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UNIVERSIDAD NACIONAL AUTONOMA DE MEXICO FACULTAD DE MEDICINA DIVISION DE ESTUDIOS DE POSTGRADO INSTITUTO MEXICANO DEL SEGURO SOCIAL HOSPITAL GENERAL CENTRO MEDICO NACIONAL “LA RAZA” DETECCION DEL VIRUS DEL OESTE DEL NILO POR NAT EN CANDIDATOS A DONACION SANGUINEA, “ESTUDIO MULTICENTRICO” T E S I S PARA OBTENER EL TITULO DE: PATOLOGIA CLINICA P R E S E N T A : DR. RAFAEL MAGAÑA DUARTE A S E S O R : DRA BARBARA A. I. NOVELO GARZA MEXICO, D.F. 2009 UNAM – Dirección General de Bibliotecas Tesis Digitales Restricciones de uso DERECHOS RESERVADOS © PROHIBIDA SU REPRODUCCIÓN TOTAL O PARCIAL Todo el material contenido en esta tesis esta protegido por la Ley Federal del Derecho de Autor (LFDA) de los Estados Unidos Mexicanos (México). El uso de imágenes, fragmentos de videos, y demás material que sea objeto de protección de los derechos de autor, será exclusivamente para fines educativos e informativos y deberá citar la fuente donde la obtuvo mencionando el autor o autores. Cualquier uso distinto como el lucro, reproducción, edición o modificación, será perseguido y sancionado por el respectivo titular de los Derechos de Autor. AGRADECIMIENTOS A MI ESPOSA E HIJOS POR TODO SU APOYO Y COMPRENSION, POR SER QUIENES ME MOTIVARON EN MOMENTOS DIFICILES. A MIS PADRES POR TODO EL APOYO INCONDICIONAL QUE ME HAN BRINDADO DURANTE TODA MI VIDA, POR SER QUIENES SIMENTARON MIS BASES, E IMPULSARME EN TODO MOMENTO Y PERMITIR LO QUE HOY DIA SOY. A TODOS LOS QUE COLABORARON CON MI FORMACION COMO ESPECIALISTA POR SU PACIENCIA, TIEMPO, ATENCIONES Y AMISTAD. GRACIAS INVESTIGADORES 1.- Banco Central de Sangre (BCS) Centro Médico Nacional (CMN) La Raza. IMSS. Investigador Principal: Dra. Bárbara A. I. Novelo Garza1 Dirección Banco Central de Sangre Centro Médico Nacional La Raza IMSS Domicilio: Seris y Consulado Col. La Raza S/N Delegación Azcapotzalco CP 02990 México DF. Tel: 57245900 Ext 24200 Investigadores Asociados: Dr. Rafael Magaña Duarte Médico Residente de 3er. Año de Patología Clínica UMAE Hospital General Centro Médico Nacional La Raza Dra. Araceli Malagón Martínez Dr. Gamaliel Benítez Arvizu Dr. Ángel Guerra Márquez QFB Luz del Carmen Mávil Lara 2.- Banco Central de Sangre del Centro Médico de Occidente. IMSS Dra. Ma. Isabel Hernández Lugo 3.- Banco de Sangre de la Unidad Médica de Alta Especialidad Mérida, Yucatán. IMSS Dr. Jorge Eduardo Pérez Osorio QFB Rodríguez Carvajal Otilia del Carmen 4.- Banco Central de Sangre Centro Médico Nacional SIGLO XXI. IMSS Dr. Raúl Ambríz Fernández Dra. Rebeca Rivera López 5.- Banco de Sangre de la Unidad Médica de Alta Especialidad, Monterrey, Nuevo. León. IMSS Dr. González Santos Mario Alberto Dra. González Cabello Diana QCB Hernández Bonilla Sandra. QCB Fernández López Yolanda Máyela INDICE PAGINA RESUMEN………………………………………………………………………….1 ANTECEDENTES CIENTIFICOS………………………………………………….2 JUSTIFICACION………………………………………………………………….7 PLANTEAMIENTO DEL PROBLEMA……………………………………………..8 OBJETIVO GENERAL……………………………………………………………..9 HIPOTESIS…………………………………………………………………………10 MATERIAL Y METODOS………………………………………………………….11 RESULTADOS……………………………………………………………………...13 DISCUSION………………………………………………………………………..14 CONCLUSIONES………………………………………………………………….16 ASPECTOS ETICOS………………………………………………………………..17 RECURSOS FINANCIAMIENTO Y FACTIBILIDAD……………………………..18 ASPECTOS DE BIOSEGURIDAD………………………………………………….19 REFERENCIAS BIBLIOGRAFICAS………………………………………………..21 ANEXOS…………………………………………………………………………....23 RESUMEN La infección del Virus del Oeste del Nilo (VON) es una infección emergente en los Estados Unidos y Canadá, tras reportarse casos de neuro-infecciones severas y estar asociada su transmisión por transfusión sanguínea, se implementa la detección de RNA viral mediante amplificación de ácidos nucleicos (NAT), debido a que los individuos asintomáticos donaron sangre en esta etapa de viremia. En México se desconoce cual es la condición epidemiológica del VON en humanos, existen reportes de un caso autóctono y tres casos probables reportados en los últimos años. Objetivo: Determinar la prevalencia de infección activa de VON en candidatos a donación sanguínea. Metodología: Se realizo un estudio descriptivo, observacional, transversal y prospectivo (Tipo encuesta) piloto. Se estudiaron 5141muestras de candidatos a donación sanguínea en 2 de los 5 centros de donación de sangre, que inicialmente participarían de Noviembre del 2007 a Septiembre del 2008. A cada candidato a donación sanguínea se le realizo la Historia clínica del donador y la determinación de RNA viral mediante amplificación mediada por transcripción (TMA) del ensayo Procleix WNV, tecnología de CHIRON BLOOD TESTING. Las muestras sanguíneas de los candidatos que resultaron positivas fueron enviadas al Centro Médico Nacional la Raza para repetir estudio y de ser positivas se enviaron a laboratorio de referencia para confirmación y genotipo. Resultados: Se corrieron en total 5141 muestras con resultados negativos en el 100 % de las muestras. Conclusiones: Aun cuando el resultado de todas las muestras fue negativo, no implica que no haya presencia de VON, por lo cual es conveniente en un futuro realizar la búsqueda en zonas endémicas del país ya conocidas y en poblaciones de mayor riesgo. ANTECEDENTES CIENTIFICOS: El Virus del Oeste del Nilo (VON) fue descubierto en Africa en 1937, en sangre de una mujer en Uganda provincia