Descarga la aplicación para disfrutar aún más
Vista previa del material en texto
EMBRIOLOGIA HUMANA APUNTE – PRIMERA PARTE 2022 D’AMBRÓSIO ANDRADE, MARCOS VINÍCIUS MEDICINA EMBRIOLOGÍA D’AMBRÓSIO rimera parte del apunte de embriología humana, hecho durante el curso de medicina en el año de 2022, con base en los libros Embriología clínica (Arteaga Martínes, et al., 2013) y Langman, embriología humana (Sadler, 2019). TEMAS DE ESTE APUNTE MECANISMOS BIOLOGICOS ..................................................................................................... 2 CICLO SEXUAL FEMENINO ...................................................................................................... 4 GAMETOGENESIS ....................................................................................................................... 5 FECUNDACIÓN ............................................................................................................................ 7 SEGMENTACIÓN ......................................................................................................................... 8 ANEXOS EMBRIONÁRIOS ....................................................................................................... 12 EMBARAZOS MÚLTIPLES ....................................................................................................... 14 DIAGNÓSTICOS PRENATALES .............................................................................................. 15 Bibliography ................................................................................................................................. 16 P EMBRIOLOGÍA D’AMBRÓSIO MECANISMOS BIOLOGICOS Conceptos Iniciales HOMEOBOX o CAJA HOMEOTICA = conjunto de genes que regulan los ciclos del desarrollo, conducen la división del embrión en campos celulares con especificidades diferentes. Cigoto: primera célula, célula TOTIPOTENTE. Son considerados totipotentes el cigoto y los pri- meros 8 blastómeros. Cromatina descondensada, genes expresivos Cromatina condensada (genes inactivos)> cromosomas > división celular Cigoto - mórula – blástula – neurula ---- organogénesis Potencialidad evolutiva: posibilidad de diferenciación. Significado evolutivo: grados de especificidad celular. Totipotente > pluripotente > multipotente > células madre de una línea > células diferenciadas Mecanismos biológicos del desarrollo Determinación y Diferenciación • Determinación: represión u expresión de determinados genes • Diferenciación: expresión funcional y morfológica de una célula Los criterios para evaluar una diferenciación celular son: morfológicos, fisiológicos, evo- lutivos, bioquímicos. Crecimiento Celular • Hiperplasia: crecimiento en número de células • Hipertrofia: crecimiento en tamaño celular “El ciclo celular es una secuencia de sucesos que conducen a las células a crecer y prolife- rar; se encuentra regulado para evitar que las células proliferen descontroladamente y que las células con DNA dañado se dividan” (Arteaga Martínes, et al., 2013 p. 22). Se clasifican en latentes, de división continua o G0. Fases del ciclo celular: G1 > S > G2 > M (di- visión) • G1: crecimiento y síntesis de proteí- nas y RNA • S: síntesis de ADN • G2: preparación celular para la divi- sión Puntos de control: • Entre G1 y S: primer punto de control. Fosforilación de proteína retinoblas- toma (RB) para se liberar del com- plejo que hace con el factor de trans- cripción E2F. Una vez liberado el E2F, este se activa y promueve la transcripción de genes necesarios para la replicación del ADN (Arteaga Martínes, et al., 2013 p. 23). Una se- gunda vía de control es por la proteína ATM, que verifica posibles daños al ADN, en caso de daños, activa el gen supresor de tumores p53 (gen vigi- lante del ciclo). • Entre S y G2: segundo punto de con- trol. Proteína ATM, caso verifique errores inhibe la actividad de la cdk2- ciclina E, que provoca una pausa en la replicación del ADN. Si la ATM en- cuentra errores irreparables (entre G1-S o S-G2) esta proteína activa los genes de apoptosis. • Entre G2-M: corrige errores y com- prueba que el ADN esté correcto EMBRIOLOGÍA