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Efecto de las rizobacterias en el crecimiento vegetal de Phaseolus vulgaris L. y su interacción con insectos herbívoros TESIS Que presenta: Roberto Rafael Ruiz Santiago Como requisito parcial para obtener el grado de: Maestro en Ciencias en Horticultura Tropical Director de tesis: Dr. Horacio Salomón Ballina Gómez Conkal, Yucatán, México Junio, 2019 i AGRADECIMIENTOS Al Dr. Horacio Salomón Ballina Gómez por sus grandes y puntuales contribuciones al presente trabajo, su paciencia, su dedicación, su disponibilidad, por la motivación y sobre todo por brindarme un enriquecimiento profesional y personal a base de su ejemplo. A mi comité de tesis conformado por el Dr. Esaú Ruiz Sánchez, y el Dr. Jairo Cristóbal Alejo, por sus grandes aportaciones, conocimientos, objetividad, por su tiempo y honestidad. A mis profesores por su calidad humana, abrirme las puertas y brindarme sus valiosos conocimiento, apoyo y consejo para la realización de la presente investigación. Al Consejo Nacional de Ciencia y Tecnología (CONACYT) por brindarme el apoyo económico para la realización de mis estudios de Maestría. Y la oportunidad de realizar una estancia en la Universidad de Costa Rica, para el escrito del Capítulo II. A mis padres Roberto Ruiz Pérez y Nidia del Jesús Santiago Chan por su apoyo incondicional que hizo posible en todos los niveles esta gran oportunidad. A mis amigos Angel Manuel Herrera Gorocica, Armando Lima Burgos por su apoyo incondicional, conocimientos de gran valor y los buenos momentos que hicieron de esto una experiencia más especial. ii CONTENIDO CAPÍTULO I 1.1 INTRODUCCIÓN GENERAL……………………………………………………... 1 1.2 ANTECEDENTES…………………………………………………………………. 2 1.3 HIPÓTESIS…………………………………………………………………………. 5 1.4 OBJETIVOS………………………………………………………………………… 5 1.4.1 GENERAL…………………………………………………………………... 5 1.4.2 ESPECÍFICOS……………………………………………………………. 6 1.5 PROCEDIMIENTO EXPERIMENTAL…………………………………………… 6 1.6 LITERATURA CITADA…………………………………………………………… 9 CAPÍTULO II. EFFECT OF PLANT GROWTH PROMOTING BACTERIA (PGPR) IN INTERACTION WITH PHYTOPHATE INSECTS: A VISION OF METAANALYSIS ……………………………………………………………………… 13 2.1 ABSTRACT…..…………………………………………………………………… 13 2.2 INTRODUCTION………………………………………………………………… 13 2.3 MATERIALS AND METHODS…………………………………………..……… 13 2.3.1 DATA SELECTION………………………………………………………...… 14 2.3.2 EFFECT SIZES………………………………………………………… 14 2.3.3 DATA ANALYSIS……………………………………………………………… 14 2.4 RESULTS…………………………………………………………………………... 14 2.4.1 HETEROGENEITY AND GENERAL EFFECT …………………………… 14 2.4.2 PLANT GROWTH……………………………………………………... 15 2.4.3 PERFORMANCE OF INSECT HERBIVORES……………………………... 16 iii 2.4.4 VARIATION AMONG INSECT HERBIVORES …………………………… 17 2.5 DISCUSSION……………………………………………………………………… 2.5 CONCLUSIONS………………………………………………………………...… 18 20 2.7 REFERENCES……………………………………………………………………. 20 CAPÍTULO III. EFECTO DE LA ASOCIACIÓN DE Rhizobium etli - Phaseolus vulgaris L SOBRE EL CRECIMIENTO VEGETAL Y LA PREFERENCIA DE Bemisia tabaci………………………………………………………………………………………………. 26 3.1 RESUMEN………………………………………………………………………… 26 3.2 INTRODUCCIÓN…………………………………………………………..……………. 26 3.3 MATRIALES Y MÉTODOS……………………………………………………………… 27 3.3.1 INOCULACIÓN DE Rhizobium etli………………………………………….……... 27 3.3.2 EVALUACIÓN DE CRECIMIENTO VEGETAL…………………………………... 27 3.3.3 EVALUACIÓN DE PREFERENCIA Y OVIPOSICIÓN DE Bemisia tabaci…… 28 3.3.3.1 ANÁLISIS ESTADÍSTICOS………………………………………………….……… 28 3.4 RESULTADOS ……………………………………………………………………………. 28 3.4.1 CRECIMIENTO VEGETAL……………………………………………………………. 28 3.4.2 PREFERENCIA Y OVIPOSICIÓN DE Bemisia tabaci..………………….………... 30 3.5 DISCUSIÓN ….……………………………………………..………………..……………. 31 3.5 CONCLUSIONES…………………………………………………………………. 32 3.6 LITERATURA CITADA………………………………………………………….. 55 iv ÍNDICE DE FIGURAS CAPÍTULO II Figure 1. Effect size of PGPR on plant growth and performance of insect herbivore……………………………………………………………………................. 15 Figure 2. Effect size of plant growth among genus of bacteria and plant families. ……………………………………….……………………… 16 Figure 3. Effect size of insect herbivore performance among genus of bacteria and plant families ……………………………………………………………………… 17 Figure 4. Effect size (mean and 95% confidence interval) of PGPR on insect performance among feeding guilds …………………………............. 18 CAPITULO III Figura 1. Efecto de la inoculación de R. etli sobre el crecimiento vegetal en P. vulgaris ………………………… Figura 2. Efecto de la inoculación de Rhizobium etli sobre el crecimiento de biomasa de raíz en Phaseolus vulgaris L……………………………………………………………….. Figura 3. Efecto de la inoculación de R. etli sobre el número de nódulos en Phaseolus vulgaris ……………………………………………………………………………………. Figura 4. Efecto de la inoculación de Rhizobium etli sobre la oviposición de Bemisia tabaci en Phaseolus vulgaris L……………………………………………………………. Figura 5. Efecto de la inoculación de Rhizobium etli sobre la preferencia de adultos de Bemisia tabaci……………………………………………………………………………………… 29 30 30 31 31 ÍNDICE DE CUADROS CAPÍTULO II Table 1. Heterogeneity statistics for each model in the plant growth and performance of insect herbivore frequency analysis……………………….…………………………….. 15 1 CAPÍTULO 1 1.1 INTRODUCCIÓN GENERAL Todos los organismos dentro de un ecosistema están inter-conectados unos con otros por medio de cadenas alimenticias y redes tróficas (Hunter & Price, 1992; Ohgushi, 2005); y la comunicación entre ellos es facilitada por señales químicas presentes en el medio ambiente (Turlings & Wäckers, 2004; Ohgushi, 2005; Poelman et al., 2008). Aparte de los efectos bien documentados de la presencia-ausencia de PGPR en los niveles totales de nitrógeno y los consiguientes efectos sobre los herbívoros, los mecanismos subyacentes a los cambios mediados en la resistencia de las plantas a los herbívoros son poco conocidos (Dean et al., 2014) La relación entre las plantas de leguminosas y la fijación de nitrógeno de los rizobios es uno de los ejemplos más conocidos del mutualismo biológico, y sus beneficios se han aprovechado durante mucho tiempo para mejorar el rendimiento de los cultivos agrícolas. (Herridge et al., 2008). Investigaciones recientes indican que las asociaciones entre plantas y la microbiota mutualista del suelo, no solo influye en el crecimiento de la planta, sino que también afecta centralmente el resultado de las interacciones entre plantas y organismos de niveles tróficos superiores como herbívoros y patógenos (Van der Putten et al., 2001; Bonte et al., 2010, Pineda et al., 2010). Si bien muchos estudios ecológicos se centran en los efectos de abajo hacia arriba de los hongos micorrízicos (Koricheva et al., 2009), los efectos ecológicos de las bacterias colonizadoras de N2- son comparativamente poco estudiados (Dean et al., 2009; Kempel et al., 2009; Thamer et al., 2011). 2 Es por lo anterior que, en este estudio, primeramente, se analizó el efecto de las bacterias fijadoras de nitrógeno en el crecimiento vegetal y su interacción con los insectos fitófagos a través de un meta-análisis. Y posteriormente, se evaluaron los efectos en cascada de la bacteria fijadora de nitrógeno Rhizobium etli en el crecimiento del frijol común (Phaseolus vulgaris L.), y en la oviposición y preferencia de la mosca blanca (Bemisia tabaci). Con la finalidad de generar información que nos permita integrar y encontrar patrones consistentes en los factores que influyen en el impacto de las PGPR en estos organismos. 1.2 ANTECEDENTES En las dos últimas décadas, una de las áreas de estudio que actualmente estánimpactando en la agricultura, es la de aplicación de biofertilizantes a través del empleo de microorganismos como bacterias y hongos que viven en intercambio con las plantas, lo cual ha resultado muy positivo para fertilizar diversos cultivos (Crossman et al., 1987). La relación entre las plantas de leguminosas y la fijación de nitrógeno a los rizobios es uno de los ejemplos más conocidos del mutualismo biológico y sus beneficios se han explotado desde hace tiempo para mejorar el rendimiento de los cultivos agrícolas (Herridge et al., 2008). La inoculación de una planta de leguminosas, por una cepa de rizobios compatible, induce cambios físicos y químicos en la planta que facilitan la transferencia de carbono y nutrientes entre las raíces del huésped y los rizobios. Estos cambios están fuertemente influenciados por el genotipo de la cepa bacteriana asociada: diferentes cepas de rizobios pueden tener efectos distintos sobre las características del mutualismo, incluida la eficiencia de fijación de nitrógeno, la química foliar y la aptitud general de la planta (Burdon et al., 1999; Lafavre y Eaglesham, 3 1986). De igual forma se espera que estos efectos específicos de la cepa afecten las interacciones de la planta con otros organismos, como los herbívoros. En distintos estudios se han aislado diferentes especies de bacterias endofíticas de las plantas, y la mayoría pertenecen a los géneros Pseudomonas, Bacillus, Enterobacter y Agrobacterium. En ciertos estudios se ha encontrado que las plantas tratadas con bacterias benéficas pueden promover el crecimiento de las plantas, así como desarrollar mecanismos de defensa persistentes contra plagas que pueden activarse sistémicamente a través de la exposición de estas plantas al estrés, ya sea daño por foliar, por insectos o por plagas y enfermedades (Azevedo et al., 2000). Algunos microorganismos pueden formar una asociación cercana con plantas que pueden ser perjudiciales o beneficiosas para las plantas. La asociación de Rhizobium ha sido ampliamente explorada en los nódulos de raíces de las leguminosas donde fijan el nitrógeno atmosférico; pero estudios recientes, también sugieren que Rhizobium puede exhibir actividades de promoción del crecimiento de plantas (PGPR) con no leguminosas (Yanni et al., 1997). Las PGPR no solo participan en la promoción del crecimiento vegetal, sino que también se consideran los mejores agentes de control biológico, ya que tienen el potencial de suprimir la población de microorganismos patógenos e inducir la resistencia sistémica en las plantas contra enfermedades (Yunus et al 2016). Investigaciones recientes indican que las asociaciones entre plantas y la microbiota mutualista del suelo no solamente influyen en el crecimiento de la planta, sino también afectan centralmente el resultado de las interacciones entre plantas y organismos de niveles tróficos superiores como herbívoros y patógenos (Van der Putten et al., 2001; Bonte et al., 2010, Pineda et al., 2010). A pesar de centrarse en las interacciones planta-microbio, poco se sabe acerca de la 4 interacción tripartita (microorgamismo, planta insecto) de los microorganismos del suelo asociados a plantas, las plantas y los niveles tróficos superiores (Goverde et al., 2000; Gehring y Whitham, 2002; Gange et al., 2003; Bezemer et al., 2004). Esto es sorprendente ya que las bacterias fijadoras de nitrógeno juegan un papel clave para los ciclos de nitrógeno globales y locales (Sprent y Sprent, 1990). Entre ellas, las leguminosas Fabaceae asociadas con la fijación de nitrógeno a los rizobios tienen una enorme importancia económica y ecológica (Wardle, 2002). La relación coevolucionada entre las leguminosas y los rizobios se caracteriza por el suministro de nitrógeno fijo del socio microbiano a la planta, a cambio de recursos de carbono producidos por la planta y un nódulo protector de la raíz dentro del cual viven las bacterias (Lee, y Hirsch, 2006). Los cambios subyacentes en la señalización de la planta huésped y la calidad nutricional debido a esta asociación con los rizobios, pueden influir en los herbívoros. La reacción inicial de las plantas hospedantes a la colonización por rizobios se asemeja a la respuesta a los patógenos, pero esta estimulación del sistema inmune de la planta se suprime posteriormente a medida que se inicia la señalización simbiótica (Zamioudis et al., 20012). En tanto que continúa la interacción, las plantas leguminosas ejercen un grado significativo de control sobre su mutismo facultativo con rizobios, modulando la intensidad de la asociación en respuesta a varios factores, particularmente los niveles de nitrógeno del suelo (como se explica más adelante). La supresión vegetal de la nodulación parece activarse mediante la señalización de moléculas de los brotes, que incluyen las fitohormonas: ácido salicílico (SA) y ácido jasmónico (JA), que han sido implicadas previamente en defensas vegetales inducidas contra herbívoros (Chen et al., 2005). Si bien la mayoría de los estudios sobre la función ecológica de las interacciones mutualistas, planta y microrganismos, se centran en los efectos de los hongos micorrízicos en plantas y organismos asociados a las plantas, los efectos ascendentes específicos de las bacterias 5 colonizadoras fijadoras de nitrógeno siguen siendo difíciles de alcanzar (Sprent, 2001; Van der Putten et al. 2001; Van der Heijden y otros 2006, 2008). Aunque los beneficios de la fijación microbiana de nitrógeno para las plantas se han estudiado a gran profundidad, los costos asociados para los huéspedes y los efectos sobre otros organismos asociados a las plantas no se conocen bien. Esto parece tener particular impacto, en términos de los efectos producidos; los simbiontes microbianos fijadores de nitrógeno influyen en los mecanismos de las defensas de las plantas; y por lo tanto, en los niveles tróficos superiores. Las defensas vegetales pueden contribuir a una mejor forma física frente a la herbivoría; sin embargo, los costos de mantener las defensas frente al crecimiento y la reproducción puede dar lugar a restricciones de asignación de recursos (Coley et al., 1985; Herms y Mattson, 1992). 1.3 HIPÓTESIS La adición de rizobacteria fijadora de nitrógeno afecta de manera positiva el crecimiento de Phaseolus vulgaris L. así como el desarrollo de defensas físicas en sus características foliares que a su vez ocasiona la presencia y actividad de insectos en la planta. 1.4 OBJETIVOS 1.4.1 General Determinar el efecto de la inoculación con rizobacterias en el crecimiento y daño por fitófagos de Phaseolus vulgaris L. 1.4.2 Específicos Analizar la influencia de las rizobacterias en el crecimiento y su interacción con insectos fitófagos a través de un meta-análisis. 6 Determinar el crecimiento de Phaseolus vulgaris L. en respuesta a la inoculación de la rizobacteria Rhizobium etli en condiciones de campo experimentales. Analizar el efecto de Rhizobium etli sobre la oviposición y preferencia de Bemisia tabaci en plantas de Phaseolus vulgaris L. en condiciones controladas. 1.5 PROCEDIMIENTO EXPERIMENTAL El presente trabajo está integrado por dos etapas: 1) la realización del meta-análisis y 2) los bioensayos de crecimiento y rendimiento de de Phaseolus vulgaris L: así como la preferencia de Bemisia tabaco, los cuales se realizaron en áreas experimentales del Instituto Tecnológico de Conkal, ubicada en Yucatán, México, (21° 05´ N y 89° 32´ O). 7 Primera etapa: Meta-análisis Formulación de preguntas de estudio Localización de estudios: Bases de datos electrónicas y palabras clave. Extracción de trabajos ubicados en la bibliografía Proceso de inclusión-exclusión: Revisión del contenido de cada artículo Extracción de datos y generación de la base de datos X̅ testigo y X̅ tratamientoS testigo y S tratamiento Tamaño del efecto Número de seguridad Heterogeneidad entre y dentro de grupos Análisis de datos 8 Segunda etapa: Bioensayos de crecimiento Phaseolus v. L – preferencia Bemisia tabaci. Oviposición y preferencia en invernadero Crecimiento y rendimiento en campo Efecto de la inoculación de Rhizobium etli sobre el crecimiento de Phaseolus vulgaris L y la preferencia de Bemisia tabaci. Análisis de datos Diseño factorial de3x2 (inoculación Rhizobium y no inoculación) con un arreglo y (tiempo, con tres niveles). Variables: Número de huevos y adultos de Bemisia tabaci Variables: Crecimiento y rendimiento de Phaseolus vulgaris L Diseño factorial de3x2 (inoculación Rhizobium y no inoculación) con un arreglo y (tiempo, con tres niveles). 9 1.6 LITERATURA CITADA Azevedo, J. L.; W. Maccheroni JR; J. O. Pereira y W. L. Araujo, 2000. Endophytic microorganisms: a review on insect control and recent advances on tropical plants. Electron J Biotechnol., 3:40–65. Bennett, A.; Bever, J.D. 2007. Mycorrhizal species differentially alter plant growth and response to herbivory. Ecology 2007, 88, 210–218. Bezemer, T.M.; Wagenaar, R.; Van Dam, N.M.; Van der putten, W.H. & Wa ¨ckers, F.L. 2004. Above- and below-ground terpenoid aldehyde induction in cotton, Gossypium herbaceum, following root and leaf injury. J. Chem. Ecol., 30, 53–67. Bonte, D; De Roissart, A; Vandegehuchte, ML, Ballhorn DJ; Van leeuwen T; De La Peña E. 2010. Local adaptation of aboveground herbivores towards plant phenotypes induced by soil biota. PLoS ONE 5(6):e11174. doi:10.1371/journal. pone.0011174. Burdon, J.J.; Thrall, PH; Brown, AHD.1999. Resistance and virulence structure in two Linum marginale–Melampsora lini host–pathogen metapopulations with different mating systems. Evolution 53, 704–16. CHEN, H.; WILKERSON, C.; KUCHAR, J.; PHINNEY, B.; HOWE, G. 2005 Jasmonate- inducible plant enzymes degrade essential amino acids in the herbivore midgut. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 102, 19237–19242. COLEY, P.D.; BRYANT, J.P. AND CHAPIN, F. S. 1985. Resource availability and plant antiherbivore defense. Science 230, 895-899. CROSSMAN, E. K.; BONEM, E. J. & PHELPS, B. J. 1987. A comparison of response patterns on fixed-, variable-, and random-ratio schedules. Journal of the Experimental Analysis of Behavior, 48(3), 395-406. 10.1901/jeab. 1987. 48-395. Dean, J. M.; M. C. Mescher; C. M. DE Moraes. 2009. Plant–rhizobia mutualism influences aphid abundance on soybean. Plant Soil 323:187–9. 10 Gange, A. C.; D. R. J. Gane, Y. L. CHEN, and M. Q. Gong. 2003b. Dual colonization of Eucalyptus urophylla ST Blake by arbuscular and ectomycorrhizal fungi affects levels of insect herbivore attack. Agric. Forest Entomol. 7: 253Ð263. Gehring, C.A.; Whitham T.G. 1994. Interactions between aboveground herbivores and the mycorrhizal mutualists of plants. Trends Ecol Evol 9:251–255. Gehring, C.A.; Whitham T.G. 2002. Mycorrhizaeherbivore interactions: population and community consequences, pp. 295Ð320. In M.G.A. van der Heijden and I. R. Sanders (eds.), Mycorrhizal ecology. Springer, Berlin, Germany. Goverde, M.; Van der heijden, M.G.A.; Sanders, I. R.; Wiemken, A. & Erhard, A. 2000. Arbuscular mycorrhizal fungi influence life history traits of a lepidopteran herbivore. Oecologia, 125, 362–369. Herms, D. A. y Mattson, W. J. 1992. The dilemma of plants: to grow or defend. Q. Rev. Biol. 67, 283- 335. Herridge, D.; PEOPLES, M. B.; Boddey, R. M. 2008. Global inputs of biological nitrogen fixation in agricultural systems. Plant Soil 311:1–18. Hunter, M. D., & PRICE, P. W. 1992. Playing chutes and ladders: heterogeneity and the relative roles of bottom-up and top-down forces in natural communities. Ecology 73: 724-732. DEAN, J. M.; M. C. MESCHER; and C. M. DE MORAES. 2014. Plant Dependence on Rhizobia for Nitrogen Influences Induced Plant Defenses and Herbivore Performance Int. J. Mol. Sci. 2014, 15, 1466-1480; doi:10.3390/ijms15011466. JOHNSON, S. N.; Birch A.N.E.; Gregory. P.J.; Murray P.J. 2006. The ‘mother knows best’ principle: should soil insects be included in the preference–performance debate? Ecol Entomol 31:395–401. doi:10.1111/j.1365-2311.2006.00776. Kempel A; R. Brandl AND M. Schädler. 