del oeste del Nilo, en Israel en 1957 se detecta el primer caso registrado de meningoencefalitis VON y a finales de la década de 1990 en Rumania y Rusia. Como enfermedad emergente en 1999 se presenta en Estados Unidos de Norteamérica el primer brote en Queens, New York con 62 casos: 59 reportados como meningoencefalitis y 3 casos Canada en Agosto del 2001 con 462 casos. En los años subsecuentes como puede observarse en la grafica 1, se aprecia claramente un incremento gradual de casos teniendo un repunte en el 2003 y nuevamente observando este com 2006. Por otro lado fue particul casos severamente complicados con meningoencefalitis fue mayor (2,946 meningoencefalitis) en el 2002. Hasta Diciembre del 2008 se han reportado en es notorio una alta prevalencia en los estados colindantes con nuestro país como Texas y California Grafica 1 Número de casos de VON en humanos por año en Estados Unidos de América. 0 1000 2000 3000 4000 5000 6000 7000 8000 9000 10000 1999 2000 2001 62 21 66 ANTECEDENTES CIENTIFICOS: El Virus del Oeste del Nilo (VON) fue descubierto en Africa en 1937, en sangre de una mujer en Uganda provincia del oeste del Nilo, en Israel en 1957 se detecta el primer caso registrado de meningoencefalitis severa causado por VON y a finales de la década de 1990 en Rumania y Rusia. Como enfermedad emergente en 1999 se presenta en Estados Unidos de Norteamérica el primer brote en Queens, New York con 62 casos: 59 reportados como meningoencefalitis y 3 casos como síndrome febril y en Canada en Agosto del 2001 con 462 casos. 1, 2 En los años subsecuentes como puede observarse en la grafica 1, se aprecia claramente un incremento gradual de casos teniendo un repunte en el 2003 y nuevamente observando este comportamiento ascendente para el 2006. Por otro lado fue particularmente importante que el nú casos severamente complicados con meningoencefalitis fue mayor (2,946 meningoencefalitis) en el 2002. Hasta Diciembre del 2008 se han reportado enese país 1,356 casos siendo notorio una alta prevalencia en los estados colindantes con nuestro país como Texas y California 1, 2, 3 Ver Grafica 1. Número de casos de VON en humanos por año en Estados Unidos 2001 2002 2003 2004 2005 2006 2007 2008 66 4156 9862 2539 3000 4269 3630 1356 El Virus del Oeste del Nilo (VON) fue descubierto en Africa en 1937, en sangre de una mujer en Uganda provincia del oeste del Nilo, en Israel en 1957 se severa causado por Como enfermedad emergente en 1999 se presenta en Estados Unidos de Norteamérica el primer brote en Queens, New York con 62 casos: 59 como síndrome febril y en En los años subsecuentes como puede observarse en la grafica 1, se aprecia claramente un incremento gradual de casos teniendo un repunte en el portamiento ascendente para el armente importante que el número de casos severamente complicados con meningoencefalitis fue mayor (2,946 e país 1,356 casos siendo notorio una alta prevalencia en los estados colindantes con nuestro país Número de casos de VON en humanos por año en Estados Unidos 2008 1356 El VON en México á sido bien documentado desde el año 2002 en diferentes especies animales, principalmente aves y equinos. 4, 5, 6. En un estudio realizado por el Centro Nacional de la Transfusión, por el Dr. Sergio Sánchez Guerrero y cols., de 3,856 muestras recolectadas en 29 estados de la república mexicana, de Julio a Agosto del 2004, se encontró 1 caso positivo mediante Ácidos Nucleicos (procleix), confirmado también por anticuerpos (Ac) IgM por ELISA en el norte de Chihuahua, que represento 0.03% a nivel nacional y 1 caso por cada 146 muestras (0.7%) en el estado de Chihuahua. 7 En Julio del 2004 en la república mexicana se reporta el primer caso autóctono de VON en humano en el estado de Sonora, inicialmente diagnosticado como dengue, pero finalmente confirmado por cultivo celular como VON. En éste mismo año, se presento otro caso en Coahuila que curso con un cuadro neurológico diagnosticado como probable VON fundamentado en títulos de Ac mediante ELISA (Ac anti-VON IgG de 1:2560 e IgM 1:40) y en 2006 se notifica de un caso en Santa María Tonameca, Oaxaca.8, 9,10 Entre Julio del 2003 a Julio del 2006 en el noreste de la república mexicana, se estudiaron pacientes con infección activa por Dengue, donde el 79.5% de los sueros estudiados fueron positivos para Ac IgG contra VON, lo que confirma una reacción cruzada por Ac entre ambos virus, complicando el diagnostico de VON, ya que la prevalencia de Dengue es alta en nuestro país (40%) y la infección de VON puede ser falsamente diagnosticada como Dengue.11 Es factible sospechar ante el creciente número de casos de Dengue en el norte de nuestro país del 2005 a la fecha, junto con el repunte de VON en el sur de EUA, que algunos casos de dengue sean en realidad VON, como se sugiere por Fernández-Salas I y cols. 12 Aunque la principal forma de infección se lleva acabó por la picadura de mosquitos de diferentes géneros, existen otras vías de transmisión: Exposición ocupacional en laboratorio, trasplantes de órganos, alimentación al seno materno, vía transplacentaria y trasfusión sanguínea.7,13 En EUA se reporto el primer caso de VON adquirido por transfusión sanguínea en 2002, de los 4156 casos documentados en ese año 23 casos (0.55%) fueron asociados a transfusión sanguínea, 43% fueron pacientes inmunocomprometidos con una mortalidad del 29%, extraordinariamente alta en comparación a la esperada cuando la infección es adquirida por la picadura del mosquito infectado en la que se tiene una mortalidad menor al 1 %. Por tal motivo ese país implementa la prueba de detección de VON en bancos de sangre, en ese mismo año el riesgo estimado de VON por transfusión sanguínea fue 1.46 a 12.33 casos por cada 10,000 unidades transfundidas. Posterior a la implementación de la técnica de Acidos Nucleicos (NAT) que permite la detección del genoma viral el riesgo disminuyo a 0.44 casos por cada 10,000 donaciones. 