Nematodos

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UNIVERSIDAD DE CÓRDOBA 
CÓDIGO: 
FDOC-090 
VERSIÓN: 01 
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GUÍA DE PRÁCTICAS DE LABORATORIO 
 
 
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FACULTAD: CIENCIAS DE LA SALUD 
DEPARTAMENTO: BACTERIOLOGÍA 
PROGRAMA: BACTERIOLOGÍA 
NOMBRE DEL CURSO: PARASITOLOGÍA 
NOMBRE DE LA PRÁCTICA: 
 
 
1. OBJETIVOS 
 
▪ Dominar conocimientos teóricos y prácticos de nematodos intestinales con el fin de 
aplicarlos al realizar una adecuada identificación de estos mediante técnicas utilizadas 
en el laboratorio. 
▪ Aplicar las técnicas de montaje y lectura del examen coprológico con el fin de realizar 
una correcta identificación microscópica de huevos y/o larvas de nemátodos 
intestinales. 
▪ Dominar técnicas de concentración para el recuento de huevos de nematodos 
intestinales e interpretar su resultado en el laboratorio. 
 
 
 
 
▪ Ofrecer una excelente atención en salud y adoptar uan conducta humanitaria que 
permita prestar el mejor servicio, de esta manera contribuir al mejoramiento de la 
calidad de vida de al comunidad. 
▪ Promover las buenas prácticas de laboratorio de parasitología que permitan la 
obtención de buenos resultados, de esta manera brindar una atención en salud 
humanitaria con calidad continua y oportuna. 
 
 
▪ Dominar técnicas de montaje de muestras de materia fecal con el fin de identificar las 
diferentes estructuras de parásitos intestinales tipo nemátodos encontradas en un 
examen coprológico. 
▪ Interpretar los diferentes resultados obtenidos de la lectura de un examen coprológico 
para el recuento de huevos con el fin de realizar un diagnostico adecuado y preciso de 
estas parasitosis. 
 
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▪ Dominar los conocimientos necesarios sobre las características morfológicas y 
estructurales de nemátodos intestinales y así realizar su correcta identificación en el 
laboratorio. 
▪ Promover una constante actualización y desarrollo, con el fin de poder actuar con 
libertad y autonomía, dentro de los mejores niveles de idoneidad y competencia. 
▪ Concientizar a los estudiantes de la importancia de un correcto montaje, lectura y 
reporte de un examen coprológico. De ello depende la obtención de resultados 
veraces y con calidad. 
▪ Valorar el papel que juega el bacteriólogo dentro del esquema clínico y su aporte en el 
mejoramiento de la salud humana. 
 
 
2. INTRODUCCIÓN 
 
 
Los nemátodos son parásitos de amplia distribución y muy frecuentes en países tropicales. 
Las parasitosis humanas por nematodos fueron reconocidas desde la antigüedad, lo cual 
puede explicarse porque muchos de estos parásitos en su estado adulto son macroscópicos. 
Los nemátodos son gusanos de forma cilíndrica, bilateralmente simétricos y con los extremos 
de menor diámetro. Poseen un sistema digestivo completo, aparato reproductor muy 
desarrollado y sexos separados. Los órganos internos están contenidos en una cavidad 
corporal o pseudocele, delimitada exteriormente por una pared que comprende cutícula, 
hipodermis y capa muscular. Se reproducen por medio de huevos que dan origen a larvas en 
su transición a nematodos intestinales y se transmiten por tierra contaminada con huevos o 
larvas que salen de la materia fecal. 
Entre los nemátodos intestinales que parasitan al hombre se encuentran: 
Áscaris lumbricoides 
Es el nemátodo intestinal de mayor tamaño que parasita al hombre, en su forma adulta es de 
color rosado o blanco amarilloso, los sexos se pueden diferenciar por la forma del extremo 
posterior, el cual en el macho es curvo y en la hembra es recto: los parásitos adultos viven en 
la luz del intestino delgado. 
Los huevos al ser eliminados no son embrionados, por lo tanto no son infectantes por vía 
oral, estos requieren un tiempo de maduración en el suelo por lo menos de un mes. 
Pueden se fértiles, infértiles, corticados o decorticados; los huevos fértiles provienen de las 
hembras fecundadas, tienen forma oval o redondeada y miden aproximadamente 6 micras de 
diámetro, poseen una cubierta con 3 membranas: una interna vitelina, una media de 
glucógeno y una externa albuminoide de aspecto mamelonado. Estos huevos al ser 
examinados en las heces se observan de color café por estar coloreados por la bilis y en su 
interior presentan un material granuloso que posteriormente dará origen a las larvas. Los 
huevos infértiles no se observan con frecuencia, provienen de hembras no fecundadas, son 
irregulares, alargados, con protuberancias externas grandes o ausentes y generalmente con 
una membrana. El materia en su interior es vacuolado, opaco y granular. Aunque no son 
 
