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DETECCIÓN Y CUANTIFICACIÓN DEL VIRUS EPSTEIN BARR EN SANGRE PERIFÉRICA Y PLASMA DE PACIENTES PEDIÁTRICOS. TESIS PARA OBTENER EL TÍTULO DE ESPECIALISTA EN: PEDIATRIA PRESENTA: Dra. Mayra Alondra Liévano Pérez MÉXICO, D. F Febrero 2011 UNIVERSIDAD NACIONAL AUTÓNOMA DE MÉXICO FACULTAD DE MEDICINA DIVISIÓN DE ESTUDIO DE POSGRADO HOSPITAL INFANTIL DE MÉXICO FEDERICO GÓMEZ TUTORES: M.C. JOSE LUIS SANCHEZ HUERTA DRA. BRICEIDA LÓPEZ MARTÍNEZ UNAM – Dirección General de Bibliotecas Tesis Digitales Restricciones de uso DERECHOS RESERVADOS © PROHIBIDA SU REPRODUCCIÓN TOTAL O PARCIAL Todo el material contenido en esta tesis esta protegido por la Ley Federal del Derecho de Autor (LFDA) de los Estados Unidos Mexicanos (México). El uso de imágenes, fragmentos de videos, y demás material que sea objeto de protección de los derechos de autor, será exclusivamente para fines educativos e informativos y deberá citar la fuente donde la obtuvo mencionando el autor o autores. Cualquier uso distinto como el lucro, reproducción, edición o modificación, será perseguido y sancionado por el respectivo titular de los Derechos de Autor. 2 DEDICATORIA. A MIS PADRES: Porque son parte de mi vida, son los que me han visto crecer, quienes han disfrutado mis logros y tristezas tomándome siempre de la mano, no importando el camino eterno del sueño anhelado, sabiendo y teniendo fe en que el logro llegaría, a pesar de que el camino no termina. Con todo el amor que guardo en mi ser gracias. A MIS HERMANOS: Ari, Karina , Guillermo y Karina Guadalupe Por ser mis compañeros de vida, por continuar pendientes de mis sueños y decisiones. A MIS SOBRINOS: Ambar, Adrian y Alex: Porque su existencia me envuelve de entusiasmo para continuar en el sendero de la vida. A MI AMOR: Sergio, por la maravillosa vida que tengo a su lado y las fuerzas que me inspira para mantenerme de pie, caminar y correr. A MI TUTORA DE TESIS: Dra. Briceida López Martínez por darme su tiempo, paciencia y hacer realidad este trabajo de investigación. 3 ÍNDICE I Marco teórico 6 II Planteamiento del Problema 14 III Justificación 15 IV Objetivo 16 V Material y Métodos 17 a) Diseño b) Población c) Muestra d) Criterios de inclusión e) Criterios de exclusión f) Metodología VI Plan de Análisis Estadístico 19 VII Resultados 19 VIII Discusión 22 IX Conclusiones 23 X Anexos 24 XII Bibliografía 25 4 RESUMEN Detección y cuantificación del virus Epstein Barr en sangre periférica y plasma de pacientes pediátricos. Introducción. El virus Epstein Barr (VEB) tiene la característica de provocar latencia, el 90% de la población ha presentado la primoinfección, por lo que se encuentra ampliamente distribuido en todo el mundo. La enfermedad que se asocia con mayor frecuencia al VEB es la mononucleosis infecciosa sin embargo, se relaciona con la aparición de enfermedades malignas como el linfoma de Burkitt, carcinoma nasofaríngeo, linfoma no Hodgkin y el síndrome linfoproliferativo postrasplante (SLPT). La alta incidencia del SLPT la cual es de 1 a 20% en niños se debe a que la primoinfección la padecen después de ser trasplantados. Se recomienda la determinación de la carga viral del VEB en sangre periférica y plasma para dar seguimiento a los pacientes inmunosuprimidos y en riesgo de padecer el SLPT. Objetivo. Describir la detección y cuantificación del virus Epstein Barr en sangre periférica y plasma de pacientes pediátricos. Material y Métodos: Se analizaron de forma retrospectiva 1052 muestras de pacientes pediátricos, recibidas en el periodo de abril del 2008 a noviembre del 2009, a los cuales se les realizó la investigación del virus de Epstein Barr (VEB) en sangre total periférica y plasma por medio de PCR en tiempo real (2104 determinaciones). Utilizando un diseño de la compañía TIBMOL Biol y el equipo LightCycler®, Resultados: De las 1052 