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Guias de prevencion de infecciones hospitalarias 2012

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COMITÉ DE INFECCIONES 
 
 
GUIAS DE PREVENCION 
 DE INFECCIONES 
HOSPITALARIAS 
Dr. Eduardo Larrañaga Lic. Silvia Fernández 
2ª edición 
 
Montevideo, 2012 
 
 
 
 
 
2ª edición Página 1 
 
 
 
 
CONTENIDO: Página 
Introducción..………………………………………………………… 3 
Aislamientos Hospitalarios..……………………………………...4 
Uso correcto del equipamiento de protección personal (EPP)…..11 
Guía Rápida de patología y Aislamiento Hospitalario…………..15 
Higiene de Manos……………………………………………………22 
Prevención de las Infecciones Relacionadas a Dispositivos 
Vasculares……………………………………………………………..25 
Prevención de la Neumonía Asociada a Ventilación Mecánica….39 
Prevención de la Infección Urinaria Asociada a Catéter Vesical……….42 
Prevención de la Infección del Sitio Quirúrgico………………….45 
Gestión de Residuos Sólidos Hospitalarios……………………...50 
Guía de Antisépticos………………………………………………… ..55 
Guía del Laboratorio de Análisis Clínicos………………………..59 
Recomendaciones en profilaxis antimicrobiana en cirugía……….64 
Bibliografía……………………………………………………… ……66 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
2ª edición Página 2 
 
 
 
 
 
INTRODUCCION 
 
El control de la infección hospitalaria (IH), es un indicador de la calidad de la atención de las 
Instituciones de Asistencia Médica. 
 
El programa de control de infecciones tiene como objetivos principales: 
 
1. Proteger al paciente. 
2. Proteger al personal de salud, visitas y otras personas en el ambiente 
 hospitalario. 
3. Reducir la infección nosocomial. 
4. Reducir el tiempo de internación. 
5. Reducir los costos relacionados con la internación. 
 
Los programas de control de infecciones abarcan toda la práctica hospitalaria y 
proporcionan un medio para la evaluación mediante la Auditoria Clínica. 
 
Problemas como la reducción de las tasas de infecciones y la resistencia bacteriana a los 
antibióticos, requieren de un sistema de vigilancia y un entrenamiento adecuado del personal 
vinculado a la asistencia. El apoyo a esta actividad debe provenir de las más altas esferas de 
decisión nacional e institucional, ya que impacta directamente en la 
mortalidad, morbilidad y costos vinculados al proceso asistencial. 
 
Definición de I.H. (OMS.) 
 
Es una infección que se presenta en un paciente internado en un hospital o en otro 
establecimiento de atención de salud, en quien la infección no se había manifestado ni estaba 
en período de incubación al momento de la internación. Comprende las 
infecciones contraídas en el hospital, pero manifestadas después del alta y también las 
infecciones ocupacionales del personal del establecimiento. 
 
La infección hospitalaria genera elevados costos al prolongar los días de 
hospitalización, aumenta el consumo de antimicrobianos, y aumenta la mortalidad. 
 
Elevar los niveles de calidad en el cuidado de los usuarios es una responsabilidad y 
preocupación constante de los profesionales de la salud. En base a ello el Comité de 
Infecciones elaboró las presentes Guías, las que permitirán una consulta de rápido y fácil 
acceso al personal sanitario. 
 
Las presentes guías fueron elaboradas siguiendo las recomendaciones del CDC, 
 
(Centers for Disease Control. Atlanta. EUA), las recomendaciones de otras Sociedades 
Científicas y la Normativa Institucional. 
 
 
 
 
 
 
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CATEGORÍAS DE LAS RECOMENDACIONES DEL CDC 
 
Cada recomendación está categorizada en base a la existencia de datos científicos, 
racionalidad teórica, aplicabilidad e impacto económico. El sistema de categorización es el 
siguiente: 
Categoría IA. Fuertemente recomendado para su implementación y fuertemente 
apoyado por estudios bien diseñados experimentales, clínicos y/o epidemiológicos. 
Categoría IB. Fuertemente recomendado para su implementación y apoyado por 
algunos estudios experimentales, clínicos o epidemiológicos y fuerte racionalidad 
teórica. 
 
Categoría IC. Requerido por normas o reglamentos. 
 
Categoría II. Sugerido para implementación y apoyado por sugestivos estudios clínicos o 
epidemiológicos o racionalidad teórica. 
Sin recomendación. Práctica para la cual no hay evidencia suficiente o no hay 
consenso acerca de su eficacia. 
 
 
AISLAMIENTOS HOSPITALARIOS 
 
EPIDEMIOLOGIA 
 
Para que exista una infección se necesita un reservorio con agentes infecciosos, un 
huésped capaz de recibirlos y una vía por la cual los agentes llegan desde el reservorio al 
huésped. 
En la infección hospitalaria el reservorio es el propio paciente infectado o colonizado, el 
personal de salud o los objetos del entorno. 
 
La colonización/infección de un huésped depende de la predisposición individual a 
adquirirla, la edad, la enfermedad subyacente, el tratamiento antimicrobiano previo, el uso de 
corticoides, inmunosupresores, radiaciones, cirugía, anestesia, y el uso de 
catéteres endoluminales. 
 
La transmisión se hace por cinco vías posibles: 
 
1. Por contacto: este puede ser directo persona - persona o indirecto a través de 
 objetos (agujas, instrumental, guantes). 
2. Por gotas mayores de 5 micras, que NO se mantienen en suspensión en el aire, 
 son expedidas al hablar, toser o estornudar. Se trasmiten por el aire a una 
 distancia no mayor de 1 metro o 1,5 metros y se depositan en las conjuntivas, 
 mucosa nasal o la boca del huésped. 
 
 
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3. Transmisión aérea: a través de microgotas menores de 5 micras, partículas 
 que quedan suspendidas en el aire y pueden ser inhaladas a distancia por el 
 receptor. 
4. Transmisión por objetos comunes: agua, medicamentos o soluciones 
 contaminadas, equipo de terapia respiratoria, etc. 
5. Transmisión por vectores vivos: insectos, roedores, etc.(excepcional en 
 patógenos hospitalarios). 
La forma más efectiva de evitar la infección, es impedir su transmisión de paciente a 
paciente y de paciente a personal de la salud. 
 
El aislamiento está dirigido a romper la cadena de transmisión. 
 
Todos los pacientes deben ser sometidos a medidas que minimicen una posible 
transmisión de patógenos, conocidas como: precauciones estándar. 
 
 
 
1. PRECAUCIONES ESTÁNDAR. 
Se aplica a todos los usuarios 
Comprende: 
1. Higiene de manos. (Ver Guía de Higiene de Manos) 
2. Colocación de guantes limpios no estériles: siempre que se tome contacto con 
sangre o cualquier fluido corporal, mucosas, piel no intacta u objetos 
contaminados. 
 
Protege al paciente, al trabajador y evita la transmisión. 
 
El uso de guantes NO exime de realizar higiene de manos antes de ponérselos y 
al quitárselos. Se deben cambiar los guantes entre paciente y paciente, y en un 
mismo paciente, si se toma contacto con una zona contaminada y se pasa a una 
limpia. 
 
3. Cuando se van a realizar procedimientos que puedan salpicar o ensuciar con 
fluidos corporales, se usan: guantes, sobretúnicas limpias no estéril, tapabocas y 
protectores oculares. 
4. En la habitación se debe mantener siempre una distancia mayor de un metro 
entre paciente y paciente. La puerta debe permanecer abierta y la ventilación ser 
adecuada. 
5. El material debe ser procesado después del uso de acuerdo a las normas 
vigentes en la Institución de limpieza, desinfección o esterilización, y de acuerdo 
a su clasificación: crítico el que penetra en el torrente sanguíneo o invade sitios 
estériles, semi-crítico (entra en contacto con mucosas, Ej. : aparatos de 
fibroscopía) y no critico (solo contactan con la piel sana: estetoscopios, aparato 
de presión) 
6. El transporte de la ropa usada, debe hacerse dentro de contenedores resistentes y 
de acuerdo al nivel de contaminación de la misma. 
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7. Los instrumentos corto- punzantes serán colocados en contenedores de paredes 
 resistentes a la perforación. 
8. La vajilla se lava con agua caliente y detergente y se enjuaga con agua e 
 hipoclorito. 
9. Las habitaciones y los objetos próximos a la cama, se limpian conagua y jabón 
 y se desinfectan con agua e hipoclorito. 
II) AISLAMIENTO DE CONTACTO. 
Comprende: 
1. Habitación individual, es lo ideal. Si no es posible se realiza aislamiento de 
cohorte (pacientes con igual enfermedad infecciosa o microorganismo, pueden 
compartir la habitación). 
2. Usar siempre guantes limpios no estériles, antes de cualquier contacto con el 
 paciente, o su entorno. 
3. Aplicación de alcohol gel, antes de colocarse y después de retirarse los guantes. 
4. Usar equipamiento de protección personal (sobretúnica, tapaboca, lentes), si se 
 valora que en la atención se tendrá contacto con el paciente, fluidos orgánicos o 
 instrumental 
5. Esfignomanómetro, etetoscopio, termómetro, alcohol gel exclusivos para el 
 paciente 
6. La vajilla no se aisla 
7. Bolsa roja para residuos en la habitación 
8. Bolsa transparente para recolectar la ropa de cama en la habitación 
9. Artículos de limpieza exclusivos para la habitación 
 
10. Limitar los traslados del paciente a lo estrictamente 
 necesario. 
EL FAMILIAR UNICAMENTE DEBE APLICASE ALCOHOL GEL EN LAS 
MANOS ANTES Y DESPUES DE LA VISITA 
 
Se aplica a: 
 
• Infecciones por patógenos multirresistentes (MR), por ejemplo, 
Staphylococcus aureus meticilino resistente (SAMAR), Acinetobacter spp, entre 
otros. 
• Colonización o infección por Enterococo Resistente a Vancomicina (ERV) 
• Diarrea por Clostridium difficcile, Enterovirus, Rotavirus 
• Infecciones de piel y partes blandas con secreciones no contenidas 
• Escabiosis. 
• Otras infecciones virales: Virus sincicial respiratorio 
 
Adenovirus 
 
EL FAMILIAR UNICAMENTE DEBE APLICARSE ALCOHOL GEL EN LAS 
 MANOS ANTES Y DESPUES DE LA VISITA 
 
 
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AISLAMIENTO DE CONTACTO 
 
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Habitación individual, es lo ideal. Si no es posible se realiza aislamiento 
de cohorte (pacientes con igual enfermedad infecciosa o microorganismo, 
pueden compartir la habitación). 
La puerta puede permanecer abierta. 
Usar siempre guantes limpios no estériles, antes de cualquier 
contacto con el paciente, o su entorno. 
 
 
 
 
Aplicación de alcohol gel, antes de colocarse y después de 
retirarse los guantes. 
 