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infectantes, son importantes en el diagnóstico ya que indican la presencia de Áscaris 
lumbricoides hembras en el intestino. Cuando los huevos tanto fértiles como infértiles 
carecen de la capa albuminoide reciben el nombre de huevos decorticados. 
La infección se da por la ingestión de tierra o alimentos contaminados que contengan huevos 
embrionados. Esta parasitosis es la mas frecuente y cosmopolita de todas la nematodosis 
humanas. 
 
Trichuris trichiura 
También conocido como Tricocéfalo, en su forma adulta es un gusano blanco cuya 
localización es a nivel de la mucosa del intestino grueso, se caracteriza por tener los dos 
tercios anteriores del cuerpo muy delgado y el tercio posterior mas grueso, simulando un 
látigo. Cuando las infecciones son muy intensas los parásitos se ubican en el colon y recto, 
razón por la cual, los pacientes con esta parasitosis pueden sufrir prolapso rectal. 
Los huevos salen en la materia fecal sin ser infectantes por vía oral, ya que no están 
embrionados, por lo que requieren de un período de maduración en el suelo, el cual puede 
durar de semanas a meses. Estos miden 25 micras de ancho por 50 micras de largo, son 
muy característicos y fáciles de identificar, son de color café, poseen doble membrana y tiene 
tapones albuminoides en sus extremos, semejando forma de balón de rugby o de limón. 
La infección se da por la ingestión de agua o alimentos contaminados con huevos 
embrionados. 
 
Uncinaria 
Existen dos parásitos con este nombre, el Ancylostoma duodenales y Necator americanus 
cuya localización es a nivel dl intestino delgado. Sus formas adultas son muy similares, de 
color blanco, el macho se diferencia de la hembra porque en el extremo posterior tiene un 
ensanchamiento radial o bursa copulatriz para sujetar a la hembra durante la ovulación, 
mientras que la hembra tiene el extremo posterior de forma cónica. 
Los huevos de uncinaria son indistinguibles entre si, tienen forma oval y miden 40 micras de 
ancho por 60 micras de largo, poseen una membrana delgada y en su interior presentan una 
masa granulosa única o con blastómeros, generalmente de 4 a 6. Cuando los huevos 
embrionados en el suelo eclosionan emerge una larva llamada rhabditiforme, la cual muda 
dos veces hasta convertirse en una larva filariforme que es la forma infectante que 
contaminan al huésped a través de la piel y/o mucosas. 
 
Strongiloides estercolaris 
Es un parásito muy pequeño que vive en el interior de la mucosa del intestino delgado, 
principalmente en el duodeno o yeyuno. El parásito hembra es filiforme transparente, mide 2 
milímetros de largo por 50 micras de ancho. El macho no existe y se ha comprobadoque la 
hembra es partenogenética. Cuando las condiciones del medio le son favorables el parásito 
puede vivir como nemátodo libre durante algún tiempo presentando los dos sexos. 
Los huevos son similares a los de uncinaria, pero eclosionan en la mucosa intestinal y dan 
origen a larvas rhabditiformes, que se eliminan con las materias fecales y en el suelo se 
transforman en larvas filariformes que son las infectantes. 
 
