Valores-de-referencia-hematologicos-en-poblacion-adulta-de-trabajadores-en-la-Delegacion-Azcapotzalco-de-la-Ciudad-de-Mexico

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UNIVERSIDAD NACIONAL AUTONOMA DE 
MEXICO 
 FACULTAD DE ESTUDIOS SUPERIORES CUAUTITLAN 
 
 
 
 
 
“Valores de referencia hematológicos en población adulta de 
trabajadores en la Delegación Azcapotzalco de la Ciudad de 
México” 
 
 
 
 
T E S I S 
 
PARA OBTENER EL TÍTULO DE: 
 
QUIMICA FARMACEUTICA BIOLOGA 
 
 
P R E S E N T A: 
 
LIZBETH DE LA ROSA RESENDIZ 
 
 
ASESOR DE TESIS: 
 
Q.F.B. RENE DAMIAN SANTOS 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
Cuautitlan Izcalli, Edo. De México 2006
 
UNAM – Dirección General de Bibliotecas 
Tesis Digitales 
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 1
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 G R A D E C I M I E N T O S A 
A DIOS, Por la fe que me ha brindado para seguir adelante, por darme 
la paciencia necesaria para comprender y saber esperar, por la familia 
que mandaste, por los problemas que he padecido, pero sobre todo te 
doy gracias por permitirme llegar a este momento tan importante para mi 
desarrollo profesional 
 A mi madre: 
La señora Blanca Resendiz Camilo, por todo el amor que siempre me has 
brindado, por los consejos que me has dado, por alentarme a seguir 
adelante, por la fuerza que me has brindado cuando la he necesitado, 
por que eres la motivación más grande que pueda tener TE AMO. 
A mi Padre: 
Por los momentos que hemos compartido, por preocuparte por mi y por tu 
cariño. Hoy quiero decirte que también te quiero y que admiro ese espíritu 
aventurero que tienes, ese aire de juventud que te caracteriza, siempre 
estas en mis oraciones y le pido a Dios que te cuide hasta donde te 
encuentras. 
A mis Hermanos: 
Nayi por todas las travesuras que hicimos juntas y por los líos en los que 
me metías. Laura por ser mi confidente, por las aventuras compartidas 
Hipolito, por ser tan ocurrente por tu buen humor que siempre nos contagia, 
a los tres gracias, los quiero mucho. 
A mi Abuelo (Sr. Carlos): 
Por todo su apoyo brindado durante el tiempo que estuve estudiando la 
carrera, por preocuparse por mi cuando llegaba tarde y también por sus 
regaños. Gracias porque siempre has sido un gran apoyo para la familia. 
 
A mis Tios (Fam. Resendiz): 
Arturo q. p. d., por que siempre que busque su ayuda nunca me la negó a 
pesar de sus propios problemas encontraba la manera de ayudarme. 
Carlos, como agradecerle toda la ayuda que me ofreció, los momentos 
que convivimos cuando estuve trabajando con usted para poder lograr 
este objetivo, por tomarse la molestia de preguntar como iba en la 
escuela y cuales eran mis planes a futuro, lo quiero muchísimo, espero no 
haberlo defraudado. 
Juana, gracias por abrirme las puertas de su casa durante mis estudios y 
aun después, gracias también por el apoyo brindado. 
Alicia, gracias por compartir su espacio conmigo, por lo buenos y malos
momentos y alentarme a seguir adelante. 
 2
 
 
 
Jorge, por confiar y creer en mí, por que siempre está dispuesto a ayudar a 
su familia. 
Alfredo, Por las asesorías de física y fisicoquímica y por compartir su tiempo 
conmigo en el momento indicado. 
Luisa, Pedro, Salvador y Alejandro, esto para mí es maravilloso y gracias por 
cada minuto que me brindaron y todo el cariño que me han demostrado. 
 
A mis primos: 
Saul, David, Diego, Rocío, Jazmín, Marco y Rodrigo, espero ser buen 
ejemplo para ustedes y ayudarles en lo que esté a mi alcance. 
 
Abiud: 
Por volvernos a encontrar, por el tiempo que hemos compartido, por estar en 
mi pasado, por ser parte de mi presente y por que Dios permita que seas 
parte de mi futuro, por tu apoyo, por hacerme enojar y hacerme feliz y 
también por aguantar mis caprichos, te amo mi amor. 
 
A mi Asesor: 
Por aceptar ayudarme en este proyecto y su paciencia durante la realización 
del mismo. Gracias. 
 
A mis sinodales: 
Por ser participes en este trabajo, y por sus opiniones y consejos para la 
mejora de este. 
 
A la QFB Ana Lilia Cuesta: 
Por los permisos que me brindó para la realización de este trabajo, por 
insistir en mi titulación, por hacerme ver mis errores, por darme la 
oportunidad de trabajar y aprender más a su lado. En verdad la aprecio. 
 
A la Facultad de Estudios Superiores Cuautitlan: 
Por abrirme sus puertas para que pudiera desarrollarme profesionalmente 
A mis Profesores: 
Por compartir conmigo sus conocimientos y experiencias 
 
 
Y gracias a las personas que por alguna razón no fueron mencionadas. 
 G R A D E C I M I E N T O S A 
 3
 
INDICE 
 
INTRODUCCION 
 
1.0 Importancia de la Biometría Hemática …………………………………………6 
1.1 Usos de la Citometría Hemática ………………………………………………..6 
1.2 Automatización de la Citometría Hemática ……………………………………7 
 
1.3 INDICES ERITROCITARIOS PRIMARIOS..................................................10 
1.3.1 Hemoglobina………………………………………………………………….. 10 
1.3.2 Hematocrito……………………………………………………………….……11 
1.3.3 Eritrocitos…………………………………………………………….……….. 11 
 
1.4 Morfología Normal del Eritrocito………………………………………………..12 
1.5 Morfología Anormal del Eritrocito………………………………………………12 
1.6 Variaciones en el tamaño……………………………………………………….17 
1.7 Variación en el color……………………………………………………………..19 
 
1.8 INDICES ESRITROCITARIOS SECUNDARIOS…………………………….20 
1.8.1 Indices de Wintrobe…………………………………………………………..20 
1.9 Uso del ancho de Distribución eritrocitaria…………………………………...21 
 
2.0 LEUCOCITOS O GLOBULOS BLANCOS (SERIE BLANCA)……………..23 
2.1 Recuento Diferencial……………………………………………………………24 
2.1.2 Fundamento de la Tinción de Wrigth……………………………………….24 
 
3.0 PLAQUETAS (SERIE TROMBOCITICA)…………………………………….29 
3.1 Funciones de las Plaquetas……………………………………………………29 
 
4.0 INTERPRETACION DE LA CITOMETRIA HEMATICA…………………….30 
4.1 Enfermedades que afectan a la Serie Roja de manera predominante……32 
4.2 Enfermedades que afectan a la Serie Blanca predominantemente……….32 
 
5.0 CONTROL DE CALIDAD………………………………………………………33 
 
6.0 VALORES DE REFERENCIA…………………………………………………36 
6.1 Valores de Referencia de Grupo……………………………………………...37 
6.2 Valores de Referencia Individualizados………………………………………38 
 
7.0 OBJETIVO GENERAL…………………………………………………………40 
7.1 Objetivos Particulares………………………………………………………….40 
 
8.0 HIPOTESIS……………………………………………………………………..42 
 
9.0 MATERIALES Y METODOS………………………………………………….44 
9.1 Materiales……………………………………………………………………….44 
9.2 Metodología…………………………………………………………………….46 
9.3 Manejo del Analizador Hematológico Celly 70……………………………..48 
 4
9.4 Diagrama de Flujo………………………………………………………………50 
 
10.0 RESULTADOS………………………………………………………………52 
 
11.0 DISCUSION…………………………………………………………………70 
 
12.0 CONCLUSIONES…………………………………………………………..74 
 
13.0 BIBLIOGRAFIA……………………………………………………………..75 
 
ABREVIATURAS (Anexo 1)………………………………………………………79 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 5
 
 
 
 
 
 
 
 
ntroducción I 
Introducción 
Introducción 
Introducción 
Introducción 
 6
 
INTRODUCCION 
 
1.0 Importancia de la Biometría Hematica 
 
La biometría hemática también denominada Citometría Hemática(CH) es el 
primer examen al que se enfrenta el clínico en la valoración diagnostica de un 
paciente y aunque se considera como un simple examen de laboratorio en 
realidad valora el estudio de tres líneas celulares, cada una con funciones 
diferentes entre sí pero que tienen en común que son producidas en la médula 
ósea (Eritrocitos, Leucocitos y Plaquetas) (1). 
 
El término Citometría Hemática (CH) parece ser el más adecuado para referirse 
a la medición de las célulasde la sangre (citos = célula, metros = medida, 
haematos = sangre). La interpretación correcta de toda la información que 
ofrece una CH permite establecer sospechas diagnosticas definidas sobre la 
enfermedad que causa las alteraciones de la misma y ahorrar al medico y al 
paciente tiempo, esfuerzos e incluso erogaciones económicas (2). 
 
La CH es un examen por demás importante, ya que permite examinar las 
células de la sangre, detectando si existen variaciones en la calidad y cantidad 
los cuales muchas veces se asocian a diversas patologías, dichas alteraciones 
incluyen a las disminuciones de hemoglobina, hematocrito y eritrocitos, es decir 
a las anemias y realizando una adecuada determinación de la CH es posible 
establecer el diagnostico presuntivo. De la misma forma se detectan trastornos 
leucocitarios tanto de tipo cuantitativo, cualitativo y mieloproliferativo, en cuanto 
a las plaquetas también se detectan trastornos de tipo cuantitativo. Es por eso 
que la CH es uno de los recursos de los laboratorios con mayores posibilidades 
de aportar puntos de partida en cuanto a diagnostico, pronostico y tratamiento. 
La condición es su correcta ejecución, tanto técnica como interpretativa (3, 4, 5). 
 
 
 
 
 7
1.1 Usos de la citometria hemática 
 
Los usos de la CH son múltiples, pero en el seguimiento de los pacientes con 
quimioterapia o radioterapia, el diagnóstico de los enfermos con síndrome 
anémico, febril o purpurico son los más frecuentes. En el cuadro 1 se muestran 
los signos y síntomas de cada uno de los síndromes. Pocos de ellos se 
consideran tan específicos como para llegar a un diagnostico definitivo por lo 
que se requiere el apoyo de la CH y otros estudios de laboratorio y de médula 
ósea. 
 
 
Cuadro 1 Usos de la Citometria Hemática 
Síndrome febril Síndrome anémico Síndrome purpúrico 
Hipertermia Palidez Petequias 
Calofríos Disnea Equimosis 
Sudoración Lipotimia Hematuria 
Mialgias Palpitaciones Epistaxis 
Artralgias Astenia Gingivorragia 
Otras Adinamia Metrorragia 
 Otras 
 
 
La CH completa se puede realizar en forma manual y automatizada sin 
embargo la mejor opción es con un contador automatizado, capaz de hacer 
mediciones simultáneas de hemoglobina, número de eritrocitos, volumen de 
estos, cuenta plaquetaria, cuenta de leucocitos y diferencial de leucocitos 
 
 
1.2 AUTOMATIZACIÓN DE LA CITOMETRÍA HEMATICA 
 
Inicialmente los procedimientos empleados en los laboratorios eran siempre 
manuales sin embargo la reproducibilidad, exactitud y precisión eran renglones 
con variaciones importantes, hoy en día la CH ha evolucionado gracias a la 
 8
automatización de las técnicas lo que ha permitido aumentar su validez y 
precisión. La información que brinda la CH automatizada permite hacer el 
diagnostico diferencial de numerosas situaciones patológicas, los equipos 
automatizados van desde los muy sencillos hasta los más sofisticados, 
básicamente predominan los principios de operación o combinaciones de 
estos: impedancia eléctrica y difracción de rayos láser y para la cuenta 
diferencial emplean unos, el análisis de imagen por computadora (DIFF3), la 
citoquímica (Advia 120), gradientes de centrifugación (QBC) o energía de alta 
frecuencia, la difracción de luz láser e impedancia eléctrica (5, 6). 
 
