Descarga la aplicación para disfrutar aún más
Vista previa del material en texto
CLINICOCLINICO VETERINARIOVETERINARIO UniversidadUniversidad VeracruzanaVeracruzana LABORATORIOLABORATORIO Practica 7. Harada Mori Tema:Tema: Realizado porRealizado por Araceli LabourdetteAraceli Labourdette CalderónCalderón 13-04-2023 Introducción Es útil, principalmente, para la obtención de larvas rabditiformes y filariformes de Uncinarias y estrogiloideos, aunque también desarrollan Ascaris. Fue descrita inicialmente en el año 1955 por Harada y Mori como una técnica de concentración de larvas. Esta técnica se fundamenta en el embrionamiento y separación de larvas sobre papel filtro y su principal utilidad es el estudio de larvas de nematodos como S. stercoralis, uncinarias y Trichostrongylus sp. (Botero et al., 2003). Fundamento Los huevos uncinariformes observados en muestras fecales pueden ser difíciles o imposibles de diagnosticar, mientras que las larvas que surgen de ellos se identifican fácilmente. Un problema práctico frecuente es la diferenciación de las infecciones por Necator de las producidas por Ancylostoma. Para cultivar larvas a partir de huevos, Harada y Mori (1955) describieron un método sencillo y limpio en tubos de ensaye. Objetivo • Realizar cultivo de huevos para obtener desarrollo de larvas y así poder precisar la especie. Material • Tubos de ensayo de preferencia cónica, de 15 mL de capacidad, en su defecto, tubos de ensayo de 25 X 175 mm • Tiras de papel filtro (Whatman #2 u otro similar) cortadas 2 mm menos anchas que el diámetro del tubo y 2 cm más largas, con un extremo más afinado. • Agua destilada • Baja-lenguas, palos de paleta o aplicadores de madera • Gradilla o soporte para tubos • Guantes • Microscopio Método 1. Agregar al tubo 1 ó 2 mL de agua destilada o solución salina. 2. Cortar una tira de papel filtro de 12-15 x 1,5-2 cm dependiendo del diámetro y tamaño del tubo. Extendido de la muestra: 1. Con el aplicador, extender la muestra de heces (0,5 a 1 g) sobre la superficie del papel, dejando libre los extremos. 2. Colocar cuidadosamente el papel filtro dentro del tubo, evitando el contacto de las heces con el liquido. 3. Tapar el tubo y rotular con los datos del paciente. 4. Incubar a 27ºC - 37°C por 4 a 10 días Resultados No hubo presencia de huevos o parásitos en la muestra, solo se observo la presencia de cristales de sal debido a que se evaporo el cloruro de sodio Referencias Biagi F., Enfermedades parasitarias, Editorial la Prensa Medica Mexicana,17ª reimpresión, 2000, México D.F. HARADA- MORI. (2008, 21 de junio). Parasitología General. https://para1.wordpress.com/2008/06/21/harada-mori/
Compartir