 
 
Usar equipamiento de protección personal (sobretúnica, 
tapaboca, lentes), si se valora que en la atención se tendrá contacto 
con el paciente, fluidos orgánicos o instrumental. 
 
 
 
 
 
Esfingomanómetro, estetoscopio, termómetro y alcohol gel exclusivo para el 
paciente. 
 
 
Bolsa roja para residuos en la habitación. 
Bolsa roja o transparente para recolectar la ropa de cama en la 
 habitación. 
Artículos de limpieza exclusivos para la habitación. 
Trasladar al paciente lo estrictamente necesario. 
 
 
 
 
 
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III) AISLAMIENTO DE GOTAS. 
 
Se agregan a las medidas de precaución estándar en presencia o ante la sospecha de 
microorganismos que pueden trasmitirse por partículas > 5 micras, que pueden 
diseminarse hasta aproximadamente 1 m de distancia al hablar, toser, estornudar. 
 
Se aplica: 
 
1. La habitación individual es lo ideal, de no ser posible aislamiento de cohorte. 
2. Puede quedar la puerta abierta de la habitación. 
3. Colocarse tapaboca el personal asistencial cuando esta a una distancia menor de 
 un metro. 
4. Cuando hay que trasladar al paciente, colocarle tapaboca. 
AISLAMIENTO DE GOTAS 
 
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Habitación individual, es lo ideal. Si no es posible se realiza aislamiento 
de cohorte (pacientes con igual enfermedad infecciosa o microorganismo, 
pueden compartir la habitación). 
La puerta de la habitación pude permanecer abierta. 
Usar siempre guantes limpios no estériles, antes de cualquier 
contacto con el paciente, o su entorno. 
 
 
 
Aplicación de alcohol gel, antes de colocarse y después de 
retirarse los guantes. 
 
 
 
Usar equipamiento de protección personal (sobretúnica, 
tapaboca, lentes), si se valora que en la atención se tendrá un 
acercamiento al paciente menor de 1 metro. 
 
 
 
Esfingomanómetro, estetoscopio, termómetro y alcohol gel 
exclusivos para el paciente. 
 
Bolsa roja para residuos en la habitación. 
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Bolsa roja o transparente para recolectar la ropa de cama en la 
 habitación. 
Artículos de limpieza exclusivos para la habitación. 
Trasladar al paciente lo estrictamente necesario. 
IV) AISLAMIENTO DE VIA AEREA 
Se agregan a las medidas de precaución estándar en presencia o ante la sospecha de 
microorganismos que pueden trasmitirse por partículas < 5 micras, que quedan 
suspendidas en el aire y pueden ser inhaladas a distancia del paciente cuando se entra en la 
habitación. 
 
Se aplica a: 
 
Tuberculosis, Sarampión, Varicela o sospecha de los mismos hasta demostración de lo 
contrario. Para las dos últimas es recomendado que las personas susceptibles no entren a la 
habitación. 
 
Comprende: 
 
1. Habitación individual obligatoria o aislamiento de cohorte. 
2. Que el aire fluya desde el pasillo hacia el exterior del edificio, lo ideal es de 6 a 
12 cambios de aire por hora, para ello hay que mantener la puerta cerrada. 
3. Toda persona que entre a la habitación, debe usar una mascarilla de alto nivel de 
 protección respiratoria (modelo N95). 
4. Si hay que trasladar al paciente hacerlo con tapabocas quirúrgico. 
AISLAMIENTO DE VIA AEREA 
 
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Habitación individual. 
Cuando sea posible abrir las ventanas hacia el exterior. 
 
 
 
Mantener la puerta de la habitación cerrada. 
Uso de guantes, protección ocular y sobretúnica si hay riesgo de 
contacto o salpicadura con fluidos corporales del paciente. 
 
 
 
 
 
 
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Las visitas y acompañantes deben ser orientados en las medidas de 
aislamiento. 
El paciente debe usar tapaboca quirúrgico para salir de la 
habitación. 
Termómetro, esfingomanómetro y estetoscopio personal. 
 
 
 
Recolección de ropa en bolsa transparente o roja en la 
habitación. 
Bolsa roja para residuos. 
Artículos de limpieza exclusivos de la habitación. Se 
utiliza tapaboca con filtro. 
En Tuberculosis pulmonar se usa tapaboca con filtro si el paciente 
se encuentra en la etapa “bacilífera“, o sea con tos y expectoración. 
EL TAPABOCA CON FILTRO ES DE USO PERSONAL SE 
CAMBIA CADA 15 DIAS 
SE CAMBIA ANTES, SI: SE MOJA, ROMPE O DIFICULTA LA 
RESPIRACION 
NO SE USA CON TAPABOCA QUIRURGICO POR 
DEBAJO 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
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V) INMUNODEPRIMIDO 
 
Lo más importante en el manejo de estos pacientes es el lavado de manos ya que los 
usuarios inmunodeprimidos se infectan con microorganismos de la flora endógena. 
Existen, sin embargo situaciones específicas que pueden requerir evaluación 
individual para la indicación del cuidado. 
• Pacientes a los que se les administrará quimioterapia deben ser evaluados por el 
 equipo para estudio de posibilidades de indicación de habitación individual. 
 
• Utilizar jabón con antiséptico para higiene de manos. 
 
• Aplicación de alcohol gel 
 
• El uso de sobretúnicas y tapabocas no son necesarios. A pesar de estar indicadas 
 las sobretúnicas por algunos investigadores para la disminución de las 
 infecciones, en el caso de inmunodeprimidos no existen evidencias de costo 
 beneficio. Esto si se aplica a los pacientes en Unidades de Trasplante de Médula 
 Osea. 
 
• Personas con infección no deben entrar a la habitación del paciente. 
 
 
USO CORRECTO DEL EQUIPAMIENTO DE 
 PROTECCIÓN PERSONAL 
 
Colocación y retiro de elementos de protección 
personal 
Secuencia para colocar 
 
• Bata 
• Mascarilla 
• Protección ocular / 
Protección facial / 
Gorro• Guantes 
Secuencia para retirar 
• Guantes 
• Bata 
• Gorro/Protección 
ocular /protección 
facial 
• Mascarilla 
 
La higiene de manos luego del retiro es vital! 
 
 
 
 
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Colocación mascarilla quirúrgica 
 
 
Ubicar sobre la nariz, 
boca y el mentón. 
Adaptar la pieza 
flexible sobre la nariz 
Asegurar sobre las 
orejas y nuca. 
 
 
 
 
 
 
 
Colocación de respirador N-95 
 
Paso 1 Paso 2 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
Sostenga el respirador en la Coloque el respirador en s u 
palma de la mano, permita que barbilla, con la pieza nasal hacia 
las tiras cuelguen libremente. arriba. 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
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Colocación de respirador N-95 
 
Paso 3 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
Tire la correa superior y 
colóquela detrás de su cabeza. 
Tire la correa inferior y colóquela 
alrededor del cuello debajo de 
las orejas 
 
 
 
Retiro de mascarilla quirúrgica o 
 de respirador N95 
 
 
 
El frente del respirador y su cara externa 
pueden estar contaminados por humedad 
o por secreciones respiratorias. Solo el 
elástico puede ser manipulado para su 
retiro, desde atrás. 
 
Siempre hacer higiene de las manos 
después de retirar y descartar el 
respirador. 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
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Recomendaciones para el uso correcto del tapaboca con filtro 
El tapaboca N 95 no cumple con su función si se usa con tapaboca quirúrgico por 
debajo o es utilizado por personal masculino con barba 
 
Si el usuario se encuentra en etapa bacilífera o sea abundante tos y expectoración, o en la 
atención al mismo usted permanecerá por más de una hora en la habitación, es 
aceptable colocar mascarilla quirúrgica por encima del tapaboca con filtro, para proteger que 
la cara externa del mismo 
La vida útil del tapaboca con filtro es de 10 días, se debe descartar antes si: se moja, 
quiebra o usted considera que estuvo expuesto a secreciones del usuario 
 
No doblarlo, no colocarlo en el bolsillo del uniforme 
 
Guardarlo en sobre de papel con el nombre del funcionario 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
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GUIA DE AISLAMIENTO HOSPITALARIO 
En la presente guía rápida se encuentran las principales enfermedades transmisibles y 
las medidas de prevención a aplicar en cada caso, así como el tiempo de duración de las 
mismas. 
Su consulta puede buscarla por diagnóstico y/o germen involucrado ordenados 
alfabéticamente. 
 
ENFERMEDAD INFECCIOSA TIPO DE DURACION - OBSERVACION 
PRECAUCION 
ABSCESOS 
• Con gran drenaje (no se • CONTACTO • Mientras drenen 
contiene con apósitos) 
• Con escaso drenaje • ESTANDAR 
ACTINOMICOSIS • ESTANDAR 
ADENOVIRUS EN JOVENES Y • GOTITAS Y • Duración de la enfermedad 
NIÑOS CONTACTO 
ANTRAX 
• CUTANEO • ESTANDAR 
• PULMONAR • ESTANDAR 
ASCARIASIS • ESTANDAR 
ASPERGILOSIS • ESTANDAR 
BLASTOMICOSIS • ESTANDAR 
BOTULISMO • ESTANDAR 
BRUCELOSIS • ESTANDAR 
CANDIDIASIS (Todas las formas) • ESTANDAR 
CELULITIS 
• Con drenaje incontenible • CONTACTO • Duración de la enfermedad 
• Sin lesiones supuradas • ESTANDAR 
CHANCROIDE • ESTANDAR 
Chlamydia trachomatis 
• Conjuntival • ESTANDAR 
• Genital • ESTANDAR 
• Respiratoria • ESTANDAR 
Clostridium sp. 
• Clostridium botulinum • ESTANDAR 
• Clostridium difficile • CONTACTO • Duración de la enfermedad 
 