Las ventajas de los métodos automatizados sobre los métodos manuales están 
totalmente aceptados: 1) rapidez, 2) precisión, 3) cálculo automático del 
hematocrito y de las constantes hematológicas. Se fabrican en la actualidad 
excelentes instrumentos, estos contadores en forma automática pipetean, 
diluyen y después pasan la solución de células sanguíneas a través de una 
apertura pasando por un campo a una velocidad fija para contar las células 
individuales, debido a que los eritrocitos son poco conductores de la 
electricidad producen una caída momentánea en la conducción, la magnitud de 
la cual es una medida del tamaño celular relativo. Por tanto la técnica de 
impedancia eléctrica hace posible tanto la rapidez como la precisión en la 
cuenta de un gran número de eritrocitos y en forma simultánea la del volumen 
celular. 
Los contadores que usan láseres ópticos brindan las mismas mediciones con 
base en las características de dispersión de la luz (3). 
 
Debido a que un gran número de células se cuentan con mucha rapidez, los 
errores de medición (coeficiente de variación) de los contadores automáticos es 
menor al 2% (3). 
 
 
El analizador hematológico Celly 70 que fue el analizador utilizado en este 
trabajo se basa en el principio de impedancia eléctrica, la sangre es diluida en 
una solución buffer, la conductividad eléctrica varía según las células en la 
solución buffer diluyente. Un cierto volumen de la dilución pasa a través de la 
 9
apertura (Ø = 80um para WBC y 60um para RBC) en tanto una corriente 
eléctrica es aplicada. Cuando una célula pasa a través de la apertura (también 
llamado orificio), esta desplaza el diluyente conductivo en la zona de medida, 
incrementando la resistencia en el área. Este efecto es proporcional a la 
 
cantidad de diluyente desplazado y por ende proporcional al volumen de la 
célula que lo ocasiona. El equipo amplifica estos pulsos eléctricos, cuenta el 
número y tamaños de las células en ambas cámaras de conteo, WBC y 
RBC/PLT (7). 
 
De esta forma los datos que arroja el equipo para la CH completa incluye la 
determinación de: hemoglobina (Hb), hematocrito (Hto), cuenta de eritrocitos 
(RBC), índices celulares (volumen corpuscular medio (VCM), hemoglobina 
corpuscular media (HCM), concentración de hemoglobina corpuscular media 
(CHCM), ancho de distribución eritrocitaria (RDW), esto corresponde a la serie 
roja, cuenta de leucocitos (WBC) y diferencial de leucocitos, correspondiente a 
la serie blanca cuenta de plaquetas (PTL) y volumen plaquetario medio (MPV). 
 
 
Hoy el uso de los contadores automatizados, para la realización de la 
citometría hemática, además de llevarnos a la obtención de datos más precisos 
y exactos que los obtenidos por métodos manuales, nos permiten determinar 
rutinariamente la cardinalidad y las dimensiones de las plaquetas, de los 
leucocitos y de los eritrocitos, además del RDW, la cuenta diferencial de 
leucocitos, el MPV y el plaquetocrito (8). 
 
 
La serie roja la compone la determinación de los índices eritrocitarios primarios 
y secundarios. Los índices eritrocitarios primarios son: la determinación de Hb, 
Hto y el número de eritrocitos/ml. (1) 
 
 
 
 
 10
 
1.3 INDICES ERITROCITARIOS PRIMARIOS 
(SERIE ROJA) 
 
1.3.1 Hemoglobina. 
 
La hemoglobina (Hb), componente principal de los glóbulos rojos, es una 
proteína conjugada que sirve de vehículo para el trasporte de oxígeno y dioxido 
de carbono. Totalmente saturada cada gramo contiene alrededor de 1.34 ml 
de Oxigeno. (9) 
 
La Hb es una proteína globular que fija oxigeno en los pulmones y lo 
transportador la sangre hacia los tejidos y las células que rodean el lecho 
capilar del sistema vascular. Al volver a los pulmones, desde la red de capilares 
la Hb actúa como transportador de dióxido de carbono y de protones. Se trata 
de una proteína alosterica que consta de 2 pares de cadenas polipeptídicas (2α 
y 2β con 141 y 146 aminoácidos respectivamente) y 4 grupos protéticos hem, 
que contiene cada uno un átomo de hierro ferroso. (9, 10, 11) 
 
 
Un grupo prostético es la porción no polipeptídica de una proteína. El hem es 
una molécula de porfirina que contiene un átomo de hierro en su centro, el cual 
puede formar 5 o 6 enlaces de coordinación dependiendo de la unión de 
oxígeno (u otro ligando) a la Hb (oxi-Hb, desoxi-Hb). (11) 
La Hb se mide en gramos por decilitro y representa la cantidad de esta proteína 
por unidad de volumen. Este parámetro debe ser el único a emplear para 
definir si hay o no anemia. Es decir sólo si la cifra de Hb es inferior al valor 
normal puedeasegurarse que hay anemia, las cifras normales de Hb son 
variables y dependen de: la edad, sexo, altura del sitio de residencia. (2) 
 
 
Los métodos considerados para la determinación de la Hb son: el método de la 
cianometa-Hb (hemoglobinocianuro) o sea HICN, el de la oxi-Hb y el que mide 
el contenido de hierro para la determinación de la concentración de Hb. El 
 11
método de la HICN es el recomendado por el INTERNATIONAL COMMITTEE 
FOR STANDARIZATION IN HEMATOLOGY (ICSH-1978). (9) 
 
1.3.2 Hematocrito 
 
Es la relación del volumen del eritrocito con el de la sangre total. Se mide en 
porcentaje, este parámetro no debe emplearse para establecer la existencia de 
anemia. Los valores normales del Hto dependen también de la edad, sexo y 
altura del sitio de residencia. (2, 9) 
 
El Hto se puede medir directamente por centrifugación con macrométodo o 
micrométodo, o de forma indirecta como el producto del Volumen corpuscular 
Medio por el recuento de hematíes en aparatos automáticos, por lo tanto es un 
parámetro eritrocitario con menor precisión y exactitud que la Hb. (9) 
 
 
1.3.3 Eritrocitos 
 
Los glóbulos rojos (eritrocitos) son los más numerosos de los tres 
componentes celulares y normalmente componen casi la mitad del volumen 
sanguíneo, estas células están llenas de Hb. La formación continuada de 
eritrocitos o glóbulos rojos (GR) se denomina eritropoyesis. Esta constituye un 
sistema de renovación continua, es decir que sus elementos celulares poseen 
vida media limitada por lo cual deben ser reemplazados en forma periódica. (12, 
13) 
 
Mientras se encuentra en circulación, el eritrocito está sujeto a una gran 
variedad de cambios metabólicos y mecánicos. La eliminación de células con 
alguna anormalidad puede ocurrir por 3 mecanismos: 
 
1. Células con alteraciones moderadas son destruidas en el bazo 
2. Células con alteraciones importantes son eliminadas en el hígado 
 12
3. Eritrocitos severamente dañados cuya integridad estructural está 
comprometida son destruidos en circulación con la consecuente 
liberación de su contenido en el plasma. (5) 
 
 
1.4 Morfología normal del eritrocito 
 
 
Los GR tienen forma de discos redondeados bicóncavos y con un diámetro 
aproximado de 7.5um. En condiciones normales la producción de eritrocitos 
constituye una magnitud constante: alrededor de 30 ml por kilogramo de peso 
corporal. Los eritrocitos viven en el ser humano 120 días. Alrededor de 20 ml 
de eritrocitos desaparecen por día de la circulación y por lo tanto idéntica 
cantidad debe ser producida por el organismo en el mismo lapso. (13, 14) 
 
 
 
Figura 2. Morfología normal del eritrocito vista en un microscopio electrónico de barrido 
 
1.5 Morfología Anormal del Eritrocito (Variación en la forma) 
 
Poilquilocitosis.- Se le denomina a cualquier célula con una forma anormal, 
en algunos casos de anemia pueden observarse células ovales, en forma de 
pera, silla de montar, casquete o en formas totalmente irregulares. 
 
El frotis puede proporcionar claves morfológicas importantes sobre la 
enfermedad del eritrocito. Se ha introducido una terminología internacional 
 13
utilizando palabras derivadas del griego para describir las células basándose 
en su morfología tridimensional. 
 
 
Estomatocito.- En extensiones teñidas con wright, la zona central pálida 
normalmente es rectangular o como hendida (estoma significa abertura como 
un boca), en preparaciones tridimensionales tiene forma de copa cóncava 
(Anemia hemolítica congénita, alcoholismo agudo, cirrosis alcohólica, 
mononucleosis infecciosa, envenenamiento por plomo etc.). 
 
Figura 3. Estomatocito visto en microscopio electrónico de barrido 
 
 
Equinocito.- Cubierto por 10 a 30 proyecciones cortas espaciadas 
uniformemente sobre la superficie celular. 
 
 
 
 
Figura 4. Equinocitos vista en microscopio optico aumento 100x 
 
 14
 
 
Acantocito.- Forma irregular con 2 a 10 espinas esféricas inclinadas de 
longitud y diámetro variable. Las bases de las espinas del acantocito son de 
volumen variable, diferente de los equinocitos, cuyas espinas son de 
dimensiones notablemente uniformes. 
 
 
 
Figura 4. Comparación entre Acantocitos y Equinocitos vista en microscopio óptico aumento 100x 
 
Esferocito.- No son células realmente esféricas, su grosor está aumentado de 
modo que la concavidad central está muy disminuida y puede pasarse por alto, 
en las extensiones sanguíneas los esferocitos aparecen circulares y tienen una 
zona central teñida más obscura (Anemia hemolítica adquirida, reacciones 
transfusionales, esferocitosis hereditaria). 
 
 
 
Figura 6. Esferocitos vista en microscopio óptico aumento 100x 
 
 
 15
 
Esquizocito.- Hematíe roto que asume característicamente una forma de 
medio disco con dos o tres extremidades afiladas (Anemia hemolítica, 
vasculitis, glomerulonefritis, quemaduras graves, hemólisis por válvulas 
cardiacas). 
 
 
 
Figura 7. Esquizocito vista en microscopio óptico aumento 100X 
 
 
 
Drepanocito.- (Células falciformes) término que describe la célula falciforme y 
una variedad de formas inducidas por la polimerización de la hemoglobina 
falciforme, en la extensión de sangre son alargadas, ligeramente curvadas con 
extremos puntiagudos que se parecen a una hoja de hoz. 
 
 
 
Figura 8. Inducción de Drepanocitos con methabisulfito de sodio visto en aumento 40x 
 
 
 16
 
Eliptocito.- (Ovalocito) disco bicóncavo oval que muestra varios grados de 
aberraciones elípticas desde ovaladas hasta una célula casi cilíndrica, bipolar, 
alargada (Anemia perniciosa, anomalías congénitas de los hematíes 
mendelianos dominantes y no ligados al sexo). 
 
 
 
 
Figura 9. Eliptocito vista con microscopio óptico aumento 100x 
 
 
Codocito.- (Célula en diana) se produce un exceso relativo por la curvatura de 
la membrana en el centro del hoyo. La Hb se acumula donde las membranas 
celulares superior e inferior se separan cuando la célula está sobre una 
preparación de sangre formando la densidad central” de la diana. 
 
 
 
 
Figura 10. Codocito vista en microscopio óptico aumento 100x 
 
 
 
 17
Dacriocito.- Célula que se caracteriza por una elongación única o una 
extremidad afilada, descrita previamente como una lagrima, raqueta 
(Mielofibrosis con metaplasia mieloide, talasemia). 
 
