages in Inflammatory vitiligo skin parallels melanocyte disappareance. Am J Pathol 1996;2:1219-1228.17. Aslanian F, Noe R M, Antelo D P, Farias R E, Das P K, Galadari I, Cuzzi T, Filgueira AL. Immunohistochemical Findings in Active Vitiligo Including Depigmenting Lesions and Non- Lesional Skin. Open Dermatol J 2008;2:105-110 18. Claudy A, Rouchouse B. Langerhans Cells and vitiligo: quantitative study of T6 and HLA-DR antigen-expressing cells. Acta Derm Venereol (Stockh) 1984;64:334-336. 19. Mishima Y, Miller-Milinska A. Junctional and high level dendritic cells revealed with osmium iodide reaction in human and animal epidermis under conditions of hyperpigmentation and depigmentation. J Invest Dermatol 1961;31:107-120. 20. Kovacs SO. Vitiligo. J Am Acad Dermatol 1998;38:647-668. 21. Riley P. Distribution of epidermal dendritic cells in pigmented and unpigmented skin. J Invest Dermatol 1967;48:28-38. 22. Malhotra N, Dytoc M. The Pathogenesis of Vitiligo. Intech 2013;17:153-172. 23. Spritz R A. The genetics of generalized vitiligo and associated autoimmune disorders. Pigment Cell Res 2007;20:271-278. 24. Laddha N C, Dwivedi M, Mansuri M S, Gani A R, Ansarullah, Ramachandran A V, Dalai S, Begum R. Vitiligo: interplay between oxidative stress and immune system. Exper Dermatol 2013;22:245-250. 25. Van Geel N A C, Mollet I G, De Schepper S, Tijin E P M, Vermaelen K, Clark R A, Kupper T S, Luiten R M, Lambert J. First histopathology and immunophenotipic analysis of early dynamic events in a patient with segmental vitíligo associated with halo nevi. Pigment Cell Res 2010;23: 375-384. 26. Alikhan A, Felsten L M, Daly M, Petronic-Rosic V. Vitiligo: A comprehensive overview. Part 1. J Am Acad Dermatol 2011;65:473-491. 27. Wang C Q F, Cruz-Inigo A E, Fuentes-Duculan J, Moussai D, Gulati N, Sullivan-Whalen M, Gilleaudeau P, Cohen J A, Krueger J G. TH17 cells and activated dendritic cells are increased in vitiligo lesions. Plos one 2011; 6:1-11. Tabla I. Características sociodemográficas del grupo con vitiligo Características n(%) n=20 Sexo Hombre Mujer 1 (5.0) 19 (95.0) Edad 46±12.3 Topografía Extremidades Cabeza y tronco Cabeza, tronco, extremidades Tronco y extremidades 1 (5.0) 2 (10.0) 10 (50.0) 7 (35.0) Evolución 6.5 (4.0-20.5) Superficie corporal afectada; (%)* 15 (10-20) *Variable presentada como mediana (rango intercuartilar) Tabla 2. Inmunomarcación para CD1a en piel pigmentada y despigmentada No. CL inmunomarcación CD1a Células/mm Paciente No. Piel normopigmentada Piel despigmentada Células/mm Células/mm 1 7.82 17.39 2 15.65 16.52 3 10.43 12.17 4 12.17 12.17 5 12.17 12.17 6 20 26.08 7 17.39 22.60 8 17.39 18.26 9 15.65 19.13 10 26.08 29.56 11 15.65 27.82 12 14.78 20 13 18.26 30 14 19.13 21.73 15 20 26.08 16 11.30 20 17 16.52 20.86 18 18.26 16.5 19 10.43 20 20 15.65 14.78 Tabla 3. Resultados de la inmunomarcación con CD1a, CD83 y CD80 en biopsias cutáneas de de piel hipopigmentada comparada con biopsias cutáneas de piel normopigmentada Inmunomarcadores Piel Normopigmentada Células/mm Piel hipopigmentada Células/mm Valor de p CD1a 15.7±4.2 20.2±5.5 0.006 CD80 Negativo Negativo 1.0 CD83 Negativo Negativo 1.0 Gráfica 1. Distribución del número de células de Langerhans por mm, tanto en piel normopigmentada como en piel despigmentada, de acuerdo a la evolución de la enfermedad. 0 5 10 15 20 25 30 Piel normopigmentada. Célu- las/mm Piel despigmentada. Céls/mm Portada Índice General Resumen Texto Conclusiones Referencias
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