D’AMBRÓSIO • Durante la metafase de la mitosis existe un cuarto punto de control, de- nominado control de huso, a fin de prevenir errores en la separación de las cromátides hermanas. Motilidad Celular movimiento celular • Quimiotaxis: estímulos por medio de sustancia soluble • Haptotaxis: sigue el gradiente de con- centración de moléculas específicas, emiten pseudópodos. Muerte Celular • Necrosis: muerte natural, no progra- mada, sea por ausencia de metabolismo o nutrientes, sea por condiciones ambientales desfavora- bles, sea por infección. Membrana su- fre rotura. • Apoptosis: suicidio celular, muerte programada. La célula se fragmenta. Inducción Fenómeno por el cual un órgano o estructura, llamado inductor, induce que otro órgano o estructura, llamado inducido, sufra diferen- ciación. Figure 1 - Migración celular durante la gastrulación. (Arteaga Martínes, et al., 2013 p. 62) EMBRIOLOGÍA D’AMBRÓSIO CICLO SEXUAL FEMENINO DEFINICIÓN: Son cambios cíclicos que ocurren a nivel del sistema reproductor femenino y sus hormonas rela- cionadas y que tiene por finalidad producir gametas. Inicio: pubertad (12/13 años) Finaliza con menopausia (47/50 años) CICLO OVÁRICO • FASE FOLICULAR: días 0-14 o inicia con la menstruación o FSH: FOLICULO ESTIMU- LANTE, hipófisis o Folículos: primordiales, prima- rios, secundarios y terciarios (Graaf o maduro); todos produ- cen estrógeno o Folículo de Graaf produce pico de estrógeno, que viaja por el to- rrente sanguíneo y estimulan la hipófisis a producir LH (luteini- zante). El pico de estrógeno se pasa en el día 14, el LH estimula la ovulación. o Liberación del ovocito II. Día 14. • FASE LUTEA: días 14-28 o LH: a nivel de la hipófisis o (ovario) Folículo de Graaf se convierte en cuerpo amarillo o cuerpo lúteo que libera progeste- rona (y también estrógeno). Si no hay fecundación se convierte en cuerpo blanco (cuerpo albicans) por medio de cicatrización. CICLO ENDOMETRIAL • FASE MENSTRUAL: día 1-4 o Queda de progesterona y estróge- nos estimulan la descamación del endometrio (capa proliferativa) – menstruación – queda la capa ba- sal apenas. • FASE PROLIFERATIVA: días 5-14 o Regulada por estrógenos. Endo- metrio aumenta su espesor, rege- nera la capa funcional, desarro- llan las arteriolas y vénulas. Au- mentan en número las glándulas uterinas. o Ovulación: día 14 • FASE SECRETORA: 14-25 o Regulada por progesterona. Continúan el desarrollo de arte- riolas y vénulas, que se vuelven espiraladas. o Glándulas uterinas crecen y acu- mulan glucógeno, mucina y lípi- dos. • FASE ISQUÉMICA: 25-28 o Ocurre solamente si no hay fe- cundación o Disminuye la cantidad de proges- terona o Glándulas uterinas paran de se- cretar o Arteriolas y vénulas inician vaso- constricción o Necrosis de la capa funcional y su desprendimiento EMBRIOLOGÍA D’AMBRÓSIO GAMETOGENESIS Proceso de formación de gametas Etapas: proliferación, crecimiento, maduración (división meiótica). ESPERMATOGÉNESIS Inicio: pubertad No tiene tiempo para finalizar Tiempo de duración del proceso: 74 días A nivel de los túbulos seminíferos, las esper- matogonias, formadas por células germinati- vas primordiales, se dividen en dos líneas: Tipo A: función de mitosis. Tipo B: proveniente de diferenciación de las células tipo A, sufren meiosis • Espermatogonia: 2n=46 cromosomas simples • Espermatocito primario: 2n=46, sufre la primera meiosis (meiosis I - reduccional) • Espermatocitos secundarios: n=23, tiene las cromátides-hermanas unidas, sufre meiosis II (equitativa) • Espermátides: n=23, cromosomas sim- ples •Espermatozoides: n=23 simples, origina- dos por el proceso de diferenciación ce- lular que sufren las espermátides: esper- miogénesis Espermiogénesis Espermátides sufren liberación del exceso de citoplasma, compactación de la cromatina, formación del acrosoma a partir del Golgi, formación del flagelo por el centriolo distal, formación de la vaina mitocondrial por con- centración de las mitocondrias a nivel del cuello del espermatozoide, formación de vaina citoplasmática alrededor del cuello y flagelo. Maduración Los espermatozoides son liberados y llegan al epidídimo, donde sufren maduración, pro- ceso