 
 
 
Figura 11. Dacriocito vista en microscopio óptico aumento 100x 
 
 
 
 
 
Queratocitos.- Hematíes con un volumen celular relativamente normal que han 
sido deformados por la extirpación de una zona de membrana adyacente, 
sellada herméticamente que deja dos extremos puntiagudos o más (Prótesis 
vasculares). (15, 16) 
 
 
 
1.6 Variaciones en el tamaño 
 
Anisocitosis: Implica que la variación en el tamaño de los eritrocitos es mayor 
que la normal, basándose en sus diámetros las células se dividen en 
Gigantocitos, Macrocitos, Megalocitos y Microcitos. 
 
 Gigantocitos.- Las células son mayor de 10um de diámetro a causa de 
la falta de división celular (poliploidia). 
 18
 
 Macrocitos.- Las células son superiores a 8um de diámetro y se pueden 
originar por déficit de vitamina B12 o ácido fólico, pueden encontrarse 
en anemias megaloblasticas, cirrosis y anemias hemolíticas. 
 
Figura 12 Macrocito vista en microscopio óptico aumento 100x 
 
 Megalocitos.- Miden de 9 a 12um de diámetro, se presentan 
normalmente en el déficit de ácido fólico o vitamina B12. 
 
Figura 13 Megalocitos vistos en microscopio óptico aumento 100x 
 Microcitos.- Miden menos de 6um de diámetro y se deben a déficit de 
hierro.(15) 
 
Figura 14 Microcitos Vistos en microscopio óptico aumento 100x 
 
 
 
 19
1.7 Variaciones en el color 
 
Hipercromia: El contenido de hemoglobina de las células individuales parece 
mayor, mientras que la célula es más gruesa que lo normal. 
 
 
 
 
 
Figura 15. Eritrocitos hipercrómicos (indicaos con las flechas) vistos en microscopio óptico 100xHipocromía: Cuando la hemoglobina está fuertemente disminuida el área 
central pálida tiene mayor tamaño llegando a ser notable. 
 
 
 
Figura 15. Eritrocitos Hipocrómicos vistos en microscopio óptico 100x 
 
 
 
 
 
 20
Policromasia: Se refiere a la coloración difusa azul claro (basofilia difusa) de 
los eritrocitos jóvenes teñidos con wright-giemsa (reticulocitos). (15) 
 
 
Figura 16. Eritrocitos jóvenes (Reticulocitos) policromatofilos vistos en microscopio óptico 100x 
 
 
 
1.8 INDICES ERITROCITARIOS SECUNDARIOS 
 
 
1.8.1 Indices de wintrobe 
 
Los índices eritrocitarios secundarios son: el Volumen Corpuscular Medio 
(VCM), la Hemoglobina Corpuscular Media (HCM) y la Concentración Media de 
Hemoglobina Corpuscular (CHCM), se calculan a partir de los índices 
primarios, nos indican el tamaño y contenido de la hemoglobina en la población 
de eritrocitos estudiada. (1) 
 
Wintrobe introdujo los cálculos para la determinación del tamaño, contenido y 
concentración de hemoglobina en los glóbulos rojos, estos índices permiten 
diferenciar las anemias según tamaño: Microcíticas (VCM disminuido), 
Normocíticas (VCM normal) o macrocíticas (VCM aumentado). Según su 
concentración de hemoglobina: Hipocrómicas (HCM disminuido) o 
normocrómicas (HCM normal). (4, 9) 
 
VCM.- Se mide en fentolitros (fl) o micras cúbicas. Este índice eritrocitario, es 
de gran valor en el esclarecimiento de la causa de la anemia, el VCM es el 
 21
volumen medido de los hematíes de una muestra sangre dada y se calcula 
como sigue (9): 
 
 
 
 VCM (um3 o fentolitros) = HTO (%) X 10 
 # GR 
HCM.- Se expresa en picogramos (pg) y representa el contenido de la 
hemoglobina en el promedio de eritrocitos, este índice debe ser el único que 
se emplee para referirse a la cantidad de Hb en cada eritrocito y se calcula de 
la siguiente manera (2, 9): 
 
HCM (picogramos) = Hb (g/l) X 10 
 # GR 
 
 
 
CHCM.- Es la concentración de Hb en el promedio de eritrocitos, este índice 
eritrocitario es medido como porcentaje, se determina a partir de la Hb y el Hto 
(2, 6, 9) 
 
CHCM (%) = Hb ( g/dl) X 100 
 Hto (%) 
 
 
 
1.9 Uso del ancho de distribución eritrocitaria (RDW) 
Los autoanalizadores en hematología mejoraron el diagnóstico de las 
diferentes anemias1, 2 proporcionando resultados seguros y nuevos 
parámetros hematológicos. De estos, son importantes los histogramas de 
distribución por tamaño que muestran el tamaño medio de las células dentro de 
una población celular específica, distribución de las células respecto a la media 
y presencia de subpoblaciones significativas. Los datos del histograma se 
producen por la acumulación de impulsos eléctricos cuando cada célula pasa 
 22
por un detector y posteriormente son graficados. (Resistencia Electrónica o 
Impedancia). 
 
El RDW mide el grado de anisocitosis. Este parámetro fue ampliamente 
documentado desde 1980. (5, 17) 
Pudiéndoselo expresar como una desviación estándar en fl o como un 
coeficiente de variación en %. 
La heterogeneidad en los tamaños celulares de los glóbulos rojos conocida 
como anisocitosis en el frotis de sangre periférica puede ser medida coneste 
coeficiente (RDW). 
Las muestras con un valor de RDW bajo o normal (aproximadamente 14%) 
tienen generalmente una población homogénea y un histograma de distribución 
por tamaño de carácter gaussiano, a diferencia de las que poseen un RDW alto 
(generalmente mayor de 18%) que tienen poblaciones celulares heterogéneas 
directamente relacionadas con el grado de anisocitosis observados en el frotis 
de sangre periférica. 
En el siguiente esquema se muestran los histogramas que pueden encontrarse 
para el RDW. 
 
 
 
2.0 LEUCOCITOS O GLOBULOS BLANCOS (SERIE BLANCA) 
 
Los glóbulos blancos son los encargados de la defensa del organismo y 
reciben el nombre de leucocitos por la etimología leuco (blanco) y cito (célula). 
(18) 
 
 23
 
 
Se efectúan dos determinaciones principales: 
1) Cuenta total de leucocitos 
2) Cuenta diferencial de leucocitos (1) 
 
 
La función principal de los glóbulos blancos (GB) es combatir las infecciones 
bacterianas, víricas, por hongos y parasitarias. (19) 
Los leucocitos son de forma redonda mientras circulan por la sangre y adoptan 
formas variadas cuando sales de los vasos sanguíneos y su diámetro oscila 
entre 6 y 18um. 
 
Muchas infecciones estimulan a la médula ósea a liberar al torrente sanguíneo 
grandes números de leucocitos que normalmente están en reserva, lo que se 
evidencia como un aumento en el número de células blancas en la sangre 
periférica. (20) 
 
 
Los datos que proporciona la CH son número de glóbulos blancos, cuenta 
diferencial y alteraciones de los mismos. Se mide en miles por milímetro cúbico 
(mm3). El número de leucocitos depende de muchos factores como edad, peso, 
consumo de hormonas anticonceptivas etc. (2) 
 
 
La función principal de todo el sistema leucocitario es defender al organismo en 
contra de lo que es ajeno. No obstante cada uno de estos tipos de células tiene 
funciones diferentes y se comportan como un sistema independiente aunque 
relacionado con los demás. 
 
El sistema leucocitario difiere del eritrocitario y plaquetario en varios aspectos. 
La función de los últimos se realiza en la sangre en tanto que la función de los 
leucocitos se efectúa en el espacio extravascular. (21) 
 
 24
 
En la sangre humana pueden distinguirse en orden de frecuencia los siguientes 
tipos de leucocitos: Neutrófilos, Linfocitos, Monocitos, Eosinófilos y Basófilos. 
La producción de linfocitos se realiza en diferentes sitios pero la de los 
neutrófilos, monocitos, eosinófilos y basófilos ocurre exclusivamente en la 
médula ósea del ser humano. 
Es importante enfatizar que para la identificación morfológica se puede efectuar 
un frotis delgado de sangre periférica teñido con una técnica adecuada (tinción 
de wrigth). (19) 
 
2.1 Recuento Diferencial 
 
Los recuentos diferenciales tienen como finalidad obtener información de la 
distribución relativa de los diferentes leucocitos en sangre periférica. El 
porcentaje obtenido o el número absoluto de cada célula es de gran utilidad 
para el diagnostico de múltiples enfermedades y orienta en la elección del 
tratamiento a seguir en los pacientes y pone de manifiesto la existencia de 
efectos secundarios en paciente que reciben quimio o radioterapia. Los 
laboratorios clínicos utilizan diferentes procedimientos para efectuar el recuento 
diferencial de los leucocitos, los más empleados se basan en la proporción de 
extensiones sanguíneas realizándose una tinción con colorante de wrigth. (22) 
 
2.1.1 Fundamento de la tinción de wrigth 
Es una coloración de Romanowsky que utiliza dos colorantes principales: la 
Eosina es un colorante ácido de color naranja que se une a las estructuras 
básicas (ejem. Hemoglobina, proteínas cationicas de los gránulos de los 
eosinófilos) y el Azul de Metileno colorante básico de color azul brillante que 
tiñe estructuras ácidas. 
Un frotis de sangre periférica se realiza con una gota de sangre fresca que se 
extiende sobre un portaobjetos y con ayuda de otro que se denomina extensor 
y se deja secar al aire y se tiñe con un colorante adecuado. (23) 
 
 
 25
Los neutrófilos son los leucocitos más importantes y numerosos que forman la 
primera defensa en contra de una invasión bacteriana, según la forma de su 
núcleo se le puede clasificar en neutrófilos en banda y en neutrófilos 
segmentados. (18) 
 
 
 
Neutrófilos Segmentados.- (60-65 % del total de los leucocitos) miden entre 
10 y 15um, en promediotienen 3 segmentos pero pueden encontrarse en la 
sangre normal células incluso con 5 segmentos. (19, 21) 
Se caracterizan por presentar un núcleo con cromatina compacta, los lóbulos 
están conectados por delgados puentes. Su citoplasma contiene abundantes 
gránulos finos color púrpura que tienen abundantes enzimas destructoras 
necesarias para la lucha contra gérmenes extraños. 
 
