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FACTORES QUE INTERVIENEN EN EL PROCESAMIENTO DEL SEMEN BOVINO DURANTE SU CONGELACION* Martha Aguirre M. Steven Anderson Ernesto Huertas V." 1. INTRODUCCION Aunque el manejo del semen en la especie bovina está bastante conocido, existe todavia la discusión referente al momento óptimo de Ilevar a cabo la congelación. Es asi como Cragle y Myers (1954) encontraron que el semen presentaba una movilidad aceptable al estar diluido en soluciones de citrato de sodio que oscilaban de 2,4% a 3,3% y con una concentración de glicerol del 4,5% al 8% para tiempos de equili- brio de 6,5 a 16 horas. Por otro lado Graham etal. (1957) encontraron diferencias significativas (P 0,05) al emplear semen congelado con perlodos de equilibrio de 4 a 12 horas y con un no retorno (N.R.) sobre 75 dIas de 63,4% y 67,8%, respectiva- rnente, mientras que el N.R. al inseminar con semen congelado a las 8 horas de equilibrio del glicerol fue de 65,2%. No se presentaron diferencias en fertili- dad entre las 8 y 12 horas de equilibrio, ni entre las 4 y las 8 horas. Nagase (1972) obtuvo buenos resultados al con- getar semen en pellets con un tiempo de equilibrio que iba de 3 a 10 horas sin encontrar diferencias. Con este trabajo Se trató de determinar el mo- mento óptimo para la congelación del semen, reali- zando análisis antes y después de la congelación, en diferentes etapas del perlodo de equilibrio, después de la adición de la segunda parte del diluyente que contenIa el glicerol. Se estableció una comparaciOn entre la técnica de congelación usual a las 22 horas, contra tiempos de equilibrio menores. El momento inapropiado de la congelación puede conducir a una reducción en la fertilidad de las muestras, ya que ocasiona alteraciones en las condiciones fIsicoqufmi- cas del semen. Es asi como Pace y Graham (1970) observaron un aumento progresivo en la liberación de Ia enzirna intracelular Transaminasa Glutámica Oxaloacética (G.O.T.) a través de las horas de equilibrio y encon- traron una correlación entre la cantidad total de G.O.T. en el medio extracelular y la fertilidad (r = 0,21) signiflcativamente (P( 0.05), to cual indicó que las células espermáticas que contienen altas canti- dades de G.O.T. tienen una elevada capacidad fertili- zante, y a su vez está en relación directa con la concentración de la muestra (1960). Saacke y Marshall (1968), empleando la cobra- ción de Giemsa, encontraron varias deformaciones de los acrosomasde acuerdo a su grado de deterio- ración. Pero aclararon que la relación de Ia morfolo- gIa acrosómica y su alteración con la fertilidad po- tencial, movilidad e inmovilidad o muerte celular, como una consecuencia de alteración, deben ser entendidas con mayor claridad antes que el papel de esta estructura en la fertilización pueda ser comple- tamente evaluado. 2. MATERIALES Y METODOS 2.1. ORIGEN Y MANEJO DEL SEMEN. Se trabajd con 3 toros Holstein, 1 Normando y 1 San Martinero, cuyas edades fluctuaban entre 3 y 5 afios, en el Centro Experimental de Tibaitatá, situa- do a 2.550 m.s.n.m., con temperatura media de 13°C y humedad relativa del 7617c. Los animales fueron mantenidos en pastoreo sobre praderas con pasto kikuyo y un suplemento de concentrado. ContribuciOn del Programa de Fisiolog(a Animal (Division de Ciencias Animales) del Instituto Colombiano Agropecuario, CA. Respectivamente: Bióloga, Laboratorio de IneminaciOn, ICA Tibaitatâ, Apartado Aéreo 151123; Medico Veterinario, Ph.D., Técnjco de la Earten Americana, Bogota, D.E, y Medico Veterinario Zootecnista, Ph.D., Técnico del ICA hasta 1975. Revista ICA, Bogota (Colombia) Vol. XIII. No. 3. pp. 551 . 558 Septiembre 1978. CK ISSN 0018.894. 551 Los eyaculados se colectaron en el Centro de Inseminación Artificial del ICA, una vez por semana a cada animal, empleándose para tal práctica la vagina artificial. Las muestras de semen se mantuvieron a 37°C por 5 a 10 mmutos, tiempo en que se efectuaba el análisis de concentración, empleando un espectrofo- tómetro Baush and Lomb; también se analizaron el porcentaje de movilidad y el porcentaje de esperma- tozoides vivos para determinar rápidamente la calidad de las muestras recolectadas. El semen se diluyó en relación de 1:4 con una solución isotónica previamente calentada a 37°C, a base de citrato de sodio dihidratado 2,9% (ply): yema de huevo 20% (v/v), penicilina (1.000 UI/cc) y estreptomicina (1,000 mg/cc). La temperatura