que dura 12 días y en el cual se pasan transformaciones bioquímicas y funcionales que confieren motilidad a los espermatozoi- des y una cubierta glicoproteica. Sufre aún más un proceso, llamado capacitación. Capacitación Se caracteriza por cambios bioquímicos y biofísicos que sufren los espermatozoides mientras ascienden por el tracto reproductor femenino, que modifican la superficie del ga- meto masculino permitiendo así que se torne apto para la fecundación. Los cambios que ocurren durante la capacitación en el esper- matozoide le confieren hiperactividad y le permiten también reconocer la zona pelúcida y realizar exocitosis acrosómica, como indi- can Arteaga Martínes & García Peláez (2013, p. 73) Control Hormonal Hipotálamo libera factores liberadores de gonadotropinas, que son captados por la adenohipófisis Adenohipófisis produce: FSH, LH y prolac- tina FSH actúa sobre las células sustentaculares LH y prolactina actúan sobre las células in- tersticiales Las células sustentaculares producen hormo- nas que actúan sobre las espermatogonias, iniciando sus divisiones. EMBRIOLOGÍA D’AMBRÓSIO OVOGENESIS Inicio intrauterino: ovogonias se dividen del 3º hasta el 5º mes Finaliza con la menopausia • Ovogonia: 2n=46 • Ovocito primario: 2n=46 dobles, sufre meiosis I que se frena en PROFASE I, que es retomada en la pubertad. N.º total de ovocitos al nacer = 600 a 800 mil. • CUANDO LLEGA LA PUBERTAD: Cerca de 400 mil ovocitos están viables en la pubertad. Ovocito I termina meio- sis I y forma el primer corpúsculo polar y el ovocito II, esto se pasa a cada ciclo sexual femenino. El ovocito I es suscep- tible a daños por el tiempo. • Ovocito II: n=23 dobles, empieza la meiosis II y se frena en la METAFISIS, que continua solo caso sufrir fecunda- ción. • Al sufrir fecundación, el ovocito II ter- mina su división, formando el ovulo y el segundo corpúsculo polar Características de los folículos Folículo primordial • compuesto por ovocito primario y mono- capa de células foliculares. Folículo primario • Unilaminar: compuesto por ovocito pri- mario y epitelio cubico unilaminar. • Multilaminar: ovocito primario y epitelio estratificado (células de la granulosa). Al lado externo de las células de la granulo- sas se encuentra una membrana basal, de- nominada teca folicular; al lado interno, la zona pelúcida. • Mientras se madura, la teca folicular forma la teca interna, vascularizada y compuesta por células secretoras; y la teca externa, una capa de tejido fibroso. Folículo secundario • Las células de la granulosa forman espa- cios que se llenan de líquido. Folículo terciario • Presenta un amplo antro • Ovocito primario termina la división meiótica I • Cúmulo oóforo: grupo de células de la granulosa que mantienen unidos el ovo- cito secundario y células foliculares que lo rodean a la pared del folículo. Figure 2 - Folículos Ováricos: Arteaga Martínes & García Peláez (2013, p. 44.) EMBRIOLOGÍA D’AMBRÓSIO FECUNDACIÓN Fase 1 penetración de la corona radiata • Enzima hialuronidasa liberada por los espermatozoides destruye la C.R. • Espermatozoides atraviesan la corona radiata y llegan a la superficie externa de la zona pelúcida • Denudación: destrucción de la corona radiata. • En la zona pelúcida hay las enzimas zp1, zp2, zp3 • Al encontrar la zp3: (reconocimiento de especies), desencadena la reacción acrosómica Fase 2 Penetración de la zona pelúcida • Liberación de enzimas acrosómicas que degradan la zona pelúcida • Nueva membrana externa del espermatozoide es la membrana interna del acro- soma • Que se une a la ZP2, atraviesa la zona pelúcida y encuentra la membrana plas- mática del ovocito. Fase 3 penetración de la memb. Plasmática • Fusión de las membranas • Bloqueo de la poliespermia: o Rápido: entrada de Na, provoca cambio de la ddp de la membrana del ovocito de - 70mv a +20mv o Lento: reacción cortical, aumento de la concentración de Ca intracelular (REL), liberación de gránulos corticales que liberan enzimas que modifican a las zp2, zp3, bloqueando el reconocimiento de nuevos espermatozoides. • Formación de pronúcleos femenino y masculino • Pronúcleo femenino sufre la meiosis II • Singamia: unión de los pronúcleos • Anfimixis: disposición en plano ecuatorial de los cromosomas, inicia las mitosis. Figure 3 – Fecundación (Sadler, 2019 p. 77) EMBRIOLOGÍA D’AMBRÓSIO SEGMENTACIÓN 1ª Semana DÍA CARACTERISTICAS 1 Fertilización 2 Blastómeros. Cuando el embrión tiene cerca de 8 blastómeros, empieza a sufrir la compactación. 