 
La principal función de los neutrófilos es la de detener o retardar la acción de 
agentes infecciosos o materiales extraños. Su capacidad fagocítica aumenta 
cuando las bacterias están recubiertas de anticuerpos, el neutrófilo emite 
seudópodos alrededor de la partícula a ingerir y los fusiona con lo cual la 
misma queda en su interior englobada por una vacuola fagocítica, donde será 
destruida con la participación de las enzimas líticas que posee la célula. (20) 
 
 
 
 
Figura 12. Neutrofilo segmentado vista en microscopio óptico aumento 100x 
 
 26
 
 
Neutrofilos en Banda.- Los neutrófilos en banda o “cayados” son un tipo 
menos maduro que los neutrófilos segmentados, pueden verse en la sangre de 
personas normales y comprende aproximadamente del 1 al 3% del total 
leucocitario. Cuando se trata de combatir infecciones bacterianas severas, 
peden aumentar y número ya que la médula ósea los libera en virtud de la 
emergencia antes de terminar su maduración. (19, 20) 
 
 
 
 
Figura 13. Neutrofilo en banda vista con microscopio óptico aumento 100x 
 
 
Linfocitos.- Constituyen aproximadamente el 30% de los leucocitos, se peden 
encontrar de distintos tamaños: grandes, medianos y pequeños. Las funciones 
en el sistema linfático son en general la producción de anticuerpos circulantes y 
la expresión de la inmunidad celular. (20, 23) 
 
Los linfocitos son células esféricas o ligeramente ovoides con un diámetro de 8 
a 12um, el núcleo (azul oscuro) ocupa el 90% de la célula. El citoplasma es 
muy delgado y se tiñe color azul claro formando un anillo alrededor del núcleo. 
(18) 
Los linfocitos son los que migran más tardíamente a las zonas de inflamación, 
todos son formados en la médula ósea, sólo se diferencian en cuanto a los 
lugares de maduración, dos son los tipos de linfocitos: linfocitos T ( 
maduración en el timo) y linfocitos B (maduración en la médula ósea), 
 27
aproximadamente el 70-80% de los linfocitos en sangre periférica muestran 
características de células T, estos tienen una vida media de varios años, así 
como una gran capacidad y velocidad para recircular entre la sangre y los 
tejidos, también almacenan y conservan la memoria inmunológica (células T de 
memoria). Una vez activadas son células efectoras (células asesinas) de la 
inmunidad celular y secretan sustancias biológicamente activas que sirven de 
mediadores solubles de inmunidad en la respuesta inflamatoria. (4, 20) 
 
 
 
Figura 14. Linfocito visto con microscopio óptico aumento 100x 
 
Eosinófilos.- Tienen un tamaño similar al de los neutrófilos, se encuentran en 
menor cantidad del 1 al 3% del total de leucocitos, tienen actividad fagocítica y 
un papel muy importante en las parasitosis y condiciones de alergias. Es una 
célula fácilmente identificable por la presencia de grandes gránulos color 
naranja en su citoplasma, el eosinófilo presenta en general dos lóbulos. (18, 20, 23) 
 
 
 
Figura 15. Eosinófilo visto en microscopio óptico aumento 100X 
 
 28
Basófilos.- Es el menos abundante, se encuentra en un porcentaje menor al 
1%, son algo más pequeños que los eosinófilos con un promedio de 10um. 
Poseen gránulos de heparina e histamina. Estas sustancias son mediadores 
químicos que modulan la inflamación, participan en reacciones de 
hipersensibilidad y alergia. 
 
Los gránulos de los basófilos con frecuencia se distribuyen sobre el núcleo y lo 
ocultan. (18, 20, 21, 23) 
 
 
 
Figura 16. Basófilo visto en microscopio óptico aumento 100x 
 
 
 
Monocitos.- Los monocitos junto con los linfocitos son los leucocitos que 
forman la segunda línea de defensa del organismo, son los leucocitos de mayor 
tamaño con un diámetro de 15-20um, tres veces la de un eritrocito, el núcleo es 
grande, puede ser redondo, oval o en forma de herradura, son células 
fagocíticas con gran capacidad bacteriana y viajan por sangre periférica para 
luego emigrar a diferentes tejidos como hígado, baso, pulmones, ganglios 
linfáticos, hueso, cavidades serosas para convertirse en estos tejidos en 
macrófagos libres o fijos para formar lo que se conoce como sistema 
mononuclear fagocítico. 
 
El monocito típico tiene un citoplasma azul grisáceo, presenta gránulos muy 
finos difíciles de observar y tienen un núcleo en forma de riñón pero pueden ser 
 29
redondos u ovalados, sin depresiones, debido a que su aspecto morfológico es 
tan variable se asemejan y confunden con los linfocitos grandes. (4, 18, 20, 21, 23) 
 
 
 
Figura 16. Monocito visto en microscopio óptico aumento 100x 
 
 
 
3.0 PLAQUETAS (SERIE TROMBOCITICA) 
 
Las plaquetas son los elementos formes más pequeños de la sangre, miden 
de 2 a 4um de diámetro en extensiones teñidas y de 5 a 7 fentolitros de 
volumen, actúan en la hemostasia y en el mantenimiento de la integridad 
vascular además de participar en el proceso de la coagulación sanguínea. 
Desarrollan cuatro distintas funciones en respuesta al daño vascular. 
 
 
 
3.1 FUNCIONES DE LAS PLAQUETAS 
 
1) Mantenimiento continuo de la integridad vascular al sellar las 
deficiencias menores del endotelio 
2) Detención inicial de la hemorragia a través de la formación de tapones 
plaquetarios. 
 30
3) Estabilización del tapón hemostático al contribuir con la actividad 
procoagulante (factor 3 plaquetario) haciendo que la cascada de 
coagulación forme fibrina. 
4) Promoción de la curación vascular al estimular la migración de células 
endoteliales y la migración y proliferación de células musculares lisas 
mediales (a través de la liberación del mitógeno, factor de crecimiento 
derivado de plaquetas OPDGF). (9, 19) 
 
 
 En la CH los datos que se informan para la serie trombocítica son: número de 
plaquetas, distribución de los volúmenes plaquetarios, plaquetocrito. 
 
El Volumen Plaquetario Medio (VPM) es inversamente `proporcional a la 
cuenta de palquetas. El Plaquetocrito, es el porcentaje del volumen total de las 
células sanguíneas que ocupan las plaquetas y se calcula multiplicando el VPM 
por el número de plaquetas. (22) 
 
Los valores disminuidos de plaquetas indican trombocitopenia, los valores 
aumentados indican trombocitosis. 
 
4.0 INTERPRETACIÓN DE LA CITOMETRIA HEMATICA (CH) 
 
Los siguientes son ejemplos de las CH con los hallazgos más comunes en las 
enfermedades hematológicas. Los resultados que se reportan son los más 
frecuentes. A continuación se incluyen las siguientes enfermedades 
considerando la parte de la CH que se altera con más intensidad. 
 
4.1 Enfermedades que afectan la serie roja de manera predominante 
La anemia es un síndrome que tiene múltiples causas. De hecho, existen 
aproximadamente 500 causas del proceso y en cada paciente el origen se 
debe determinar con exactitud si se quiere administrar un tratamiento 
apropiado. (2) 
 
 
 31
 
Algunas clasificaciones de la anemia se resumen en el siguiente diagrama 
 
 
Diagnostico sindromático Anemia 
 
 
 
Análisis de Laboratorio Hemograma 
 
 
 
Comprobación de anemia Hemoglobina baja 
 
 
 
 
 
VCM bajo VCM normal VCM alto 
 
 
 
Anemia microcitica Anemia normocitica Anemia macrocitica 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 32
4.2 Enfermedades que afectan a la serie blanca predominantemente 
 
Leucocitosis (Aumento de Glóbulos Blancos). Algunas causas son: 
a) Infecciones Agudas 
b) Padecimientos Mieloproliferativos(Leucemias Crónicas, Agudas) 
c) Necrosis Tisular (Infarto al Miocardio, Quemaduras, Gangrena) 
 
Leucopenia (Glóbulos Blancos Disminuidos) algunas causas pueden ser: 
a) Infecciones Virales (Hepatitis, Influenza, Parotiditis, HIV) 
b) Medicamentos (Sulfonamidas, Antibióticos, Analgésicos, 
Mielosupresores) 
c) Radiaciones Ionizantes 
 
 
4.3 Enfermedades que afectan a la serie trombocítica de manera 
predominante 
 
Trombocitosis (Plaquetas Elevadas) consecuencia de esta puede ser: 
a) Padecimientos malignos 
b) Síndromes mieloproliferativos 
c) Padecimientos Autoinmunes 
d) Pancreatitis crónica 
e) Cirrosis Hepática 
 
Trombocitopenia (Plaquetas disminuidas) 
 
a) Púrpura Autoinmune 
b) Leucemia Aguda 
c) Hiperesplenismo 
d) Púrpura Trombocitopénica 
e) Transfusiones sanguíneas 
f) Radiaciones ionizantes 
 
 
 33
5.0 CONTROL DE CALIDAD 
 
Una de las áreas de la actividad humana en la que la aplicación de las técnicas 
estadísticas ha tenido gran difusión y al mismo tiempo un gran éxito es en 
aquellos aspectos que se relacionan con el control de calidad. Aunque 
inicialmente el control de calidad se aplicó sólo a fabricación industrial, en 
seguida se extendió su radio de acción a la prestación de servicios en donde se 
incluye el área de salud como son los laboratorios clínicos. (24) 
 
El uso de la palabra calidad tiene muchos significados. La Organización 
Internacional de Standarizaciones (ISO) ha definido calidad como “Todas la 
características de una entidad que sustentan su capacidad de satisfacer las 
necesidades expresas e implícitas, entendiendo por entidad, productos, 
actividades, procesos, organizaciones o personas (Boquet 1998). (25) 
 
 
La Federación Internacional de Química Clínica (IFCC), define al control de 
calidad como el estudio de aquellos errores que son responsabilidad del 
laboratorio y los procedimientos usados para reconocerlos y minimizarlos, 
incluyendo a todos los que se producen en el laboratorio, desde el momento en 
que se dan las instrucciones al paciente para la toma de muestra, hasta la 
entrega e interpretación de resultados. (26) 
 
Un laboratorio debe tener como propósito esencial producir resultados de alta 
calidad y confiabilidad, garantizar que el proceso de medición es exacto, 
confiable y adecuado para el propósito para el cual es aplicado. Esta 
pretensión puede lograrse a través de un proceso documentado en el cual se 
planea una serie de actividades tendientes a controlar, garantizar y asegurar 
que todos los procesos y procedimientos de medida del laboratorio se están 
ejecutando dentro de las especificaciones definidas para producir el resultado. 
(28) 
 
 
 
 34
El control de calidad se refiere a un método de control en el cual la calidad 
ocupa el primer lugar en importancia. El mejor abogado conocido de este 
método es W. Edgard Demming, un estadístico americano renombrado por 
haber ayudado a la industria japonesa a su reconstrucción. 
El papel básico del laboratorio clínico es proporcionar datos cuantitativos y 
cualitativos de especimenes biológicos, que ayuden al diagnostico, tratamiento 
y prevención de enfermedades humanas. Las buenas prácticas del laboratorio 
clínico y el control de calidad, ayudan a prevenir, identificar y corregir errores y 
permiten comprobar la corrección de los mismos. (26) 
 
Con el propósito de mejorar la calidad de su desempeño, los laboratorios 
deben implementar programas de control de calidad interno y someterse a la 
evaluación externa de la calidad. La IFCC clasifica al control de calidad en 
interno (CCI) y externo (CCE). 
 
Control de calidad interno.- El control de calidad interno lo define como el 
procedimiento en el cual se utilizan los resultados de un solo laboratorio con el 
propósito de controlar la calidad. (26) 
 
 
Control de calidad Externo.- El control de calidad externo lo define como el 
procedimiento en el cual se analizan comparativamente los resultados de 
varios laboratorios que analizaron los mismos especimenes. (26) 
 
 
El procedimiento del control de calidad interno más recomendado es el utilizar 
materiales estables de forma rutinaria y por periodos cortos de tiempo, este 
procedimiento de control de calidad fue inicialmente propuesto por W. Edward 
en 1920 y en ellos se representa en el eje de la X el tiempo, mientras que el 
eje vertical Y se representa algún indicador de la variable cuya calidad se mide. 
Además incluyen otras 2 líneas horizontales: Limite Superior e Inferior de 
control. 
 
 35
En 1947 Edward publicó el primer libro de control de calidad interno (CCI) para 
laboratorios farmacéuticos y fue hasta 1950 cuando Levey y Jennings lo 
introdujeron a los laboratorios clínicos de los EUA. 
Algunas pruebas realizadas por Belk y Sunderman en 1947 indicaron la 
necesidad de mejorar la calidad de los laboratorios clínicos. Años más tarde, 
en 1964, Tonks encontró que en 175 laboratorios evaluados en Canadá, un 
47.6% tenían resultados inaceptables. 
 
En México, el establecimiento interno se inició en 1969 en el Instituto Mexicano 
del Seguro Social (IMSS), sin embargo a la fecha no todos los laboratorios lo 
realizan de manera sistemática. 
En 1978 la SS en la ciudad de México organizó un programa de evaluación 
externa de la calidad, en este programa participaron aproximadamente 35 
laboratorios y fue dirigido por el Dr. Sánchez Medal. 
 
En 1982 la federación internacional de química clínica, con apoyo de la OMSS 
patrocinó en México el proyecto de química Clínica que tuvo una duración de 3 
años (29). 
 