muestras estudiadas, en 498 (47.3%) muestras de sangre periférica (SP) y en solamente 253 (24.05%) muestras de plasma (PL), se detectó y se cuantificó la carga viral del VEB. Las muestras negativas para la detección en SP fue de 52.7% (554) y en plasma 75.95% (799). Se identificaron 99 (9.41%) muestras de SP con carga viral mayor de 5,000 5 copias/ml y valores menores a 100 copias/ml en plasma, en su mayoría muestras de pacientes postrasplantados. Conclusiones: En éste estudio observamos que tanto en la determinación en sangre total como en plasma se logra detectar la presencia de VEB, sin embargo es importante considerar que la cantidad de copias encontrada a través de muestras de plasma son mucho más bajas que las encontradas en sangre total, por lo que en base a este estudio sugerimos que el clínico debe tomar en cuenta que una cifra baja de capias de VEB en plasma no excluye al paciente de cursar con la enfermedad activa, debiendo tener siempre la determinación en sangre total para un mejor seguimiento de sus pacientes. Es necesaria la realización de más estudios para determinar los valores de corte en el estudio cuantitativo de carga viral para infección de VEB con PCR en tiempo real. 6 I.-MARCO TEÓRICO VIRUS EPSTEIN BARR El virus Epstein Barr (VEB) fue descubierto por Dennis Burkitt en 1950, mediante el estudio de una forma de cáncer que afectaba la mandíbula de los niños y adolescentes del África Ecuatorial. Posteriormente en 1964, Tony Epstein, Ivonne Barr y Burt Achong examinaron las biopsias de tumores extirpados y encontraron un virus parecido a las partículas de los herpesvirus y así establecieron que el VEB era el causante de estos tumores 1. Los VEB son virus grandes (100 a 200 nm de diámetro) que poseen una nucleocápside con simetría icosaédrica, rodeada por una cubierta externa que contiene lípidos. Su genoma está constituido por una molécula de ADN bicatenario que tiene de 170 a 175 kpb, y codifica para aproximadamente unas 100 proteínas. La molécula de ADN está flanqueada en ambos extremos por un número variable de repeticiones terminales, cada una de ellas de una longitud aproximada de 500 pb 2. Al igual que el resto de los integrantes de la familia de los Herpes virus, el virus Epstein Barr (VEB) tienen la característica de provocar latencia (1), se encuentra ampliamente distribuido en todo el mundo, pues más del 90% de la población mundial se encuentra infectada 2. El virus entra en el huésped y provocala infección, generalmente como resultado de la transmisión oral con un individuo portador de VEB 5, aunque hasta el momento no está totalmente claro sí el virus que se libera en la saliva de los portadores sanos proviene de los linfocitos B de mucosas, células plasmáticas o células del epitelio escamoso. Recientemente se ha reportado la presencia del virus en secreciones genitales de ambos géneros, indicaría que también puede ser transmitido sexualmente. Por otro lado se ha reportado que el virus puede encontrarse en leche materna, lo que muestra que al parecer pudiera existir una ruta de transmisión vertical muy poco común3. 7 MECANISMOS DE LATENCIA DELVIRUS EPSTEIN BARR Las células B infectadas por el VEB pueden expresar un grupo bien definido de genes de latencia que incluye seis antígenos nucleares (EBNAs) y tres proteínas latentes de membrana (LMP1, LMP2A, LMP2B). De estas proteínas de latencia, LMP1 es considerada la oncoproteína más fuerte y es esencial para la inmortalización de las células B y comparte propiedades funcionales con los miembros de la superfamilia de los receptores del factor de necrosis tumoral, particularmente CD40 5, 9. Las diferencias existentes entre los genes que codifican las proteínas nucleares EBNA-2 y EBNA-3A, -3B y -3C distinguen dos diferentes tipos del VEB denominados VEB-1 y VEB-2 que se diferencian para trasformar los linfocitos B in vitro tal es el