2009. Symbiotic soil microorganisms as players in aboveground plant–herbivore interactions—the role of rhizobia. Oikos 118:634–640 11 Koricheva, J.; Gange A.C.; Jones, T. 2009. Effects of mycorrhizal fungi on insect herbivores: a meta-analysis. Ecology. 90: 2088–2097. LA favre, A. K. y Eaglesham A. R. J. 1986. The etfects of high temperatures on soybean nodulation and growth with different strains of bradyrhizobia. Canadian Journal of Microbiology 32, 22-27. Laguerre, G.; Depret, G.; Bourion, V.; DUC, G. 2007. Rhizobium leguminosarum bv. Viciae genotypes interact with pea plants in developmental responses of nodules, roots and shoots. N. Phytol. 2007, 176, 680–690. Lee, a.; Hirsch, A.M. 2006. Choreographing the complex interaction between legumes and a- and b-rhizobia. Plant Signal. Behav. 2006, 1, 161–168. Ohgushi, T. 2005. Indirect interaction webs: herbivore-induced effects through trait change in plants. Annu. Rev. Ecol. Evol. Syst. 36: 81-105. Pineda, A.; Zheng, S J.; Van loon, J. J. A.; Pieterse, C. M. J.; Dicke, 2010. Helping plants to deal with insects: the role of beneficial soil-borne microbes. Trends Plant Sci. 15:507–14. Poelman, E. H.; Van loon, J. J. A., & Dicke, M. 2008. Consequences of plant defense for biodiversity at higher trophic levels. Trends in Plant Sci. 13: 534-541. Sprent, J. I. & Sprent, P. 1990. Nitrogen Fixing Organisms. Chapman and Hall, London, U.K. Thamer, S.; Schädler, M.; Bonte,; Ballhorn, D. 2011. Dual benefit from a belowground symbiosis: nitrogen fixing rhizobia promote growth and defense against a specialist herbivore in a cyanogenic plant. Plant and Soil. 341: 209–219. doi:10.1007/s11104-010-0635-4. Turlings, T. C. J., & Wäckers, F. L. 2004. Recruitment of predators and parasitoids by herbivore- damaged plants, pp. 21-75, en Cardé, R. T., & Millar, J. (eds.), Advances in Insect Chemical Ecology. Cambridge University Press, Cambridge. VAn der putten, W. H.; VET, L. E. M.; HARVEY, J. A.; WÄCKERS, F. 2001. Linking above- and belowground multitrophic interactions of plants, herbivores, pathogens, and their antagonists. Trends Ecol Evol 16:547–554. 12 Van wees, S. C. M.; Van der ent; S., Pieterse, C. M. J. 2008. Plant immune responses triggered by beneficial microbes. Curr. Opin. Plant Biol. 11:443–48. Wardle, D. A. 2002. Communities and Ecosystems: Linking theAboveground and Belowground Components. Princeton University Press, Princeton, NJ. Wilson, K. G.; Stinner, R. E. 1984. A potential influence of rhizobium activity on the availability of nitrogen to legume herbivores. Oecologia 1984, 61, 337–341. Yanni, Y. G.; R. Y. Rizk; V. Corich, A. Squartini; K. Ninke; S. Philip Hollingsworth; G. Orgambide; F. De Bruijn; J. Stoltzfus; D. Buckley; T. M. Schmidt; P. F. Mateos; J. K. Ladha; And F. B. Dazzo. 1997. Natural endophytic association between Rhizobium legumino sarum bv. trifolii and rice roots and assessment of its potential to promote rice growth. Plant Soil 194:99–114. Yunus, F.N.; Iqbal M.; Jabeen, K.; Kanwal, Z.; Rashid, F. 2016. Antagonistic activity of pseudomonas fluorescens against fungal plant pathogen aspergillus niger. sci lett. 2016; 4:66–70. Zamioudis, C.; Pieterse, C. M. J. 2012. Modulation of host immunity by beneficial microbes. Mol. Plant Microbe Interact. 2012, 25, 139–150. 13 EFFECT OF PLANT GROWTH PROMOTING BACTERIA (PGPR) IN INTERACTION WITH PHYTOPHAGUES INSECTS: A VISION OF METAANALYSIS Roberto-Rafael-Ruiz-Santiago1,Horacio-Salomón-Ballina-Gómez1*, Esaú-Ruiz-Sánchez1, Jairo-Cristóbal-Alejo1, Angel-Manuel-Herrera-Gorocica1, Laura-Yesenia-Solís-Ramos2 1Tecnológico Nacional de México, Instituto Tecnológico de Conkal, Avenida Tecnológico s/n, C.P. 97345, Conkal, Yucatán, México. Tel. 01 (999) 9-12-41-30 Ext. 121. 2Biotecnología de Plantas, Escuela de Biología, Universidad de Costa Rica, Sede Rodrigo Facio, San Pedro, Costa Rica. * Corresponding author: horacio.ballina@itconkal.edu.mx Abstract: In recent years, the effect of plant growth promoting rhizobacteria (PGPR) has been studied through its impact on the highest trophic levels, as well as to develop persistent defense mechanisms against pests. While there are several studies on the use of PGPR in growth, responses to the interaction of phytophagous insects are varied and complex, so a systematic study is necessary to offer clear conclusions on the subject. Our study shows that PGPRs generally benefit the growth of plants and decrease the stability of defoliating insects. The use of PGPR promoted the plant growth in most of taxonomic families, this pattern was observed in the same way in the PGPR genera. In insect performance only the PGPR Rhizobium and Bacillus genera showed a clear decrease in insect performance. For the families of the plants, it was the Brassicaceae and Solanaceae that showed negative effects on the performance of the insects. The use of PGPR showed a negative effect in the group of sucking insects. In contrast, the performance of insects in chewing insects did not show a null effect. The performance variables of the insects were higher in the survival and density of the sucking insects. Keywords: Meta-analysis, resistance, tri-trophic interaction, insects. Introduction All organisms within an ecosystem are interconnected through trophic networks (Hunter and Price 1992; Ohgushi 2005), this communication is facilitated by signals present in the environment (Ohgushi 2005; Poelman et al. 2008). The case of microbial symbionts of plants that live in the soil as nitrogen-fixing bacteria can have important impacts on plant ecology through influences on soil fertility, plant growth and interactions between plants and other organisms (Bennett and Bever 2007; Laguerre et al. 2007). In addition to the well-documented effects of the presence and absence of rhizobia on total nitrogen levels and the consequent effects on herbivores, the mechanisms underlying the rhizobia and the mid-changes in plant resistance to herbivores are poorly understood (Dean et al. 2014). In recent years the effect of plant growth promoting rhizobacteria (PGPR) has been studied through its impact on higher trophic levels (Van der Putten et al. 2001; Bonte et al. 2010; Pineda et al. 2010). In several genera it has been shown that plants treated with PGPR can promote the plant growth, as well as develop persistent defense mechanisms against pests (Azevedo et al. 2000). These compensations can be given by phytostimulators or by suppressing diseases and pests of plants (Lugtenberg and Kamilova 2009; Pineda et al. 2010; Shoresh et al. 2010; Van Wees et al. 2008). Considering that PGPR and other soil microbes synthesize different plant hormones for growth (Shari fi-Ryu 2016), it is not surprising that these microbes can trigger cascading effects towards herbivorous insects, both negatively and positively (Hartley and Gange 2009). In the case of PGPR, they can provide an additional food supply for herbivores by stimulating the plant growth and improving the nutritional quality of the host plant of the herbivore, as well as it can increase the resistance of the herbivore attack on the ground (Pineda et al. 2010; Ahemad and Kibret 2014). Although many ecological studies focus on the bottom-up effects of mycorrhizal fungi (Koricheva et al. 2009), in addition to this, the ecological effects of N2-colonizing bacteria are comparatively poorly studied (Dean et al. 2009; Thamer et al. 2011), and this relative allocation of resources towards morphological and defense traits is considered limited by compensations with the plant growth (Herms and Mattson 1992). While there are several studies on the use of PGPRs in growth, there are varied responses on the interaction of Phytophagous insects so there is a need for a systematic study to give clear conclusions on the subject. (Dean et al. 2009; Kempel et al. 2009; Katayama et al. 2010). Our study would help to clarify the general patterns of plant interactions with symbiotic microorganisms and their impact on herbivorous insects. In this context, this work integrates a meta-analysis of independent studies on the effects of (PGPR) on plant growth and its interaction with phytophagous insects. The analysis was divided into plant growth, family of plants, genus of bacteria, type of insect and its interaction to insect plant inoculation. Materials and methods 14 Data selection The studies were obtained from electronic databases in: Only Library, Science Direct, Springer Journal, Taylor & Francis and Wiley Online Library. To obtain relevant information on the effects of PGPR, the search terms were: Bacteria, promotion, plant, growth, tri-trophic interaction, resistance, insect, induction, defense, growth, deter, herbivores. The citations of the studies found in the search were also included. For this meta-analysis the data were included if the studies met the following criteria: 1) the studies were carried out after the year 2000. 2) The studies had to evaluate the effect of the inoculation of bacteria that promote growth and its impact on defoliating insects. 3) The studies reported data on growth, leaf consumption, incidence, leaf damage, leaf area, leaf biomass, root biomass, total biomass, number of leaves and root length. 4) the studies had to be presented in English and published in the literature reviewed by experts. 