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Clostridium perfringens 
1. Enfermedad alimentaria • ESTANDAR 
1. Gangrena gaseosa • ESTANDAR 
COCCIDIODOMICOSIS 
• Lesiones drenando • ESTANDAR 
• Pulmonar • ESTANDAR 
COLITIS ASOCIADA A • ESTANDAR 
ANTIBIOTICO 
CONJUNTIVITIS 
• Bacteriana por Chlamydia • ESTANDAR 
• Gonococcica • ESTANDAR 
• Viral Aguda (hemorrágica) • CONTACTO • Duración de la enfermedad 
CITOMEGALOVIRUS Infección 
• Neonatal • ESTANDAR 
• Inmunosupresora • ESTANDAR 
CRIPTOCOCOSIS • ESTANDAR 
DENGUE • ESTANDAR 
ENDOMETRITIS • ESTANDAR 
ENTEROBIASIS • ESTANDAR 
ENTEROCOLITIS 
• C. Difficile • CONTACTO • Duración de la enfermedad 
• Necrotizante • ESTANDAR 
ENTEROVIRAL (Infección) 
• Adultos • ESTANDAR 
• Jóvenes • CONTACTO • Duración de la enfermedad 
• Niños • CONTACTO • Duración de la enfermedad 
EPIGLOTITIS (Por Haemophilus • GOTITAS • Hasta 24 hs después de terapia 
Influenzae) efectiva 
ERISIPELA (Ver Streptococos 
Grupo A) 
ESTRONGILOIDIASIS • ESTANDAR 
FORUNCULOSIS (St. Aureus) 
• Niños • CONTACTO • Duración de la enfermedad 
• Jóvenes • CONTACTO • Duración de la enfermedad 
GASTROENTEROCOLI (*) Use precauciones de contacto en 
niños con pañales o en casos de niños 
TIS(*) hasta 6 años con incontinencia y 
mientras dure la enfermedad 
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• Campylobacter sp. • ESTANDAR 
• Cólera • ESTANDAR 
• C. Difficile • CONTACTO • Duración de la enfermedad 
• Escherichia coli • ESTANDAR 
1. Con pañales • CONTACTO • Duración de la enfermedad 
1. Incontinente • CONTACTO • Duración de la enfermedad 
• Otras especies • ESTANDAR 
• Giardia lamblia • ESTANDAR 
• Rotavirus • ESTANDAR 
1. Con pañales • CONTACTO • Duración de la enfermedad 
1. Incontinente • CONTACTO • Duración de la enfermedad 
• Salmonella sp. (Incluyendo • ESTANDAR 
S. Typhi) 
• Shigella sp. • ESTANDAR 
1. Con pañales • CONTACTO • Duración de la enfermedad 
1. Incontinente • CONTACTO • Duración de la enfermedad 
 
• Vibrio parahaemolyticus • ESTANDAR 
• Yersinia enterocolítica • ESTANDAR 
GONOCOCCIA NEONATAL • ESTANDAR 
OFTALMIA 
GONORREA • ESTANDAR 
HANTAVIRUS (SINDROME • CONTACTO • Duración de la enfermedad 
PULMONAR) 
Helicobacter pylori • ESTANDAR 
HEPATITIS VIRAL (*) (*) Mantener precauciones con niños de 
hasta 3 años de edad, mientras dure la 
hospitalización; niños de 3 a 14 años 
hasta por dos semanas. 
• TIPO A • ESTANDAR 
1. Pacientes con pañales • CONTACTO • Duración de la enfermedad 
2. Pacientes incontinentes • CONTACTO • Duración de la enfermedad 
• TIPO B • ESTANDAR 
• TIPO C • ESTANDAR 
• OTRAS NO A, NO B • ESTANDAR 
• TIPO E • ESTANDAR 
• DELTA • ESTANDAR 
HERPES SIMPLE 
• Encefalitis • ESTANDAR 
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• Neonatal • CONTACTO • Duración de la enfermedad 
• Mucocutáneo: 
1. Diseminado • CONTACTO • Duración de la enfermedad 
1. Primario • CONTACTO • Duración de la enfermedad 
1. Severo • CONTACTO • Duración de la enfermedad 
• Mucocutáneo: 
1. Recurrente • ESTANDAR 
1. De piel • ESTANDAR 
1. Oral • ESTANDAR 
4. Genital • ESTANDAR 
 
HERPES ZOSTER (VARICELA 
ZOSTER) 
• Localizada en pacientes • AEREA Y 
inmunodeprimidos o CONTACTO 
diseminada. 
Personas susceptibles a la 
Varicela o con alto riesgo de 
adquirirla pueden desarrollarla 
cuando se exponen con 
pacientes con lesiones por 
Herpes Zoster y por lo tanto no 
deben entrar a la habitación ni 
proporcionar cuidados a los 
pacientes. 
• Localizada en paciente • ESTANDAR 
normal 
HISTOPLASMOSIS • ESTANDAR 
HIV INFECCION • ESTANDAR 
IMPETIGO • CONTACTO • Hasta 24 horas de iniciado el 
tratamiento 
INFLUENZA • GOTITAS • Duración de la enfermedad: 
aplicar cohortes con múltiples 
casos. Puede desarrollarse un 
programa de vacunación para 
pacientes y cuidadores. 
JACOB CREUSTZFELDT • ESTANDAR • Los instrumentos deben 
esterilizarse durante 20 minutos 
(Enfermedad vaca loca) a 134° C. 
LEGIONARIO Enfermedad de • ESTANDAR 
LEPRA • ESTANDAR 
LEPTOSPIROSIS • ESTANDAR 
LINFOGRANULOMA VENEREO • ESTANDAR 
LISTERIOSIS • ESTANDAR 
MENINGITIS 
• Aséptica (no bacteriana o • ESTANDAR 
meningitis viral) 
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• Bacteriana en neonatos, por • ESTANDAR 
Gram negativos entéricos 
• Hongos • ESTANDAR 
• Haemophilus Influenzae • GOTITAS • Hasta 24 horas después de 
terapia efectiva. 
• Listeria monocytogenes • ESTANDAR 
• Neisseria meningitidis• GOTITAS • Hasta 24 horas después de 
terapia efectiva. 
• Neumococo • ESTANDAR 
• Tuberculosis • ESTANDAR • Los pacientes deben ser 
examinados por evidencia de 
Tuberculosis Pulmonar activa. 
Si la tuvieran, aplicar medidas 
correspondientes a ese 
diagnóstico. 
• Otros diagnósticos de • ESTANDAR 
meningitis bacteriana. 
MENINGOCOCCICA Neumonía • GOTITAS • Hasta 24 horas después del 
tratamiento efectivo 
MENINGOCOCCEMIA (Sepsis • GOTITAS • Hasta 24 horas después del 
19eincubación19) tratamiento efectivo 
MONONUCLEOSIS • ESTANDAR 
MULTIRRESISTENTES A 
DROGAS GERMENES (infección o 
colonización) 
• Gastrointestinal • CONTACTO • Hasta finalizar terapia con 
ATB. Y obtener cultivo 
negativo. 
• Respiratorio • CONTACTO • Hasta finalizar terapia con 
ATB. Y obtener cultivo 
negativo. 
• Neumococcica • ESTANDAR 
• Piel, heridas, lesiones • CONTACTO • Hasta finalizar terapia con 
ATB. Y obtener cultivo 
negativo. 
MYCOBACTERIAS NO 
TUBERCULOSAS (ATIPICAS) 
• Pulmonar • ESTANDAR 
• Heridas • ESTANDAR 
Mycoplasma neumonía • GOTITAS • Duración de la enfermedad 
MUCORMYCOSIS • ESTANDAR 
NEUMONIA: 
• Adenovirus • GOTITAS Y • Duración de la enfermedad 
CONTACTO 
 
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• Bacteriana • ESTANDAR 
• Chlamydia • ESTANDAR 
• Hongos • ESTANDAR 
• Haemophilus influenzae: 
1. Adultos • ESTANDAR 
1. Niños (cualquier edad) • CONTACTO • Hasta 24 horas después de 
iniciada terapia efectiva. 
• Legionella • ESTANDAR 
• Meningococcica • GOTITAS • Hasta 24 horas después de 
iniciada terapia efectiva. 
• Multirresistentes bacterias • GOTITAS • Duración de la enfermedad 
• Mycoplasma (Neumonía • ESTANDAR 
atípica primaria) 
• Pneumocystis carinii • ESTANDAR 
• Staph. Aureus • ESTANDAR 
• Streptococcus, Grupo A: 
1. Adultos • GOTITAS • Hasta 24 horas después de 
iniciada terapia efectiva. 
1. Niños • GOTITAS • Hasta 24 horas después de 
iniciada terapia efectiva. 
• Viral • ESTANDAR 
PALUDISMO • ESTANDAR • Instalar filtros en las ventanas y 
las puertas en áreas endémicas 
PAPERAS • GOTITAS • Duración de la enfermedad 
PARAINFLUENZA VIRUS • CONTACTO • Duración de la enfermedad 
RESPIRATORIO EN NIÑOS 
PARVOVIRUS B19 • GOTITAS Duración de la enfermedad 
 
No puede compartir la habitación con un 
paciente inmunodeprimido. 
PUSTULAS DERMATITIS • ESTANDAR 
CONTAGIOSA VIRAL 
RABIA • ESTANDAR 
ROSEOLA INFANTIL • ESTANDAR 
 
Exantema súbito 
RUBEOLA • CONTACTO • Hasta 7 días de comienzo de la 
erupción. 
ROTAVIRUS Infección (ver 
gastroenteritis) 
SALMONELOSIS (ver 
gastroenteritis) 
 
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SARAMPION • AEREA • Duración de la enfermedad 
SARNA • CONTACTO • Hasta 24 horas después de 
terapia efectiva. 
 
 
SINDROME DE REYE • ESTANDAR 
Staphylococcus aureus 
• Piel, heridas, quemaduras 
1. Drenaje abundante • CONTACTO • Duración de la enfermedad 
2. Drenaje menor (contenible) • ESTANDAR 
• Enterocolitis por Staph. • CONTACTO • Duración de la enfermedad 
Multirresistente 
• Neumonía • ESTANDAR 
SINDROME DE SHOCK TOXICO • ESTANDAR 
(St. Aureus) 
Streptococcus (GRUPO B) • ESTANDAR 
 
• Enfermedad estreptococcica 
 Neonatal por Strep. B 
 
Streptococcus (GRUPO A) 
• Piel, heridas, quemaduras 
1.Drenaje abundante • CONTACTO • Hasta 24 horas después de 
iniciada la terapia efectiva 
2.Drenaje menor (contenible) • ESTANDAR 
• Endometritis • ESTANDAR 
• Faringitis y neumonía en • GOTITAS • Hasta 24 horas después de 
niños iniciada la terapia efectiva. 
• Fiebre escarlatina • GOTITAS • Hasta 24 horas después de 
iniciada la terapia efectiva. 
TETANOS • ESTANDAR 
TIÑA (Infección por hongos, • ESTANDAR 
dermatomicosis) 
TOXOPLASMOSIS • ESTANDAR 
TUBERCULOSIS 
• Drenaje de lesiones • ESTANDAR • El paciente debe ser examinado 
extrapulmonar, incluido en búsqueda de TBC pulmonar 
escrófula. activa. 
• Extrapulmonar, meningitis • ESTANDAR 
• Pulmonar confirmado o • AEREA • Suspender las precauciones 
sospechosa de enfermedad solamente cuando el paciente 
laríngea con TBC, está recibiendo una 
terapia efectiva, tiene mejoría 
 
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clínica y se han obtenido 3 
cultivos seguidos de esputo en 
diferentes días 
• Test positivo de piel, sin • ESTANDAR 
evidencia de enfermedad 
pulmonar. 
TIFUS ENDEMICO Y EPIDEMICO • ESTANDAR 
TIFOIDEA (Ver gastroenteritis) 
TOS CONVULSA • GOTITAS • Mantener las precauciones 
hasta 5 días después que el 
paciente recibe terapia efectiva. 
URINARIA INFECCION (Incluida • ESTANDAR 
pielonefritis, con o sin catéter 
urinario) 
VARICELA • AEREA • Mantener las precauciones 
hasta que todas las lesiones 
formen costra. 
VIRUS SINCICIAL • CONTACTO • Duración de la enfermedad 
RESPIRATORIO 
 
HIGIENE DE MANOS 
 
INTRODUCCIÓN 
 
La higiene de manos debe ser un hábito para los trabajadores del área de la salud y el 
contralor de su adhesión es un desafío para los Comités de Infecciones. 
 