3 y 4 Mórula (día 3 o 4, cuando existe de 16 a 32 células) 5 (+-1) Formación de la blástula: cerca de 8 o 10 blastómeros se agrupan en un polo, for- mando el embrioblasto (MCI), las células periféricas forman el trofoblasto. El conjunto toma forma esférica, al interior se forma una cavidad denominada blastocele (cavidad exocelomica), que se llena de líquido. El conjunto de blastocele, trofoblasto y embrioblasto se denomina blastocisto. Blastocisto temprano: tiene aún la zona pelúcida 6 (+-1) Blastocisto tardío: pierde la zona pelúcida 7 Implantación (nidación). Trofoblasto se divide en sincitiotrofoblasto (GCH y degradación del endometrio) y citotrofoblasto (células mitóticamente activas). Hacía el día 7+-1 el embrioblasto se reorganiza formando el disco embrionario bilaminar (blastulación), “las células del epiblasto son cuboidales, mientras que las del hipoblasto son aplanadas y quedan relacionadas con el blastocele” (Arteaga Martínes, et al., 2013 p. 94). Se forman las placas (membranas) precordal y anal. Otros conceptos para desarrollar: • Potencialidad celular • Genetic Imprinting (impronta genómica) Figure 4 – Blastocisto (Sadler, 2019 p. 86) EMBRIOLOGÍA D’AMBRÓSIO 2ª Semana DÍA CARACTERÍSTICAS 8 Entre el epiblasto y trofoblasto empieza a formar la cavidad amniótica primitiva. Células del epiblasto forman los amnioblastos que se disponen en forma de cúpula, que cierra la cavidad formando el amnios. 9 Se forma la membrana exocelomica (Heuser), a partir del hipoblasto, constitu- yendo la cavidad celómica o saco vitelino primario. A nivel del trofoblasto: se forman los espacios lacunares en el sincitiotrofoblasto (Arteaga: día 8 +-1) En el día 9+-1 todo el saco trofoblástico está penetrado en el endometrio. Los espacios lacunares confluyen formando redes lacunares. 10 11 Membrana de Heuser forma dos capas celulares, una interna, el endodermo extra- embrionario, y una externa, el mesodermo extraembrionario. El mesodermo extraembrionario, entre los días 11 y 12 (Sadler, 2019), ocupa todo el espacio entre el trofoblasto y el amnios y membrana exocelomica, empieza a forma cavidades en su interior, que confluyen y lo divide en dos capas: mesodermo somatopleurico y esplacnopleurico. 12 Sangre materna ingresa a las lagunas sincitiales en los días 11 y 12 (Sadler, 2019), o 12 o 13 +-1 (Arteaga Martínes, et al., 2013). Reacción decidual: edema del endometrio como reacción a la implantación y a los cambios y crecimiento del disco bilaminar. Al inicio se limita a la zona próximade la implantación, después se difunde y forma las deciduas basal, capsular y pa- rietal. 13 Saco vitelino se divide, restando el saco vitelino definitivo o secundario (Sadler, 2019). Mesodermo extraembrionario ya está completamente divido y la cavidad celómica ya está formada. Formación de las vellosidades coriónicas primarias (Sadler, 2019)*. 14 * Para Sadler (2019, p. 99), las vellosidades primarias empiezan a se formar en el día 13. Mientras que, para Arteaga Martínes & García Peláez (2013, p. 98), las vellosidades corionicas primarias se forman em el día 9+-1 y las secundarias en el día 12 o 13+-1. EMBRIOLOGÍA D’AMBRÓSIO 3ª a 8ª Semana Tercera Semana Gastrulación El día 15 marca el inicio de la gastru- lación con la formación de la línea primitiva y, posteriormente, de la fosita primitiva. La gastrulación consiste en el proceso pelo cual el embrión bilaminar se torna trila- minar. Una vez formada la línea primitiva, un grupo de células del epiblasto sufren dife- renciación, convergen hacia la línea primi- tiva, invaginan por la línea, divergen y elon- gan, substituyendo el hipoblasto por el endo- dermo intraembrionario. Un segundo grupo de células epiblás- ticas, también diferenciadas, migra por la lí- nea primitiva para formar el mesodermo in- traembrionario. Lo que