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Los parásitos adultos, al atravesar el intestino delgado, causan inflamación severa con 
cuadro de enteritis, observándose diarrea sanguinolenta, decaimiento, estados anémicos ye 
n casos graves la muerte. 
 
Enterobius vermicularis 
También conocido como Oxiuro. El parásito adulto es un gusano de color blanco amarillento, 
en el extremo anterior se encuentra la boca provista de tres labios y un par de aletas 
cefálicas. La hembra mide aproximadamente 1 centímetro de longitud y tiene el extremo 
posterior recto y puntiagudo, por lo que se conoce como gusano de alfiler: el macho mide la 
mitad de la hembra, con el extremo posterior curvo y una espícula copulatriz. 
Los huevos son blancos, transparentes con un lado plano y otro curvo, por lo que tiene una 
forma similar a la letra D. estos miden de 50 a60 micras de largo por 25 micras de ancho, 
tiene envoltura delicada y traslúcida, generalmente están larvados en el momento d la 
ovoposición por lo que puede haber autoinfección. 
El examen coprológico de rutina, usado para el diagnóstico de los nemátodos intestinales, no 
es de gran utilidad para l diagnóstico de los Oxiuros, la identificación de este parásito se hace 
generalmente por el hallazgo de los huevos en la región perianal, perineal o vulvar utilizando 
el método de Graham o por visualización de los parásitos adultos. 
 
RECUENTO EN PLACA MICROSCÓPICA 
Es le procedimiento mas sencillo pero poco exacto para el recuento de huevos. Consiste en 
estudiar uan placa microscópica que contenga mas o menos 2 mg de materia fecal. Cantidad 
que se consigue aproximada mente al hacer una preparación para coprológico utilizando 
laminillas de 22x22 mm. El recuento se hace recorriendo toda la lámina, el número de 
huevos se multiplica por 500 para dar el resultado en huevos por gramo de materia fecal 
(h.p.g.). 
 
La intensidad de la infección por nematodos se mide de acurdo a la siguiente tabla: 
Nemátodo Leve (h.p.g.) Moderada (h.p.g.) Intensa (h.p.g.) 
Áscaris lumbricoides <5000 5000-50000 >50000 
Trichuris trichiura <1000 1000-10000 >10000 
Uncinarias <2000 2000-4000 >4000 
Oxiuros No se hace el recuento de huevos. Solo se informa 
como positivo o negativo Strongiloides 
estercolaris 
 
 
3. PROCEDIMIENTO 
 
 
Montaje de coprológico 
1. Realizar el montaje del examen coprológico en solución salina al 0.85% y lugol. 
 
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2. Observar el montaje en el microscopio con objetivo de 10X-40X recorriendo toda la 
preparación con el fin de identificar las diferentes estructuras de nemátodos 
intestinales. 
3. Informar las estructuras encontradas (larva y/o huevo) de nematodos intestinales de 
acuerdo a la siguiente tabla: 
 
OBJETIVO 
LARVA Y/O HUEVO POR CAMPO 
(+) (++) (+++) (++++) 
10X 1-15 16-25 26-35 >35 
40X 1-5 6-10 11-15 >15 
 
 
 
Técnica de Graham 
 
1. Consiste en un pedazo de cinta engomada trasparente de aproximadamente 12 cm de 
largo por 1 cm de ancho, que se pega en un portaobjetos, dejando que salgan ambos 
extremos de la cinta. 
2. Uno de estos extremos se dobla sobre si mismo para usarlo como cogedera, el otro se 
pega en un bajalengua de tal modo que la parte pegante quede hacia afuera, con ello 
se hacen varias aplicaciones en la región perianal. 
3. Se vuelve apegar en la placa de vidrio, se alisa con una gasa para evitar las burbujas 
que se puedan formar y que podrían confundirse con huevos de Oxiuro. 
4. Luego se desprende el portaobjetos del bajalengua y queda lista para mirarla al 
microscopio. 
La muestra debe tomarse antes de bañarse la región perianal, preferiblemente en las horas 
de la mañana y durante varios días. 
 
