Colección, Preservación y Transporte De Muestras Fecales. Examen Macroscópicoy Microscópico y Métodos De Concentración en el Diagnóstico de Enteroparásitos

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UNIVERSIDAD PRIVADA SAN JUAN 
BAUTISTA 
Escuela profesional de tecnología médica 
especialidad laboratorio clínico y anatomía patología 
 
TEMA: 
Colección, Preservación y Transporte De Muestras 
Fecales. Examen Macroscópicoy Microscópico y 
Métodos De Concentración en el Diagnóstico de 
Enteroparásitos 
ALUMNO: 
Tasayco Laura Kevin Josseph. 
DOCENTE: 
 GIANCARLO JESUS JARA PISCONTI 
 
CHINCHA – PERU 
 
 
 2023 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 INTRODUCCION 
En esta parte vamos a ver las diferentes metodos de obtencion de muestra 
correctamente, conservacion, transporte y procesamiento de las diversas 
muestras que obtenemos de las muestras en los laboratorios. 
Lo principal de esto es poder procesar las muestras lo antes posibles y no fuera 
el caso aplicar un fijador para conservar la muestra con las diversas estructuras 
parasitarias para su estudio para el analisis de dichas muestras. 
Ademas veremos las diversas tecnicas para aplicarlas para el procesamiento de 
las diversas muestras, como tecnicas de sedimentacion rapida, sedimentacion 
con fuerza centrifuga entre otras muchas tecnicas que se explicaran en este 
informe. 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
DESARROLLO 
I. Bases Teoricas 
I.I Examen directo macroscopicos 
El examen directo macroscopios es principalmente para describir aspectos a 
siemple vista de las diferentes muestras fecales que se obtienen de los 
pacientes. Esta descripcion incluye coloracion de las heches, formas, 
consistencia y peso de la la heches. 
I.II Examen directo microscopico 
El examen directo microscopico es para poder distinguir las diversas formas 
evolutivas de los parasitos a nivel microscopico comopuden ser los quistes y 
trofosoitos. 
II. Bases Practicas 
II.I EXAMEN DIRECTO O DEL MONTAJE HUMEDO 
II.I.I Generalidades. 
- Trofozoitos o quistes de protozoarios, huevos o larvas de 
helmintos en buena cantidad. 
- Util para el primer despistaje. 
- Es sencillo y rapido, adecuado para muestras diarreicas con 
sospechas de amebiasis 
- Insuficiente para elcmpleto diagnostico parasitologia. 
II.I.II Procedimeinto. 
o Colocar en un extremo de la lámina portaobjeto una gota 
de suero fisiológico y, con ayuda de un aplicador, agregar 
1 a 2 mg de materia fecal, emulsionarla y cubrirla con una 
laminilla cubreobjeto. 
o Colocar en el otro extremo de la lámina portaobjeto, una 
gota de lugol y proceder a la aplicación de l a muestra 
fecal como en el párrafo anterior. 
o Con el suero fisiológico, los trofozoítos y quistes de los 
protozoarios se observan en forma natural, y con lugol, 
las estructuras internas, núcleos y vacuolas. 
o En algunos casos, se recomienda el uso de colorantes 
vitales, debido a que no alteran la actividad del trofozoíto. 
Los más usados son verde brillante 0,2% y rojo neutro 
0,01% 
o Observar al microscopio a 10X ó 40X. No es aconsejable 
usar objetivo de inmersión (100X), pues se puede 
ensuciar el microscopio 
o Recorrer la lámina siguiendo un sentido direccional, 
ejemplo: de derecha a izquierda, o de arriba a abajo. 
II.II. TECNICA DE SEDIMENTACION ESPONTANEA EN TUBO 
II.II.I Generalidades 
- Empleado para despistaje definitivo de enteroparasitos 
- La sensibilidad de triplica 
- Facil reproducible y economico. 
II.II.II Procedimientos 
o Tomar la muestra de heches y homogenizar con suero 
fisiologico en un tubo o en el mismo recipiente de la 
muestra 
o Colocar gasa, hundiendola en la abertuda del tubo y 
sujetarlo con una liga. 
o Filtrar el homogeneizado por la gasa llenando el tubo 
hasta la cuarta parte del tubo. 
o Agregar suero fisiologico hasta 1cm por debajo del borte 
del tubo. 
o Ocluir la abertura del tubo con una tapa. 