 
 
En la Escuela Nacional Ciencias Biológicas (ENCB) se inició como un proyecto 
de investigación el programa de evaluación de la calidad entre laboratorios 
(PECEL), hoy PACAL en este programa participan 1816 laboratorios de casi 
todos los estados de la republica (26). 
 
En México existe un anteproyecto de la norma oficial mexicana desde el 4 de 
Diciembre de 1998 que obliga a los laboratorios clínicos a participar en los 
programas de evaluación externa de la calidad. (26) 
 
Así pues, el control estadístico de calidad tiene como objeto monitorizar de 
forma continua, mediante técnicas estadísticas, la estabilidad del proceso y 
mediante los gráficos de control este análisis se efectúa de forma visual. (24, 25) 
 
 36
La finalidad de los gráficos de control es monitorizar la variable para su buen 
funcionamiento y detectar rápidamente cualquier anomalía respecto al patrón 
correcto puesto que ningún proceso se encuentra espontáneamente en un 
estado de control. Así como mantenerlo, ese es el objetivo del control de 
calidad. 
 
El control de calidad es especialmente importante en el campo de la 
hematología, por que contribuye a facilitar un diagnostico preciso de estados 
patológicos comunes importantes para la salud pública, como las anemias y 
las discrasias sanguíneas. (30) 
 
 
6.0 VALORES DE REFERENCIA 
 
El término valor de referencia se ha propuesto en lugar de “valor normal” la cual 
tiene distinto significado en estadística, epidemiología y en la clínica. (31) 
 
Los valores de referencia (VR) pueden definirse como los valores de una 
variable obtenidos de un grupo de individuos en un determinado estado de 
salud, tomando en cuenta los parámetros de edad, genero, entidad etc. (32) 
 
No existe un acuerdo universalmente estandarizado para obtener los VR, se 
recomienda desde un mínimo de 40 hasta 300 sujetos o más para cada 
categoría o grupo, tampoco existe acuerdo en como obtener una garantía 
absoluta de que los factores pre-analiticos implicados en la preparación del 
sujeto y los observados en el método analítico durante la producción de los VR 
sean los mismos. (33) 
 
 
Con la incorporación de los contadores celulares en el laboratorio clínico en la 
década de los 50’s los valores de referencia para índices eritrocitarios (IE) 
encontrados en los principales textos de hematologíay medicina del laboratorio 
así como en innumerables reportes de la literatura científica se vieron 
incrementados en especificidad y sensibilidad. Sin embargo, estos valores de 
 37
referencia (VR) hoy por hoy ha dejado de ser del todo útiles e la practica 
cotidiana. (33) 
 
 
En la actualidad se considera necesario que cada laboratorio clínico determine 
los valores de referencia de su población urbana, para contar con una forma 
objetiva de evolución de las mediciones particulares para cada paciente, ello en 
razón de que cada población posee condiciones demográficas, económicas, 
culturales y de asentamiento geográfico propias, que inciden en las magnitudes 
típicas de sus parámetros bioquímicos y citológicos. (8, 27) 
 
Establecer correctamente los valores de referencia de cada prueba examinada 
por el laboratorio es tan importante como el resultado obtenido para el 
paciente, ya que el médico no está interesado en el número en sí, a el le 
interesa ver si el resultado es normal o anormal y si es anormal en que 
magnitud. (25) 
 
La obtención de los VR para un grupo de individuos incluye: 
 Selección de la población y grupo referencial. 
 Obtención y evaluación de la muestra. 
 Análisis estadístico de los datos para establecer el intervalo de 
referencia. (33, 34) 
 
Pueden considerarse dos tipos de valores de referencia: los valores de 
referencia de grupos y los valores de referencia individualizados. 
 
6.1 Valores de referencia de grupo 
Los valores de referencia generalmente se obtienen de sujetos sanos. El 
proceso de la obtención de los valores de referencia de grupo incluye: 1) definir 
la población de sujetos, 2) seleccionar los sujetos y 3) obtener procesar y 
analizar todas las muestras. 
 
 38
Definición de la población de sujetos. La población de la cual se seleccionen 
los sujetos debe estar claramente definida. Un complemento de esta definición 
debe ser el buen estado de salud. 
 
Selección de los sujetos. 
Edad.- los valores pediátricos de referencia difieren de los valores del adulto. 
Sexo.- En comparación con las mujeres de la misma edad, los hombres tienen 
valores más elevados de Hb, BUN, creatinína y Ácido úrico. 
Embarazo.- En el embarazo los factores procoagulantes y fibrinolíticos son más 
elevados, como lo es el valor de la fosfatasa alcalina en suero (ejem. isoenzima 
Fosfatasa Alcalina placentaria). 
 
Obtención y análisis de la muestra 
Habiendo seleccionado un grupo apropiado de pacientes, hay que especificar 
la preparación del paciente, antes de la toma de muestra y de los procesos 
analíticos (8). 
 
6.2 Valores de referencia individualizados 
 
En comparación con los valores de referencia de grupo, los valores de 
referencia individualizados pueden tener ciertas ventajas. En este último 
método se obtiene un cierto número de muestras de un paciente mientras se 
encuentra en el mismo estado de salud bien definido. Los resultados de las 
pruebas de laboratorio obtenidos a lo largo del tiempo se usan para calcular un 
intervalo de referencia personal (individualizado). 
La razón de utilizar intervalos específicos de un paciente se basa en el hecho 
de que los valores individuales varían menos que los valores de referencia de 
grupo (8). 
 
El presente estudio se realiza con la finalidad de establecer los valores 
hematológicos en población adulta para un laboratorio de la ciudad de México 
para aportarlos como referencia en la población que dicho laboratorio maneja 
(Laboratorio Clínico Central) y de esta forma ayudar a mejorar la interpretación 
clínica de los resultados. 
 39
 
 
 
 
 
 
 
OBJETIVOS 
bjetivos O
OBJETIVOS 
OBJETIVOS 
OBJETIVOS 
 40
 
7.0 OBJETIVO GENERAL: 
 
Establecer los valores de referencia hematológicos para un laboratorio de la 
ciudad de México (Laboratorio Clínico Central) basándose en los resultados 
obtenidos de las Biometrías Hemáticas de una población adulta de 
trabajadores de la ciudad de México en un periodo determinado (Marzo 2006 a 
Abril de 2006) para mejorar la calidad en los resultados. 
 
 
 
 
7.1 OBJETIVOS PARTICULARES: 
 
 Determinar los valores de referencia hematológicos para ayudar al 
laboratorio a mejorar la interpretación clínica de la biometría hemática. 
 Realizar un análisis estadístico de las biometrías hemáticas para obtener 
los valores de referencia. 
 Analizar los valores de referencia obtenidos y compararlos con los 
reportados en bibliografía y programas comerciales relativos a 
hematología (base de datos). 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 41
 
 
 
 
 
 
ipótesis H
HIPÓTESIS 
HIPÓTESIS 
HIPÓTESIS 
HIPÓTESIS 
 42
 
 
 
 
 
 
8.0 HIPOTESIS 
 
Si se obtienen valores de referencia hematológicos para un laboratorio de la 
ciudad de México (Laboratorio Clínico Central) en una población adulta normal, 
entonces los valores obtenidos darán un enfoque más preciso del estado de 
salud o enfermedad que aguarda la población de dicha zona que el laboratorio 
maneja. 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 43
 
 
 
 
 
Material 
Material 
Material 
Material 
aterial M 
 44
 
 
9.0 MATERIALES Y METODOS 
 
 
9.1 Materiales 
 
 Tubos con tapón morado con anticoagulante EDTA 
 Sistemas al vacío (aguja y adaptador) 
 Ligadura 
 Torundas 
 Alcohol 70% 
 Contador automatizado Celly marca BIOCODE HYCEL 
 Control Normal Celly-Trol 
 Solución de Wright 
 Buffer de fosfatos 
 Portaobjetos 
 Agitador de Tubos Marca Klitab 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 45
 
 
 
 
 
 
 
etodologíaM 
METODOLOGÍA 
METODOLOGÍA 
METODOLOGÍA 
METODOLOGÍA 
 46
 
 
9.2 Metodología 
 
La población de la cual se seleccionaron los sujetos de referencia fue 
claramente definida, lo más homogénea posible, tomando en cuenta que se 
consideró como un criterio importante el buen estado de salud de los pacientes. 
 
Para la realización de este proyecto se seleccionó a la población de una 
reconocida empresa de electrónica, los cuales acudieron al laboratorio a 
realizarse un chequeo general en los meses de Marzo y Abril de 2006. 
Sólo se tomaron en cuenta a aquellos individuos que en el examen médico no 
manifestaron síntomas de enfermedad aguda o grave, no presentaron síntomas 
o signos de infección en ese momento, ni fiebre o sangrado aparente, así como 
la declaración de su residencia en la ciudad de México en los últimos 3 años. 
Una vez establecida la población de sujetos, se incluyeron para el análisis 107 
pacientes del género masculino y 98 pacientes del género femenino. 
 
Los pacientes acudieron entre las 7:00 y 10:00 de la mañana, permanecieron 
sentados 5 minutos y se les extrajo la muestra de sangre venosa del antebrazo 
con aplicación de un torniquete máximo 60 segundos utilizando el sistema al 
vacio, la muestra sanguínea se recolectó en un tubo con anticoagulante EDTA 
K3. El análisis de las muestras se llevó a cabo dentro de los primeros 60 
minutos posteriores a la extracción, previamente la sangre fue homogeneizada 
con la ayuda de un agitador de tubo marca Klitab en una temperatura entre 18 
– 25ºC. 
 
Las muestras fueron analizadas en el contador automatizado Celly, del cual 
previamente fue determinada la precisión y exactitud, se realizó la verificación 
y control de calidad interno utilizando un control normal (Hycel-trol) para 
determinar la funcionalidad del equipo, así como el control de calidad externo 
de la hemoglobina en el programa de aseguramiento de la calidad 
(PACAL) presentando una calificación de excelente desde Abril de 2005 (fecha 
en que fue comprado el equipo). 
 47
El equipo se calibró con el calibrador CAL-TROL marca Hycel-trol. 
Una vez obtenidos los resultados, estos se agruparon por sexo, se llevó a cabo 
el análisis estadístico de los datos para calcular el promedio, la desviación 
estándar (DE) y los intervalos de confianza superior e inferior (percentiles 5 y 
95). Los datos fueronprocesados en el programa SPSS 14.0 para Windows 
empleando un intervalo de confianza del 95%. 
El método, de manera manual se realiza de la siguiente manera: 
1. Se tabulan los valores a analizar 
2. Se toma el 2.5% de n + 1, siendo n el número total de valores. Este será 
el valor del percentil 2.5 
3. El percentil 97.5 se obtiene de la misma forma tomando el 2.5% a partir 
del último valor. 
 
 
Cabe mencionar que cada muestra fue analizada por triplicado y 
posteriormente se obtuvo la media de cada prueba, esto para tener valores 
más representativos y verificar la reproducibilidad del equipo (Celly). 
 
9.3 Manejo del Analizador hematológico Celly 70 
 
 Encender el analizador oprimiendo el interruptor que se encuentra en la 
parte trasera del lado izquierdo del analizador 
 
 La pantalla muestra el menú principal, oprimiendo F1 (inicio de trabajo), 
el equipo indicará “Ciclo Hidráulico en Curso” 
 
 Al finalizar el Ciclo Hidráulico oprimir Enter para validar el inicio de 
trabajo 
 
 En el menú principal oprimir la tecla F2 (lista de trabajo), introducir el 
nombre del paciente empezando por los apellidos; así como su numero 
de identificación 
 
 Oprimir Esc para regresar al menú principal y teclear F3 (recuento) 
 48
 
 Volver a teclear F3 (en la pantalla aparecerá el nombre y número de 
identificación del paciente a analizar) 
 
 Colocar la muestra previamente homogeneizada en el adaptador que se 
encuentra en la torreta (ver figura 17) 
 
 Girar la torreta hasta el tope, la aguja de muestra bajará completamente 
a la posición del tubo para tomar la cantidad de sangre necesaria para el 
análisis (aprox. 16ul) 
 
 Esperar el resultado y oprimir F8 para imprimir 
 
 La pantalla indicará la muestra siguiente a analizar. 
 