Técnicas de concentración 
 
Técnica simplificada con formol-éter 
1. Tome un tubo con partes iguales de solución isotónica y formol al 10%, 
aproximadamente 10 ml. 
2. Agregue mas o amenos un gramo de materia fecal y mezcle bien. 
3. Filtre por gasa doble. 
4. Agregue 3 ml de éter, tape y agite fuerte, destape cuidadosamente (el éter puede 
reemplazarse por gasolina). 
5. Centrifugue 2 minutos a 2000 rpm. 
6. Decante las 3 primeras capas (éter, restos de materia fecal y formol salino). 
7. Estudie el sedimento al microscopio. 
 
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Técnica de Ritchie modificada 
1. Colocar 1gr de materia fecal en un tubo de centrifuga de 15 ml. 
2. Agregar 5 ml de formol al 10% y mezclar con un palillo. 
3. Dejar en reposo 30 minutos. 
4. Adicionar 10 ml de solución salina al 0.85%. 
5. Centrifugar durante 2 minutos a 2000 rpm. 
6. Decantar. 
7. Agregar 5 ml de formol. 
8. Adicionar 3 ml de éter etílico. 
9. Mezclar y centrifugar por 2 minutos. 
10. Decantar. 
Mirar el sedimento al microscopio 
 
4. MATERIALES, EQUIPOS, REACTIVOS. 
 
▪ Muestras de materia fecal positivas para nemátodos intestinales. 
▪ Portaobjetos. 
▪ Cubreobjetos. 
▪ Solución salina al 0.85%. 
▪ Lugol parasitológico 
▪ Palillos. 
▪ Bajalenguas. 
▪ Cinta engomada trasparente. 
▪ Formol al 10%. 
▪ Tubos de centrifugación de 15 ml con tapa rosca. 
▪ Éter etílico. 
▪ Centrífuga. 
▪ Microscopios. 
▪ Papel kraft 
▪ Descartadores 
▪ Pipetas de vidrio de 5ml y 10 ml 
▪ Pipeteadores automáticos 
 
5. EQUIPOS DE PROTECCIÓN PERSONAL Y/O COLECTIVA. 
 
✓ Bata 
✓ Guantes 
✓ Gafas de bioseguridad 
 
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✓ Tapaboca 
✓ Gorro 
 
6. MANEJO DE RESIDUOS PELIGROSOS. 
 
 
 
 
 
 
 
 
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7. CUESTIONARIO O ACTIVIDADES COMPLEMENTARIAS. 
✓ Qué características permiten diferenciar Ancylostoma duodenales de Necator 
americanus ? 
✓ A nivel de qué órgano pueden realizar migraciones cada uno de estos parásitos ? 
✓ Describa las manifestaciones clínicas de cada uno de los nematodos estudiados 
✓ Cuál es la forma infectante de cada uno de los nemátodos intestinales patógenos 
para el hombre? 
✓ Qué utilidad tienen las técnicas de concentración? 
 
CASO CLÍNICO 
 
Niño de 8 años que proviene del Retiro de los Indios, llega al servicio de urgencias de la 
E.S.E Hospital San Jerónimo de Montería, presentando palidez, debilidad, nauseas, vómito y 
dolor abdominal difuso. El médico le solicita los siguientes exámenes: hemograma,gota 
gruesa y coprológico dirigido. 
Los resultados mas relevantes fueron: 
▪ Gota gruesa: negativa. 
▪ Hemograma: cuadro anémico marcado. 
 Diferencial: presencia de eosinofilia. 
▪ Coprológico dirigido: estudio de pH y azucares no significativos y sangre oculta 
positiva. 
 