14,15 Tras el uso de NAT se identificaron 818 donadores sanguíneos en fase de viremia en 2003, 224 en 2004, 417 en 2005, 361 en 2006, 352 en 2007 y 174 en 2008, lo que implica un descarte importante de unidades sanguíneas con VON y la consecuente prevención de transmisión de esta infección. Grafica 2 Grafica 2 Muestra el número de donadores sanguíneos identificados en fase de viremia del año 2003 al 2008. Tras la implementación de la prueba de NAT en los bancos de sangre de Norteamérica se observo una disminución de la transmisión de VON por trasfusión: 23 casos en el en el 2005 y dos en el 2006, estos últimos fueron pacientes inmunosuprimidos que desarrollaron enfermedad de VON neuroinvasiva después de recibir componentes sanguíneos de 1 donador asintomático infectad HISTORIA NATURAL DE LA ENFERMEDAD. El virus de VON pertenece a la familia virus RNA de una sola cadena transmitido de forma natural por la picadura de mosquitos, con pico estacional durante Junio a Noviembre. El tiempo en que es detectable el genoma de VON es 7 días antes del inicio de la enfermedad, etapa asintomática pero altamente infectante y precisamente la de mayor impacto en los donadores “clínicamente sanos”, alcanzando 150 PFU/ml 2 a 3 días an elevándose IgM al inicio del cuadro clínico y la IgG con elevación 0 100 200 300 400 500 600 700 800 900 2003 2004 818 224 Tras el uso de NAT se identificaron 818 donadores sanguíneos en fase de en 2003, 224 en 2004, 417 en 2005, 361 en 2006, 352 en 2007 y 174 en 2008, lo que implica un descarte importante de unidades sanguíneas con VON y la consecuente prevención de transmisión de esta infección. número de donadores sanguíneos identificados en fase de viremia del año 2003 al 2008. Tras la implementación de la prueba de NAT en los bancos de sangre de Norteamérica se observo una disminución de la transmisión de VON por trasfusión: 23 casos en el 2002, a 6 casos en el 2003, uno en el 2004, ninguno en el 2005 y dos en el 2006, estos últimos fueron pacientes inmunosuprimidos que desarrollaron enfermedad de VON neuroinvasiva después de recibir componentes sanguíneos de 1 donador asintomático infectad HISTORIA NATURAL DE LA ENFERMEDAD. El virus de VON pertenece a la familia Flaviviridae, Genero virus RNA de una sola cadena transmitido de forma natural por la picadura de mosquitos, con pico estacional durante Junio a Noviembre. El tiempo en que es detectable el genoma de VON es 7 días antes del inicio de la enfermedad, etapa asintomática pero altamente infectante y precisamente la de mayor impacto en los donadores “clínicamente sanos”, alcanzando 150 PFU/ml 2 a 3 días antes de la aparición de la sintomatología elevándose IgM al inicio del cuadro clínico y la IgG con elevación 2005 2006 2007 2008 417 361 352 174 Tras el uso de NAT se identificaron 818 donadores sanguíneos en fase de en 2003, 224 en 2004, 417 en 2005, 361 en 2006, 352 en 2007 y 174 en 2008, lo que implica un descarte importante de unidades sanguíneas con VON y la consecuente prevención de transmisión de esta infección. 17 Ver número de donadores sanguíneos identificados en Tras la implementación de la prueba de NAT en los bancos de sangre de Norteamérica se observo una disminución de la transmisión de VON por 2002, a 6 casos en el 2003, uno en el 2004, ninguno en el 2005 y dos en el 2006, estos últimos fueron pacientes inmunosuprimidos que desarrollaron enfermedad de VON neuroinvasiva después de recibir componentes sanguíneos de 1 donador asintomático infectado. 16 , Genero Flavivirus, es un virus RNA de una sola cadena transmitido de forma natural por la picadura de mosquitos, con pico estacional durante Junio a Noviembre. 11, 18 El tiempo en que es detectable el genoma de VON es 7 días antes del inicio de la enfermedad, etapa asintomática pero altamente infectante y precisamente la de mayor impactoen los donadores “clínicamente sanos”, tes de la aparición de la sintomatología elevándose IgM al inicio del cuadro clínico y la IgG con elevación importante 3 semanas posterior a la infección. La presencia de IgM persiste más de 6 meses y hasta 500 días después. Ver Grafica 3 Grafica 3 El tiempo en el que aparece el cuadro clínico es normalmente 8 días posterior a la infección manifestándose como un cuadro gripal leve, Síndrome febril o llegando hasta la Meningoencefalitis, esto en el 20% de los casos, ya que un 80% cursan asintomáti El diagnostico de VON se basa principalmente en la detección de anticuerpos IgM e IgG en plasma por ELISA, aunque es mas sensible la detección de estos en Liquido Cefalorraquídeo, la detección de estos anticuerpos es de 7 a 14 días posteriores detectar a individuos infectantes (asintomáticos), por lo que no es útil como prueba de tamizaje en los servicios de banco de sangre al igual que el Cultivo celular considerado el estándar de oro. Se han utilizado técnicas de biología molecular que permiten la detección del VON previo a la elevación de anticuerpos y por ende en individuos asintomáticos siendo estas pruebas de gran valor para el tamizaje en los bancos de sangre, entre las pruebas que se cuentan son la re cadena de la polimerasa (PCR) y principalmente NAT; siendo la técnica de NAT la mas utilizada debido a sus caracteriscas, acortando el periodo con una especificidad mayor del 96.7%. importante 3 semanas posterior a la infección. La presencia de IgM persiste más de 6 meses y hasta 500 días después. 