 
Torreta 
 
 
Figura 17 Analizador Hematológico Celly 70 
 
 49
 
 
 
 
 
 
Iagrama de Flujo D 
DIAGRAMA DE FLUJO 
DIAGRAMA DE FLUJO 
DIAGRAMA DE FLUJO 
DIAGRAMA DE FLUJO 
 50
 
9.4 Diagrama de Flujo 
 
 
 
 
 
 
 
 
Agrupar los resultados 
(por sexo) y realizar un 
análisis estadístico 
Determinar los Limites 
Inferor y Superior con la 
ayuda del programa 
SPSS 14.0 para Windows 
Analizar los resultados 
obtenidos 
Recolectar la muestra en 
un tubo con anticoagulate 
EDTA K3 (tubo morado) 
Homogeneizar las 
muestras en un agitador 
de tubos a una 
temperatura de 18ºC – 
25ºC
Procesar las muestras en 
el contador automatizado 
Celly 
Realizar un frotis 
sanguineo para cada 
muestra y llevar a cabo el 
conteo diferencial de 
Leucocitos
 
Recepción de pacientes 
entre las 7:00 y 10:00 de 
la mañana 
Colocar al paciente en 
posición de sentado y 
extraer la mta. de sangre 
del antebrazo con 
aplicación de un torniquete
 51
 
 
 
 
 
 
 
RESULTADOS 
RESULTADOS 
esultados R
RESULTADOS 
RESULTADOS 
 52
 
10.0 RESULTADOS 
 
A continuación se muestran los valores tomados en cuenta para el análisis 
estadístico de pacientes del género masculino (Tabla 1) como femenino (Tabla 
4); los espacios que se encuentran vacíos en cada una de las tablas se 
consideraron no válidos debido a que no se encontraban dentro de los valores 
de referencia teóricos. 
En las tablas 2 y 5 se pueden observar los valores incluidos y excluidos para el 
análisis estadístico tanto de pacientes masculinos como femeninos 
 
Así pues tomando en cuenta únicamente los valores expuestos en la tabla 1 y 4 
se procedió a realizar el cálculo estadístico con la ayuda del programa SPSS 
14.0 para windows, utilizando el cálculo de percentiles, así coma también se 
determinó la media, desviación estándar y varianza para cada caso (Tablas 3 y 
6). 
 
Tomando en cuenta las recomendaciones de la IFCC para establecer VR se 
consideraron los percentiles 2.5 y 97.5 para determinar los VR experimentales 
debido a que en estos se considera a la mayoría de la población. 
 
Los VR obtenidos se compararon con los valores de la literatura y con los del 
programa del laboratorio PX LAB (Tabla 7). 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 53
 
Tabla 1. Resumen del procesamiento de los casos para pacientes del 
género Masculino 
 
 
Casos 
Incluidos Excluidos Total 
 
N Porcentaje N Porcentaje N Porcentaje 
RBC 107 100.0% 0 0.0% 107 100.0% 
HBG 107 100.0% 0 0.0% 107 100.0% 
HTO 106 99.1% 1 0.9% 107 100.0% 
MCV 107 100.0% 0 0.0% 107 100.0% 
MCH 107 100.0% 0 0.0% 107 100.0% 
MCHC 106 99.1% 1 0.9% 107 100.0% 
RDW 107 100.0% 0 0.0% 107 100.0% 
WBC 100 93.5% 7 6.5% 107 100.0% 
PTL 102 95.3% 5 4.7% 107 100.0% 
MVP 107 100.0% 0 0.0% 107 100.0% 
NSEG 107 100.0% 0 0.0% 107 100.0% 
NBAN 107 100.0% 0 0.0% 107 100.0% 
LINF 107 100.0% 0 0.0% 107 100.0% 
MON 107 100.0% 0 0.0% 107 100.0% 
EOS 107 100.0% 0 0.0% 107 100.0% 
BASOF 107 100.0% 0 0.0% 107 100.0% 
 
 
 
 54 
 
Tabla 2. Análisis estadístico de los datos de pacientes del género masculino 
 RBC HTO HBG MCV MCH MCHC RDW WBC PTL MVP NSEG NBAN LINF MON EOS BASOF 
Válidos 107 106 107 107 107 106 107 100 102 107 107 107 107 107 107 107 N 
 
Perdidos
0 1 0 0 0 1 0 7 5 0 0 0 0 0 0 0 
 
Media 
5.496 48.592 16.256 88.636 29.536 33.393 12.746 5.862 213.509 7.049 52.411 1.654 41.887 2.775 1.261 0.233 
 
Desv. Típ. 
0.370 3.133 0.976 3.709 1.596 1.051 0.435 1.343 42.482 0.629 9.2806 1.710 9.144 1.968 1.389 0.487 
 
Varianza 
0.137 9.818 0.954 13.764 2.549 1.106 0.189 1.806 1,804.720 0.396 86.132 2.926 83.629 3.874 1.931 0.237 
 
2.5 
 
4.874 43.700 14.640 82.280 26.900 31.505 12.040 4.100 159.300 6.300 38.400 0.000 24.400 0.000 0.000 0.000 
 
25 
5.250 46.100 15.600 86.300 28.700 32.750 12.500 4.900 181.750 6.600 46.000 0.000 36.000 1.000 0.000 0.000 
 
50 
5.480 48.350 16.300 88.800 29.600 33.400 12.700 5.600 205.500 7.000 51.000 1.000 43.000 3.000 1.000 0.000 
 
75 
5.720 50.725 16.900 90.500 30.500 34.200 13.000 6.675 235.250 7.500 59.000 3.000 49.000 4.000 2.000 0.000 
 
Percentiles 
 
97.5 
6.200 54.125 17.960 95.100 32.020 34.965 14.400 9.100 406.050 8.180 68.000 5.000 54.600 6.600 4.000 1.000 
 
 55
 
Tabla 3. Resumen del procesamiento de los casos para pacientes del 
género Femenino 
Resumen del procesamiento de los casos(a) 
Casos 
Incluidos Excluidos Total 
 
N Porcentaje N Porcentaje N Porcentaje 
RBC 96 97.0% 3 3.0% 99 100.0% 
HGB 98 99.0% 1 1.0% 99 100.0% 
HTO 98 99.0% 1 1.0% 99 100.0% 
MCV 98 99.0% 1 1.0% 99 100.0% 
MCH 98 99.0% 1 1.0% 99 100.0% 
MCHC 98 99.0% 1 1.0% 99 100.0% 
RDW 98 99.0% 1 1.0% 99 100.0% 
WBC 92 92.9% 7 7.1% 99 100.0% 
PLT 96 97.0% 3 3.0% 99 100.0% 
MPV 98 99.0% 1 1.0% 99 100.0% 
NSEG 98 99.0% 1 1.0% 99 100.0% 
NBAND 98 99.0% 1 1.0% 99 100.0% 
LINF 98 99.0% 1 1.0% 99 100.0% 
MONO 98 99.0% 1 1.0% 99 100.0% 
EO 98 99.0% 1 1.0% 99 100.0% 
BASO 98 99.0% 1 1.0% 99 100.0% 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 56 
Tabla 4. Análisis estadístico de los datos de pacientes del género femenino 
 
 RBC HGB HTO MCV MCH MCHC RDW WBC PLT MPV NSEG NBAND LINF MONO EO BASO 
Válidos 96 98 98 98 98 98 98 92 96 98 98 98 98 98 98 98 N 
 
Perdidos
3 1 1 1 1 1 1 7 3 1 1 1 1 1 1 1 
 
Media 
4.791 14.098 42.104 88.228 29.541 33.491 12.734 6.336 236.927 7.215 52.581 1.693 41.653 2.489 1.428 0.265 
 
Desv. típ. 
0.330 0.9069 2.730 4.125 1.617 1.363 0.514 1.654 58.4132 0.7187 9.980 3.767 10.662 1.975 1.4142 0.547 
 
Varianza 
0.110 0.823 7.453 17.017 2.615 1.860 0.265 2.736 3,412.110 0.517 99.607 14.194 113.693 3.902 2.000 0.300 
2.5 4.247 12.490 36.385 80.450 26.090 30.995 11.680 4.165 157.550 6.200 34.000 0.000 25.000 0.000 0.000 0.000 
 
25 
4.560 13.500 40.650 85.925 28.575 32.400 12.500 5.017 199.250 6.800 45.750 0.000 36.000 1.000 0.000 0.000 
 
50 
4.780 14.100 42.200 88.600 29.750 33.600 12.800 6.250 228.000 7.100 55.000 1.000 40.500 2.000 1.000 0.000 
 
75 
5.030 14.700 43.950 90.925 30.530 34.300 13.000 7.400 267.000 7.525 59.000 2.000 49.000 4.000 2.000 0.000 
Percentiles 
 
97.5 
5.326 15.605 46.315 95.710 31.913 35.710 13.505 9.140 415.800 8.820 67.050 5.00059.050 6.000 5.000 1.000 
 
 
 
 
 57 
 
Tabla 5. Valores tomados en cuenta para el análisis estadístico de pacientes del género masculino 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 RBC HBG HTO MCV MCH MCHC RDW WBC PTL MVP NSEG NBAN LINF MON EOS BASOF
1 5.30 15.60 47.40 88.80 24.20 33.00 12.30 7.20 178.00 7.70 48.00 0.00 46.00 2.00 4.00 0.00
2 5.93 17.50 53.20 89.80 29.50 32.80 11.90 5.90 247.00 8.90 81.00 0.00 12.00 1.00 5.00 1.00
3 6.02 17.30 53.30 88.60 28.70 32.40 12.70 6.90 215.00 7.30 45.00 5.00 48.00 2.00 0.00 0.00
4 5.76 16.30 48.20 83.70 28.30 33.90 13.40 8.90 283.00 6.80 46.00 2.00 43.00 5.00 2.00 1.00
5 5.48 16.30 48.70 88.90 29.70 33.10 13.00 4.40 225.00 7.50 29.00 0.00 70.00 1.00 0.00 0.00
6 5.61 15.40 46.40 82.70 27.90 33.20 12.90 5.90 292.00 7.00 52.00 0.00 47.00 1.00 0.00 0.00
7 4.88 14.40 44.50 91.20 30.50 33.50 13.20 4.60 163.00 7.80 45.00 0.00 54.00 1.00 0.00 0.00
8 5.58 16.50 48.60 87.10 29.60 34.00 13.10 7.10 156.00 7.50 40.00 5.00 48.00 4.00 3.00 0.00
9 5.39 17.00 49.00 91.40 31.50 34.50 12.60 9.40 168.00 6.40 51.00 2.00 45.00 2.00 0.00 0.00
10 6.08 17.00 52.00 85.60 28.00 32.60 12.80 4.00 255.00 6.40 41.00 0.00 51.00 3.00 3.00 2.00
11 6.14 16.70 50.20 81.80 27.20 33.30 13.10 5.50 218.00 7.00 50.00 0.00 41.00 6.00 3.00 0.00
12 5.39 15.60 46.20 85.90 29.00 33.80 12.80 6.60 225.00 6.60 42.00 0.00 51.00 5.00 2.00 0.00
13 5.51 17.00 48.40 88.00 30.90 35.10 12.80 6.80 169.00 7.20 60.00 2.00 38.00 0.00 0.00 0.00
14 5.80 17.20 51.20 88.30 29.60 33.60 12.40 5.10 314.00 6.40 49.00 2.00 45.00 3.00 1.00 0.00
15 5.53 16.50 47.80 86.40 29.80 34.60 12.70 6.10 197.00 6.90 42.00 0.00 55.00 3.00 0.00 0.00
16 5.35 15.80 45.60 85.20 29.60 34.70 12.50 6.40 207.00 6.60 42.00 0.00 53.00 5.00 0.00 0.00
17 5.33 15.60 45.60 85.70 29.30 34.20 13.10 5.90 309.00 6.40 38.00 2.00 55.00 3.00 2.00 0.00
18 5.45 16.60 49.20 90.20 30.40 33.80 13.10 . 159.00 7.00 58.00 5.00 31.00 6.00 0.00 0.00
 58 
 