5) The studies provided the means, sample sizes and measures of variance (standard deviation or standard error) for a control group and an experimental group. Data from a single article that reported more than one plant family, PGPR genus, growth variable, leaf damage type, and insect type, were considered independent studies. Plant growth referred to the response in promoting growth in the plant group by family or in the PGPR group by genus. Insect performance referred to the performance of defoliating insects in interaction with plants inoculated with PGPR. Variation between insect guilds, referred to the type of insects, chewing or sucking, and their effects in interaction with plants inoculated with PGPR. Effect sizes To calculate the size of the effects of each variable, the mean, sample size and deviation were obtained for the control and experimental groups. If the studies did not provide this information, univariate statistical data (F, t and p) were used to calculate the effect size (Rosenberg et al 2002). All standard error values were transformed into standard deviation according to the equation: SD = SE √n, where SD is the standard deviation, SE is the standard error n is the sample size. Data analysis The effect size was calculated by Hedges: d = [(XO-XY)/s] J, where XO is a response to the control group, XY is the average response of the experimental group, s is the combined SD and J is the factor of correction for the bias due to the sample size (Gurevitch and Hedges 2001). The analysis was carried out with the statistical program Meta Win 2.1 using the fixed effects model (Rosenberg et al 2002). The confidence intervals were generated at a confidence level of 95% (bootstrap with correction of bias) for all effect sizes with 999 interactions. The effects were considered significant if the confidence intervals did not overlap with zero. To evaluate if the categorical groups (Insect performance, plant growth and insect performance among insect guilds) were homogeneous with respect to the effect size, the heterogeneitywithin each group (Qw) and among groups (QB) were calculated and the significance was evaluated by 2. The risk of bias in the data set was assessed by the security number (nfs), using the Rosenberg method (Rosenthal 1979; Rosenberg 2005). The nfs indicate the number of non-significant, unpublished or missing studies that should be added to the meta-analysis to change the results from significant to non-significant. The results are considered robust when the nfs is greater than 5n + 10, where n is the number of studies (Rosenthal 1979). Results Heterogeneity and general effect. A total of 166 studies were obtained, only 36 met the selection criteria. We synthesized 261 studies for plant growth, 194 studies for performance of insect herbivore, and 209 for feeding guilds. For the meta-analysis, the positive effect of PGPR is indicated by negative values in the variables insect performance and for feeding guilds, and positive values in the variable plant growth. Overall, PGPRs had a significant effect on plant growth, insect performance, and insect guilds. For plant growth the PGPRs produced a positive effect size of 0.3607 (Bias % CI=0.3046 to 0.4349). Instead for insect performance the inoculations of PGPR produced a negative effect size of -0.2483 (Bias % CI= -0.4004 to -0.1119) (Fig 1; Table 1). 15 Figure 1. Effect size (mean and 95% confidence interval) of PGPR on plant growth and performance of insect herbivore. The number of point samples used to calculate each mean is shown for each analysis. Means with confidence intervals that did not overlap with zero were considered significant. n: sample size; nfs: failsafe number; *: indicate statistical robustness of nfs. Mean effect size (E++) and 95% Bias CI are presented for all response variables. Table 1. Heterogeneity statistics for each model in the plant growth and performance of insect herbivore frequency analysis. Plant growth Insect performance Df QB P Df QB P Full model 270 2260.3 <0.0001 270 2260.2521 <0.0001 Genus of bacteria 6 23.083 <0.0001 6 101.26 <0.0001 Plant Family 3 34.609 <0.0001 4 97.3012 <0.0001 Df: degrees of freedom; QB: variation in effect size explained by the model. Plant growth The analysis of plant growth among the genera of PGPRs showed, that most of the PGPRs were significant on plant growth, except in the genera Bradyrhizobium and Rothia. However, only Rhizobium and Bacillus were robust in plant growth. On the other hand, these results showed a neutral and robust effect derived from the genus Rothia. Through all the studies, the PGPRs showed a positive significant effect on plant growth in all families. The highest effect in plant growth promotion was on the Poaceae family. 16 Figure 2. Effect size (mean and 95% confidence interval) of plant growth among genus of bacteria and plant families. The number of point samples used to calculate each mean is shown for each analysis. Means with confidence intervals that did not overlap with zero were considered significant. n: sample size; nfs: failsafe number; *: indicate statistical robustness of nfs. Mean effect size (E++) and 95% Bias CI are presented for all variables of responses. Performance of insect herbivores In general, most of the all genus of PGPR did not show robust effects on the performance of insects; except in Bacillus that did show a significant decreased. Similarly, the PGPRs only diminished in a robustness form the performance of insects in the plant families Cucurbitaceae and Brassicaceae (Fig. 3). 17 Figure 3. Effect size (mean and 95% confidence interval) of insect herbivore performance among genus of bacteria and plant families. The number of point samples used to calculate each mean is shown for each analysis. Means with confidence intervals that did not overlap with zero were considered significant. n: sample size; nfs: failsafe number; *: indicate statistical robustness of nfs. Mean effect size (E++) and 95% Bias CI are presented for all variables of responses. Variation among insect herbivores When we analyzed studies about the effect of the PGPRs on the performance of herbivorous insects, we found two important groups of feeding guilds, such as chewing and sucking insects with statistically significant difference (QB= 788.55, df=102, P<0.0001). However, only the group of sucking insects showed a robust negative response to inoculation with PGPRs with an effect size of -0.4389 (Bias% CI = -0.5614 to -0.3098). For the group of chewing insects, we found an effect size of 0.1718 (Bias% CI = -0.0854 to 0.4197) (Fig. 4). Interestingly when we partitioned each one of insect performance variable, we found that two specific variables such as weight, and preference drove the general null response of chewing insects; although these results were not statistically robust, they keep a certain tendency. Moreover, two variables such as consumption and survival showed a positive response to inoculation with PGPRs, even survival was the only variable statistically robust (Fig. 4). In the group of sucking insects, we showed that density and survival drove the negative response to inoculation with PGPRs in both cases the results were statistically robust (Fig. 4). 18 Figure 4. Effect size (mean and 95% confidence interval) of PGPR on insect performance among feeding guilds. The number of point samples used to calculate each mean is shown for each analysis. Means with confidence intervals that did not overlap with zero were considered significant. n: sample size; nfs: failsafe number; *: indicate statistical robustness of nfs. Mean effect size (E++) and 95% Bias CI are presented for all variables of responses Discussion Overall results reveal the effects of PGPR, their influences on plant growth and interaction with defoliating insects. Our main findings are the following: 1) The plant growth was highly induced by the genus Bacillus although other genus also benefited plant growth such as Pseudomonas, Rhizobium and Enterobacter. In addition, we showed that Poaceae was the plant family with higher effect on plant growth. 2) The response of PGPRs on the performance of the herbivore insects showed a lower activity of the insects on the Bacillus and Rhizobium group, however, only Bacillus showed robust results. The response of PGPR on the performance of the herbivore insects in plant families showed a negative tendency in all genus, only Cucurbitaceae, and Brassicaceae showed a robust lower activity of the insects. 3) We found variation in the insect guilds and insect performance to PGPRs, density of sucking insects for example, showed a negative and robust effect on the interaction with PGPRs. 4) In the other hand, the chewing insects showed a neutral response to PGPRs and only the survival increased robustly. Plant growth-genus PGPR and family plants A well-documented benefit of the PGPR have been found it in other plant species such as peppers (Herman et al. 2008), cabbage (Turan et al. 2014) lettuce (Chowdhury et al. 2013) and beans (Dean et al. 2014). Also, in Bacillus and Rhizobium the high stimulation in plant growth have been shown in studies used to improve the soil fertility, plant growth and the performance of important agronomic crops (Herman et al. 2008; Turan et al. 2014;Chowdhury et al. 201; Dean et al. 2014); even in the case of Bacillus and Pseudomonas when are inoculated together with Rhizobium they can improve the plant growth (Guiñazu et al. 2010; Camacho 2001; Dashti et al. 1998; Srinivasan et al. 1996). Although the benefit produced by PGPRs is in different order of magnitude, in all cases its due to the results of synergy among plant species, the bacterial strains, plant species, climatic conditions, soil and stage of crop development (Mostasso et al. 2002, Asadi et al. 2005). In addition, each PGPR improves differentially the increase of IAA production, phosphate solubilization,ammonia production and siderophore production (Stajković et al. 2011). Insect performance Genus PGPR and family plants. Our study uncovered a tendency in the decrease of the performance of the insects by the inoculation of the genera Bacillus and