resta de epiblasto, pasa a llamarse ahora ectodermo. Un tercer grupo de células a nivel del ectodermo migra, ahora por la fosita primi- tiva, formando el proceso notocordal, a nivel del mesodermo, que, en seguida, es invadido por la fosita tornándose un conducto hueco denominado conducto notocordal. Algunas células de la base de la notocorda y del endo- dermo, próximos a la fosita primitiva, sufren apoptosis, generando un canal que conecta el saco amniótico al saco vitelino, denominado canal neuro entérico, que, en humanos, rápi- damente se cierra. Otros puntos importantes para definir: • Formación de las vellosidades corió- nicas secundarias y terciarias • Formación del alantoides • Inicio de formación del aparato cir- culatorio • Vasculogenesis, angiogénesis, remo- delación y maduración • Células germinativas originadas del epiblasto y su destino. A Partir De La Cuarta Semana A Nivel Del Ectodermo Neurulación La notocorda induce la formación de la placa neural. La placa neural se desarrolla e invagina, desprende del ectoderma y se transforma en surco neural. De las paredes del surco neural se for- man pliegues neurales que se acercan a la lí- nea media y empiezan a unirse desde la re- gión central hasta los extremos cefálicos y caudal (día 21). Quedan abiertos los neurópo- ros anterior (que se cierra el día 25) y el pos- terior (que se cierra el día 27/28). La notocorda sigue induciendo al tubo neural, principalmente en la región cefálica, donde se forman las vesículas encefálicas en la cuarta semana. En la cuarta semana, las vesículas en- cefálicas primarias, de sentido cefálico a cau- dal, son prosencéfalo, mesencéfalo y rom- bencéfalo. En la quinta semana se forman las ve- sículas encefálicas secundarias. El prosencé- falo origina el telencéfalo y el diencéfalo, y el rombencéfalo origina el metencéfalo y el mielencéfalo. A Nivel Del Mesodermo Mesodermo paraxial Forma somitomeros, los 7 primeros somitomeros (a nivel cefálico) originan neu- romeros, que formará los huesos del cráneo y los músculos da cabeza. A partir del 8vo somitomero, se forma las somitas (cerca del día 20), que originarán las vértebras. Somitas: occipitales, cervicales, toráci- cas, lumbares y sacro coccígeas, que se divi- den en: • Esclerotomas: origina vertebra • Dermatoma: origina piel • Miotomas: origina músculos EMBRIOLOGÍA D’AMBRÓSIO Mesodermo intermedio Formará los gononefrotomos, que se dividen en: • Creta genital: formará las gónadas • Cresta urinaria: formará parte del apa- rato urinario (principalmente el ri- ñón). Mesodermo lateral Se divide em dos hojas: somática e a esplác- nica (intraembrionarios) • Somática: queda unida al ectoderma, entra em contacto con el mesodermo somático extraembrionario (sola- mente hasta el plegamiento embrio- nario). Formará los miembros (final de 4ª semana, inicio de 5ª) • Esplacnopleura: unida al endodermo, entra em contacto con a esplacno- pleura extraembrionaria (solamente hasta el plegamiento embrionario). Formará el tubo digestivo y os “me- sos” (meso esófago, mesogastrio, mesenterio). Parte cefálica del mesodermo lateral forma el campo cardiogénico primario, que también se divide en visceral y parietal • Visceral: forma cavidades (día 18), que se unen formando los tubos en- docárdicos que, cuando el embrión se pliega, estes tubos se juntan for- mando el corazón primitivo. • Parietal: forma pericardio. Vasculogenesis y angiogénesis Vasculogenesis: formación de vasos sanguí- neos por diferenciación de células mesodér- micas. Los hemangioblastos se dividen entre centrales, que formarán glóbulos rojos, y pe- riféricos, que formarán el endotelio de los va- sos. Angiogénesis: formación de vasos sanguí- neos a partir de vasos preexistentes. Maduración: diferenciación de los vasos en venas, arterias, capilares. Remodelación: adaptación a la morfología. A Nivel Del Endodermo Formación del intestino primitivo (IP) divi- dido en tres porciones. IP anterior limitado por el estomodeo, sepa- rado de la membrana bucofaríngea. IP posterior limitado por el proctodeo, sepa- rado de la membrana cloacal. Portal anterior: divide IP anterior del medio, esbozo hepático. Portal