Es la medida más simple y la más efectiva para prevenir la infección hospitalaria. 
 
DEFINICIÓN DE TERMINOS 
 
• Higiene de manos: Término general que se aplica a: lavado de manos, lavado 
 antiséptico, fricción de manos con antiséptico y antisepsia quirúrgica de manos. 
• Lavado de manos: Lavado con detergente (jabón) común (sin antimicrobiano) 
 y agua. 
• Lavado de manos antiséptico: Lavado con agua y un detergente (jabón) 
 conteniendo un agente antiséptico. 
• Antisepsia de manos: Se refiere al lavado de manos antiséptico o a la fricción 
 de manos con antiséptico (uso de alcohol gel) 
• Antisepsia quirúrgica de manos: Se refiere al lavado de manos antiséptico o 
 fricción de manos antiséptica, realizado por el personal del equipo quirúrgico 
 para eliminar la flora transitoria y reducir la flora residente. El antiséptico debe 
 tener actividad antimicrobiana persistente o residual. 
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• Actividad antimicrobiana persistente o residual: Prolongada actividad 
 antimicrobiana que previene o inhibe la proliferación o sobrevida de 
 microorganismos después de la aplicación del producto. 
 
 
 
RECOMENDACIONES: Sus 5 momentos para la higiene de las manos 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
Indicaciones para lavado de manos y antisepsia de manos. 
A. Cuando las manos están visiblemente sucias o contaminadas con 
material proteináceo o están visiblemente sucias con sangre u otros fluidos 
corporales, lavar las manos con jabón no antimicrobiano y agua, o jabón 
antimicrobiano y agua. (IA) 
B. Si las manos no están visiblemente sucias usar un gel-alcohólico 
para la descontaminación rutinaria de las manos. (IA) 
 
Técnica de higiene de manos 
 
A. Cuando se descontaminen las manos con un alcohol gel, aplicar el producto en 
 la palma de una mano y frotar las manos juntas, cubriendo todas las superficies 
 de la mano y dedos, hasta que las manos estén secas 
B. Seguir las recomendaciones del fabricante en cuanto a la cantidad del producto a 
 usar. 
C. Cuando se lavan las manos con jabón y agua, se las debe humedecer primero 
 con agua, aplicar una cantidad del producto recomendado por el fabricante y 
 frotarlas una contra otra vigorosamente al menos 15 segundos, cubriendo todas 
 las superficies de manos y dedos. Enjuagar con agua y secar cuidadosamente 
 con una toalla descartable 
 
Usar una toalla para cerrar la canilla (IB) 
 
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Evitar el uso de agua caliente porque repetidas exposiciones a ésta pueden 
incrementar el riesgo de dermatitis (IB) 
 
D.Son aceptables presentaciones de jabón en forma líquida.(II) 
E. No se recomienda usar toallas de tela en el área de la salud (II) 
 
Antisepsia quirúrgica de manos 
A. Remover los anillos, relojes y brazaletes antes de comenzar el lavado de manos 
 quirúrgico (II) 
B. Remover la suciedad ubicada debajo de las uñas con un limpiador de uñas y bajoel chorro de agua (II) 
C. Se recomienda antisepsia quirúrgica de manos usando un jabón antimicrobiano o 
 alcohol gel con actividad persistente antes de colocarse los guantes estériles 
 cuando realizará un procedimiento quirúrgico (IB) 
D. Cuando se realiza antisepsia de manos quirúrgica usando un jabón 
 
antimicrobiano, fricción de las manos y antebrazos por el tiempo recomendado por 
el fabricante (usualmente 2-5 minutos). Largos tiempos de fricción (ej. 10 minutos), 
no son necesarios (IB) 
 
E. Cuando use un alcohol gel con actividad persistente, seguir las instrucciones del 
 fabricante. Antes de aplicar la solución de alcohol, prelavar las manos y 
 antebrazos con un jabón no antimicrobiano, luego secar completamente. 
F. Después aplicar el producto basado en alcohol como se recomienda, por un 
mínimo de 5 minutos, permitiendo que las manos y antebrazos sequen antes de 
colocar los guantes (IB) 
 
Agentes para higiene de manos 
 
No agregar jabón a dispensadores parcialmente vacíos. Esta práctica de rellenar 
puede llevar a la contaminación bacteriana del jabón. (IA) 
 
Diariamente vaciar e higienizar el recipiente que contiene el jabón de manos 
 
 
 
Cuidado de la piel 
 
Los trabajadores podrán usar lociones o cremas para minimizar la ocurrencia de 
dermatitis irritativa de contacto asociada con antisepsia de manos o lavado de 
manos (IA) 
 
Otros aspectos de la higiene de manos 
 
A. No usar uñas artificiales o extensiones, cuando se tiene contacto directo con 
 pacientes (1A) 
B. Mantener las uñas naturales cortas. (II) 
C. Usar guantes cuando pueda ocurrir contacto con sangre u otros materiales 
 potencialmente infectantes, membranas mucosas o piel no intacta. (IC) 
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D. Remover los guantes después del cuidado al paciente. No usar el mismo par de 
 guantes para el cuidado de más de un paciente y no lavar los guantes entre usos 
 con diferentes pacientes (IB) 
E. Cambiar los guantes durante el cuidado de un paciente si se mueve desde un 
 sitio del cuerpo contaminado a un sitio corporal limpio (II) 
F. No hay recomendación respecto al uso de anillos en el área de la salud. (SR) 
 
 
PREVENCION DE LAS INFECCIONES 
RELACIONADAS A DISPOSITIVOS 
 INTRAVASCULARES 
 
 
 
INTRODUCCIÓN 
La utilización de catéteres intravasculares con fines diagnósticos o terapéuticos es cada vez 
mas frecuente. Los catéteres venosos centrales (CVC), son el origen del 90% de las 
bacteriemias de origen hospitalario. 
 
 
 
PATOGENIA 
 
Los microorganismos responsables son aquellos cuyo hábitat natural es la piel. La 
colonización desde la superficie cutánea del paciente o por colonización exógena de la piel a 
través de las manos del personal de la salud, permite que los mismos migren por la superficie 
externa y alcancen la punta del catéter y la superficie intravascular a través de la fibrina que se 
constituye tras la inserción del mismo. Conocida como vía 
extraluminal, es el mecanismo responsable en el 70-90% de los casos, en especial en los 
primeros diez días de insertado el catéter. 
La colonización endoluminal ocurre cuando las bacterias acceden por el interior del catéter 
desde las conexiones del mismo, favorecido por la manipulación del personal, está involucrada 
en el 10-50% de los casos. Es el mecanismo principal en catéteres utilizados para la 
alimentación parenteral, sobre todo cuando se utilizan infusiones con lípidos y en especial en 
aquellos cuya utilización excede los diez días, lo cual supone una mayor manipulación de 
llaves y rampas. 
La capa de fibrina que recubre al catéter puede colonizarse por vía hematógena (3-10% de los 
casos) por bacteriemia desde un foco distante de infección. 
El uso de fluidos contaminados es una causa muy poco frecuente de infección asociada a 
catéteres: menos del 3% de los casos. 
Los catéteres de polivinilo y de polietileno son más trombogénicos y favorecen más la 
adherencia de los microorganismos que los de teflón, poliuretano o silicona. 
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La predisposición a la adherencia de ciertos microorganismos es otro aspecto bien 
conocido en particular para Staphylococcus aureus, Estafilococos coagulasa negativos, 
Cándida albicans los que en presencia de soluciones con glucosa adquieren dicha 
propiedad. 
 
DEFINICIONES: 
 
• CONTAMINACIÓN DEL CATÉTER: recuento inferior a 15 unidades 
 formadoras de colonias (ufc) en el cultivo de la punta, utilizando la técnica 
 cuantitativa descrita por Maki. 
• COLONIZACIÓN DEL CATÉTER: recuento significativo mediante una 
 técnica cuantitativa o un recuento igual o mayor de 15 ufc por técnica 
 semicuantitativa en la punta del catéter o en la conexión sin que existan signos 
 clínicos de infección en el punto de entrada del acceso vascular ni signos 
 clínicos de sepsis. 
 
• INFECCIÓN DEL SITIO DE ENTRADA: 
 
- Clínicamente documentada: signos locales de infección, eritema, dolor, edema y 
purulencia dentro de los 2 cm. Del sitio de entrada del catéter. 
 
 
- Microbiologicamente documentada: signos locales de infección en el punto de entrada del 
catéter más un cultivo positivo del punto de entrada del catéter, pero sin bacteriemia 
concomitante. 
• FLEBITIS: induración o eritema con calor y dolor en el punto de entrada y/o en 
 el trayecto del catéter. 
• INFECCIÓN DEL TÚNEL: signos inflamatorios a nivel del trayecto 
 subcutáneo del catéter a más de 2 cm. del sitio de salida. 
 
 
 
BACTERIEMIA RELACIONADA AL CATÉTER: se pueden diferenciar cuatro 
situaciones: 
 
1. Bacteriemia o fungemia relacionada con el catéter (diagnóstico tras la 
retirada del mismo): aislamiento del mismo microorganismo (especie e 
idéntico antibiograma) en el hemocultivo extraído de una vena periférica y en un cultivo 
cuantitativo o semicuantitativo de la punta del catéter en un paciente con cuadro clínico 
de sepsis y sin otro foco aparente de infección. En el caso del estafilococo coagulasa 
negativo se exigirá el aislamiento del microorganismo en al menos dos frascos de 
hemocultivos periféricos. Un solo hemocultivo con este microorganismo puede 
considerarse contaminación. 
2. Bacteriemia o fungemia relacionada con el catéter (diagnóstico sin retirada 
 del catéter): cuadro clínico de sepsis sin otro foco aparente de infección, en el 
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que se aísla el mismo microorganismo en hemocultivos simultáneos 
cuantitativos en una proporción superior o igual a 5:1 en las muestras extraídas a 
través del catéter respecto a las obtenidas por punción venosa periférica o una 
diferencia mayor de 120 minutos en el tiempo de detección entre el hemocultivo 
extraído por el catéter y por una vena periférica (sistemas automatizados). 
 
3. Bacteriemia probablemente relacionada con catéter, en ausencia de cultivo 
 de catéter: cuadro clínico de sepsis, sin otro foco aparente de infección, con 
 hemocultivo positivo, en el que desaparece la sintomatología a las 48 horas de la 
 retirada de la línea venosa y sin tratamiento antibiótico eficaz frente al 
 microorganismo aislado. 
 