18 El tiempo en el que aparece el cuadro clínico es normalmente 8 días posterior a la infección manifestándose como un cuadro gripal leve, Síndrome febril o llegando hasta la Meningoencefalitis, esto en el 20% de los casos, ya que un 80% cursan asintomáticos. 11, 18 El diagnostico de VON se basa principalmente en la detección de anticuerpos IgM e IgG en plasma por ELISA, aunque es mas sensible la detección de estos en Liquido Cefalorraquídeo, la detección de estos anticuerpos es de 7 a 14 días posteriores a la infección, lo que no permite detectar a individuos infectantes (asintomáticos), por lo que no es útil como prueba de tamizaje en los servicios de banco de sangre al igual que el Cultivo celular considerado el estándar de oro. icas de biología molecular que permiten la detección del VON previo a la elevación de anticuerpos y por ende en individuos asintomáticos siendo estas pruebas de gran valor para el tamizaje en los bancos de sangre, entre las pruebas que se cuentan son la re cadena de la polimerasa (PCR) y principalmente NAT; siendo la técnica de NAT la mas utilizada debido a sus caracteriscas, acortando el periodo con una especificidad mayor del 96.7%. 7, 18, 19 importante 3 semanas posterior a la infección. La presencia de IgM persiste El tiempo en el que aparece el cuadro clínico es normalmente 8 días posterior a la infección manifestándose como un cuadro gripal leve, Síndrome febril o llegando hasta la Meningoencefalitis, esto en el 20% de los El diagnostico de VON se basa principalmente en la detección de anticuerpos IgM e IgG en plasma por ELISA, aunque es mas sensible la detección de estos en Liquido Cefalorraquídeo, la detección de estos a la infección, lo que no permite detectar a individuos infectantes (asintomáticos), por lo que no es útil como prueba de tamizaje en los servicios de banco de sangre al igual que el icas de biología molecular que permiten la detección del VON previo a la elevación de anticuerpos y por ende en individuos asintomáticos siendo estas pruebas de gran valor para el tamizaje en los bancos de sangre, entre las pruebas que se cuentan son la reacción en cadena de la polimerasa (PCR) y principalmente NAT; siendo la técnica de NAT la mas utilizada debido a sus caracteriscas, acortando el periodo con La detección de VON por NAT en EUA y Canada se inicio en 2003, lo cual previno cientos de casos de VON por transfusión sanguínea. 17, 20, 21 Ver Grafica 2 Es necesario conocer la prevalencia de VON en nuestro país mediante un estudio multicentrico para inferir la importancia de su transmisión por transfusión sanguínea. JUSTIFICACION. El VON es actualmente considerada una infección emergente en Estados Unidos de Norteamérica y Canada, ha sido ampliamente documentada su transmisión por trasfusión, siendo esta vía con la cual se asocian los casos mas graves y de mayor mortalidad en pacientes inmunocomprometidos. Debido a su diseminación de norte a sur y a su repunte en el año 2006, así como el reporte de casos autóctonos en México se hace necesario conocer la prevalencia de la infección de VON en nuestros candidatos a donación para establecer, de ser necesario estrategias de selección del donador o medidas de tamizaje para mantener la seguridad transfusional. PLANTEAMIENTO DEL PROBLEMA. En México existen datos parciales documentados de la presencia del VON en humanos, aunado a su importancia demostrada por transfusión sanguínea, estos dos hechos, nos obligan a conocer la prevalencia de la infección activa del VON en nuestro medio. ¿Cuál es la prevalencia de infección activa de VON en candidatos a donación sanguínea? OBJETIVO GENERAL. Determinar la prevalencia de infección activa de VON en candidatos a donación sanguínea. HIPOTESIS. No requiere MATERIAL Y METODOS. Universo de trabajo: Candidatos a donación sanguínea en cada uno de los 5 centros de recolección de la muestra: Banco Central de Sangre (BCS) Centro Médico Nacional (CMN) La Raza, BCS CMN Siglo XXI de Cd. De México, BCS CMN de Occidente Guadalajara, Banco de Sangre Unidad Médica de Alta Especialidad (UMAE) Monterrey y Banco de Sangre UMAE Mérida. Tipo de estudio: Descriptivo, observacional, y transversal (Tipo encuesta) piloto. Sujeto de estudio: Candidato a donación sanguínea. Definición. Todo individuo aparentemente sano que se presento a los Bancos de Sangre con la intención de donar y que se le realizo historia clínica del donador (Anexo 1). Variable de interés: Prevalencia de infección activa. Definición conceptual. Proporción de candidatos a donación con detección de VON del total de candidatos a donación. Definición Operacional. La proporción de casos de VON en sangre de candidatos a donación sanguínea se realizo mediante la detección de RNA viral con el equipo Procleix-WNVR tecnología de CHIRON BLOOD TESTING (Ver anexo 2) el cual combina