Rhizobium, which reaffirms the growth promotion and the effects on the induction of chemical changes in plants triggered by Bacillus genus that even affect the activity of natural enemies and herbivores (Kloepper et al. 2004, Gange et al. 2012, Chowdhury et al. 2013). The fact that Bacillus decreased the insect performance more 19 strongly was expected, since that it has shown previously high suppression to population of insect pest; both in laboratory and field conditions. For example, Gadhave et al (2015) reported that inoculation increased systemic resistance induced by the inoculation of various species of Bacillus spp, through the activation of defensive signaling pathways of the plant (Brassica oleracea); which resulted in a decrease of the Brevicoryne brassicae aphid. Also, other two similar studies show negative effects of inoculation by PGPR Bacillus on general herbivorous insects (Vijayasamundeeswari et al. 2009; Valenzuela-Soto et al. 2010), results attributed to Bacillus modulation on the host plant resistance by manipulating the jasmonic acid (JA) (Valenzuela-Soto et al. 2010). The varied responses in the insect performance of the different genera can be explained by the differential expression of insect-responsive genes and insect-derived volatiles that trigger the priming in plants (Frost et al. 2008). For example, Pare et al. (2005) and Van Oosten et al. (2008) report that inoculation of Pseudomonas fluorescens did not improve the resistance of Arabidopsis against the specialists Pieris rapae L. In a similar study Pineda et al. (2012) reports its results based on the fact that the inoculation of PGPR affects the resistance against the pest in relation to the regulation of jasmonic acid (Pieterse et al. 2007, van Oosten et al. 2008). Interestingly, the results of these studies show that P. fluorescens primes Arabidopsis plants for enhanced expression of the LOX2 gene that responds to JA after feeding by suction by the generalist M. persicae, but not by the specialist B. brassicae. (Ellis et al. 2002; Moran et al. 2001; Mewis et al. 2005. On the other hand, we found evidence that plant family has a potential role in the diminish of the insect performance. Other biological process that produce variation in such responses has already been recorded among them the primary and secondary metabolites of plants mediated by rhizobia, presence of other herbivores or pathogens and predators/parasitoids, microclimatic conditions and plant architecture (Denno et al. 1995; Rostás et al. 2003; Bonte et al. 2010). Interestingly, Fabaceae and Poaceae did not shown significant effects despite at least Fabaceae has been shown to have a high association with N-fixing bacteria (Sprent 1990). We believe this could be explained due to the associations could benefit the growth and nutritional quality and simultaneously influence their suitability for being a food resource for herbivores (Schädler et al.2007). In different studies it has been shown that the benefits of PGPR such as N2 fixation by rhizobia associated with legumes, increase the N content in the tissue of the host plant which represents a crucial parameter that determines the quality of the plant as a food source for the herbivorous insects. In addition, these effects can be linked to secondary chemicals and various chemotypes in plants and bacterial strain (Kempel et al. 2009; Katayama et al. 2010; Schädler et al. 2007; Chen et al. 2008). Variations among insect guilds We found variations among the feeding guilds in response to the presence of PGPR. The use of PGPR decreased the performance of insects, particularly in sucking insects, which is consistent with the mechanisms of defense on herbivores in plants. Labandeira (1997) mentions that, the feeding of herbivores causes mechanical damage, however, the degree of damage can vary greatly depending of feeding guilds, whether if they are chewing, or sucking insects. The difference between the feeding guilds may have due to a hormonal issue linked to plant defense. In different studies, Zarate et al. (2007) and De Vos et al. (2006) report the relationship on some growth hormones linked to the defense of plants such as jasmonic acid or salicylic acid (Verhagen et al. 2004). For example, while chewing insects are adversely affected by defenses mediated by jasmonic acid, sucking insects are also affected by the same defense pathways. However, it has been reported that phloem suckers appear to activate pathways of signaling of salicylic acid which counteracts the effects of jasmonic acid defenses through crosstalk, which increase the performance of insects (Thaler et al. 1999, Van Poecke and Dicke 2002), and as result of this, it is possible to find variations in the performance of insects among feeding guilds. We observed that the use of PGPR diminish the density of sucking insect. In previous studies it has found a negative correlation between plant growth with biological N-fixing and performance and abundance of aphids (Chau et al. 2005; Rutz et al. 1990; Schutz et al. 2008). While, the PGPRs only increased the survival and consume in chewing insects. These results may have related to the sap-feeder herbivores and chewing insects to benefit of higher N-content and other nutrient on plant tissues (Schoonhoven, et al. 2005). Nevertheless, the guild of chewing insects it is negatively affected by plant defenses mediated by jasmonic acid (Van Oosten et al. 2008; Zheng,et al. 2007; Howe and Jander 2008). Opposite to chewing insects, the guild of sucking insect can deal with plant defenses (Thaler et al. 1999; Van Poecke and Dicke 2002). Additionally, insect herbivory could induced alter on the volatile compounds of plants. For example, Peñaflor et al. (2011) recorded that density of laid eggs of the moth S. frugiperda 20 on maize plants suppress the emission of herbivore-induced plant volatiles (HIPV), which can act as attraction compound to natural enemies or repellent for herbivores insect (Xiao et al. 2012). The present meta-analysis uncovers critical global patters on the role of PGPRs on the plant growth, and the performance of the pest insects under several biological scenarios and in different plant species and taxonomic families; therefore, this information may establish the basis to direct new directions on the use of these organisms in the agroecosystems. Conclusions Our study shows that PGPRs benefits the plant growth in most plant families and taxonomic genera (except Rothia and Bradyrhizobium). Also, Rhizobium and Bacillus genera decreased the performance of herbivore insects mainly in suckers. The plant families with strongest negative effects on insect performance were Brassicaceae and Solanaceae. The performance variables most affected were survival and density of insects only in sucking insects. Acknowledgments The authors thank CONACyT Mexico for the M. Sc. Scholarship awarded to Roberto R. Ruiz Santiago. and the CONACYT mixed scholarship program, which allowed a stay at the University of Costa Rica, which allowed the realization of this study. References Ahemad M, Kibret M (2014) Mechanisms and applications of plant growth promoting rhizobacteria: current perspective. J. King Saud Univ. Sci. 26:1–20 Appendix 1. Overview of studies included in the meta- analyses. Numbers present the number of studies of recorded in the dataset Asadi R, Afshari H M, Khavazi K, Nourgholipour F, and Otadi A (2005) Effects of common bean nodulating rhizobia native to Iranian soils on the yield and quality of bean. Iranian Journal of Soil and Water Sciences 19: 215– 225. Azevedo J L, Maccheroni Jr W, Pereira J O and Araujo W L (2000) Endophyticmicroorganisms: a review on insect control and recent advances on tropical plants. Electron J Biotechnol., 3:40–65. Bennett A, Bever JD (2007) Mycorrhizal species differentially alter plant growth and response to herbivory. Ecology 2007, 88, 210–218. Bonte D, De Roissart A, Vandegehuchte M L, Ballhorn D J, Van Leeuwen T, de la Peña E (2010) Local adaptation of aboveground herbivores towards plant phenotypes induced by soil biota. PLoS ONE 5(6):e11174. doi:10.1371/journal. pone.0011174 Camacho M, Santamaria C, Temprano F, Rodriguez- Navarro DN, Daza A (2001) Co-inoculation with Bacillus sp. CECT 450 improves nodulation in Phaseolus vulgaris L. Can. J. Microbiol., 47 (11), 1058– 1062. Chau A, Heinz K, Davies F (2005) Influences of fertilization on Aphis gossypii and insecticide usage. J Appl Entomol 129:89–97 Chen Y, Schmelz EA, Wäckers F, Ruberson JR (2008) Cotton plant, Gossypium hirsutum L., defense in response to nitrogen fertilization. J Chem Ecol 34:1553–1564. doi:10.1007/s10886-008-9560-x Chowdhury SP (2013) Effects of Bacillus amyloliquefaciens FZB42 on lettuce growth and health under pathogen pressure and its impact on the rhizosphere bacterial community. PLoS One 8:e68818 Dashti N, Zhang F, Hynes R, Smith DL, (1998) Plant growth promoting rhizobacteria accelerate nodulation and increase nitrogen fixation activity by field grown soybean Glycine max (L.) Merr. under short season conditions. Plant Soil, 200 (2), 205–213 (1998). 21 De Vos M, Van Z W, Koornneef A, Korzelius JP, Dicke M (2006) Herbivore-induced resistance against microbial pathogens in Arabidopsis. Plant Physiol. 