posterior: divide intestino medio del posterior. Intestino medio: Unido al saco vitelino por el conducto vitelino, está formado por una alza cefálica y otra caudal. En la 6ª semana es for- zado a salir de la cavidad abdominal por el crecimiento de otras estructuras, formando la hernia umbilical fisiológica. Entre las novena y décima semana reingresa a la cavidad abdo- minal. El intestino posterior termina en una dilata- ción llamada cloaca que, en la 5ª semana es invadida por mesodermo y dividida por un ta- bique urogenital en dos senos: • Seno urogenital, que formará la ve- jiga y la uretra. • Seno anorrectal: que formará todo el recto y parte del ano. EMBRIOLOGÍA D’AMBRÓSIO ANEXOS EMBRIONÁRIOS Saco Vitelino Bolsa situada bajo la superficie ventral del embrión. Se forma el día 9, cuando el hipo- blasto emite células que tapizan la cavidad, formando la membrana de Heuser. En el día 13, se transforma en saco vitelino definitivo o secundario, después de parte de este anexo se desprender del saco primario (quiste). Las funciones del saco vitelino son: • Formar las células germinativas primor- diales. • Hematopoyesis: forman los islotes san- guíneos en el día 18. • Contribuye a la formación del intestino. Se va reduciendo hasta desaparecer, que- dando el conducto vitelino con dos venas y dos arterias. Corion Es una membrana que cubre el saco corió- nico. Formado por mesodermo somatopleu- rico. Sectores: liso y velloso, que formará las vellosidades coriónicas. El corion se forma en la segunda semana. Las vellosidades son clasificadas en • Primaria: cito y sincito; segunda semana, día 13. • Secundaria: cito, sincito y somatopleura; tercera semana. • Terciaria: cito, sincito, somatopleura y vasos fetales; tercera semana. • Troncales: atraviesan el sincito para for- mar la coraza citotrofoblastica. Placenta Diámetro 15 a 20cm, espesor de 2 a 3cm, peso de 600g (sexta parte del peso del RN). • Componente materno: decidua basal (en- dometrio) placa decidual, forma tabiques placentarios que la divide en cotiledones en cuyo interior ocurren los intercambios. • Componente fetal: placa curio única constituida por corion velloso, amnios y cordón umbilical.El cordón umbilical está compuesto por dos arterias (CO2) y una vena (O2). La vena umbilical se ramifica y adentra a cada cotile- dón, formando la vena de las vellosidades, que absorbe los nutrientes y oxígeno y los lleva hacia la vena umbilical. Las arterias um- bilicales, ricas en desechos y gas carbónico, se ramifican en los cotiledones formando las arterias de las vellosidades, que eliminan es- tos compuestos para que sean absorbidos por las venas endometriales y conducidos hacia el cuerpo materno. La membrana placentaria después del cuarto mes se hace muy finita, compuesta apenas por el endotelio del vaso y el sincitiotrofo- blasto francamente adelgazado. Funciones placentarias: • Nutritiva: intercambio de gases y nutrien- tes • Protectora: transmisión de anticuerpos maternos al feto • Urinaria: eliminación de excretas fetales • Endocrina: producción de hormonas (es- tradiol, estrógenos, GCH, somatotropina) Hormonas placentarias: • GCH: mantiene el cuerpo lúteo y tiene función inmunomoduladora; • Progesterona: mantiene el endometrio y es miorrelajante; • Estrógenos: contribuye al crecimiento del útero, desarrollo de las glándulas mama- rias, incremento del flujo de sangre útero placentario (unidad materno-fetoplacen- tario, glándulas suprarrenales del feto) • Somatotropina, lactogenoplacentario HPL: estimula desarrollo de glándulas mamarias maternas, tiene efecto diabeto- génico por provocar resistencia a insulina materna para aumentar la glucosa en la sangre materna, ofreciendo mayor dispo- nibilidad al feto. Relacionada al diabetes gestacional, que ocurre en mujeres con predisposición al DM2, generando fetos macroscópicos por exceso de oferta de glucosa (>4 kg) EMBRIOLOGÍA D’AMBRÓSIO Amnios Cavidad amniótica se forma la segunda se- mana, es tapizada por amnioblastos, que la llenan de líquido (98~99% agua; 1~2% célu- las fetales, proteínas, hidratos de carbono, lí- pidos, Na, K…) Funciones: protección mecánica, amortigua- dora, movimientos