cuatro metodologías: captura de híbridos por perlas magnéticas, amplificación mediada por transcripción (TMA), marcaje del RNA amplificado por protección de híbridos y detección por luminometría. Las muestras doblemente reactivas fueron enviadas al BCS CMN La Raza para correr una tercer prueba, en caso positivo se enviaron a un laboratorio de referencia internacional para confirmación y detección de Ac IgM e IgG por ELISA y Genotipo. Indicador: Presencia o ausencia de infección por VON. Escala de Medición: Nominal (dicotómica) Criterios de inclusión: Todos aquellos candidatos a donación sanguínea que aceptaron participar mediante la firma de la carta de consentimiento informado y que se les haya realizado historia clínica del donador. Criterios de exclusión: No aplica. Criterios de eliminación: Complicaciones técnicas o logísticas que impidieron obtener y/o procesar la muestra de sangre venosa. Descripción General del Estudio: Todos los candidatos a donación sanguínea que se presentaron en cualquiera de los 5 centros de estudio participantes, que se les realizo la historia clínica del donador y que aceptaron participar mediante la firma de consentimiento informado por escrito (ver anexo 3), durante el periodo de Noviembre del 2007 a Septiembre del 2008. Se realizo un estudio multicentrico en los siguientes 5 Centros que contaron coninfraestructura necesaria, tanto para la captación y procesamiento de las muestras: Dos en Cd México en BCS C.M.N. La Raza y BCS C.M.N. Siglo XXI, 1 en Banco de Sangre (BS) UMAE Monterrey, Nuevo León; 1 en Banco de Sangre C.M.N. de Occidente Guadalajara, Jalisco; 1 en BS UMAE Mérida, Yucatan. Se analizaran 5141 muestras de los centros de recolección, obtenidas de candidatos a donación sanguínea captados durante los meses de Noviembre del 2007 a Septiembre del 2008. Cada muestra sanguínea se recolecto en 2 tubos Vacutainer PPT (Plasma Preparation Tube) y uno de ellos fue utilizado para realizar la TMA para VON. Las muestras positivas se corrieron por duplicado, y las repetidamente reactivas fueron enviadas con la historia clínica del donador al BCS CMN La Raza para nuevo estudio, junto con el segundo tubo recolectado, de resultar nuevamente reactivas se enviaron a un laboratorio de referencia internacional para corroborar diagnóstico, detección de Ac IgM e IgG y realizar genotipo viral. Ver Figura 4 Muestras positivas se corrieron por duplicado En caso positivo En caso negativo Se descarta Se corrió una tercera muestra en BCS CMN La Raza En caso positivo En caso negativo Se descarta Se envió a laboratorio de referencia internacional para confirmación, detección de Ac IgM e IgG por ElISA y Genotipo viral Figura 4 Tamaño de la muestra: Se realizo un estudio piloto con 5141 muestras. Resultados: Se corrieron en total 5141 muestras con resultados negativos en el 100 % de las muestras. Discusión: El hecho de no encontrar casos positivos de VON en nuestra población de candidatos a donación sanguínea, no implica que no haya presencia del VON en el país, ya que sería algo adecuado en el futuro llevar acabó la búsqueda de VON en una población más seleccionada como enfermos de vías respiratorias y síndromes febriles, así como aquellos casos de infecciones virales del sistema nervioso central, ya que nuestra población es generalmente sana en los bancos de sangre debido a los filtros aplicados para la selección de donadores aunado al período de viremia tan corto del VON, además de que no participaron los bancos de sangre que pudieran tener una mayor probabilidad de encontrar individuos infectados. Por otro lado también es conveniente tomar en cuenta que quizás el tamaño de la muestra no fue el adecuado ya qué por problemas de logística algunos de los centros no recolectaron muestras, en tanto que otros perdieron las muestras por falta de seguimiento de la red fría, recolectando al final solo 5,141 muestras de las 25,000 contempladas inicialmente y de acuerdo a calculo de muestra con IC 99% y alfa 0.01 nuestro tamaño de muestra necesario era de 9,972. Hay que considerar también que en nuestro país por investigaciones previas los estados que han presentado un número mayor de animales infectados por VON es en el norte del país y sureste mexicano, sitios de los cuales lamentablemente no pudimos obtener muestras, en los cuales sería muy conveniente realizar estudios en un futuro con una población más seleccionada como la ya mencionada. Algo que en nuestro país a complicado probablemente de forma importante la detección del VON es la presencia del Dengue, ya que ambos son Flavivirus y por estudios previos se comprobó que las pruebas serológicas para la detección de Dengue presentan reacción cruzada con VON, por lo que lo ideal sería realizar las pruebas mediante tecnología de NAT lamentablemente el período de viremia es muy corto para su detección; algunos investigadores han propuesto que existe una protección cruzada hacia VON y probablemente por este fenómeno la ausencia de casos, no dejando de lado tampoco la posibilidad de que debido a que el VON es una enfermedad emergente y que hasta hace poco tiempo no se tenía conocimientos mayores en nuestro continente y por lo tanto tampoco la pericia del personal médico para detectarlo debido al gran parecido del cuadro clínico inicial tanto de Dengue como VON, es probable que se hayan diagnosticado erróneamente como Dengue, ya que