4. Bacteriemia o fungemia relacionada con los líquidos de infusión: cuadro 
 clínico de sepsis, sin otro foco de infección, con aislamiento del mismo 
 microorganismo en el líquido de infusión y en el hemocultivo extraído por vía 
 percutánea. 
 
COMPLICACIONES 
• Sepsis relacionada al catéter: se define por la asociación de disfunción de uno 
 o varios órganos junto con un recuento significativo mediante una técnica 
 cuantitativa o un recuento igual o mayor de 15 ufc por técnica semi cuantitativa 
 en la punta del catéter o en la conexión. 
• Tromboflebitis: es una inflamación de la pared de la vena (pudiendo llegar a la 
 supuración) frecuentemente asociada a trombosis venosa y a bacteriemia. 
 
RECOMENDACIONES 
 
Educación y entrenamiento del EQUIPO DE SALUD.- 
 
Hay que educar a los médicos y enfermeros sobre las normas para colocacióny uso de los 
catéteres venosos, procedimiento de inserción y mantenimiento. Las medidas de control de 
infecciones deben de ser conocidas en detalle por todo el equipo de salud para prevenir las 
infecciones relacionadas al catéter. (IA) 
 
Vigilancia de infecciones relacionadas al catéter. (IRC). 
 
• Palpar el sitio de inserción a través de la curación para ver si hay signos de 
 flebitis como son inflamación y/o dolor (IB). 
 
• Inspeccionar visualmente el sitio de inserción cada vez que se cambia la 
curación a los efectos de evaluar si el paciente tiene inflamación o signos de 
infección (IB). 
 
• En los catéteres centrales no realizar en forma rutinaria cultivos de vigilancia de 
catéter o del paciente a menos que halla signos y síntomas de infección (IB). 
 
Higiene de manos: 
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Lavar las manos con agua y jabón o usar alcohol gel (según las recomendaciones que se 
establecen en esta guía) antes y después de manipular el catéter, las conexiones o la 
curación. (IA). 
 
Precauciones de barrera durante la colocación de los catéteres: 
a- Colocarse guantes siempre que se inserta un catéter central, periférico o arterial. 
 (Precauciones estándares) (IB). 
b- Se deben de colocar guantes siempre que se cambia la curación de un acceso venoso. 
(IB). 
c- Los guantes usados para el cambio de curación o colocación de catéteres periféricos 
pueden ser limpios, no estériles (II). 
NORMAS PARA LOS CATÉTERES VENOSOS CENTRALES (CVC) 
Selección del catéter. 
a- Es recomendable cuando está indicado el uso de un catéter venoso central, insertarlo por 
punción periférica. (IA) 
b- Es preferible usar catéteres de luz única a menos que sea indispensable uno de 
múltiples luces para el tratamiento del paciente (IB). 
 
Selección del sitio de inserción. 
 
a- La vena subclavia es el lugar de preferencia. La vena yugular y la femoral son 
alternativas válidas pero con mayor riesgo de infección (IA). 
 
b- Se debe de evitar la inserción en una zona próxima a fuentes de infección. 
 
c- La tunelización del catéter no está indicada ya que no ha demostrado menor riesgo de 
infección. (II) 
PAQUETE DE MEDIDAS PARA LA PREVENCIÓN DE BACTERIEMIAS 
 VINCULADAS A CVC 
 
MEDIDAS PARA LA INSERCIÓN 
Higiene de manos 
Uso de medidas de máxima barrera 
Limpieza y desinfección de la piel con 
clorhexidina jabonosa y alcohólica 
 
Evitar acceso femoral 
 
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MEDIDAS DE MANTENIMIENTO 
Higiene de manos 
Manipulación higiénica del catéter 
Desinfección de la piel con clorhexidina 
alcohólica al 2% al curar cada 48 hs. y 
retirar el catéter 
Retirar vías innecesarias 
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MEDIDAS DE MAXIMA BARRERA: 
 
• Para la inserción de catéteres venosos centrales (incluidos los de inserción 
periférica) y catéteres arteriales se deben utilizar medidas de máxima barrera 
(mascarilla, gorro, bata, campos o sábanas estériles, y guantes estériles). (IA) 
 
• Las personas ayudantes a la inserción deben cumplir las medidas anteriores y 
las colaboradoras con el profesional que está realizando la técnica deben 
colocarse, como mínimo, gorro y mascarilla. 
 
• El campo estéril debe cubrir todo el paciente 
 
• La conducta “quirúrgica” de los operadores es esencial, limitando al mínimo el 
número de operadores (IA). 
 
• No se recomienda el uso de solventes orgánicos (IA). 
 
• La fijación del catéter debe ser suficientemente firme para evitar la salida 
accidental del catéter y su movilización en el sitio de inserción. Hay que evitar 
que los puntos de fijación impidan la inspección visual del punto de inserción. 
• Una vez colocado el catéter se cubrirá con gasas estériles, se deben de evitar las 
curaciones voluminosas que dificulten la palpación. 
 
• No está indicado el uso de polvos o pomadas con antibióticos en la curación. 
(IB). 
Cuidados del sitio de inserción del catéter y prevención de la infección 
extraluminal. 
• Visualizar por rutina cada 24 hs. El sitio de inserción. El momento oportuno es 
 cuando finaliza el baño del paciente. Se realizará el cambio de la curación según 
 lo establecido en estas guías. 
 
Anotar en la historia clínica en la planilla correspondiente: 
 
• Fecha de colocación. 
• Sitio de inserción de la vía 
 
• Fecha en que se realiza la curación. 
 
• Condiciones del sitio de inserción: si presenta exudado, si tiene purulencia 
 
• Comunicar al médico cualquier complicación. 
 
Las unidades de Cuidados Intensivos e Intermedios usaran la planilla, que está diseñada 
para ello y los sectores convencionales harán los registros en la hoja de Indicaciones de 
Enfermería. 
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• Cambiar la curación si exuda, si el paciente transpira profusamente o si se 
ensucia con fluidos. (IB) 
 
• No se recomienda el uso de ungüentos u otras aplicaciones locales de 
antibióticos en el sitio de inserción. (IB) 
 
• No se recomienda el uso de los catéteres de alimentación parenteral para la 
administración de otros fluidos o extracción de sangre. (IB) 
 
• Si el catéter es de más de una luz, se debe de seleccionar una exclusivamente 
para la administración de la alimentación parenteral. (IC) 
 
• La retirada del catéter deberá ser lo antes posible. (IA) 
 
• No se realizará de rutina cultivo de la punta del catéter si no hay sospecha de 
infección. (IB) 
 
• No está indicado cambiar los catéteres venosos centrales en forma rutinaria para 
prevenir las infecciones asociadas a los mismos. (IA) 
 
• Cuando la inserción se hace en una situación de emergencia o no se ha podido 
asegurar una técnica estéril, se recomienda cambiar el catéter e implantar otro en otro 
sitio, de preferencia dentro de las primeras 24 horas. 
 
• No se recomienda el recambio del catéter bajo cuerda, a menos que sea 
necesario cambiarlo por mal funcionamiento y no haya sospecha de infección. 
(IB) 
 
• Si se sospecha infección relacionada al catéter y hay evidencias de infección 
local (inflamación, rubor o purulencia) hay que retirar el mismo, enviar la punta al 
laboratorio para cultivo y colocar un nuevo catéter en otro sitio. (IB) 
 
Prevención de la colonización de las conexiones y de la infección intraluminal. 
 
a. Deben de utilizarse el mínimo de conexiones posibles. 
b. Manipular las conexiones lo mínimo necesario. 
c. Aplicar alcohol gel en las manos antes de manipular las conexiones. (IA) 
d. Desinfectar las conexiones con alcohol al 70% antes de usarlas. (IA) 
e. Las conexiones que no estén en uso deben permanecer cerradas y 
 tapadas. (IB) 
f. Cambiar las tubuladuras de las bombas de infusión, las llaves de tres vías 
 y otros conectores cada 72 horas y cada vez que se reemplaza el catéter. 
g. No deben de usarse soluciones en paralelo con una aguja cómo conector 
 y por ningún motivo se debe de colocar una aguja para puncionar el 
 recipiente del fluido que se infunde. (IA) 
h. Las tubuladuras usadas para pasar sangre o sus derivados deben de 
 retirarse una vez que han sido usadas. (IB) 
i. Las emulsiones de lípidos deben de pasarse dentro de las 12 hs. De 
 iniciada su infusión y luego deben descartarse las tubuladuras. 
 
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j. Cambiar las tubuladuras usadas para la infusión de propofol dentro de las 
6 y hasta las 12 hs. De iniciado su uso. (IA) 
 
Prevención de la infección relacionada con los líquidos de infusión. 
a- Controlar los recipientes de fluidos parenterales observando si hay turbidez, roturas o 
presencia de partículas extrañas y controlar la fecha de vencimiento. (IA) 
 
b- En lo posible usar aditivos y/o medicación de dosis única. (II) 
 
c- Si se utilizan multidosis y están contenidas en ampollas éstas deben desecharse. (IA) 
 
d- Si las multidosis están envasadas en frasco ampolla, se deberá de limpiar el tapón de goma 
con alcohol al 70% cada vez que se vaya a utilizar. (IA) 
e- Utilizar elementos estériles cada vez que se accede a un frascode multidosis, 
evitando la contaminación antes de puncionar el tapón de goma. (IA) 
f- Descartar los frascos de multidosis ante la sospecha de contaminación o cuando 
alcanzó la fecha de vencimiento. (IA) 
g- Completar la infusión de las soluciones de lípidos en un período no mayor a 12hs. 
(IB) 
h- Completar la infusión de sangre o derivados en 4 hs. 
Retiro de catéter 
• Supuración de la puerta de entrada. 
• Fiebre más inflamación en el sitio de inserción, sin otro foco evidente. 
• Fiebre sin signos inflamatorios en el sitio de inserción, ni existencia de otro foco 
 que la explique, en paciente portador de cardiopatía valvular, prótesis valvular o 
 vascular y/o inmunocomprometido. 
• Fiebre inexplicada en paciente de CTI. 
• Fiebre, más bacteriemia con o sin compromiso inflamatorio del sitio de 
 inserción, sin otro foco que lo explique. 
 
No retiro de catéter 
 
• Acceso venoso difícil. 
• Ausencia de capital venoso accesible. 
• Alto riesgo de complicación mecánica. 
• Diátesis hemorrágica. 
• En las situaciones en las cuales la probabilidad de que el foco sea el catéter sea 
 baja. 
 
PREPARACIÓN DE MEDICACION DE USO INTRAVENOSO. 
 