fetales, temperatura cons- tante. Durante el tercer trimestre el líquido se re- nueva por completo cada 3 horas, gran parte se intercambia a través de la membrana am- niótica. Deglución fetal: El feto deglute 20 ml por hora. Durante la fase fetal, la orina contribuye a la formación del líquido amniótico. El feto traga el líquido y lo elimina por la placenta. • Polihidramnios: anencefalia, atresia eso- fágica; • Oligohidramnios: deficiencias de los ri- ñones (agenesia) Cordón umbilical Formado por el pedículo de fijación. En la cuarta semana el pedículo de fijación se une al pedículo vitelino. Después de la quinta se- mana, el pedículo vitelino se incorpora al in- testino primitivo. Componentes del pedículo de fijación: • Alantoides: induce formación de vasos (dos arterias, dos venas). Una porción de la vena derecha desaparece, y la vena se junta a la izquierda, quedando dos arterias y una vena. Una vez que cumplió su fun- ción, se fibrosa y se transforma en URACO (ligamento entre vejiga y om- bligo). • Mesoderma extra e intraembrionaria: for- man el tejido conectivo • Mesoderma extraembrionario: forma la gelatina de Wharton. Figure 5 – Izquierda: embrión de 6 semanas (Sadler, 2019 p. 193). Derecha: feto de 23 semanas (Sadler, 2019 p. 196) EMBRIOLOGÍA D’AMBRÓSIO EMBARAZOS MÚLTIPLES Puede ocurrir la formación de gemelos dicigóticos o monocigóticos. Dicigóticos Los dicigóticos no comparten anexos embrionarios, pero puede ocurrir de fusionaren las placentas. Presentan conformación genética distintas y forman dos embriones distintos. Ocurre por la libera- ción de dos óvulos al mismo tiempo, fecundados por dos espermatozoides. Monocigóticos Se caracteriza por la formación de uno solo embrión que, en algún momento, se divide. Esta divi- sión puede ocurrir a diferentes estadios y tendrá distintas características: División de blastómeros Durante la fase de mórula (días 1~3); ocurre en 30% de los casos. Es biplacentario (forma dos placentas), bicorial y biamniotico (forma dos corión y dos amnios). División del blastocisto (MCI) Durante la fase de blástula (días 4~8); ocurre en 65~70% de los casos. Es monoplacentario, mo- nocorial y biamniotico: embriones comparten misma placenta y mismo corion, pero poseen amnios separados. División del disco bilaminar Durante la fase bilaminar (días 8~13). Es monoplacentario, monocorial y monoamniotico; y “pue- den llegar a compartir el cordón umbilical, el saco vitelino y la alantoides, aunque no en todos los casos” (Arteaga Martínes, et al., 2013 p. 190). Factores de riesgo • Antecedentes familiares • Edad materna > 30 años aumenta la pro- babilidad • A mayor cantidad de embarazos previos aumenta la probabilidad • La etnia negra presenta mayores tasas de embarazos múltiples Trillizos Puede ocurrir por tripla ovulación, principal- mente cuando la madre realiza o ha realizado inducción de ovulación o técnicas de fertili- dad asistida; o puede ocurrir por un embarazo de gemelos dicigóticos en que uno de estes embriones se divide. Patologías asociadas Síndrome de transfusión feto-fetal También llamada de feto transfundido-trans- fusor. Ocurre en 15% de los embarazos mo- nocigóticos monocoriales. Se forman anasto- mosis entre los vasos placentarios de tal forma que un feto recibe mayor cantidad de sangre placentaria que el otro, generando un feto de mayor tamaño y otro de menor ta- maño. En 50~70% de los casos mueren am- bos productos, como indica Sadler (2019, p. 210). Gemelos siameses Ocurre en 0,5% de los embarazos monocigó- ticos, se caracteriza por la separación incom- pleta de los embriones. Puede generar geme- los toracópagos (unidos por el tórax), picópa- gos (unidos por la cadera), onfalópagos (uni- dos por el abdomen), etcétera. EMBRIOLOGÍA D’AMBRÓSIO DIAGNÓSTICOS PRENATALES Técnicas no invasivas Ecografía: Utiliza imágenes formadas por ondas sono- ras, es operador dependiente. Puede ser reali- zado por vía transvaginal (1er trimestre) o transabdominal (2º y 3er trimestre). Funciones: identificas número de fetos, edad, posición crecimiento y latidos cardiacos del feto; posición de la placenta; movimientos fe- tales, movimientos