caso del VEB tipo 1. Dependiendo de los genes expresados en la célula huésped, se han descrito tres formas diferentes de latencia del VEB, que se observan en las distintas líneas celulares y en las diversas patologías asociadas al VEB 9. La forma de latencia I se observa en el linfoma Burkitt (LB) y en los linfocitos B infectados que circulan en la sangre periférica. En esta forma de infección la expresión del genoma viral queda limitada a los EBERs y a la proteína EBNA-1 cuya función es indispensable para mantener el episoma pero que carece de capacidad inmunógena. Este patrón tan restringido de expresión génica permitiría a las células infectadas escapar a la vigilancia inmune por linfocitos citotoxicos (CTL), favoreciendo así la persistencia de la infección latente 5.9. La forma de latencia tipo II se asocia fundamentalmente a neoplasias. En esta forma se expresan la proteínas EBNA-1 y LMP-1, LMP-2A y 2B y los EBERs. Es la que caracteriza a la enfermedad de Hodgkin (EH) y al carcinoma nasofaríngeo (CNF) 5,9. 8 La forma de latencia tipo III es la que caracteriza a las líneas linfoblastoides y se observa también en la mononucleosis infecciosa y en la gran mayoría de los trastornos linfoproliferativos B asociados a inmunodeficiencia. La inmunosupresión actuaría permitiendo que los linfocitos B infectados expresen todas las proteínas asociadas a la infección latente sin que sean reconocidos y eliminados por los CTL 5,9. MANIFESTACIONES CLÍNICAS DE LA INFECION POR EPSTEIN BARR El VEB produce una infección latente, en la que se reporta que los portadores sanos tienen de 1 a 50 células infectadas por millón de leucocitos (8), con reactivaciones esporádicas, debido a que la mayor parte de las poblaciones de los linfocitos B humanos infectados, mantienen un estado latente de replicación y expresión genética viral, pero pocas entran a una fase productiva del virus a menos que el individuo se encuentre inmunosuprimido. Cuando esto sucede, el virus coloniza las células del epitelio nasofaríngeo donde establece su ciclo lítico de replicación, provocando una respuesta inflamatoria localizada que produce un exudado faríngeo y es llevado por vía linfática hasta los ganglios locales, lo que ocasiona una viremia, que desarrolla la linfadenopatía local y generalizada, así como la esplenomegalia. Los mecanismos patogénicos por los que el VEB es capaz de inducir la aparición de tumores se relacionan con las proteínas codificadas por algunos de los genes expresados en la infección latente, dichos productos inducen diferentes efectos sobre la célula 5-8. Cuando la infección por el VEB se presenta durante la infancia generalmente pasa clínicamente inadvertida, mientras que si se presenta hasta la adolescencia o posteriormente puede provocar la mononucleosis infecciosa. En los individuos inmunocoprometidos, el VEB ha sido relacionado con enfermedades malignas como el linfoma de Burkitt, carcinoma nasofaríngeo, linfoma no Hodgkin y el síndrome linfoproliferativo postrasplante (SLPT) 4. 9 La Mononucleosis infecciosa es la más típica forma clínica de la infección primaria por el VEB. Como sucede con los demás herpesvirus, la infección en niños es mucho más leve que la que se produce en adolescentes o adultos. El tiempo de incubación de alrededor de un mes. Después de un período prodrómico, caracterizado por escalofríos, sudoración, fiebre y malestar, se presenta la enfermedad, que en su forma más típica incluye la tríada de odinofagia, fiebre y linfadenopatías. También aparecen con frecuencia hepatoesplenomegalia y exantema. La mayoría de los casos remite de forma espontánea a las 3 o 4 semanas, aunque el cansancio puede durar un poco más tiempo. Existen algunas complicaciones importantes con alteraciones neurológicas (meningoencefalitis y Guillain Barré), obstrucción laríngea o rotura de bazo. En la gran mayoría de casos la