142:352–63 Dean JM, De Moraes CM (2009) Plant–rhizobia mutualism influences aphid abundance on soybean. Plant Soil 323:187–9 Dean JM, Mescher MC, De Moraes CM (2014) Plant dependence on rhizobia for nitrogen influences induced plant defenses and herbivore performance. Int J Mol Sci 15:1466–1480. Denno RF, McClure MS, Ott JR (1995) Interspecific interactions in phytophagous insects—competition reexamined and resurrected. Annu Rev Entomol 40:297–331 Frost CJ, Mescher MC, Carlson JE, and De Moraes CM (2008) Plant Defense Priming against Herbivores: Getting Ready for a Different Battle. American Society of Plant Biologists DOI: https://doi.org/10.1104/pp.107.113027 Gadhave K R, Finch P, Gibson TM, Gang A C (2015) Plant growth-promoting Bacillus suppress Brevicoryne brassicae field infestation and trigger density-dependent and density independent natural enemy responses J Pest Sci DOI 10.1007/s10340-015-0721-8 Gange AC, Eschen R, Schroeder V (2012) The soil microbial community and plant foliar defences against insects. In: Iason GR, Dicke M, Hartley SE (eds) The ecology of plant secondary metabolites: from genes to global processes. Cambridge University Press, UK, pp 170–188 Guiñazú LB, Andrés JA, Del Papa MF, Pistorio M, Rosas SB (2010) Response of alfalfa (medicago sativa l.) to single and mixed inoculation with phosphate-solubilizing bacteria and Sinorhizobium meliloti. biol fertil. soils, 46 (2), 185–190 Gurevitch J, Hedgez LV (2001) Meta-analysis: combining results of independent experiments. Pages 347–369 in Barton, K. E., & Koricheva. The ontogeny of plant defense and herbivory: characterizing general patterns using meta-analysis. Am Nat 175:481–493 Hartley SE, Gange AC (2009) Impacts of plant symbiotic fungi on insect herbivores: mutualism in a multitrophic context. Annu. Rev. Entomol. 54:323–42 Herman MAB, Nault BA, Smart CD (2008) Effects of plant growth-promoting rhizobacteria on bell pepper production and green peach aphid infestations in New York. Crop Prot 27:996–1002 Herms DA, Mattson WJ (1992) The dilemma of plants: to grow or to defend. Quart Rev Biol 67:283–335 Howe, G.A. and Jander, G. (2008) Plant immunity to insect herbivores. Annu. Rev. Plant Biol. 59, 41–66 Hunter MD, and Price PW (1992) Playing chutes and ladders: heterogeneity and the relative roles of bottom-up and top-down forces in natural communities. Ecology 73:724-732. Katayama N, Nishida T, Zhang ZQ, Ohgushi T (2010) Belowground microbial symbiont enhances plant susceptibility to a spider mite through change in soybean leaf quality. Popul Ecol 52:499–506. doi:10.1007/s10144-010- 0207-8 Kempel A, Brandl R, Schädler M (2009) Symbiotic soil microorganisms as players in aboveground plantherbivore interactions―the role of rhizobia. Oikos 118:634–640 Kloepper JW, Ryu CM, Zhang S (2004) Induced systemic resistance and promotion of plant growth by Bacillus spp. Phytopathology 94:1259–1266 22 Koricheva J, Gange AC, Jones T (2009) Effects of mycorrhizal fungi on insect herbivores: a meta-analysis. Ecology 90:2088–2097. doi:10.1890/08-1555.1 Labandeira CC (1997) Insect mouthparts: ascertaining the paleobiology of insect feeding strategies. Annu Rev Ecol Sys 28:153–193 Laguerre G, Depret G, Bourion V, Duc G (2007) Rhizobium leguminosarum bv. viciae genotypes interact with pea plants in developmental responses of nodules, roots and shoots. N. Phytol. 2007, 176, 680–690. Lugtenberg B, Kamilova F. (2009) Plant growth-promoting rhizobacteria. Ann. Rev. Microbiol. 63: 541–556. Mewis I, Appel HM., Hom A, Raina R, and Schultz JC (2005) Major signaling pathways modulate Arabidopsis glucosinolate accumulation and response to both phloem-feeding and chewing insects. Plant Physiol. 138:1149-1162. Moran P, Thompson JF (2001) Molecular responses to aphid feeding in arabidopsis in relation to plant defense pathways. Plant Physiol 125:1074–1085 Mostasso L, Mostasso FL, Dias BG, Vargas MAT, and Hungria M (2002) Selection of bean (Phaseolus vulgaris L.) rhizobial strains for Brazilian Cerrados. Field Crops Research 73: 121–132. Ohgushi, T. (2005) Indirect interaction webs: herbivore-induced effects through trait change in plants. Annu. Rev. Ecol. Evol. Syst. 36: 81-105. Pare PW, Farag MA, Krishnamachari V, Zhang H, Ryu CM, Kloepper JW (2005) Elicitors and priming agents initiate plant defense responses. Photosynth Res 85:149–15 Peñaflor MF, Erb M, Robert CA, Miranda LA, Werneburg AG, Dossi FC, Turlings TC, Bento JM. 2011. Oviposition by a moth suppresses constitutive and herbivore-induced plant volatiles in maize. Planta 234:207–215. Pieterse CMJ, Dicke M (2007) Plant interactions with microbes and insects: from molecular mechanisms to ecology. Trends Plant Sci 12:564–569 Pineda A, Zheng SJ, van Loon JJA, Pieterse CMJ, Dicke M (2010) Helping plants to deal with insects: the role of beneficial soilborne microbes. Trends Plant Sci 15:507–514. doi:10.1016/j. tplants.2010.05.007 Pineda A., Zheng SJ, van Loon JJA, Dicke M (2012) Rhizobacteria modify plant-aphid interactions: a case of induced systemic susceptibility. Plant Biol. 14, 83–90. Poelman EH, Van Loon JJA, and Dicke M. (2008) Consequences of plant defense for biodiversity at higher trophic levels. Trends in Plant Sci. 13: 534-541. Rosenberg MS (2005) The file-drawer problem revisited: a general weighted method for calculating fail-safe numbers in meta-analysis. Evolution 59(2):464–468. https://doi.org/10.1111/j.0014-3820.2005. tb01004.x Rosenberg MS, Adams DC, Gurevitch J (2002) MetaWin: statistical software for meta-analysis. Version 2.1. Sinauer, Sunderland Rosenthal R (1979) The file drawer problem and tolerance for null results. Psychcol Bull 86(3):638–641. https://doi.org/10.1037/00332909.86.3.638 Rostás M, Simon M, Hilker M (2003) Ecological cross-effects of induced plant responses towards herbivores and phytopathogenic fungi. Basic Appl Ecol 3:43–62 Rutz C, Hugentobler U, Chi H, Baumgartner J, Oertli J (1990) Energy-flow in an apple plant–aphid (Aphis pomi Degeer) (Homoptera, Aphididae) ecosystem, with respect to nitrogen-fertilization. Plant Soil 124:273–279 23 Schädler M, Roeder M, Brandl R, Matthies D (2007) Interacting effects of elevated CO2, nutrient availability and plant species on a generalist invertebrate herbivore. Glob ChangeBiol 13:1005–1015. doi:10.1111/j.1365- 2486.2007.01319.x Schoonhoven, L.M (2005) Insect-Plant Biology, Oxford University Press Schutz K, Bonkowski M, Scheu S (2008) Effects of Collembola and fertilizers on plant performance (Triticum aestivum) and aphid reproduction (Rhopalosiphum padi). Basic Appl Ecol 9:182–188 SharifiR, Ryu CM (2016) Chatting with a tiny below ground member of the holobiome: communication between plants and growth-promoting rhizobacteria. Adv. Bot. Res. 82:135–60 Shoresh M, Harman GE, Mastouri F (2010) Induced systemic resistance and plant responses to fungal biocontrol agents. Annu. Rev. Phytopathol. 48:21–4 Sprent JI, Sprent P (1990) Nitrogen-fixing organisms: pure and applied aspects. Chapman and Hall Srinivasan M, Petersen DJ, Holl FB (1996) Influence of indoleacetic-acid-producing Bacillus isolates on the nodulation of Phaseolus vulgaris by Rhizobium etli under gnotobiotic conditions. Can. J. Microbiol., 42 (10), 1006–1014 (1996). 26 Stajkovíc (2011) Improvement of common bean growth by co-inoculation with Rhizobium and plant growth- promoting bacteria. Romanian Biotechnological Letters Thaler J (1999) Jasmonate-inducible plant defences cause increased parasitism of herbivores. Nature 399:686–688 Thamer S, Schädler M, Bonte D, Ballhorn DJ (2011) Dual benefit from a belowground symbiosis: nitrogen fixing rhizobia promote growth and defense against a specialist herbivore in a cyanogenic plant. Plant and Soil 341:209–219. doi:10.1007/s11104-010-0635-4 Turan M, Ekinci M, Yildirim E, Gunes A, Karagoz K, Kotan R, Dursan A (2014) Plant growth-promoting rhizobacteria improved growth, nutrient, and hormone content of cabbage (Brassica oleracea) seedlings. Turk J Agric For 38:327–333 Valenzuela-Soto JH, Estrada-Hernandez MG, Ibarra-Laclette E, Delano-Frier JP (2010) Inoculation of tomato plants (Solanum lycopersicum) with growth-promoting Bacillus subtilis retards whitefly Bemisia tabaci development. Planta 231:397–410 Van der Putten WH, Vet L, Harvey J, Wäckers F (2001) Linking above- and belowground multitrophic interactions of plants, herbivores, pathogens, and their antagonists. Trends Ecol Evol 16:547–554 Van Oosten VR, Bodenhausen N, Reymond P, Van Pelt JA, Van Loon LC, Dicke M, Pieterse CMJ (2008) Differential effectiveness of microbially induced resistance against herbivorous insects in Arabidopsis. Mol Plant Microbe Interact 21:919–930 Van Poecke RMP, and Dicke M (2002) Induced parasitoid attraction by Arabidopsis thaliana: involvement of the octadecanoid and the salicylic acid pathway. J. Exp. Bot. 53:1793-1799. Van Wees SCM, Van der Ent S, Pieterse CMJ (2008) Plant immune responses triggered by beneficial microbes. Curr. Opin. Plant Biol. 11:443–48 Verhagen BWM, Glazebrook J, Zhu T, Chang HS, Van Loon LC, and Pieterse CMJ (2004) The transcriptome of rhizobacteria-induced systemic resistance in Arabidopsis. Molecular Plant-Microbe Interactions,17: 895- 908. 24 Vijayasamundeeswari A, Ladhalakshmi D, Sankaralingam A, Samiyappan R (2009) Plant growth promoting rhizobacteria of cotton affecting the developmental stages of Helicoverpa armigera. J Xiao Y, Wang Q, Erb M, Turlings TC, Ge L, Hu L, Li J, Han X, Zhang T, Lu J, Zhang G, Lou Y. 2012. Specific herbivore-induced volatiles defend plants and determine insect community composition in the field. Ecology Letters 15:1130–1139. Zarate SI Kempema LA, Walling LL (2007) Silverleaf whitefly induces salicylic acid defenses and suppresses effectual jasmonic acid defenses. Plant Physiol 143:866–875 Zheng, S.J. (2007) Sensitivity and speed of induced defense of cabbage (Brassica oleracea L.): dynamics of BoLOX expression patterns during insect and pathogen attack. Mol. Plant-Microbe Interact. 