respiratorios; presencia o ausencia de anomalías congénitas; cantidad de líquido amniótico, flujo sanguíneo umbili- cal; sirve también como guia para procedi- mientos invasivos. • Semanas 5~10: se mide la longitud cefa- locaudal • Semanas >11: se mide diámetro biparie- tal, longitud femoral y circunferencia ab- dominal • Semanas 11~14: translucencia nucal (pliegue de la nuca, normal <3 mm); hueso nasal y maxilar, marcadores en la sangre materna. • Semana 20: se realiza scan fetal, órgano por órgano. Pruebas en suero materno 1er o 2º trimestre, se utilizan pruebas en suero materno, asociados a parámetros ecográficos y a la edad materna para se calcular riesgo de enfermedades. Se cuantifican las moléculas de alfafetopro- teína, gonadotropina coriónica humana y es- triol no conjugado y, en algunos centros, tam- bién se cuantifica la inhibina A dimérica. Aumento anormal de alfafetoproteína puede indicar gestación múltiple, muerte fetal, de- fectos del cierre del tubo neural o pared ven- tral, riñón poliquístico, entre otros. (Arteaga Martínes, et al., 2013 p. 219). Disminución de alfafetoproteína, relacionado con los niveles de las otras moléculas, puede indicar síndrome de Down (Arteaga Martínes, et al., 2013 p. 219). Además, se re- laciona también con trisomía 18, anomalías cromosómicas sexuales y triploidia (Sadler, 2019 p. 240). Cariotipo fetal en sangre materno A partir de la novena semana se puede reali- zar. Indicados a madres con edad superior a 35 años o que poseen antecedentes familiares de síndromes cromosómicas. Tiene la fun- ciónde identificar aneuploidías y microdele- ciones cromosómicas fetales. Técnicas invasivas Indicados a madres con edad >35, histórico familiar de abortos, alteraciones cromosómi- cas, hijos previos con síndrome de Down y/o defectos de cierre del TN. Tiene riesgos di- versos, incluso perdida de embarazo. Punción de vellosidades coriónicas Vía transvaginal, se aspira 5~30 mg de tejido velloso y se cultiva las células citotrofoblas- tica para análisis genética. Amniocentesis Ideal entre semanas 16~18. Por vía abdomi- nal, se introduce una aguja en la cavidad am- niótica para extraer cerca de 20~30 ml de lí- quido para análisis genética y citológica. • Fracción solida: células de descamación del feto. Usos para identificación de cro- matina sexual, grupo sanguíneo, cariotipo fetal. • Fracción liquida: análisis de: o Bilirrubina libre: hemolisis por eritroblastose fetal, en concentra- ción alta, puede traspasar la BHE y destruir los núcleos de la base. o Metabolitos libres: indicadores de fenilcetonuria y galactosemias. o Alfafetoproteínas: mencionado anteriormente. o Estriol: elevado puede indicar dia- betes materna y síndrome adreno- genital fetal. o Factor surfactante: indicador de madurez pulmonar. EMBRIOLOGÍA D’AMBRÓSIO Cordocentesis Semana 14, más indicada. Punción del cor- dón umbilical. Indicada a tratamiento de eri- troblastose fetal, infecciones (como toxoplas- mosis), arritmias y patologías tiroideas. Cirugías Fetales Las cirugías abiertas exponen el útero para llegar feto, están indicadas entre las semanas 18 y 30, para tratamiento de defectos del tubo neural, malformaciones cardiacas y hernias diafragmáticas. Las cirugías fetoscopicas no exponen el feto, están indicadas para derivaciones de obstruc- ción de vías urinarias; cortar bridas amnióti- cas; eliminar vasos anormales de la síndrome del feto transfundido-transfusor y reparar hernias diafragmáticas. Estudio genético preimplantatorio Técnica con manipulación directa del em- brión. Se utiliza técnicas de fertilización in- vitro para generar un embrión y hacer estu- dios genéticos través de biopsia del trofo- blasto (días 3~5). El material es criopreser- vado hasta la conclusión del estudio. Los em- briones sanos son implantados y los no sanos son eliminados. Bibliography Arteaga Martínes, Sebastian Manuel and García Peláez, Maria Isabel. 2013. Embriología Humana y Biología del Desarrollo. Mexico, D.F. : Editorial Medica Panamericana, 2013. p. 570. Sadler, T. W. 2019. Langman embriología médica. [trans.] Gabriela Enriquez Cotera. 14. Barcelona : Wolters Kluwer, 2019.
Compartir