Continuación Tabla 5 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
19 5.87 17.00 51.00 86.90 28.90 33.40 13.50 10.40 172.00 7.20 57.00 0.00 36.00 5.00 1.00 1.00
20 5.11 15.30 45.40 88.80 29.90 33.80 13.60 5.00 227.00 7.00 53.00 0.00 47.00 0.00 0.00 0.00
21 5.25 16.30 48.30 91.90 31.00 33.90 13.20 5.80 148.00 8.90 50.00 2.00 45.00 2.00 1.00 0.00
22 5.57 16.60 49.60 89.00 29.80 33.40 13.00 8.00 176.00 7.60 66.00 0.00 33.00 1.00 0.00 0.00
23 5.09 15.90 46.00 90.50 31.20 34.50 13.30 6.90 161.00 8.30 49.00 0.00 50.00 1.00 0.00 0.00
24 5.88 15.90 47.70 81.20 27.20 33.40 12.80 5.50 252.00 6.40 43.00 3.00 49.00 1.00 3.00 1.00
21 5.25 16.30 48.30 91.90 31.00 33.90 13.20 5.80 148.00 8.90 50.00 2.00 45.00 2.00 1.00 0.00
22 5.57 16.60 49.60 89.00 29.80 33.40 13.00 8.00 176.00 7.60 66.00 0.00 33.00 1.00 0.00 0.00
23 5.09 15.90 46.00 90.50 31.20 34.50 13.30 6.90 161.00 8.30 49.00 0.00 50.00 1.00 0.00 0.00
24 5.88 15.90 47.70 81.20 27.20 33.40 12.80 5.50 252.00 6.40 43.00 3.00 49.00 1.00 3.00 1.00
26 6.24 16.80 51.00 81.80 26.90 32.90 13.40 . 210.00 6.60 54.00 0.00 46.00 0.00 0.00 0.00
27 5.72 17.50 51.80 90.55 30.60 33.70 13.00 5.20 205.00 6.70 55.00 2.00 38.00 3.00 1.00 1.00
28 6.54 18.50 55.10 84.25 28.30 33.60 12.70 . 186.00 6.60 50.00 4.00 45.00 0.00 1.00 0.00
29 5.52 14.60 44.10 79.90 26.60 33.10 13.40 4.00 194.00 7.60 59.00 3.00 37.00 1.00 0.00 0.00
30 5.37 16.80 49.00 91.20 31.30 34.30 12.60 5.10 214.00 7.50 66.00 0.00 28.00 3.00 3.00 0.00
31 5.88 18.50 53.50 91.00 31.50 34.50 12.70 6.60 212.00 6.30 43.00 5.00 49.00 1.00 1.00 1.00
32 5.78 16.80 50.70 87.70 29.00 33.13 12.80 4.90 235.00 6.50 60.00 0.00 33.00 5.00 0.00 2.00
33 5.16 16.30 46.00 89.10 31.60 35.40 12.90 . 203.00 7.30 40.00 2.00 52.00 2.00 3.00 1.00
34 5.59 17.10 49.70 88.90 30.60 34.40 12.30 5.10 247.00 7.10 52.00 1.00 44.00 3.00 0.00 0.00
35 5.51 15.80 47.50 86.20 28.70 33.30 12.40 9.00 194.00 7.30 64.00 2.00 31.00 1.00 2.00 0.00
 59 
 Continuación Tabla 5 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
36 5.72 17.60 52.70 91.10 30.80 33.40 12.80 6.40 180.00 7.70 46.00 1.00 46.00 3.00 3.00 1.00
37 5.00 14.80 43.90 87.80 29.60 33.70 12.50 4.70 . 7.90 52.00 3.00 42.00 2.00 1.00 0.00
38 5.52 15.90 47.50 86.05 28.80 33.50 12.40 7.00 165.00 7.00 57.00 1.00 46.00 1.00 1.00 0.00
39 5.60 16.10 47.90 85.50 28.80 33.60 13.10 4.60 235.00 6.30 50.00 0.00 49.00 1.00 0.00 0.00
40 5.31 16.20 47.30 89.00 30.50 34.20 12.90 5.90 152.00 6.40 56.00 0.00 39.00 3.00 2.00 0.00
41 5.14 15.60 45.90 89.30 30.30 34.00 12.60 4.80 312.00 5.90 54.00 0.00 46.00 0.00 0.00 0.00
42 5.42 16.20 47.60 87.80 29.90 34.00 13.10 4.60 185.00 6.60 51.00 3.00 43.00 2.00 1.00 0.00
43 5.59 16.40 47.20 84.40 29.30 34.70 12.40 6.60 201.00 6.50 52.00 5.00 39.00 4.00 0.00 0.00
44 5.98 18.00 54.30 90.80 30.10 33.20 12.40 4.50 173.00 6.50 45.00 0.00 52.00 2.00 1.00 0.00
45 5.14 14.80 42.80 83.30 28.80 34.60 12.40 4.70 191.00 6.70 39.00 0.00 54.00 3.00 4.00 0.00
46 5.27 14.40 43.70 82.90 27.30 33.00 12.00 4.80 211.00 6.70 39.00 0.00 54.00 3.00 4.00 0.00
47 6.13 16.90 55.00 89.70 27.60 30.80 12.50 . 234.00 7.10 67.00 0.00 29.00 2.00 2.00 0.00
60 5.32 16.10 46.10 86.80 30.30 34.80 13.00 6.20 159.00 7.60 56.00 0.00 40.00 4.00 0.00 0.00
61 4.76 15.00 42.80 89.90 31.50 34.90 12.80 4.00 . 8.00 61.00 0.00 37.00 1.00 1.00 0.00
62 5.14 16.90 46.60 90.30 32.90 36.40 12.50 5.40 243.00 6.80 50.00 1.00 40.00 3.00 5.00 1.00
63 5.43 16.80 47.90 88.20 30.90 35.00 12.70 6.50 236.00 6.90 68.00 5.00 40.00 5.00 2.00 0.00
64 5.54 17.50 50.40 90.50 31.60 34.80 12.40 5.80 197.00 6.70 71.00 1.00 25.00 3.00 0.00 0.00
65 5.22 16.10 46.00 88.20 30.90 34.90 12.40 5.30 187.00 6.80 59.00 0.00 40.00 0.00 0.00 1.00
66 5.66 17.50 50.30 88.80 30.90 34.70 12.70 5.30 186.00 5.90 63.00 3.00 36.00 1.00 0.00 0.00
 60 
 Continuación Tabla 5 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
67 5.18 15.00 44.50 86.00 29.00 33.60 12.70 8.00 201.00 6.30 65.00 5.00 30.00 0.00 0.00 0.00
68 5.61 16.00 48.40 86.50 28.50 33.10 13.40 7.30 191.00 6.70 49.00 0.00 47.00 3.00 1.00 0.00
69 5.15 15.10 46.40 90.00 29.30 32.60 12.80 5.70 161.00 6.70 63.00 0.00 34.00 3.00 0.00 0.00
70 5.87 16.70 51.80 88.20 28.44 32.20 12.40 4.00 . 8.40 52.00 0.00 48.00 0.00 0.00 0.00
71 5.53 16.50 50.00 90.50 29.80 33.00 12.10 4.10 168.00 6.70 50.00 2.00 44.00 3.00 1.00 0.00
72 5.48 16.60 47.70 87.00 30.30 34.80 12.30 5.60 . 7.60 56.00 2.00 40.00 2.00 0.00 0.00
73 5.48 16.50 47.70 87.00 30.10 34.60 12.30 7.30 165.00 8.00 66.00 3.00 30.00 1.00 0.00 0.00
69 5.15 15.10 46.40 90.00 29.30 32.60 12.80 5.70 161.00 6.70 63.00 0.00 34.00 3.00 0.00 0.00
70 5.87 16.70 51.80 88.20 28.44 32.20 12.40 4.00 . 8.40 52.00 0.00 48.00 0.00 0.00 0.00
71 5.53 16.50 50.00 90.50 29.80 33.00 12.10 4.10 168.00 6.70 50.00 2.00 44.00 3.00 1.00 0.00
72 5.48 16.60 47.70 87.00 30.30 34.80 12.30 5.60 . 7.60 56.00 2.00 40.00 2.00 0.00 0.00
73 5.48 16.50 47.70 87.00 30.10 34.60 12.30 7.30 165.00 8.00 66.00 3.00 30.00 1.00 0.00 0.00
86 5.90 15.90 50.60 85.80 26.90 31.40 12.40 5.70 294.00 6.20 48.00 5.00 42.00 2.00 3.00 0.00
87 6.31 18.30 56.50 89.60 29.00 32.30 12.60 4.60 182.00 7.00 55.00 0.00 36.00 7.00 1.00 1.00
88 5.58 16.30 50.30 90.10 29.20 32.40 12.80 7.00 292.00 6.30 47.00 2.00 49.00 2.00 0.00 0.00
89 5.05 16.30 47.60 94.20 32.30 34.20 12.50 4.90 287.00 6.40 57.00 1.00 35.00 6.00 1.00 0.00
90 5.78 16.10 50.60 87.60 27.90 31.80 13.20 5.40 199.00 7.30 59.00 3.00 32.00 2.00 4.00 0.00
91 5.76 17.20 53.20 92.40 29.90 32.30 12.90 5.60 233.00 7.60 65.00 0.00 31.00 4.00 0.00 0.00
92 5.32 15.40 46.10 86.70 28.90 33.40 13.00 4.80 277.00 6.80 60.00 0.00 37.00 1.00 2.00 0.00
93 4.87 16.00 48.20 99.00 32.90 33.20 12.30 6.10 217.00 7.10 67.00 4.00 23.00 6.00 0.00 0.00
 61 
 Continuación Tabla 5 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
94 5.39 16.40 50.20 93.10 30.40 32.80 12.40 8.40 232.00 7.50 68.00 2.00 24.00 5.00 1.00 0.00
95 5.00 14.80 45.40 90.80 29.60 32.60 12.70 4.80 173.00 7.70 38.00 3.00 56.00 2.00 1.00 0.00
96 5.36 15.90 48.00 89.5029.70 33.20 12.60 4.40 179.00 6.70 47.00 1.00 44.00 5.00 2.00 1.00
97 5.39 16.10 49.80 92.20 29.80 32.40 12.90 4.90 215.00 7.30 46.00 2.00 49.00 1.00 2.00 0.00
98 5.15 15.60 48.60 94.30 30.30 32.20 13.40 6.70 286.00 6.90 47.00 2.00 44.00 5.00 0.00 2.00
99 4.99 15.20 45.70 91.60 30.50 33.40 12.80 5.60 197.00 6.30 42.00 4.00 52.00 2.00 0.00 0.00
100 4.98 15.00 46.40 93.10 30.10 32.30 13.20 4.90 188.00 7.10 49.00 1.00 49.00 0.00 1.00 0.00
101 5.43 15.90 48.30 88.90 29.30 32.90 12.80 5.10 184.00 7.10 50.00 3.00 46.00 0.00 1.00 0.00
102 5.42 14.90 46.40 85.70 27.50 32.10 12.60 7.00 184.00 7.30 53.00 1.00 42.00 1.00 2.00 1.00
103 5.14 15.00 46.40 90.30 29.20 32.40 13.00 7.40 238.00 7.30 51.00 4.00 43.00 2.00 0.00 0.00
104 4.85 14.70 45.10 93.00 30.30 32.50 12.60 4.10 198.00 6.30 46.00 0.00 45.00 7.00 2.00 0.00
105 5.39 15.50 48.70 90.30 28.70 31.80 12.30 5.00 218.00 6.70 58.00 1.00 32.00 3.00 5.00 1.00
106 6.34 17.60 . 87.30 27.70 31.80 12.70 7.40 221.00 7.70 48.00 2.00 42.00 7.00 1.00 0.00
107 4.95 14.40 43.80 88.50 29.10 32.90 12.60 . 261.00 7.10 68.00 4.00 24.00 3.00 1.00 0.00
Total 107 107 106 107 107 106 107 100 102 107 107 107 107 107 107 107
 62 
 