recuperación es total mediante tratamiento sintomático. Dado que el virus inmortaliza o transforma los linfocitos en el cultivo, siempre se ha sospechado la participación de este agente en el Linfoma de Burkitt Endémico (LBE). Este linfoma endémico de algunas regiones de África presenta en sus células viriones y secuencias de ADN del virus. Se pensó que VEB actuaría por activación del oncogen c-myc, por la presencia de un gen en el propio del virus. Recientemente se sospecha que el papel que este virus desempeña es el de cofactor ya que en los LB esporádicos no se encuentran secuencias del virus. Parece ser que la infección por plasmodium, que produce una importantísima alteración del papel "vigilante" de los linfocitos T, puede ser el factor principal del desarrollo de este tumor en estas zonas endémicas. La respuesta serológica característica en pacientes con Carcinoma Nasofaringeo Indiferenciado también lo ha asociado con este virus. A diferencia del las células que componen este tumor, también endémico de extremo oriente, son de estirpe epitelial. 10 Cada vez hay más pruebas de que la inmunosupresión o la alteración de la función de los linfocitos T favorece la aparición de Enfermedades Linfoproliferativas en pacientes inmunosuprimidos e infectados por VEB tal es el caso de leucoplasia peluda de los pacientes VIH positivos o el síndrome linfoproliferativo del postrasplantado. El Síndrome de Fatiga Crónica (SFC) con cansancio crónico, febrícula, debilidad muscular e incapacidad para concentrarse se ha intentado relacionar con este virus. La única prueba de esta asociación la constituye en una cierta elevación de los títulos de anticuerpos frente al virus. También se ha descrito este cuadro en asociación con otros virus y la importancia que el paciente dio a su enfermedad. SINDROME LINFOPROLIFERATIVO POSTRASPLANTE Y EPSTEIN BARR. Se conoce como síndrome linfoproliferativo postrasplante (SLPT) a un espectro de lesiones que abarca desde la proliferación linfoide atípica a un verdadero linfoma, que se produce como consecuencia de la inmunodepresión en receptores de órgano sólido o de un trasplante alogénico de progenitores hematopoyéticos. La patogénesis de la SLPT es multifactorial y compleja. Los factores de reconocida participación incluyen una vigilancia inmunológica inapropiada por parte del huésped, la estimulación antigénica crónica por el injerto, el órgano trasplantado, así como el tipo, la intensidady la duración de la terapia Inmunosupresora. Sin embargo, el escenario de mayor riesgo para desarrollo de SLPT lo encontramos en receptores seronegativos pretrasplante para el VEB lo cual indica la no exposición previa a la infección viral y por ende la ausencia de protección inmunológica que reciben un órgano o productos sanguíneos de donador seropositivo o que adquieren la enfermedad primaria de manera natural en la etapa postrasplante, cuando el individuo se encuentra con una respuesta inmune comprometida por la administración de inmunosupresores. 11 La frecuencia reportada de SLPT en adultos receptores de trasplante renal es de 4.9 y 1.6% en pacientes seronegativos vs. seropositivos pretrasplante, respectivamente, y existe una frecuencia mayor en población pediátrica vs. adulta, con porcentajes correspondientes de 10 vs. 1.2%, diferencia explicada en cierta medida por la frecuencia de receptores pediátricos seronegativos cuando se comparan con población adulta (12). Los SLPT incluyen las siguientes entidades: a) lesiones precoces (early lessions): hiperplasia plasmocítica reactiva y SLPT similares a mononucleosis infecciosa; b) SLPT polimórfico; c) SLPT monomórfico; y d) linfoma de Hodgkin. La mayoría de SLPT están asociados al VEB y corresponden a proliferaciones clonales de células B o, con menor frecuencia, policlonales. El patrón de expresión de los productos de latencia es del tipo III, similar