inicialmente ambos pueden cursar con un Síndrome febril y datos de afección respiratoria, remitiendo muchos sin llegar a las complicaciones, además de que estos síntomas impiden que una persona sea candidata para donación sanguínea. Por otro lado debemos considerar la influencia geográfica y climática, ya que en los sitios con grandes precipitaciones pluviales y con extensa vegetación ofrecen un ambiente más propicio para los mosquitos Culex, que fungen como vectores, considerando esto debemos tomar en cuenta que los bancos de sangre se encuentran en zonas urbanas (con población urbana) con escaza vegetación, con un ambiente entonces menos propicio para la presencia de los mosquitos Culex caso contrario a los medios rurales donde abunda la vegetación, canales y charcas. Es entonces muy importante tomar en cuenta todo lo anteriormente mencionado antes de descartar la presencia de VON en nuestro país. Conclusiones: Aun cuando el resultado de todas las muestras fue negativo, no implica que no haya presencia de VON, por lo cual es conveniente en un futuro realizar la búsqueda en zonas endémicas del país ya conocidas y en poblaciones de mayor riesgo. ASPECTOS ETICOS. El presente proyecto no interfirió en ningún momento con la atención del candidato a donación sanguínea, se le Informo de manera amplia y clara en qué consistía su participación asegurando la confidencialidad, además de que los procedimientos están de acuerdo con las normas éticas, el Reglamento de la Ley General de Salud en Materia de Investigación para la Salud y con la declaración de Helsinki y sus enmiendas con el código de Núremberg y el informe de Belmont, se anexa carta de consentimiento informado. Los individuos que resultaron positivos se les notifico y se les entregaron sus resultados, junto con las demás pruebas que se realizaron para el estudio del donador como marca la norma para la disposición de sangre y sus componentes para uso terapéutico (NOM-SSA-003-1993). RECURSOS FINANCIAMIENTO Y FACTIBILIDAD. Se conto con la infraestructura necesaria para la obtención de la muestra y el proceso en cada uno de los dos centros participantes, junto con el personal acorde para el desarrollo de este proyecto, al tener personal capacitado en la obtención, separación, conservación, y estudio de la muestra. Chiron Blood Testing S. De R.L. De C.V. colaboro con el equipo y su instalación, con reactivos, tubos, capacitación para el manejo del equipo y los estudios complementarios al laboratorio de referencia. Registros Sanitarios COFEPRIS: El equipo con los números 1271E2004 SSA, 1103E2004 SSA, 0618R2007 SSA y los reactivos con el No. 1275R2006 SSA. (Anexo 4) Registro en Cuadro Básico ante el IMSS: El equipo consta con el siguiente registro 533.342.1468 Los reactivos están fuera del cuadro básico. Se anexo carta de confidencialidad (Anexo 5) donde se aclara que el análisis de resultados se llevo acabó por el grupo de investigadores, sin la participación de la empresa que proporciono el equipo y el reactivo. EN CASO PERTINENTE ASPECTOS DE BIOSEGURIDAD. Las muestras se manejaron en base al empleo de las normas de manejo de biológico-infecciosos y del laboratorio clínico. REFERENCIAS BIBLIOGRAFICAS 1. Dauphin G, Zientara S, Zeller H, Murgue B, West Nile Virus: worldwide current situation in animals and humans. Comp Immunol Microbiol Infect Dis 2004; 27: 343-55. 2. Guharoy R, Gilroy SA, Noviasky JA, Ference J. West Nile Virus Infection. AMJ Health-Syst Pharm. 2004; 61:1235-41. 3. Statistics, Surveillance, and Control by CDC. West NileVirus Activity in humans in the United States 1999 trough 2007. www.cdc.gov 4. Estrada-Franco J, Navarro-López R, Beasley D, et al. West Nile Virus in Mexico: Evidence of Widespread Circulation since July 2002. Emerg Infect Dis 2003; 9:1604-7. 5. Loroño-Pino MA, Blitvich BJ, Farfán-Ale JA et al. Serologic Evidence of West Nile Virus Infection in Horses, Yucatan State, Mexico. Emerg Infect Dis 2003; 9(7): 857-9. 6. Blitvich BJ, Fernández SI, Contreras-Cordero et al. Serologic Evidence of West Nile Virus Infection in Horses, Coahuila State, Mexico. Emerg Infect Dis 2003; 9(7): 853-5. 7. Sanchez-Guerrero SA, Romero-Estrella S, Rodríguez-Ruíz A et al. Detection of West Nile Virus in the Mexican blood supply, Transfusion 2004; 46:111-17. 8. Elizondo-Quiroga D, Davis CT, Fernandez-Salas I et al. West Nile Virus Isolation in Human and Mosquitoes, Mexico. Emerg Infect Dis 2005; 11: 1149- 52 9. Díaz-Olachea CG, Maza-Flores M, Dondis-Camaño D, Lamas-Padilla BE. Probable encefalitis por virus del oeste del Nilo. Arch Neurocien 2005; 10 (4): 264-6 10. Secretaria de Salud/SAGARPA. Anuario de Virus del Oeste del Nilo 2006. www.dgepi.salud.gob.mx 11. Fernandez-Salas I, Garza-Rodríguez ML, Beaty BJ y cols. Presencia del virus del oeste del Nilo en el noreste de México. Salud Publica Mex 2007; 49:210-7 12. Boletín de Epidemiologia, semana 19. Vigilancia, Prevención y Control deEnfermedades2007; www.mex.opsoms.org/contenido/dengue/mexicodeng.htm. 13. Sampathkumar P, West Nile Virus Epidemiology, Clinical presentation, Diagnosis and Prevention, Mayo Clin Proc; 78: 1137-44. 14. Biggerstaff BJ, Petersen LR, Estimated risk of transmission of the WNV through blood transfusion in the USA 2002 .Transfusion 2003; 43: 1007-17. 15. Stramer SL, Fang CT, Foster GA, Wagner AG, Brodsky JP, Dodd RY. West Nile Virus among blood donors in the United States, 2003-2004. N Engl J Med 2005. 