20, 1332–1345 Author Year Plant species Plant species Insect species Dose Number of studies Abdul et al 2017 Nicotiana tabacum Bacillus subtilis N/S 1×107 cfu/mL 6 Badri et al 2012 Arabidopsis thaliana Mix bacteria N/S N/S 22 Ballhorn et al 2013 Phaseolus lunatus L. Bradyrhizobium sp. Epilachna varivestis 1x10 5 cfu/mL 6 Ballhorn et al 2015 Alnus rubra Frankia 100 mg/mL 2 D’Alessandro et al 2014 Zea mays Enterobacter aerogenes Spodoptera littoralis 1x10 8 cfu /mL 9 Dean et al 2014 Glycine max Enterobacter aerogenes Helicoverpa zea 1x10 6cells/mL 4 Dean et al 2009 Glycine max Aphis glycines N/S N/S 12 Dong et al 2011 Arabidopsis thaliana Bacillus cereus N/S 5x10 8 cfu/mL 3 Etesami 2010 Oryzia sativa L Bacillus amyloliquefaciens/Bacillus cereus N/S 5x10 8 cfu/mL 12 Gadhave et al 2015 Brassica oleracea Bacillus subtilis /Bacillus amyloliquefaciens Brevicoryne brassicae 1x10 8 cfu7mL 45 Godschal et al 2015 Phaseolus lunatus L. Rhizobium N/S 1x107 cells/mL 3 Hacket et al 2013 Solanum tuberosum Rhizobium leguminosarum Hamiltonella defensa N/S 4 Heath 2010 Medicago truncatula Rhizobium Spodoptera exigua 1x10 6cells/mL 5 Heorman et al 2008 Capsicum annum Bacillus subtilis Myzus persicae 1x10 9cfu/mL 23 Martinuz et al 2012 Curcubita pepo Rhizobium Aphis gossypii N/S 6 Megali et al 2013 Solanum lycopersicum L. Lactobacillus spp./ Streptococcus/ Saccharomyces spp Spodoptera littoralis N/S 4 Muqarab 2016 Solanum lycopersicum L. Pseudomonas sp. /Rothia sp. Spodoptera littoralis 1x10 6cells/mL 18 Nishita et al 2010 Cicer arietinum Rhizobium N/S 1x10 5 cfu/mL 4 Parisi et al 2014 Trifolium repens/Lolium multiflorum Mix bacteria Aphis N/S 6 Qi et al 2012 Oryzia sativa L Bacillus subtilis Sogatella furcifera 1x10 8 cfu mL 19 Santos et al 2014 Zea mays rhizobacterium/Azospirillum brasilense Diabrotica speciosa 1×10 7 cfu/mL 5 Senthilraja et al 2013 Arachis hypogaea Pseudomonas fluorescens /B. bassiana Diabrotica speciosa 3 x 10 8 cfu/g 30 Thamer et al 2010 Phaseolus lunatus L. Rhizobium Epilachna varivestis N/S 15 25 Tonelli et al 2017 Glycine max Bradyrhizobium japonicum / Bacillus sp. N/S 1x109 cfu/mL 6 Whitaker et al 2014 Glycine max Rhizobium fredii/Bradyrhizobium japonicum/B. elkani Aphis glycines N/S 6 26 EFECTO DE LA ASOCIACIÓN DE Rhizobium etli - Phaseolus vulgaris L SOBRE EL CRECIMIENTO VEGETAL Y LA PREFERENCIA DE Bemisia tabaci EFFECT OF THE ASSOCIATION OF Rhizobium etli - Phaseolus vulgaris L ON THE PLANT GROWTH AND THE PREFERENCE OF Bemisia tabaci R. R. Ruiz Santiago, H. S. Ballina Gómez, E. Ruiz Sánchez, J. Cristóbal alejo. Tecnológico Nacional de México, Instituto Tecnológico de Conkal, Avenida Tecnológico s/n, C.P. 97345, Conkal, Yucatán, México. Tel. 01 (999) 9-12-41-30 Ext. 121. *Autor para correspondencia: ABSTRACT The effects of the association between nitrogen fixing bacteria Rhizobium etli and Phaseolus vulgaris L. on plant growth, their influence on the oviposition and preference of Bemisia tabaci were evaluated. For such effects, bean plants were established in sterilized soil. For the treatments two batches of plants were formed: plants inoculated with R. etli and non-inoculated plants (control). In the first experiment, plant growth and characteristics related to defense against phytophages were measured. In the second experiment, the preference and oviposition of Bemisia tabaci was evaluated by means of free choice and non-choice tests. The inoculation with R. etli favored some specific growth characteristics, such as leaf area and root length. The variables of defense against phytophages, as well as the preference of adults and the oviposition of B. tabaci were not different between inoculated and non-inoculated plants. Key words: Trophic interactions, Rhizobacteria, plant growth, Preference, Oviposition. RESUMEN Se evaluaron los efectos de la asociación entre la bacteria fijadora de nitrógeno Rhizobium etli y Phaseolus vulgaris L. en el crecimiento vegetal, su influenciaen la oviposición y preferencia de Bemisia tabaci. Para tales efectos se establecieron las plantas de frijol en suelo esterilizado. Para los tratamientos se formaron dos lotes de plantas: plantas inoculadas con R. etli y plantas no inoculadas (control). En el primer experimento, se midió el crecimiento vegetal y características relacionadas a defensa contra fitófagos. En el segundo experimento, se evaluó la preferencia y oviposición de Bemisia tabaci mediante pruebas de libre elección y no elección. La inoculación con R. etli favoreció algunas características específicas de crecimiento, como área foliar y longitud de la raíz. Las variables de defensa contra fitófagos, así como la preferencia de adultos y la oviposición de B. tabaci no fueron diferentes entre plantas inoculadas y no inoculadas. Palabras clave: Interacciones tróficas, Rizobacteria, crecimiento vegetal, Preferencia, Oviposición. INTRODUCCIÓN En la naturaleza, las interacciones tróficas son componentes básicos de casi todos los ecosistemas y a menudo están fuertemente influenciadas por fuerzas dadas de abajo hacia arriba y de arriba hacia abajo del suelo (McNeill y Southwood, 1978). Las interacciones entre las plantas y microorganismos de la rizósfera pueden afectar a manera de cascada a los insectos fitófagos en el follaje (Thamer et al. 2011; Dean et al. 2014). En la familia Fabaceae, la interacción con bacterias de la familia Rhizobiaceae, capaces de aprovechar una gran proporción del nitrógeno 27 atmosférico, resulta de gran importancia para el desarrollo de las plantas (FAO, 1984). Estas bacterias no solo participan en la promoción de crecimiento vegetal, sino que también pueden tener profundos impactos en la ecología de las plantas a través de influencias en las defensas en contra de insectos fitófagos, (Bennett y Beyer, 2007; Laguerre et al. 2007). La especie Rhizobium etli tiene una gran afinidad con varias especies de leguminosas y se ha utilizado comúnmente para mejorar los cultivos, como el frijol común, ya que es capaz de inducir la formación de nódulos fijadores de nitrógeno que estimulan el crecimiento y el rendimiento (Pirlak, 2006; Shaharoona et al. 2006; Tilak et al. 2006). Los mecanismos detrás del efecto sobre el crecimiento vegetal, se ha relacionado con el aumento en la captación de nitrógeno, síntesis de fitohormonas (auxina, citoquinina) y solubilización de minerales (Adesemoyea et al. 2010; Egamberdieva et al. 2010; Collavino et al. 2010; Robin et al. 2008). Los beneficios de la interacción no solamente se reflejan en el crecimiento vegetal, sino también en los insectos fitófagos (Yunus et al. 2016; Dean et al. 2009; Kempel et al. 2009; Katayama et al. 2010). Los mecanismos por los que Rhizobium induce resistencia contra fitófagos son poco conocidos. Es por lo anterior que en este estudio se abordará el efecto de la inoculación de la bacteria Rhizobium etli en el crecimiento de Phaseolus vulgaris, así como en la oviposición y preferencia de Bemisia tabaci. MATERIALES Y MÉTODOS Los experimentos se realizaron en el Instituto Tecnológico de Conkal, ubicado en Conkal, Yucatán, México, (21° 05´ N y 89° 32´ O). Como planta hospedera se usó la especie de frijol común P. vulgaris L., la cual forma una estrecha asociación con las bacterias del suelo fijadoras de N2. La cepa bacteriana que se utilizó en el estudio se obtuvo del producto comercial Biofábrica Siglo XXI S.A. de C.V. RHIZOFER, cuyo ingrediente activo es la rizobacteria R. etli (específica para leguminosas cultivadas). Para llevar acabo los experimentos, el suelo usado para establecer las plantas de frijol, se esterilizó a 121°C por 20 minutos. En suelo esterilizado se establecieron dos grupos de plantas: grupo de plantas inoculadas y grupo de plantas no inoculadas (control). Inoculación de Rhizobium etli Para la inoculación de la bacteria se siguió la recomendación indicada en la etiqueta del producto comercial. El producto comercial contiene una concentración de R. etli de 12.7 x106 UFC/g. Para la aplicación, se diluyó 2.3 g en 1 L de agua. Con la mezcla se procedió a humedecer las semillas de frijol. El procedimiento anterior permitió adherir 1.76x105 UFC/g por semilla de P. vulgaris. Una vez inoculadas, las semillas se dejaron reposar por 2 horas en una manta extendida bajo condiciones de laboratorio. Con las semillas inoculadas se procedió con la siembra en charolas germinadoras. Se sembró además un lote de semillas sin inocular (control). Las plantas de 8 días de siembra, se trasplantaron en macetas de volumen 20 kg. Evaluación de crecimiento vegetal Para la evaluación de crecimiento vegetal, se establecieron 160 plántulas de P. vulgaris en un diseño factorial de 2 2 (Tratamiento/Días de crecimiento) con un arreglo completamente al azar, cada planta se consideró como unidad experimental, con 10 repeticiones por tratamiento. El estudio se llevó a cabo durante los meses de mayo–julio. Las plantas se mantuvieron en exclusorios de malla antiáfidos. Se midió el crecimiento del frijol, así como características relacionadas a defensas contra fitófagos. El experimento finalizó a los 60 días después del trasplante. Se midieron las variables de crecimiento aéreo: longitud del tallo (cm), número de hojas por planta, diámetro basal del tallo (mm), área foliar (cm2), área foliar especifica (SLA) 28 (g/cm2); las variables de crecimiento de raíz: longitud de raíz (cm) y biomasa de raíz. Además, se evaluó el número de nódulos de la raíz. Como variables de defensa contra fitófagos se midieron la dureza y espesor foliar. Las mediciones se realizaron cada 15 días. Durante el proceso experimental las condiciones ambientales fueron: temperatura promedio de 38.5ºC con máxima 45.5ºC y mínima de 28.