1 - Preparación del lugar físico: 
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a. Limpiar la mesada de la enfermería antes de comenzar a realizar la 
 preparación de la medicación con el alcohol al 70%. 
b. Utilizar la zona de la mesada que esté más alejada de la pileta de lavado 
 de manos. 
c. Limpiar la bandeja a utilizar con alcohol al 70% 
 
2- Técnica de preparación: 
a) Lavado de manos. 
 
b) Leer la tarjeta donde consta la medicación a administrar (observar que no esté 
vencida, que no haya turbidez, o partículas extrañas) 
 
c) Realizar la desinfección de los tapones de los medicamentos y/o sachets de sueros con 
torundas embebidas con alcohol al 70%. 
d) Los sachets de sueros se cortarán con tijera previamente desinfectada con alcohol al 
 70%, cada vez que se realice el corte. 
e) Preparar la medicación según la indicación. 
f) Corroborar lo indicado al paciente con los datos que están en la tarjeta de 
medicación. 
Mientras realiza la preparación de la medicación EVITE: toser y/o estornudar en el área de 
preparación de la medicación. 
 
ADMINISTRACIÓN DE LA MEDICACION INTRAVENOSA 
• Corroborar que la medicación preparada corresponda al paciente, verificando 
 nombre, habitación y N° de cama. 
 
• Colocar la bandeja con la medicación en un lugar limpio, puede ser la mesa 
 de luz o mesa de comer del paciente, verificando que estos lugares estén en 
 buenas condiciones de higiene. NUNCA APOYAR LA BANDEJA EN LA 
 CAMA 
• Retirar el tapón de la llave triple vía, sacar la jeringa de su envoltorio y colocar 
 el tapón en la envoltura de la jeringa teniendo precaución de mantener la 
 asepsia. 
 
• Colocar la jeringa en la llave de tres vías. 
 
• Si es una vía venosa periférica corroborar que la vía esté permeable: aspirando y 
 observando que venga sangre. 
 
 
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• Inyectar el medicamento a infundir en forma lenta controlando la aparición de 
 complicaciones, como: infiltración, ardor, dolor, enrojecimiento en la zona, etc. 
• Si la administración de la medicación se hace por vía periférica, lavar la vena 
 con 10cc de S. Fisiológico para preservar la permeabilidad de la vía. 
 
• Cerrar la llave y colocar el tapón. 
 
• Colocar el material usado en la bandeja y retirarla de la habitación 
 
• Lavado de manos. 
 
• Registro en la historia clínica de la medicación administrada. 
 
 
 
RECUERDE: Es importante que el equipo de salud, se preocupe por preservar el 
sistema venoso de los pacientes, las medicaciones agresivas, deben de usarse en 
dilución. 
 
 
 
RECOMENDACIONES ADICIONALES PARA CATETERES 
 
Recomendaciones para prevenir la infección relacionada con los sistemas de 
monitorización de la presión. Catéter arterial y Swan-Ganz 
 
α. Se recomienda que los dispositivos utilizados para monitorizar la presión sean 
 descartables. (IB) 
β. Si no es posible que sean descartables, deben ser esterilizados de acuerdo a las 
 instrucciones del fabricante. 
χ. Se deben mantener estériles todos los elementos del sistema de monitorización. 
 (IA) 
δ. Se recomienda cambiar todo el sistema de monitorización, (sea descartable o 
 esterilizado) y las tubuladuras cada 96 horas. (IB) 
ε. Se recomienda manipular el sistema lo estrictamente necesario y usar un sistema 
 cerrado de flujo continuo para el lavado. (II) 
φ. No administrar ningún tipo de soluciones terapéuticas o medicación a través del 
 mismo. (IA) 
γ. No se recomienda remplazar de rutina los catéteres arteriales. (II) 
η. El catéter de Swan-Ganz debe retirarse lo antes posible y nunca debe 
 permanecer más de 5 días. (IB) 
 
CATÉTER UMBILICAL. 
 Reemplazo del catéter 
 
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a. Se recomienda mantener el catéter umbilical un máximo de 7 días. (II) 
b. No hay recomendación sobre la remoción o cambio del catéter venoso umbilical 
 cuando el paciente tiene fiebre sin causa aparente. (SR) 
 
Cuidados del sitio de inserción 
a. Se debe realizar la desinfección del sitio de inserción con solución alcohólica de 
 gluconato de clorhexidina. (IB) 
b. No se recomienda la aplicación rutinaria de antimicrobianos en el sitio de 
 inserción del catéter. (SR) 
 
 
CATETERES PARA HEMODIALISIS 
 
INTRODUCCIÓN. 
 
Los catéteres doble luz, constituyen al igual que otros dispositivos invasivos un factor de 
riesgo para la infección hospitalaria. 
Según la NKF K/DOQI Clinical Practice Guidelines for Vascular Access. 2006, la 
Densidad de Incidencia de bacteriemia relacionada al catéter para diálisis es de: 
 
• 4- 6 episodios de infección por cada 1000 catéteres - día (SIN CUFF) 
 
• 1-5 episodios de infección por cada 1000 catéteres - día (CON CUFF) 
 
• 8 episodios de infección por cada 1000 catéteres - día en FEMORALES 
 
 
INDICACIONES DE TIPO DE CATÉTERES PARA HEMODIALISIS 
 
1. POLIURETANO 
• Hemodiálisis de Urgencia 
• Disfunción multiorgánica 
• Injuria Renal aguda (requerimiento HD <2 semanas) 
 
2. CDL NO TUNELIZADO SIN CUFF 
• Requerimiento dialítico > 2 semanas y < 3 semanas en paciente no infectado (IB 
CDC 2002) 
• Situaciones especiales 
 
3. CDL TUNELIZADO CON CUFF 
• Simultáneo con la realización del angioacceso definitivo 
 
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• Enfermedad Renal Crónica sin posibilidad de otro angioacceso 
 
• Si se requiere diálisis por más de 3 semanas (IB CDC 2002) 
 
 
 
COMPLICACIONES INFECCIOSAS 
 
Aparición 
 
• Primeras 2 semanas luego de la colocación. 
• Después de 2 semanas de colocado. 
 
Localización de la Infección 
 
• Sitio de salida del catéter 
• Túnel subcutáneo 
• Bacteriemia 
• Metastásicas (Endocarditis, abscesos) 
 
BACTERIEMIA RELACIONADA A CATÉTER EN PACIENTE EN 
 HEMODIÁLISIS 
 
 
Diagnóstico: 
• Hemocultivos positivos de catéter y de vena periférica con un conteo al menos 5 
 veces mayor en la muestra obtenida del catéter. 
• Puede no haber diferencias en el conteo de colonias entre las dos muestras si son 
 extraídas intra diálisis. 
• Una definición más práctica es la presencia de hemocultivos positivos en un 
 paciente febril con catéter colocado en ausencia de otros focos infecciosos 
 clínicos. 
 
• Hemocultivos positivos de catéter o periférico + punta de catéter (+) al mismo 
 germen. 
 
NORMAS DE ACTUACIÓN 
 
• Los catéteres no tunelizados se asocian con mayores tasas de complicaciones, 
por lo que su uso se reservará para períodos de tiempo previstos inferiores a tres 
semanas.(B) 
 
• La longitud será la menor posible, para maximizar el flujo obtenido. Se 
recomiendan tramos intravasculares de 15 cm en yugular derecha, 20 cm en 
yugular izquierda, y de 20 a 25 cm en femorales.(B) 
 
2ª edición Página 35• El calibre será suficiente para garantizar un flujo adecuado para la HD. En 
catéteres de doble luz para adultos se recomiendan 11 ó 12 French para no 
tunelizados y de 13 a 15 French para tunelizados.(B) 
• La sustitución rutinaria de los catéteres no tunelizados no previene las 
infecciones del catéter ni del orificio cutáneo.(A) 
 
• Los catéteres no tunelizados en femorales han de ser retirados antes de los 7 
días. No es recomendable el cambio con guía metálica en el mismo punto.(A) 
 
• El catéter debe ser retirado inmediatamente si existe shock séptico, bacteriemia 
con descompensación hemodinámica o infección del túnel con fiebre.(B) 
 
• Ante la aparición de fiebre en un paciente portador de CVC, deben extraerse 
hemocultivos de sangre periférica y de ambas ramas del catéter. Las 
extracciones deben ser simultáneas y cultivarse mediante técnicas cuantitativas si es 
posible.(B) 
 
• En los casos de infección grave o cuando no se retira el catéter, ha de iniciarse 
antibioticoterapia empírica a la espera de resultados microbiológicos.(B) 
 
• El tratamiento conservador sin retirada del catéter es aceptable en catéteres 
tunelizados infectados por microorganismos habituales. Ha de usarse 
antibioticoterapia sistémica asociada a sellado intraluminal del catéter con 
antibióticos adecuados. El sellado intraluminal con antibióticos no asociado a terapia 
sistémica no es efectivo. (B) 
RECOMENDACIONES PARA PREVENIR LA INFECCIÓN POR CATÉTER 
 PARA HEMODIALISIS 
 
Preoperatorio: 
 
• De ser posible el usuario debe realizarse baño en ducha, lavado de cabello con 
 jabón líquido con antiséptico. 
• Si el usuario se encuentra en cama, imposibilitado del baño de ducha, se debe 
 realizar baño en cama con igual producto. 
• Se deben retirar vías venosas transitorias. 
 
 
 
Colocación del catéter. 
 
• Se debe tener las “Máximas precauciones de barrera”, (ver página 23) 
• Mantener técnica aséptica. 
 
Curación del sitio de salida del catéter 
• Lavado de manos. 
 
 
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• El operador usará precauciones de barrera (gorro, sobretúnica, tapaboca y 
 guantes estériles) 
• Colocar al paciente gorro y tapaboca. 
• Delimitar el área operativa colocando un campo estéril. 
• Curar con técnica aséptica. 
• La curación se debe realizar con solución de gluconato de clorhexidina 
 alcohólica al 0.5 %. 
• La curación debe ocluir totalmente el catéter. 
• Se debe realizar curación de las ramas por separado. 
• NUNCA COLOCAR CINTA DE FIJACIÓN DIRECTAMENTE SOBRE EL 
 CATETER 
• Al realizar higiene del usuario, se deben tomar las precauciones necesarias a los 
 efectos de evitar que la curación se moje. Cubrir con elemento impermeable la 
 zona de inserción del catéter. Si se humedece la curación se debe cambiar de 
 forma inmediata. 
RECOMENDACIONES BÁSICAS PARA PREVENIR LA INFECCIÓN POR 
 CATÉTER PERIFÉRICO. 
 
1. Higiene de manos. 
2. Mantener la asepsia durante la colocación del catéter. 
3. Antisepsia cutánea con alcohol al 70%. 
4. Lavado de la vena luego de la administración de los medicamentos. 
5. Revisión diaria de la necesidad de mantener el catéter, y retirada de las vías 
 innecesarias. 
EN TODO ACCESO VASCULAR: 
 
Debe reducirse al mínimo imprescindible la manipulación de conexiones y limpiar los 
puntos de inyección del catéter con alcohol 70º antes de acceder con ellos al 
sistema venoso. 
Previo a la manipulación de conexiones realizar higiene de manos y colocación de 
guante. Categoría IA 
 
 
 
 
 
 
GUIA PARA LA PREVENCIÓN DE LA NEUMONIA 
 ASOCIADA A VENTILACIÓN MECANICA 
 
INTRODUCCION 
 
 
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La neumonía asociada a ventilación (NAV) es la que se desarrolla en pacientes durante la 
asistencia respiratoria mecánica (ARM), luego de 48 horas de intubación. 
 