al de las líneas celulares linfoblastoides obtenidas in vitro. No obstante, se han descrito ocasionalmente patrones de latencia de los tipos I y II. Las características clínicas de los SLPT son variables y dependen del tipo de inmunodepresión, del órgano trasplantado y del tipo morfológico. En los pacientes sometidos a trasplante de órgano sólido la incidencia de SLPT es del 1 al 30%, dependiendo del tipo de trasplante y de la edad del paciente. En la población pediátrica sometida a trasplante de hígado, la incidencia es del 10%, con una mortalidad del 60% y con una alta morbilidad que incluye la pérdida del órgano trasplantado 10-12. METODOS DIAGNÓSTICOS DEL VIRUS DE EPSTEIN BARR Existen varios procedimiento para el diagnóstico de laboratorio de las infecciones por el virus de Epstein Barr, el mejor procedimiento es el aislamiento del virus o de alguno de sus componentes o productos. Aunque se reconocen tipos celulares naturalmente susceptibles a la infección por el VEB, in vitro se reduce prácticamente a linfocitos B, que son transformados, en un proceso lento y tecnológicamente complejo, por lo que el aislamiento es un procedimiento imposible para la gran mayoría de laboratorios de diagnóstico. La identificación de antígenos del virus tampoco ha resultado 12 una aproximación adecuada. Por último, la detección de DNA del virus por la reacción en cadena de la polimerasa ha mostrado un buen rendimiento comparativo con los estudios serológicos. La determinación de la carga vírica del VEB tiene gran utilidad por sí sola, aunque debe combinarse con parámetros clínicos y otras técnicas de laboratorio adicionales. En los receptores de trasplante, la detección cualitativa del VEB generalmente no se correlaciona con la presencia de SLPT, dado que el virus puede detectarse en la sangre periférica de individuos infectados sanos en bajos niveles. En cambio, los ensayos cuantitativos permiten observar las fluctuaciones de la carga vírica en el desarrollo y regresión de esta enfermedad. Actualmente, la forma más común de determinar la carga vírica del VEB se basa en pruebas de PCR. Inicialmente estos métodos fueron semicuantitativos y su mayor desventaja radicaba en la escasa estandarización de la metodología y la posibilidad de obtención de resultados falsos negativos por factores de inhibición de la PCR presentes en las muestras biológicas. Posteriormente, los métodos cuantitativos competitivos de PCR mejoraron la determinación de la carga vírica del VEB. La inclusión de calibradores internos para cada reacción permitió identificar los problemas de inhibición. Aunque éstos ensayos de carga vírica son reproducibles precisos y complejos, requieren una elevada manipulación durante y después de la PCR y precisan gran número de cálculos para la obtención de los resultados. Este hecho no permite el procesamiento de un elevado número de muestras y dificulta el seguimiento de un gran número de pacientes. En cambio, la PCR cuantitativa en tiempo real, al detectar durante la amplificación la fluorescencia de los productos de PCR, requiere poca manipulación y permite el seguimiento de un mayor número de pacientes y muestras. Los sistemas Taqman (Applied Biosystems) y de LightCycler (Roche Diagnostics) son los métodos más empleados actualmente 11. Actualmente, se utilizan varios tipos de muestras para los ensayos de cuantificación de DNA del VEB. Éstas incluyen la sangre total, células de sangre periférica, suero y plasma. El aislamiento de células sanguíneas es 13 laborioso, requiere mayor cantidad de sangre y el proceso puede dañar las células. En cambio, la utilización de sangre total requiere poco volumen de muestra, siendo un argumento de peso para el seguimiento de niños y pacientes graves. Además, no requiere pasos previos a la extracción del DNA. Los niveles de carga vírica hallados en las células de sangre periférica y en sangre total, son generalmente más elevados que los hallados en plasma. La carga vírica asociada a las células sanguíneas puede persistir a elevados niveles, pero no acompañarse con la detección en plasma, o detectarse a valores bajos. En los laboratorios clínicos se ha incrementado el uso de la carga viral como herramienta para el diagnóstico y seguimiento de las enfermedades relacionadas con virus. La carga viral del VEB no solo es útil para detectar una infección activa, sino también como marcador tumoral de ciertas formas malignas. 