Tabla 6. Valores tomados en cuenta en el análisis estadístico de pacientes del género femenino 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 RBC HGB HTO MCV MCH MCHC RDW WBC PLT MPV NSEG NBAND LINF MONO EO BASO 
1 5.07 14.70 43.70 86.10 29.00 33.60 12.70 5.07 240.00 6.90 60.00 3.00 33.00 3.00 1.00 0.00
2 5.13 14.60 44.40 86.60 28.50 33.00 13.30 5.20 230.00 7.30 56.00 0.00 49.00 0.00 0.00 0.00
3 . 12.80 37.60 97.00 33.00 34.10 12.50 3.60 219.00 8.10 42.00 1.00 53.00 4.00 0.00 0.00
4 4.99 12.50 37.80 75.80 25.10 33.10 13.00 4.40 225.00 7.50 29.00 0.00 70.00 1.00 0.00 0.00
5 5.60 14.50 45.10 80.50 25.90 32.30 13.30 5.30 291.00 7.50 45.00 3.00 49.00 1.00 2.00 0.00
6 5.42 15.20 46.10 85.00 28.00 33.00 12.90 8.60 337.00 6.60 47.00 0.00 51.00 0.00 1.00 1.00
7 4.92 14.50 43.90 89.20 29.50 33.10 12.30 8.10 262.00 7.20 55.00 4.00 38.00 3.00 0.00 0.00
8 4.30 13.10 40.00 93.10 30.50 32.60 13.00 7.90 267.00 6.90 39.00 1.00 57.00 1.00 2.00 0.00
9 4.53 11.60 36.00 79.50 25.60 32.20 13.10 4.70 267.00 6.80 30.00 5.00 59.00 2.00 3.00 1.00
10 5.42 16.40 50.00 92.20 30.20 32.50 12.80 5.90 272.00 7.40 38.00 2.00 58.00 1.00 1.00 0.00
11 4.23 12.60 37.40 88.50 29.80 33.70 13.70 6.30 206.00 7.90 56.00 3.00 39.00 1.00 0.00 1.00
12 4.25 13.50 39.40 92.70 31.80 34.20 13.00 4.20 155.00 8.30 61.00 1.00 34.00 1.00 3.00 0.00
13 5.13 14.30 42.40 82.60 27.90 33.80 13.60 4.60 248.00 6.10 59.00 0.00 42.00 4.00 3.00 0.00
14 4.70 14.10 41.10 87.40 30.00 34.20 12.90 4.70 221.00 6.20 48.00 0.00 46.00 4.00 2.00 0.00
15 4.60 14.70 41.60 90.40 31.90 35.40 12.40 5.70 221.00 6.80 48.00 1.00 44.00 4.00 3.00 0.00
16 5.20 15.10 44.30 85.20 29.00 34.20 12.90 4.90 226.00 6.50 38.00 0.00 60.00 2.00 0.00 0.00
 63 
 
 
Continuación Tabla 6 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
17 5.17 15.70 46.30 89.60 30.40 34.00 12.50 6.70 162.00 7.80 56.00 2.00 38.00 3.00 1.00 0.00
18 5.25 15.60 45.70 87.20 29.70 34.10 12.60 8.10 286.00 6.50 42.00 1.00 52.00 1.00 2.00 2.00
19 5.21 15.00 43.80 84.00 28.80 34.30 12.40 6.50 250.00 7.30 42.00 0.00 46.00 6.00 4.00 0.00
20 4.83 14.70 42.70 88.50 30.50 34.40 13.30 7.70 139.00 6.90 55.00 0.00 43.00 2.00 1.00 0.00
21 4.98 14.90 42.40 85.20 29.90 35.20 12.90 4.30 168.00 6.80 66.00 2.00 30.00 0.00 2.00 0.00
22 4.88 15.30 43.90 90.00 31.40 34.80 12.80 6.00 328.00 5.80 35.00 0.00 62.00 0.00 3.00 0.00
23 4.78 13.60 40.10 83.90 28.50 34.00 13.40 5.20 263.00 7.70 54.00 1.00 43.00 1.00 1.00 0.00
24 4.96 13.40 39.70 89.10 30.10 33.70 13.20 7.90 237.00 7.70 41.00 2.00 52.00 5.00 0.00 0.00
25 4.48 13.40 40.10 89.40 29.90 33.40 12.90 6.00 245.00 7.90 63.00 6.00 25.00 4.00 2.00 0.00
26 4.52 13.80 40.20 88.50 30.40 34.30 12.50 7.20 208.00 7.00 67.00 3.00 27.00 3.00 0.00 0.00
27 4.82 14.10 41.50 86.00 29.20 34.10 12.80 4.10 188.00 7.00 69.00 0.00 27.00 2.00 0.00 2.00
28 5.12 14.30 42.20 82.50 27.90 33.90 12.60 6.30 154.00 7.80 56.00 0.00 42.00 2.00 0.00 0.00
29 5.10 15.50 45.00 88.20 30.40 34.40 13.10 9.70 214.00 7.80 59.00 0.00 38.00 1.00 2.00 0.00
30 4.49 14.10 40.20 89.53 31.40 35.00 12.90 9.40 212.00 7.40 64.00 3.00 33.00 0.00 0.00 0.00
31 5.25 14.60 43.40 82.66 27.80 33.64 13.60 8.40 328.00 6.90 64.00 2.00 33.00 0.00 0.00 1.00
32 4.53 13.50 39.80 87.85 29.80 33.91 13.10 6.00 . 8.20 76.00 1.00 21.00 2.00 0.00 0.00
33 5.06 13.90 43.10 85.17 27.47 32.25 12.90 5.80 344.00 7.40 59.00 0.00 39.00 0.00 0.00 2.00
34 4.72 14.50 41.00 86.86 30.72 35.30 13.00 5.90 255.00 7.10 55.00 7.00 36.00 1.00 1.00 0.00
35 4.98 15.70 45.10 90.56 31.52 34.81 12.40 5.10 225.00 6.30 57.00 3.00 37.00 0.00 3.00 0.00
 64 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
36 4.60 12.60 36.10 78.47 27.39 34.90 11.70 7.50 268.00 6.80 50.00 0.00 48.00 0.00 2.00 0.00
37 4.10 14.30 46.60 88.70 27.60 31.10 12.00 5.20 180.00 9.30 51.00 0.00 47.00 0.00 2.00 0.00
38 4.93 15.10 43.80 88.84 30.62 34.47 11.70 4.40 199.00 6.60 63.00 0.00 29.00 4.00 3.00 1.00
39 4.76 14.80 41.20 86.65 31.00 35.90 11.70 4.30 215.00 6.20 58.00 0.00 41.00 0.00 1.00 0.00
40 5.12 15.50 44.40 86.72 30.27 34.90 11.20 5.30 233.00 6.10 53.00 0.00 41.00 1.00 5.00 0.00
41 5.18 15.00 47.10 91.90 29.00 31.50 11.30 . 219.00 9.40 61.00 0.00 33.00 4.00 2.00 0.00
42 4.66 15.10 42.20 90.55 32.40 35.70 11.10 4.20 287.00 6.60 55.00 0.00 42.00 1.00 2.00 0.00
43 5.02 14.10 43.60 86.90 28.10 32.20 12.00 . 292.00 7.40 58.00 35.00 4.00 3.00 0.00 0.00
44 5.03 15.30 42.30 84.00 30.41 36.17 12.30 7.20 263.00 7.10 58.00 1.00 40.00 1.00 0.00 0.00
45 4.76 14.60 41.20 86.65 30.67 35.43 12.40 8.80 161.00 7.40 50.00 0.00 48.00 0.00 1.00 1.00
46 5.11 15.10 44.10 86.30 29.54 34.24 11.30 7.10 226.00 6.40 37.00 0.00 54.00 6.00 2.00 1.00
47 5.03 14.60 42.80 85.08 29.02 34.11 12.00 6.40 180.00 7.00 52.00 0.00 45.00 2.00 1.00 0.00
48 4.78 14.10 43.40 90.90 29.50 32.50 12.70 . 180.00 8.80 51.00 0.00 46.00 2.00 1.00 0.00
49 4.82 13.40 39.10 81.10 27.80 34.20 13.20 7.20 220.00 6.90 54.00 0.00 39.00 3.00 4.00 0.00
50 4.08 12.30 35.20 86.40 30.20 34.80 13.00 12.00 158.00 8.60 63.00 0.00 28.00 5.00 2.00 0.00
51 4.79 14.50 42.20 88.10 30.40 34.30 12.40 5.80 182.00 7.30 84.00 0.00 15.00 1.00 0.00 0.00
52 4.76 14.70 41.40 86.90 30.90 35.60 12.60 7.70 169.00 6.90 61.00 0.00 38.00 0.00 1.00 0.00
53 4.53 13.60 38.30 84.50 30.00 35.70 12.50 4.40 232.00 6.30 57.00 0.00 42.00 1.00 0.00 0.00
54 4.69 13.90 39.00 83.20 29.70 35.60 12.80 8.10 196.00 8.10 59.00 0.00 36.00 1.00 4.00 0.00
55 4.59 14.50 40.80 89.00 31.60 35.50 12.30 5.00 184.00 7.00 57.00 0.00 43.00 0.00 0.00 0.00
56 4.37 14.10 39.00 89.20 32.20 36.00 13.20 4.60 206.00 6.30 61.00 0.00 38.00 0.00 0.00 1.00
57 4.85 15.10 44.20 91.10 31.10 34.30 13.00 5.60 253.00 6.40 61.00 0.00 29.00 5.00 5.00 0.00
58 5.15 14.20 42.60 82.70 27.60 33.30 12.60 7.00 280.00 6.50 51.00 0.00 45.00 2.00 0.00 1.00
 65 
Continuación Tabla 6 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
59 4.68 14.10 42.10 90.10 30.10 33.60 12.50 4.10 148.00 7.30 58.00 0.00 39.00 2.00 1.00 0.00
60 4.73 13.60 40.90 86.50 28.70 33.30 12.70 6.80 294.00 6.40 57.00 0.00 36.00 2.00 5.00 0.00
61 4.60 14.80 41.40 90.00 32.17 36.00 12.80 5.40 200.00 7.40 39.00 2.00 55.00 2.00 1.00 1.00
62 4.00 12.30 34.90 87.25 30.75 35.24 12.60 4.60 179.00 6.60 61.00 1.00 38.00 0.00 0.00 0.00
63 4.91 14.20 42.10 85.70 28.90 33.70 13.10 6.30 252.00 7.00 53.00 2.00 39.00 4.00 2.00 0.00
64 5.22 15.00 44.50 85.10 28.70 33.70 13.50 6.40 203.00 7.90 55.00 5.00 36.00 3.00 1.00 0.00
65 4.76 14.40 42.50 89.30 30.30 33.80 13.20 6.80 230.00 7.20 57.00 0.00 35.00 6.00 2.00 0.00
66 4.65 13.70 40.90 87.90 29.40 33.50 13.40 6.90 . 9.20 34.00 3.00 58.00 1.00 3.00 1.00
67 5.52 13.80 43.20 78.30 25.00 31.90 13.60 4.90 209.00 6.80 60.00 2.00 33.00 0.00 5.00 0.00
68 4.78 13.50 42.60 89.20 28.50 31.90 12.90 5.80 203.00 7.10 42.00 2.00 53.00 1.00 1.00 1.00
69 5.04 13.40 41.90 83.20 26.10 31.80 12.50 6.20 221.00