4; 353(5):516-7. 16. Kightlinger L, Brend SM, Gorlin J et al. West Nile Virus transmission through blood transfusion – South Dakota 2006, Morb Mortal Wkly, 2007; 56(4): 76-9. 17. Viremic Blood Donor Activity in the United States reported to CDC 2003- 2009. www.cdc.gov/ncidod/dvbid/westnile/surv&control.htm#maps. 18. Sampathkumar P. West Nile Virus: Epidemiology, Clinical Presentation, Diagnosis, and Prevention. Mayo Clin Proc 2003; 78:1137-44. 19. Makar RS, Stowell CP, West Nile Virus: An Emerging Infection in Transfusion Medicine. Clin Microbiol Newsl 2004; 26 (9):65-70 20. Busch MP, Caglioti S, Robertson EF et al. Screaning the blood supply for West Nile Virus RNA by Nucleic Acid Amplification Test, N Engl J Med 2005; 353: 460-7. 21. Graigs S. H. Gen-Probe Transcription-Mediated Amplification: System Principles; Gen-Probe Incorporated, 10210 Genetic Center Drive, San Diego, CA 92121. ANEXOS. ANEXO 1: Historia Clínica del donador (FBS-1) ANEXO 2 Insertos de Técnicas. GEN-PROBE ALT WNV Assay Solo para su uso en Investigación Las características de desempeño de este producto no han sido establecidas. Equipo para 5000 Pruebas USO PREVISTO El Procleix® WNV Ensaye * es un cualitativo en el vitro la prueba de amplificación ácida nucleica para el descubrimiento de virus de Nilo Oriental (WNV) RNA en el plasma humano de las donaciones voluntarias de los componentes de sangre total y de sangre para la transfusión, y plasma como fuente futura de fabricación, y de donaciones de tejido y de órganos. El ensayo se piensa para el uso de tamizaje al donador en prueba individual o en pools de plasma humano comprendiendo alícuota iguales de no más de 16 donaciones individuales. RESUMEN Y EXPLICACIÓN DE LA PRUEBA El WNV es un flavivirus transportado por un mosquito que se asocia con la enfermedad humana que va de una apacible gripe a los síntomas de enfermedad neurológico severa1,2 .La mayoría de las infecciones de WNV son asintomáticas y aproximadamente el 20% llevan a una enfermedad apacible conocido como fiebre del virus de Nilo Oriental. Se estima que menos del 1% de las infecciones causan la enfermedad neurológica seria, el factor de riesgo más significativo es la edad avanzada3. Antes del brote Queens Nueva York en 1999, la presencia del virus en América del Norte no había sido documentada. Desde el brote original de Nueva York, el virus que es transportado predominantemente por el mosquito Culex sp., ha continuado expandiéndose del oeste y ahora se piensa que se ha establecido permanentemente en América del Norte4. Un número de grande especies aviarias sirven como reservorio huésped para el virus, considerando que se cree que los humanos y animales, como los caballos y otros mamíferos, son huéspedes incidentales5. A partir de enero del 2003, el CDC reporto casi 4000 casos humanos positivos del WNV y 259 casos humanos fatales en los EE.UU.. La ruta principal de infección de WNV humano ha sido el piquete de un mosquito infectado. En 2002, nuevos mecanismos de transmisión de persona a persona fueron documentados, incluyendo la posible infección de madre a hijo a través de leche materna infectada, infección transplacentaria, y la transmisión a través de la donación de órganos y de la transfusión de sangre. A partir de enero de 2003, catorce casos de transmisión de WNV asociada a la transfusión se han confirmado6-7. En la mayoría de las infecciones humanas, el WNV se multiplica a niveles relativamente bajos que produce una viremia transitoria que puede ser detectada en la sangre total y en el plasma. El método de prueba de ácidos nucleicos (NAT) es capaz detectar la antes de la presencia de anticuerpos durante la fase virémica. El anticuerpo Inmunoglobulina M (IgM) puede detectado en suero o en fluido cerebroespinal (liquido cefalorraquídeo) (CSF) recolectado dentro de los 8 días del inicio de la enfermedad. Los IgM y las células T de memoria pueden permanecer en el cuerpo por años3,5. Los métodos actuales para el diagnóstico de WNV son el inmunoenzayoenzimático IgM, el ensayo de Placa de Reducción de la Neutralización, y los métodos NAT. Porque los ensayos serológicos se basan en la detección de la respuesta inmune del huésped, después de la fase virémica primaria, no pueden ser apropiados para el tamizaje de la sangre. El tamizaje de las donaciones de sangre total con NAT ha sido implementado en los Estados Unidos desde principios de 1999 y se concedieron las licencias se para el tamizaje de VIH-1 y de HCV en 2002. El Procleix WNV Ensaye, usa la misma tecnología que el Ensayo Procleix VIH- 1/HCV para detectar el RNA del WNV8. PRINCIPIOS DEL PROCEDIMIENTO El Ensayo Procleix® WNV comprende tres etapas principales que tienen lugar en un sólo tubo: Preparación de la muestra; amplificación selectiva del RNA del WNV mediante amplificación mediada por transcripción (TMA)9 y detección de los productos de amplificación (amplicón) por el ensayo de protección de hibridación (HPA)10. Durante la preparación de la muestra, se aísla el RNA de las muestras de plasma mediante el uso de una captura selectiva. El plasma se trata con un detergente para solubilizar la envoltura viral, desnaturalizar proteínas y liberar el RNA genómico viral. Los oligonucleótidos (“oligonucleótidos de captura”) que son homólogos a las regiones altamente conservadas del WNV, se hibridan para la