14 II PLANTEAMIENTO DEL PROBLEMA Es bien sabida la relación que guarda el virus de Epstein Barr con la aparición de enfermedades linfoproliferativas, sobre todo en pacientes inmunocomprometidos; en Hospitales de tercer nivel como el Hospital Infantil de México Federico Gómez se atienden pacientes con inmunodeficiencia primaria o adquirida. Por lo que se considera que el seguimiento de este tipo de pacientes debe ser realizado junto con la determinación de la carga viral de Epstein Barr. La determinación del virus es realizada determinando la carga viral por PCR, siendo el método más usado, sin embargo la literatura destaca que la determinación de la carga viral en sangre total y plasma guarda diferencias importantes, ya que un porcentaje de pacientes con resultados negativos en plasma son positivos en sangre total, y de no realizarle esta ultima el diagnóstico de estos pacientes se realiza de manera tardía. Por tal motivo se debe conocer cuál es el comportamiento en la detección y cuantificación de Epstein Barr en sangre y plasma con PCR en tiempo real de muestras de pacientes pediátricos en el Hospital Infantil de México Federico Gómez. 15 III JUSTIFICACION La inmunosupresión en pacientes pediátricos sobre todo en postrasplantados de órganos sólidos es todo un reto, ya que el fin es lograr preservar el órgano el mayor tiempo posible. Sin embargo, hay varias causas de pérdida de injerto, dentro de estas se encuentra el Síndrome linfoproliferativo causado por el Virus de Epstein Barr, ante esto como parte del seguimiento de pacientes postrasplantados y pacientes con inmudeficiencias primarias y secundarias se está obligado a la determinación rutinaria de la carga del Virus Eptein Barr. En la literatura existen diferencias importantes en cuanto a su determinación en sangre total o plasma, encontrandoen esta última a pacientes negativos en los cuales al realizar la determinación en sangre total se encuentra positiva. Es necesario por tal motivo, conocer la detección y cuantificación de virus de Epstein Barr en sangre total y plasma de muestras de pacientes pediátricos en el Hospital Infantil de México Federico Gómez, con el fin de modificar el seguimiento de los pacientes a favor de la preservación de la salud. Este trabajo de investigación es la base de futuros proyectos de investigación relacionados con carga viral y niveles de inmunosupresión de pacientes postran plantados, así como la asociación de la enfermedad con la carga viral y la actividad del virus Epstein Barr. 16 IV OBJETIVO Describir la detección y cuantificación del virus Epstein Barr en sangre periférica y plasma de pacientes pediátricos. 17 V MATERIAL Y METODOS a) Diseño. Estudio retrospectivo, transversal y descriptivo b) Población de estudio. Muestras de pacientes pediátricos, recibidas en el periodo de abril del 2008 a noviembre del 2009, a los cuales se les realizó la investigación del virus de Epstein Barr (VEB). c) Muestra. Muestreo por conveniencia. d) Criterios de Inclusión: Muestras de pacientes pediátricos, recibidas en el periodo de abril del 2008 a noviembre del 2009, a los cuales se les realizó la investigación del virus de Epstein Barr (VEB) en sangre total periférica y plasma por medio de PCR en tiempo real. e) Criterios de Exclusión: -Muestras de pacientes pediátricos, recibidas en el periodo de abril del 2008 a noviembre del 2009, a los cuales se les realizó la investigación del virus de Epstein Barr (VEB) solo en sangre total periférica. - Muestras de pacientes pediátricos, recibidas en el periodo de abril del 2008 a noviembre del 2009, a los cuales se les realizó la investigación del virus de Epstein Barr (VEB) solo en plasma por medio de PCR en tiempo real. -Muestras coaguladas de pacientes pediátricos, recibidas en el periodo de abril del 2008 a noviembre del 2009, a los cuales se les solicitaba la investigación del virus de Epstein Barr (VEB). 