o Agitar el tubo por 15 sg aproximadamente 
o Dejar reposar de 30 a 40 min. En caso el sobrennadante 
siga tubo repetir los pasos anteriores hasta tener un 
sobrenadante claro. 
o Aspirar la parte media del tubo con pipeta y colocar una 
gota en la lamina portaobjeto. 
o Aspirar el sedimento y colocarlo en un portaobjeto 
o Agregar una gota de lugol y cubrirlos con una laminilla 
de celofan y observar al microscopio. 
II.III TECNICA DE SEDIMENTACION RAPIDA DE LUMBRERAS 
 II.III.I GENERALIDADES 
- Concentracion de huevos a mayor densidad entre los 
helmintos. 
- Es de diagnostico mas certero por la diferencia de densidades. 
- Requiere: Placa petri, coladera, reciiente 10ml y agua 
corriente. 
 II.III.II PROCESAMIENTO 
o Homogeneizar 3 a 6g de heces con 10 a 20ml de agua 
destilada. 
o Colocar colador y dos capas de gasa en un vaso y 
filtrarla. Llenar la copa con agua destilada de 1cm 
debajo del borde. 
o Dejar sedimentar la muestra 30 min 
o Decantar la 2/3 parte del contenido, agregar 
nuevamente agua, repetir cada 10 min por 3 a 4 veces 
hasta que el sobrenadante quede limpio. 
o Tranferir lo sedimentado a un placa petro ayudada con 
una pipeta pasteur. 
o Observar el esterooscopio o miscroscopio a menor 
aumento. 
II.IV TECNICA DE FAUST 
 II.IV.I GENERALIDADES 
- Basado en que los quistes y huevos de parasitos floten en la 
superficiene por menor densidad. 
- Uso principal el sulfato de zinc 
 II.IV.II PROCEDIMIENTO 
o Primero se homogeniza con solucion salina 10ml 
o Filtrarlo en una gasa a un vaso precipitado 
o Colocar en un tubo de 15ml y centrifugar 
o Decantar el sobrenandante y agregar sulfato de zinc 
o Homogenizar y centrifugar. 
o Agregar sulfato de zinc hasta el tope del tubo 
o Colocar un cubre objetos en el tope del tubo y 
colocarlos en un portaobjetos y hacer la lectura en el 
microscopio. 
II.V TECNICA DE RITCHIE 
II.V.I GENERALIDADES 
- Basado en uso de la fuerza centrifuga para poder sedimentar 
huevos y quistes de parasitos 
- Ayudado de de formol y eter para separar y visualizar los 
elementos parasitarios. 
II.V.II PROCESAMIENTO 
o Primero se homogeniza con solucion salina 10ml 
o Filtrarlo en una gasa a un vaso precipitado 
o Colocar en un tubo de 15ml y centrifugar 
o Decantar el sobrenandante y formol eter 
o Homogenizar y centrifugar. 
o Verificar la presencia de 4 capas 
o Descartar el sobrenadante 
o Preparar las laminas con el sedimento y observar en el 
microscopio. 
II.VI TECNICA DE BEARMAN MODIFICADO EN COPA POR LUMBRERAS 
 II.VI.I GENERALIDADES 
- Capaz de recuperar trofozoitos y helmientos de las muestras 
- Migracion al fondo de copa por induccion de tropismo 
- Examen seriado por tres veces 
- La sensibilidad de diagnostico de strongyloides stercoralis es 
del 90% 
 II.VI.II PROCEDIMIENTO 
o Colocar la coladera o rejilla metálica con la gasa 
doblada (2 a 3 capas) dentro de la copa 
o Colocar sobre la gasa, 4 a 6 g de la muestra de heces 
en fresco 
o Verter solución salina a 37ºC en cantidad suficiente por 
el borde de la copa. 
o Dejar a temperatura ambiente o en estufa a 28ºC - 37°C 
de 30 a 50 minutos. 
o Sacar la coladera o rejilla y con ayuda de una pipeta 
Pasteur obtener 1 mL de sedimento. 
o Colocar el sedimento en una luna de reloj o lámina 
cavada y observar al microscopio o esteroscopio. 
II.VII. TECNICA DE KATO KATZ 
 II.VII.I GENERALIDADES 
- Cuantificacion de carga parasitaria de heces 
- Las heces son tamizadas 
- El numero de huevecillos encontrados se multiplica por 14 
para el reporte por gramo de heches. 
II.VII.II PROCEDIMEINTO. 
o Con un aplicador (bajalengua) transferir la muestra fecal 
(0,5-1g) sobre el papel absorbente. 
o Colocar una malla o nylon de 2 x 3 cm. sobre la 
muestra. 
o Con el aplicador del kit comprimir la malla para tamizar 
la muestra. 
o Colocar el molde de plástico sobre la lámina portaobjeto 
y rellenar la perforación con la muestratamizada. 