selección del RNA en la muestra. La selección hibridada se captura luego mediante micropartículas magnéticas que se separan del plasma en un campo magnético. A continuación se realizan lavados sucesivos para eliminar los componentes superfluos del plasma del tubo de reacción. La separación magnética y los lavados se lavado con el Chiron Procleix TCS. La amplificación de la selección se realiza a través de TMA, un método de amplificaciónde ácidos nucleicos basado en transcripción que emplea dos enzimas, MMLV transcriptasa inversa y T7 RNA polimerasa. La transcriptasa inversa se utiliza para generar una copia del ADN (que contiene un promotor de la secuencia para T7 RNA polimerasa) de la secuencia de la selección. La T7 RNA polimerasa produce varias copias de amplicón de RNA a partir de la plantilla de copia del ADN. El ensayo Procleix WNV emplea el método TMA para amplificar regiones del RNA del WNV. La detección se logra mediante HPA usando sondas de ácidos nucleicos monocatenarios con marcadores quimioluminiscentes que son complementarios al amplicón. Las sondas de ácidos nucleicos marcadas hibridan específicamente al amplicón. El reactivo de selección distingue entre sondas hibridadas y no-hibridadas mediante la inactivación de la señal de las sondas no hibridadas. Durante la fase de detección, la señal quimioluminiscente generada por la sonda hibridada se mide en un luminómetro y se expresa en unidades relativas de luz (RLU). Se agrega un control interno en cada muestra de ensayo, control externo o calibrador mediante el reactivo de captura selectiva que contiene el control interno. El control interno de este reactivo controla las etapas de amplificación y detección durante el procesamiento de las muestras. La señal del control interno de cada tubo o reacción del ensayo se discrimina de la señal emitida por WNV debido a la cinética diferencial de emisión de luz de las sondas con marcadores diferentes11. El amplicón específico del control interno se detecta mediante una sonda con emisión de luz rápida (señal rápida cualificada, flasher). El amplicón específico de WNV se detecta mediante sondas de emisión de luz con cinética relativamente más lenta (señal prolongada cualificada, glower). El ensayo de cinética doble (DKA) es un método que se emplea para diferenciar las señales rápidas (flasher) de las prolongadas (glower)11. Cuando se utiliza para la detección de WNV, el ensayo Procleix WNV distingue entre señales emitidas por el control interno y la señal del WNV. Para mayor información remitase al manual del operador. ANEXO 3 Carta de consentimiento informado México D.F., a _____de_____________del 2007 Por medio de la presente acepto participar en el proyecto de investigación titulado: DETECCION DEL VIRUS DEL OESTE DEL NILO POR NAT EN CANDIDATOS A DONACIÓN SANGUÍNEA, “ESTUDIO MULTICENTRICO” Registrado ante la Comisión Nacional de Investigación Científica con el número 2007 785 075. El objetivo de este estudio es: Determinar la prevalencia de Virus del Oeste del Nilo en candidatos a donación sanguínea. Se me ha explicado que mi participación consistirá en: Proveer aproximadamente 10 mL de sangre los cuales serán tomados por la misma punción de la vena realizada durante la toma de muestras para la donación de sangre. Declaro que se me ha informado ampliamente sobre los posibles riesgos, inconvenientes y molestias derivadas de mi participación en el estudio, que son las siguientes: Moretón, dolor y/o hinchazón en el sitio de toma de la muestra de sangre, así como se me ha informado que se me entregaran los resultados de la prueba. El investigador responsable se ha comprometido a darme información así como a responder cualquier pregunta y aclarar cualquier duda que le plantee relativo al estudio para determinar la prevalencia de Virus del Oeste del Nilo. Entiendo que conservo el derecho de negarme a participar en el estudio, sin que ello afecte la atención en el proceso de la donación por parte del Banco Central de Sangre Centro Médico Nacional “La Raza”. El Investigador Responsable me ha dado seguridades de que no se me identificará en las presentaciones o publicaciones que deriven de este estudio y de que los datos relacionados con mi privacidad serán manejados en forma confidencial. En caso de dudas o preguntas relacionadas con el estudio comunicarse al Tel. 57245900 extensión 24200. ________________________________________________ Nombre, firma del candidato a donación sanguínea _____________________________________________________ Investigador Responsable Dra. Bárbara Novelo Garza Matrícula 6604102 ________________________ _________________________ Testigos ANEXO 4 Registro sanitario COFEPRIS: ANEXO 5: Carta de Confidencialidad. ANEXO 6: Sabana de recolección de datos: CENTRO B.S. CMN LA RAZA B.S. CMN SXXI B.S. CMN OCCIDENTE B.S. UMAE MONTERREY UMAE MERIDA NAT VON NAT VON POR DUPLICADO Concordancia NAT /CMN La Raza NAT LABORATORIO REFERENCIA LUGAR DE RESIDENCIA NAT POSITIVOS ANTECEDENTES VIAJES NAT POSITIVOS Ac POSITIVOS NAT POSITIVOS Portada Índice Resumen Antecedentes Científicos Justificación Planteamiento del Problema Objetivo General Hipótesis Material y Métodos Resultados Discusión Conclusiones Aspectos Éticos Recursos , Financiamiento y Factibilidad En Caso Pertinente Aspectos de Bioseguridad Referencias Bibliográficas Anexos
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