18 f) Metodología: Para la determinación de carga viral se utilizaron 3 ml de sangre periférica anticoagulada con EDTA, se tomo una alícuota de 400 µl de sangre total, la muestra restante se centrifugo a 3000 rpm por 10 minutos y se tomo una alícuota de 400 µl de plasma. Extracción de ADA: Para la extracción de ADN se utilizó el equipo MagNA Pure Compac®; con un juego de reactivos Magna Pure Compact Nucleic Acid Isolation Kit I (Roche Molecular Diagnostics) utilizando los programas de extracción de ADN a partir de 400 µl de sangre total con un volumen de elusión de 200 µl y el programa de ácidos nucleicos totales a partir de 400 µl de plasma con un volumen de elusión de 100 µl. Para la detección y cuantificación del VEB se amplificó un fragmento de 166 pb del genoma utilizando un diseño de la compañía TIBMOL Biol y el equipo LightCycler®, además como control positivo interno se utiliza un juego de iniciadores y sonda que amplifica un fragmento de 278 pb. La mezcla de reacción a un volumen final de 20 µl, utilizando 5.0 µl de ADN extraído de cada una de las muestras. Las mezclas de reacción fueron sometidas a un programa de desnaturalización de la muestra y activación de la enzima a una temperatura de 95° C por 10 minutos. Seguido de un programa de 50 ciclos de amplificación por 5 segundos a 95° C, 10 seg. a 60° C, 15 seg. a 72° C. Una curva de desnaturalización para identificar el producto de la PCR derivado del ADN del VEB, con un programa de 1ciclo por 20 segundos a 95° C, 20 seg. a 40° C, 0 seg. a 85° C con un incremento de la temperatura de 0.2° C/seg y en modo de adquisición de florescencia continuo. 19 VI PLAN DE ANALISIS ESTADISTICO Se realizo estadística descriptiva utilizando Excel 2007. VII RESULTADOS De las 1052 muestras estudiadas, en 498 (47.3%) muestras de sangre total y en solamente 253 (24.05%) muestras de plasma, se detectó y se cuantificó la carga viral del VEB. FIGURA 1.-Detección positiva para carga viral de virus Epstein Barr 20 De las muestras de ST y de PL 554 (52.7%) y 799 (75.95%) muestras respectivamente, tuvieron un resultado negativo. FIGURA 2.- Detección negativa para carga viral de virus Epstein Barr Se calcularon las frecuencias de las combinaciones posibles entre carga viral en ST y carga viral en PL, encontrándose la combinación siguiente: ST negativo – PL negativo: 525 (49.9%) muestras. ST negativo--PL positivo: se detectaron 29 muestras con un valor promedio de 364 copias/ml de PL y un intervalo que va de 100 a 1100 copias/ml. ST positivo – PL negativo: 274 (26.05%) muestras. ST positivo – PL positivo: 224 (21.29%). 21 SANGRE TOTAL - PLASMA NUMERO DE MUESTRAS PORCENTAJE Negativo - Negativo 525 49.9% Negativo - Positivo 29 2.76% Positivo - Negativo 274 26.05% Positivo - Positivo 224 21.29% Totales 1052 100% De la combinación de sangre total y plasma positivas, se identificaron 99 (9.41%) muestras de ST con carga viral de 5,000 copias/ml o más y valores menores a 100 copias/ml en PL, que significa un 9.41% del total de las muestras o un 44.2% de las 224 muestras. Con parámetros mas estrictos encontramos 56 (5.3%) muestras con valores de carga viral menores a 100 copias/ml en PL y de 10,000 copias/ml o superiores en ST, además dentro de estas ultimas muestras existen 7 con valores en ST que van desde las 70,000 hasta las 364,000 copias/ml. TABLA 1.