Según una encuesta de Prevalencia realizada en nuestro país con una participación del 
85.5% de todas las unidades de medicina intensiva, la infección nosocomial complica el 
21.1% de los ingresos a CTI y la NAV representa el 36% del total; se presenta en el 
29.7% de los ventilados de mas de 24 horas y tiene una densidad de incidencia de 39 
episodios por 1000 días de ventilación mecánica. 
La mortalidad oscila entre 30-70% según los autores, la mortalidad atribuible (muertes 
que podrían haberse evitado si no se hubiera desarrollado la NAV) es un tema 
controvertido. En varios estudios osciló entre un 21-33%, demostrando que aquellos que 
requieren ARM y desarrollan NAV, tienen un riesgo de morir de 2 a 2,5 veces mayor 
que los controles, otros autores no encontraron mortalidad atribuible y se postula que la 
mortalidad está relacionada con el patógeno responsable, las defensas del huésped y la 
antibioticoterapia apropiada. 
 
RECOMENDACIONES 
ESTERILIZACION, DESINFECCIÓN Y MANTENIMIENTO DE EQUIPOS 
 Medidas generales 
α. Lavar los equipos antes de ser esterilizados o desinfectados. (IA) 
β. Para reutilizar material semi-crítico, se deberá esterilizar o aplicar desinfección 
 de alto nivel 
χ. Para equipos sensibles al calor y la humedad, usar métodos de esterilización a 
 baja temperatura. (IA) 
δ. Cuando hay que enjuagar el material semi-crítico después de aplicar 
 desinfección de alto nivel, hacerlo con agua estéril. (IB) 
ε. Material semi-crítico: es aquel que entra en contacto directo o indirecto con la 
 mucosa del tracto respiratorio. 
Comprende: máscara, tubo orotraqueal, ambú, humidificadores, circuitos del respirador, 
broncoscopio, palas de laringoscopio, pieza bucal de aparatos de medidas respiratorias, 
nebulizadores, catéter nasal, tubo de mayo, sonda de aspiración. 
 
Aparatos de ARM. 
No esterilizar o desinfectar la maquinaria interna. (II) 
 Tubuladuras del respirador. 
• No cambiarlas de rutina, salvo que estén sucias o funcionado mal. (IA) 
• Evitar la condensación en las tubuladuras y si se produce drenar el líquido 
 condensado hacia el respirador no hacia el paciente. (IB) 
• Usar guantes para manipular las tubuladuras y los fluidos. (IB) 
• Higiene de manos con agua y jabón si están sucias o alcohol gel antes del 
 procedimiento anterior o para manipular fluidos. (IA) 
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Humidificadores e Intercambiadores de calor y humedad (ICH) 
• Se pueden usar cualquiera de los dos. (IB) 
• Usar agua estéril para los humidificadores. (IA) 
• No está indicado el cambio de rutina de los ICH, se realiza cuando están sucios 
 o funcionado mal. (II) 
 
Equipos de oxigenoterapia 
La máscara y las conexiones se cambian si están sucias o funcionando mal. (II) 
 Nebulizadores 
α. Entre uso y reuso en un mismo paciente, limpiarlo, desinfectarlo, enjuagarlo con 
 agua estéril y secarlo. (IB) 
β. Usar solo fluidos estériles y colocarlos en forma aséptica. (IA) 
χ. Utilizar frascos de dosis única, cuando esto no es posible seguir las indicaciones 
 de la farmacia para manipular, almacenar y administrar la medicación. (IB) 
 
Otros instrumentos utilizados en terapia respiratoria. 
 
a. Ambú 
 
• Esterilización o desinfección de alto nivel. (IB) 
• No hay recomendaciones sobre la frecuencia con que se deben cambiar los 
 filtros. (SR) 
 
Equipos de medir la función pulmonar. 
• No esterilizar o desinfectar la máquina de rutina entre un paciente y otro. (II) 
• Cambiar la pieza de la boca o el pico flujo entre un paciente y otro. (II) 
 
Cuidados de la traqueostomía. 
 
• Manejarla en condiciones asépticas. (II) 
• Higiene de manos, guantes y sobretúnica para el cambio de cánula. (IB) 
 
 
 
MEDIDAD PARA EVITAR INFECCIONES 
 
• Evitar la reintubación. (IB) 
• Reducir el tiempo de ARM, para lo cual se propone aplicar protocolos de 
destete y ventanas de sedación. 
• Aplicar una ventana de sedación diaria, mediante la suspensión de la 
sedación a la hora 6 en todos los pacientes de la unidad, salvoque existan 
 
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contraindicaciones precisas. Luego de evaluado el paciente reinstalar la 
sedación y comenzar con la mitad de la dosis que venía recibiendo. 
• Evitar la intubación nasotraqueal. (IB) 
• Aspirar las secreciones acumuladas por encima del manguito antes de 
 desinflarlo para retirar el tubo o moverlo. (II) 
• Mantener la presión del manguito entre 25-35 cm H2O y verificarlo en 
 cada turno. 
• Limpieza y descontaminación de la orofaringe con soluciones antisépticas 
 en cada turno. 
• Proveer un adecuado soporte nutricional, es recomendable la nutrición 
 enteral a la parenteral. 
• Es indistinto el calibre de la sonda de nutrición que use y la posición 
 naso-gástrica o naso-yeyunal. 
• Verificar que la posición de la sonda de alimentación sea la correcta. (IB) 
• Elevar el plano de la cama a 45º Siempre que no existan 
 contraindicaciones. (II) 
• Evitar la distensión gástrica, es indistinto que la nutrición enteral sea 
 continua o intermitente con descanso nocturno. 
• Poner en práctica un protocolo de control de la glucemia. 
 
 
 
 
RECOMENDACIONES BASICAS PARA PREVENIR LA NAV. 
 
1. Higiene de manos antes y después de manipular las conexiones y vía 
aérea 
 
2. Lavado bucal con antiséptico con clorhexidina . 
3. Suspensión diaria de la sedación y valoración de extubación 
4. Elevar el plano de la cama a 45° siempre que no existan 
contraindicaciones 
 
 
 
PREVENCION DE LA INFECCION URINARIA 
 ASOCIADA A CATETER 
 
INTRODUCCION 
 
La infección urinaria es la infección hospitalaria más frecuente, representa el 40% del 
total. 
 
 
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El 80% está asociado con sonda vesical y el 5 a 10% del restante, se asocia a otras 
maniobras invasivas sobre la vía urinaria. En el caso de las infecciones asociadas a 
sonda vesical, su incidencia está relacionada con la técnica de colocación, el tiempo de 
duración del cateterismo, la calidad de los cuidados y de las defensas del huésped. 
 
Al 25% de los hospitalizados se les coloca un catéter en la vía urinaria. 
 
Prolongan entre 2.4 a 4.5 días el tiempo de internación y aumentan más de 500 dólares los 
costos de internación por cada episodio. 
Las infecciones urinarias son casi siempre asintomáticas, no requieren tratamiento 
antimicrobiano específico y remiten al retirar la sonda vesical. La estrategia 
fundamental está dirigida a prevenirlas. 
 
Las principales consecuencias de la infección urinaria asintomática son: 
 
• La posible progresión hacia pielonefritis, bacteriemia y sepsis. 
• Selección de cepas resistentes favorecido por la presión antibiótica. 
• Que constituya un reservorio de bacterias hospitalarias, posibilitando una fuente 
 de infección cruzada. 
 
La infección ocurre a punto de partida de la flora endógena del paciente o de 
microorganismos del medio ambiente hospitalario transportado por el personal de la 
salud. 
 
El ascenso de los patógenos responsables de la infección ocurre sobre todo por dos vías: 
 
• Intraluminal a contracorriente, favorecida por la contaminación de la bolsa 
 colectora, en 1/3 de los casos. 
• Extraluminal en los 2/3 restantes. 
 
De estas, 1/3 se infectan durante las 48 horas que siguen al cateterismo y se atribuye a defectos 
en la técnica de colocación del catéter. Los 2/3 restantes, se presentan más 
alejados con relación al momento de la colocación. Este último mecanismo, es debido a la 
formación de una película biológica formada por sustancia orgánica e inorgánica 
procedente de restos celulares, bacterianos y bacterias, que crece entre el catéter y la 
pared de la uretra. (Biofilm) 
 
Los microorganismos proceden de la flora propia perineal del paciente, como 
Escherichia coli, Proteus, Klebsiella, Enterobacter, Enterococcus spp. O Acinetobacter, producto 
de la colonización previa por infección cruzada, trasmitida por las manos del personal 
asistencial. 
La composición de la flora está relacionada con la presión de selección ejercida por el uso de 
antibióticos. 
Las siguientes recomendaciones se desarrollan para pacientes que requieren cateterismo 
vesical transitorio, considerado aquel cuya duración no es mayor de 21 días y excluye los 
pacientes con requerimiento de cateterismo prolongado o a permanencia. 
 