Teniendo en cuanta las características del paciente y los resultados obtenidos en las pruebas 
de laboratorio responda: 
1. ¿De qué patología sospecharía? 
2. ¿Qué estructura esperaría encontrar en el examen coprológico? 
3. Correlacione los resultados de los exámenes con la parasitosis. 
 
 
8. BIBLIOGRAFÍA 
▪ JHON BERNARD HENRY. El laboratorio en el diagnóstico clínico. 
▪ BAILEY Y SCOTT. Diagnóstico microbiológico. 
▪ JAWETZ. Microbiología médica. 
▪ MANUAL MODERNO. Diagnóstico clínico y de laboratorio. Manual moderno. 
▪ FAUSTINA RUBIO CAMPAL. Inmunología (aplicaciones prácticas en hematología y microbiología). 
▪ MANUAL DE LABORATORIO CLÍNICO DIAGNÓSTICO. LANSING M. PRESCOTT Microbiología. 
▪ WALLACE PETER, GEOFFREY PASVOL Atlas de medicina tropical y parasitología () 
▪ BURTON JEROME BOGITSH, CLINT EARL CARTER, THOMAS N. OELTMANN Human Parasitology 
▪ LYNNE SHORE GARCIA Diagnostic medial parasitology 
▪ PAUL SCHMID HEMPEL Evolutionary Parasitology: The Integrated Study of Infections, Immunology, 
 
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▪ Ecology, and Genetics 
▪ GERALD D. SCHMIDT & LARRY S. ROBERTS' foundations of parasitology 
▪ OLIVIER DE BRUYN Parasitology Research Trends. Advances in biology and medicine series. 
▪ STEPHANE PEETERS Advances in biology and 
▪ THEODOR, HIEPE, LUCIUS Parasitología general. 
▪ THEODOR, HIEPE, LUCIUS Protozoologia Médica 
▪ FRANCISCO BIAGI Enfermedades parasitarias 
▪ Atlas de Parasitología. Laboratorio Italmex 1993. 
 
 
9. RECOMENDACIONES 
 
✓ Leer la guía y desarrollar las actividades propuestas 
✓ Traer todos los elementos de bioseguridad y protección personal para el desarrollo de la 
práctica 
✓ Revisar bibliografía referente al tema 
 
10. ANEXOS 
 https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/30521805/ 
 
 
 
▪ BOTERO DAVID Y RESTREPO MARCOS, Parasitosis Humanas, CIB, Tercera edición, Medellín 1998. 
▪ DUQUE SOFIA Y Otros, Parasitismo Intestinales-Material de Referencia- Atlas, Instituto Nacional de 
▪ Salud, Santafé de Bogotá-2000. 
▪ ZAMAN VIGAR, Atlas de Parasitología Clínica, Medicina Panamericana 
▪ PUMAROLA y Otros, Microbiología y Parasitología Médica, Salvat 1995. 
▪ DELGADO-IRIBARREN ALBERTO, Manual de Laboratorio Clínico Básico-Microbiología, McGraw Hill. 
▪ VELEZ H, Fundamentos de Medicina – Enfermedades Infecciosas. CIB, Medellín 1998. 
▪ www.soton.ac.uk -ceb/diagnosis/vol 1. htm. 
▪ www.tulane,edu/-dmsander/www/224/Enta.gif 
▪ Clínica y Complicaciones de las Parasitosis: Iván Londoño Morales. Edit. U. De A. 1ª Edición 1993 
▪ Enfermedades Parasitarias. Clínicas de atención primaria. Interamericana. 1991. 
▪ Parasitología Clínica. Beaver – Jung. Salvat. 2ª. edición 1986. 
https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/30521805/
http://www.soton.ac.uk/
http://www.tulane,edu/-dmsander/www/224/Enta.gif