- Frecuencia de las combinaciones posibles entre carga viral en ST: sangre total y carga viral en PL: plasma. 22 VIII. DISCUSION En pacientes postrasplantados bajo terapia inmunosupresora y e pacientes inmunosuprimidos, el seguimiento de la infección por el VEB se tiene que realizar por medio de la carga viral en sangre total y plasma, y nos ayuda a la identificación temprana de los pacientes en riesgo de desarrollar la enfermedad activa causada por virus de Epstein Barr. No existen valores de corte en el estudio cuantitativo de carga viral para infección de VEB, que nos permitan identificar a los pacientes que lo van ha desarrollar, aunque algunos autores, han propuesto valores de pacientes que están en riesgo de padecerlo, como Wagner y cols. que proponen 5,000 copias/µg de ADN extraído de células mononucleres de sangre periférica (CMSP) y valores en plasma superiores a 10,000 copias/ml, concluyendo que ambos tipos de muestra son útiles, para dar seguimiento a la infección por el VEB, en individuos inmunocompetentes e inmunosuprimidos, aunque al parecer el plasma tiene una especificidad superior (14). En cambio Orentas RJ y cols reportan que pacientes trasplantados con cargas virales de indetectable a 10,000 copias/µg ADN de CMSP son considerados como normales, con valores superiores a 20,000 copias/µg ADN de CMSP no parecen estar en riesgo letal inmediato por SLPT y con valores superiores a 100,000 copias/µg ADN de CMSP están claramente en alto riesgo de mortalidad asociada al trasplante (15). En este trabajo, hemos encontrado que el 9.41% de nuestras muestras con carga viral de 5,000 copias/ml o más y valores menores a 100 copias/ml en PL o el 5.3% de muestras con valores de carga viral menores a 100 copias/ml en PL y de 10,000 copias/ml o superiores en SP, además dentro de estas ultimas muestras existen 7 con valores en SP que van desde las 70,000 hasta las 364,000 copias/ml. Pacientes que en caso de no haber hecho la determinación en sangre periférica hubiesen pasadoinadvertidos y con un alto riesgo de padecer el SLPT. 23 IX CONCLUSIONES En base a los resultados obtenidos a través de esta investigación, proponemos que para la valoración y tratamiento en pacientes inmunosuprimidos y pos trasplantados con alto riesgo de presentar SLPT, es necesario que el médico tratante cuente con los resultados de carga viral en sangre periférica y plasma con PCR en tiempo real para que con estos datos se tenga la evidencia necesarias que le permita modular la inmunosupresión y por lo tanto prevenir el desarrollo del SLPT, como lo reporta Lee TC y Cols. donde el propósito de su trabajo fue implementar un protocolo de seguimiento frecuente del VEB, en el que la carga viral del virus dirija la reducción de la inmunosupresión y con ello disminuir la incidencia de SLPT en sus pacientes (16). Observamos que tanto en la determinación en sangre total como en plasma se logra detectar la presencia de VEB, sin embargo es importante considerar que la cantidad de copias encontrada a través de muestras de plasma son mucho más bajas que las encontradas en sangre total, por lo que en base a este estudio sugerimos que el clínico debe tomar en cuenta que una cifra baja de capias de VEB en plasma no excluye al paciente de cursar con la enfermedad activa, debiendo tener siempre la determinación en sangre total para un mejor seguimiento de sus pacientes. Es necesaria la realización de más estudios para determinar los valores de corte en el estudio cuantitativo de carga viral para infección de VEB con PCR en tiempo real. 24 X ANEXOS HOJA DE RECOLECCION DE DATOS: NO. DE MUESTRA NOMBRE DEL PACIENTE EDAD FECHA COPIAS DE VEB EN PLASMA COPIAS DE VEB EN SANGRE TOTAL 25 XI BIBLIOGRAFIA 1. Kieff E and Rickinson A B. Epstein Barr Virus and Its Replication. 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