o Levantar el molde dejando el “cilindro” de la muestra en 
la lámina portaobjeto. 
o Colocar la laminilla glicerinada con verde de malaquita 
sobre la muestra y con ayuda de un tapón de jebepresionar sobre la laminilla, buscando extender la 
muestra. 
o Dejar para la diafanización a temperatura ambiente de 
30 a 45 minutos. 
II.VIII. TECNICA DE GRAHAM 
 II.VIII.I GENERALIDADES 
- Empleado para el diagnostico de enterobiasis en pacientes 
preescolcares. 
- Se ralizan toqyes anales con cinta adhesiva 
- Huevos o adultos se quedan adeheridos 
- Realizar tres veces alcanza una sensibilidad del 90% 
 II.VIII.II PROCESAMEINTO. 
o Separar los glúteos del paciente para que quede 
expuesta la región perianal, donde se localizan los 
huevos del nematodo. 
o Aplicar la superficie adhesiva a la región anal y perianal. 
o Retirar la cinta adhesiva y pegarla a lo largo del 
portaobjetos. 
o Retirar los guantes y lavarse las manos tras la recogida 
de la muestra. 
II.IX TECNICA DE ZIEKL NEELSEN MOFIFICADO 
 II.IX.I GENERALIDADES 
- Se basa en el compartameinto de acidos resistentes de la 
cubierta de parasitos 
- Son teñidos de rojo con fondo verde o azul dependiendo el 
contraste usado. 
 II.IX.II PROCEDIMEINTO 
o Colocar las láminas portaobjetos sobre el soporte de las 
varillas de vidrio. 
o Con el estilete o pinza curva hacer un frotis de heces en 
la lámina portaobjeto y dejar secar. 
o Fijar la lámina con alcohol metílico de 2 a 5 minutos y 
dejar secar. 
o Agregar hidróxido de sodio sobre el preparado por un 
minuto, eliminar el exceso y lavar con agua. 
o Cubrir la lámina con la fucsina fenicada (previa 
agitación del frasco) por 5 minutos, diluida previamente 
en agua al tercio (1 mL colorante y 2 mL de agua). 
o Lavar suavemente la lámina portaobjeto con agua 
corriente. 
o Decolorar con alcohol-ácido, cubriendo el portaobjeto 
por unos segundos hasta quitar el colorante. 
o Lavar suavemente el portaobjeto con agua. 
o Colocar como colorante de contraste verde de 
malaquita 1% o azul de metileno 1-1,4% durante 5 
minutos, diluidas previamente al tercio. 
o Lavar la lámina suavemente con agua corriente y dejar 
secar a temperatura ambiente. 
o Realizar el montaje con cytoseal, 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
CONCLUSIONES 
En conclusion lo visto aquí refleja las diversas variedades de metodos y tecnicas 
utilizados para poder cuantificar, identificar u diagnosticas a a un pacientes por 
medio de estos metodos, hay algunos metodos especializados que son 
especificamente para ciertos parasitos como otros su son para parasitos 
helmintos o protozoos. 
Todo formato de respuesta de resultados debe contener los datos de 
identificación: nombre, edad, sexo, fecha, las características organolépticas de 
las heces (consistencia, color, presencia de sangre y moco), datos de la 
observación microscópica (presencia de leucocitos, eritrocitos, levaduras, fibras 
musculares no digeridas y parénquima de células vegetales en cantidad 
considerable), ya que esta información facilitará un mejor diagnóstico clínico 
Para terminar todos los metodos explicados en este informe nos ayuda a poder 
identificar a diversas estrcuturas parasitarias y poder dar un resultado con lo 
observamos en la diversas muestras de heces que nos manden procesar. 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
BIBLIOGRAFIA 
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el 11 de mayo de 2023, de 
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Un nuevo método, más sensible, para detectar huevos de helmintos en heces. (2002). 
Revista panamericana de salud publica [Pan American journal of public health], 
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http://bvs.minsa.gob.pe/local/INS/165_NT37.pdf
ANEXOS 
 
 
SEDIMENTACION ESPONTANEA 
 
 
 
 
 
 
SEDIMENTACION RAPIDA DE LUMBRERAS 
 
 
 
 
 
 
TECNICA DE GRAHAM 
 
TECNICA E KINYOUNG