ºC, humedad relativa promedio de 60.8 % e intensidad de luz promedio de 0.040 µmol m-2 s-1. Evaluación de preferencia y oviposición de Bemisia tabaci En el experimento de interacción plantas hospedera – B. tabaci, se evaluó la preferencia y oviposición de B. tabaci sobre las plantas de frijol, a través de pruebas de libre elección (jaulas entomológicas) y no elección (jaulas clip) como lo describe Mouttet et al. (2011). Para esto las plantas se mantuvieron en crecimiento dentro de un invernadero. Para la prueba de libre elección, se preparó una cámara cúbica (40 x 40 x 35 cm) de metacrilato transparente, la cual en la parte superior contaba con agujeros circulares de 3.5 cm de diámetro. Todos los agujeros se ubicaron a una distancia 5.5 cm. En los agujeros se colocaron hojas de plantas de P. vulgaris inoculadas y no inoculadas, con la superficie abaxial hacia el interior de la cámara cúbica, donde se liberaron adultos de B. tabaci sin sexar, en promedio de 80 individuos por hoja. A las 72 h de la liberación de adultos, se contabilizó el número de huevos y número de adultos en cada hoja. Este ensayo se llevó a cabo al día 30 y 60 después del trasplante. Para la prueba de no elección, se usó la técnica de jaulas clip de acuerdo a Mouttet et al. (2011). Se establecieron jaulas clip cilíndricas de 3.5 cm de diámetro y 4 cm altura, hechas de vasos plásticos con clip metálico para sostener la jaula en la superficie de la hoja de abaxial. Las jaulas clip contaban con una abertura circular de 2.5 cm de diámetro en extremo que no estaba en contacto con la hoja. Mediante esa abertura circular se introdujeron los adultos de B. tabaci y se cubrió con una malla de nylon para la ventilación. En cada jaula clip se introdujeron 30 adultos de mosquita blanca sin sexar. Después de 72 horas de la introducción de los adultos a las jaulas, se contabilizó número de huevos en las hojas. El experimento llevó a cabo al día 30 y 60 después del trasplante. Análisis estadísticos Para la prueba de crecimiento estabilidad vegetal los datos fueron analizados a través de un modelo lineal generalizados mixtos (MLGM, McCullagh y Nelder, 1989), bajo una estructura factorial (tratamiento/tiempo)en un arreglo completamente al azar. Los datos de densidad de huevos y adultos en las hojas en las pruebas de preferencia fueron analizados por medio de una prueba estandarizada de t-student considerando una estructura factorial (tratamiento/tiempo); se utilizaron comparaciones pareadas de Bonferroni. Estos análisis se realizaron mediante el paquete estadístico Infostat/E para Windows. Todas las graficas se realizaron con el software Sigmaplot versión 12.0. RESULTADOS Crecimiento vegetal El crecimiento de las plantas inoculadas y no inoculadas fue similar en la mayoría de las variables. En las evaluaciones a los 1 y 15 días después del trasplante (DDT) no se observó diferencia significativa. Sin embargo, a partir del día 30 DDT se observó un aumento en el crecimiento vegetal en las plantas inoculadas (Figura 1). Las plantas inoculadas mostraron mayor biomasa 29 aérea (P <0.0001, Chi2 wald 73.19) y área foliar (P<0.0001, Chi2 wald 719.03) que las plantas no inoculadas en las evaluaciones 30, 45 y 60 DDT. Para las variables longitud tallo (P< 0.0004, Chi2 14.48) y número de ramificaciones (P<0.0001, Chi2 wald 49.03) se observó diferencia significativa entre plantas inoculadas y no inoculadas sólo en las evaluaciones 45 y 60 DDT. El número de hojas aumentó en el grupo de plantas inoculadas al día 30, sin embargo, el número de hojas disminuyó en las fechas posteriores y se mantuvo por debajo del grupo control hasta el fin del experimento (P<0.0001, Chi2 6.83). El diámetro del tallo no mostró diferencias significativas (P>0.05, Chi2 8.34). En el caso de características morfológicas de defensa foliar, éstas no mostraron diferencias significativas para grosor (P<0.0489, Chi2.2.31) y dureza foliar (P< 0.2167, Chi2 1.45), únicamente se encontró variación en el factor tiempo en relación a la variable grosor de la hoja (P< 0.0001, Chi2 7.29). Figura 1. Efecto de la inoculación de R. etli sobre el crecimiento vegetal en P. vulgaris L A) Biomasa aérea, B) Número de hojas, C) Aérea foliar, D) Número de ramificaciones, E) Diámetro 30 del tallo F) Longitud del tallo. n=6 (Benjamini & Hochberg <0.005) (*) indica diferencias significativas. En las variables de crecimiento de raíz, las plantas inoculadas mostraron aumento en la biomasa de raíz en las evaluaciones 45 y 60 DDT (P<0.0001, Chi2 wald 15.81). Sin embargo, la longitud de la raíz no mostró diferencias significativas entre los tratamientos (P<0.0044, Chi2 wald 8.95). En el caso del número de nódulos, esta variable mostró incremento significativo en los 45 y 60 DDT (Figura 2 y 3). Figura 2. Efecto de la inoculación de Rhizobium etli sobre el crecimiento de biomasa de raíz en Phaseolus vulgaris L. n=6 (Benjamini & Hochberg <0.005) (*) indica diferencias significativas. Figura 3. Efecto de la inoculación de R. etli sobre el número de nódulos en Phaseolus vulgaris L. n=6 (Benjamini & Hochberg <0.005) (*) indica diferencias significativas. Preferencia y oviposición de Bemisia tabaci. La oviposición de B. tabaci en plantas de P. vulgaris fue similar en plantas inoculadas y no inoculadas, tanto en las evaluaciones de libre elección como de no elección. De igual forma la preferencia de adultos no mostró diferencias significativas entre plantas inoculadas y no inoculadas en la prueba de libre elección (Figura 4 y 5). 1 15 30 45 60 B io m as a d e ra íz 0 2 4 6 8 Inoculado Control * Días después del trasplante 1 15 30 45 60 N ú m er o d e n ó d u lo s 0 10 20 30 40 50 60 70 Inoculado Control * * Días después del trasplante 31 Figura 4. Efecto de la inoculación de Rhizobium etli sobre la oviposición de Bemisia tabaci en Phaseolus vulgaris L. A) prueba de no elección n=30 B) prueba de libre elección n=80. (Bonferroni <0.005) (*) indica diferencias significativas. Figura 5. Efecto de la inoculación de Rhizobium etli sobre la preferencia de adultos de Bemisia tabaci en Phaseolus vulgaris L. prueba de libre elección n=80 (Bonferroni <0.005) (*) indica diferencias significativas. DISCUSIÓN El propósito de este estudio fue evaluar el aporte de Rhizobium etli en el crecimiento de Phaseolus vulgaris y su impacto en la preferencia y oviposición de Bemisia tabaci. Nuestros resultados mostraron que en las plantas inoculadas aumentó la biomasa aérea en fechas avanzadas después del trasplante, en algunas variables a partir de 30 DDT y en otros a partir de 45 DDT. Nuestros datos coinciden con los efectos beneficiosos del uso de cepas de Rhizobium spp. en diferentes especies de leguminosas reportado en diferentes estudios (Mostasso et al. 2002; Asadi et al. 2005; Mnasri et al. 2007). En el presente trabajo, el aumento dado por la asociación de R. etli específicamente en las variables de biomasa aérea, área foliar, número de ramificaciones, longitud de tallo, fue similar a lo reportado en otros estudios con cepas de Rhizobium spp. (Thamer et al, 2011; Dean et al. 2014; Yadegari et al. 2010). Así mismo, en nuestro estudio se observó que la asociación de R. etli - P. vulgaris, aumentó el crecimiento de raíz en plantas de P. vulgaris. Esto concuerda con lo reportado por Yadegari et al. (2010), quien observó un aumento en la biomasa de raíz y una mejora en la nodulación de los Días después del trasplante 30 60 N ú m e ro d e h u e vo s 0 20 40 60 80 100 Inoculado Control 30 60 N ú m e ro d e h u e vo s 0 10 20 30 40 50 B)A) Días después del trasplante 30 60 N ú m er o d e ad u lt o s 0 2 4 6 8 10 Inoculado Control 32 grupos inoculados con Rhizobium sp. Como se sabe, un factor determinante en el efecto positivo del crecimiento vegetal por la inoculación de Rhizobium es la formación de nódulos (Heath y Lau, 2011). En el presente estudio, el efecto de la inoculación en la formación de nódulos en la raíz de P. vulgaris se pudo observar claramente en los muestreos a los 45 y 60 DDT, lo cual comprueba la asociación entre esta leguminosa y R. etli. En este trabajo se evaluaron también los efectos de la asociación R. etli - P. vulgaris sobre la preferencia y oviposición del insecto fitófago B. tabaci. A pesar de que se observó un aumento en variables de crecimiento vegetal en plantas inoculadas con R. etli, hubo un efecto nulo en la preferencia y oviposición de B. tabaci. Si bien varios estudios han demostrado los efectos de la inoculación de Rhizobium en la respuesta a las plantas a insectos fitófagos (Thamer et al. 2010; Gadhave et al. 2015; Yadegari et al. 2010; Lau et al. 2008), en el presente estudio no se observó influencia de la inoculación por R. etli en la preferencia y oviposición de B. tabaci. El efecto de la asociación de Rhizobium y leguminosas sobre los insectos del follaje puede depender del aumento la producción de compuestos de defensa, como los alcaloides (Johnson y Bentley, 1991) y compuestos cianogénicos (Thamer et al. 2011). Además, los mecanismos de defensa dados por una mayor absorción de N como lo indica Bennett et al. (2006), pueden permitir que las plantas aumenten tanto la defensa como el crecimiento. Sin embargo, existen casos en los que los insectos seleccionan fitófagos plantas más vigorosas para alimentación y reproducción (Bolter et al. 1997; Hoy et al. 2000). A pesar que se conoce en detalle que la fijación de N2 por la asociación de Rhizobium spp. y leguminosas aumenta el contenido de N en las plantas (Sprent y Sprent, 1990), y que dicho N es un factor crucial que determina la calidad de la planta para los insectos fitófagos, (Schave et al. 2007; Chen et al. 2008) el conocimiento de las interacciones planta-Rhizobium sigue siendo ampliamente críptica. CONCLUSIÓN La inoculación de R. etli en el cultivo de frijol P. vulgaris produce un incremento en algunas variables de crecimiento vegetal como biomasa aérea, número de ramificaciones, área foliar y longitud de tallo. Sin embargo, la inoculación no afectó la preferencia
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