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RECOMENDACIONES 
 Personal 
a. Colocación por personal entrenado. (IA) 
b. Realizar entrenamiento periódico en la técnica de colocación y manipulación. 
 (IB) 
Uso del catéter. 
 
a. Retirarlo lo antes posible. (IA) 
 
Debe permanecer hasta cumplir con el objetivo de su indicación. Está 
demostrado que los catéteres permanecen más tiempo del necesario. 
 
b. Considerar métodos alternativos (IC) (cuando ellos están indicados) 
 
b.1. Los colectores de orina son útiles en pacientes con incontinencia, aunque la 
uretra y la piel pueden colonizarse con patógenos urinarios. No están indicados en 
pacientes excitados. 
 
b.2. Seleccionar pacientes que puedan beneficiarse de la cateterización 
suprapúbica, ésta disminuye el riesgo de infecciones, aunque tampoco ha sido 
comprobado con estudio controlados. (IC) 
c. La sonda se cambia cuando existe o se sospecha obstrucción, infección o mal 
 funcionamiento. No en forma rutinaria. (IB) 
 
Apropiada técnica de inserción del catéter 
A. Realice higiene de manos inmediatamente antes y después de insertar y/o 
 manipular la SV. (IB) 
B. Asegúrese que solo personas entrenadas (ej. Personal del hospital, miembros de la 
 familia o el propio paciente) quienes conozcan de la técnica correcta de la inserción 
 y mantenimiento aséptico de catéteres tengan ésta responsabilidad. (IB 
 
C. En hospitales de agudos, insertar SV usando técnica aséptica y equipamiento estéril 
 (inclusive el lubricante) (IB) 
D. Usar para la inserción, guantes estériles, solución estéril para la limpieza peri-uretral 
 y un lubricante unidosis estéril (IB) 
 
E. En hospitales que no sean de agudos, la técnica de cateterización intermitente 
limpia (Ej. no-estéril) es una práctica aceptable y una alternativa a la técnica estéril para 
pacientes que requieren cateterización intermitente crónica. (IA) 
F. Asegurar adecuadamente el catéter permanente después de la inserción para 
 prevenir el movimiento y la tracción uretral. (IB) 
G. A menos que haya contraindicación clínica, considerar utilizar el menor calibre de 
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catéter posible, consistente con un buen drenaje para minimizar el trauma de uretra. 
(II) 
H. Si es necesaria cateterización intermitente, hacerlo a intervalos regulares que eviten 
sobre-distensión de la vejiga. (IB) 
 
Técnica apropiada de mantenimiento del catéter urinario 
 
• Luego de la inserción aséptica de la SV, mantener el sistema de drenaje cerrado 
 (IB) 
• Si hay un quiebre en la técnica aséptica, desconexión o ocurre una pérdida, 
 reemplace el catéter y el sistema de drenaje usando técnica aséptica. (IB) 
• Mantener un flujo de orina sin obstrucción. (IB) 
• Mantener el catéter y el tubo de conexión libre de acodaduras. (IB) 
• Mantener la bolsa de colectora por debajo del nivel de la vejiga todo el 
 tiempo. No apoyar la bolsa en el piso. (IB) 
• Vaciar la bolsa colectora regularmente utilizando un contenedor separado y 
limpio, para cada paciente; evitar salpicar y prevenir el contacto de la punta de salida 
de la bolsa de drenaje con el contenedor no estéril. (IB) 
• Aplicar precauciones estándar, incluyendo el uso de guantes 
, durante la manipulación del sistema de drenaje del catéter. (IB) 
• Sistemas de drenaje urinario complejos (que utilizan mecanismos para reducir la 
 entrada de bacterias tales como dispositivos con antisépticos en la puerta de 
 drenaje) no son necesarios para cuidados rutinarios. (II) 
• Cambios de catéteres permanente o de la bolsa de drenaje en forma rutinaria, 
 fijando intervalos de tiempo,no está recomendado. 
 
• A menos que exista una indicación clínica no usar terapia antibiótica sistémica 
rutinariamente para prevenir la ITU ( infección del tracto urinario) en pacientes que 
requieren cateterización a corta o larga permanencia. (IB) 
• No limpiar el área peri-uretral con antisépticos para prevenir la ITU mientras el 
 catéter está colocado. La higiene de rutina (Ej. limpieza de la superficie del 
 meato durante el baño o ducha diaria) es apropiada. (IB) 
• A menos que se sospeche o tema obstrucción (Ej. Como por sangrado post cirugía 
 prostática o de vejiga) la irrigación de la vejiga no está recomendada. (II) 
• La irrigación de rutina de la vejiga con antimicrobianos no esta recomendada (II) 
• La rutina de instilación de soluciones antisépticas o antimicrobianos en la bolsa de 
 drenaje de orina no está recomendada (II) 
• Pinzar el catéter permanente antes del retiro, es una práctica innecesaria. (II) 
 
 
Recolección de muestras. 
 
α. Lavado de manos y guantes estériles antes de manipular la sonda. (IA) 
β. Desinfección de la sonda con alcohol al 70%. 
χ. Punción del extremo distal de la sonda con aguja fina. (IA) 
δ. Si se necesita recolectar grandes volúmenes de orina para examen se obtendrán 
 del drenaje de la bolsa colectora en forma aséptica. (IA) 
 
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RECOMENDACIONES BASICAS PARA PREVENIR LA INFECCIÓN 
 ASOCIADA A CATÉTER VESICAL. 
1. Colocar el catéter solo cuando sea estrictamente necesario 
2. Colocarlo con técnica y material estéril. 
3. Retirarlo lo antes posible. 
4. Mantener el sistema de drenaje cerrado. 
5. Evitar el uso inapropiado de antibióticos, NO TRATANDO LAS 
 BACTERIURIAS ASINTOMÁTICAS. 
 
PREVENCION DE INFECCIONES 
 DEL SITIO QUIRURGICO 
 
 
 
INTRODUCCION 
 
 
 
Las infecciones del sitio quirúrgico (ISQ), son junto con las neumonías, sepsis e 
infecciones urinarias, los cuatro tipos de infecciones hospitalarias más frecuentes. 
Las ISQ. , representan aproximadamente el 25% del total de las IH. 
En los pacientes operados las complicaciones más frecuentes son las infecciosas, las que en 
estos pacientes constituyen un factor causante o contribuyente de mortalidad. 
 
 
 
 
 
 
 
 
RECOMENDACIONES 
 
 
PRE - OPERATORIAS 
 
11. Preparación del paciente 
1. Identificar y tratar las infecciones alejadas del sitio quirúrgico antes de realizar 
 una cirugía electiva. (IA) 
2. La estadía pre operatoria debe ser tan breve como sea posible. (IC) 
3. Evitar la hiperglicemia peri- operatoria. (IB) 
 
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4. Recomendar al paciente que deje de fumar como mínimo 30 días antes de la 
 cirugía. (IB) 
5. Recomendar baño higiénico la noche anterior a la cirugía. De preferencia en 
 ducha. (IB) 
6. Limpiar y lavar ampliamente el sitio quirúrgico para remover la contaminación 
 de la piel antes de la antisepsia pre - operatoria. (IB) 
Para toda cirugía, la higiene corporal se realizará con clorhexidina detergente 
al 4%. 
No se utiliza clorhexidina detergente en cirugías, cráneo facial, oftalmológica y 
cirugía de oídos, por la toxicidad de la clorhexidina sobre estos tejidos, debiendo 
usarse jabón neutro o yodóforos en base detergente. 
7. No rasurar excepto que haya interferencia mecánica. Si fuese necesario recortar 
 el vello inmediatamente antes de la cirugía, preferentemente con recortador de 
 vello. (IA) 
8. No hay recomendación para mejorar el estado nutricional antes de la cirugía 
 como medio de evitar infecciones. (SR) 
9. No hay recomendación para aplicar mupirocina para descontaminar narinas 
 antes de la cirugía. (SR) 
10. No hay recomendación de medidas para aumentar la oxigenación durante la 
 cirugía. (SR) 
 
 
12. Manos y antebrazos del equipo quirúrgico 
 
1. Mantener uñas cortas y no usar uñas postizas. (IB) 
2. El lavado de manos pre operatorio se realizará por un mínimo de 2 a 5 minutos 
 con jabón con gluconato de clorhexidina al 4 %, desde las manos y antebrazos 
 hasta los codos. (IB) 
3. Mantener las manos elevadas después del cepillado, con los codos flexionados 
de forma que el agua escurra a partir de los dedos en dirección a los codos. Secar con 
toalla estéril y colocar guantes estériles. (IB) 
4. Limpiar debajo de las uñas antes del primer procedimiento del día. (II) 
5. No usar joyas. (II) 
 
 
13. Personal infectado o colonizado 
 
1. Notificar las infecciones sospechadas o confirmadas al Supervisor. (IB) 
2. Difundir recomendaciones específicas sobre responsabilidades cuando hay 
 infecciones transmisibles en el personal de salud. (IB) 
3. Obtener cultivos y excluir al personal quirúrgico del trabajo mientras tenga 
 lesiones activas con drenaje hasta que esté curado. (IB) 
4. No excluir del trabajo al personal colonizado con Sthap. Aureus o 
Streptococccus del grupo A excepto en caso de brotes específicos (IB) 
 
 
 
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14. Profilaxis Antimicrobiana 
 
1. Administrar antimicrobianos profilácticos solo cuando esté indicado y 
seleccionarlos en base a la eficacia contra los patógenos más comunes para los 
 tipos específicos de cirugías. Ver Profilaxis antimicrobiana en cirugía. (IA) 2. 
Administrar por vía endovenosa la dosis inicial del agente antimicrobiano 
 calculando el tiempo de tal forma, que la concentración bactericida esté en nivel 
 sérico y en los tejidos en el momento en que sea realizada la incisión. 
 Mantenerla en niveles terapéuticos hasta pocas horas después que la incisión sea 
 cerrada. Se administra durante la hora previa a la inducción anestésica o en la 
 inducción anestésica (IA) 
3. Antes de cirugías colorrectales (en adición al ítem anterior) preparar el colon a 
través de enemas y catárticos. Administrar antimicrobianos orales no absorbibles en 
dosis divididas en el día anterior a la cirugía. (IA) 
4. Para cesáreas de alto riesgo administrar la antibioticoprofilaxia inmediatamente 
después del clampeo del cordón umbilical. 
5. No usar Vancomicina rutinariamente como quimioprofilaxia. 
 
6. Se deben mantener niveles tisulares elevados durante todo el acto quirúrgico. 
Esto implica administrar una dosis de repique intraoperatoria cuando la cirugía se 
prolonga mas de dos veces la vida media del antibiótico utilizado 
(habitualmente 3 horas) o el sangrado es mayor de 1500 cc. 
 
7. No hay evidencia que demuestre que prolongar la profilaxis en el 
postoperatorio sea favorable. Además el uso prolongado de antimicrobianos 
 favorece la aparición de resistencias. Por lo que prolongarla más allá de las 
 primeras 24 h se considera inadecuado y 48 horas en cirugía cardíaca 
 8. Ajustar dosis en paciente obesos 
PREPARACIÓN PERI - OPERATORIA: en block quirúrgico 
 
Higiene de la piel 
Piel sana en cirugía de coordinación y urgencia: La 
higiene se puede realizar con: 
1. Clorhexidina detergente al 4%: Recordar, no se utiliza en cirugías, 
 cráneo facial, oftalmológica y cirugía de oídos, por la toxicidad de la 
 clorhexidina sobre estos tejidos, debiendo usarse jabón neutro o 
 yodóforos en base detergente. 
 
2. Jabón neutro 
 
 
Piel con solución de continuidad: 
 
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(herida contaminada, supurada, quemadura, presencia de ostomías). 
 
Si la herida forma parte de la cirugía se lava con Suero fisiológico y 
posteriormente Clorhexidina detergente o jabón neutro. Si la herida no forma parte 
del objetivo quirúrgico se ocluye. 
 
INTRA - OPERATÓRIO 
 
15. Ventilación 
 
1. Mantener ventilación con presión positiva con relación a los corredores y áreas 
 adyacentes. (IB) 
2. Mantener un mínimo de 15 cambios de aire por hora de por lo menos 3 cambios de 
aire fresco. (IB) 
3. Filtrar todo el aire, recirculado y fresco a través de filtros apropiados. (IB) 
4. Introducir todo el aire a través del techo y desagotar cerca del piso. (IB) 
5. No usar luz ultravioleta para prevención

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