de esta mezcla se llevó a 5°C en 2,5 horas y a esa temperatura se le agregó la otra porción de diluyen- te que coritenfa glicerol al 10% para obtener en el volumen final una concentración del 5%. El semen se mantuvo a 5°C durante 25 horas y se congelo en pellets sobre hielo seco (anhIdrido carbónico sólido) a diferentes horas del tiempo de equilibrio del glicerol: 1H, 2H, 3H, 4H, 5H y 22 horas. Los pellets se descongelaron en baflo maria a 37°C. Las muestras se analizaron en el transcurso del descenso de temperatura de los 37°C, a los 5°C antes de la adición de la segunda porción del dilu- yente y luego, su comportamiento pre y post conge- latorio en las horas de equilibrio anteriormente men- cionadas. tras de semen colocadas sobre láminas portaobjetos previamente calentadas a 37°C. 2.2.2. Porcentaje de células vivas. La tinciOn diferencial de vivos y muertos em- pleando la coloración de Blom a base de Eosina y Nigrosina, es usada para una determinación general de la habilidad de las células para retardar la infu- sión de las moléculas de colorante, pero menos usual para determinar la integridad de La membrana. Los espermatozoides que están vivos son imper- meables a la Eosina y por lo tanto no presentan coloración alguna a nivel de la cabeza, mientras que los muertos se hacen permeables a ella y su cabeza toma una coloración rojiza. La Nigrosina sirve tan solo como medio de contraste. 2.2.3. Transaminasa glutämica oxatoacética. Su actividad se midiO colorirnétricainente. Esta enzima cataliza el proceso de transaminación en el cual el grupo amino del aminoácido es transferido reversiblemente a un ácido ct-ceto y el grupo a-ceto es también transferido al aminoácido original. En este análisis se emplearon el ácido aspártico y el ácido a-cetoglutárico como substratos para determi- nar la formaciOn del ácido oxaloacético (Henry, 1969). 2.2. METODOS DE EVALUACION. Se realizaron 1.440 análisis en 20 muestras de semen cuyos parámetros fueron los siguientes: por- centaje de movilidad, porcentaje de células vivas, tinción acrosómica y el nivel de la enzima mtracelu- lar transaminasa glutámica oxaloacética (G.O.T.) en el medio extracelular. Cada uno de estos exámenes por separado no da una estimación exacta de La calidad de la suspension espermática debido a las limitaciones de cada análisis; sin embargo, la combi- nación de las 4 da una probabilidad analItica de la supervivencia de las células espermáticas y su capaci- dad fecundante. 2.2.1. Movilidad. Mide la efectividad del metabolismo que se ileva a cabo en la pieza media o parte central del esper- matozoide y da como producto final la energIa en forma de Trifosfato de Adenosina (ATP) que em- plea cada célula para sus movimientos. En un análisis microscópico que indica la relaciOn de espermatozoides que presentan un movimiento progresivo, contra aquellos que se encuentran quie- tos o que se mueven en otros sentidos. Se determi- nO al observar a! microscopio (100 X ) las mues- COOH COOH COOH COOH H=C—NH2 C0 H=C—NH2 C0 CH2 4 CH2 G,O.T. CH2 + CH2 COOH CH2 CH2 COOH COOH COOH Acido Acido Acido Acido Aspdrtico Cetoglutarico Glutámico Oxaloacético Las muestras de semen fueron centrifugadas so- bre un gradiente de centnfugaciOn discontinuo de glucosa, cuya densidad era mayor que la del dilu- yente seminal y menor que la de los espermatozoi. des. Las células espermáticas pasaban a través del gradiente sin daflo y al Ilegar al final del tubo liberaban su enzimasolo dentro de la soluciOn de glu- cosa, mientras que el diluyente permanecIa en la su- percie (Brawn, 1971). El suero (glucosa + enzima) se incubó con a- cetoglutarato por un periodo de tiempo dado. La reacción entonces se paraba por la adicón de la dinitro fen ilhidrazina, la cual se unIa con el a.ce- 552 toglutarato restante para asI formar una dinitrofenil- hidrazona. El crecimiento en densidad representó el descen- so en cetoglutarato del cual se calculó su actividad. 2.2.4. MorfologIa acrosómica. Se prepararon lániinas con la coloración de Giem- sa, la cual pet-mite determinar la morfologIa acro- sómica. Las enzimas fertilizantes, hialuronidaza y las proteolIticas "Tripsina como enzima" están normal- mente .contenidas en et acrosoma. A medida que la célula espermática va en su proceso celular catabóli- co seguido del dano celular, el acrosoma empieza a deteriorarse. Sobre la base de este proceso, los es- permatozoides se catalogaron dentro de tres grupos (Saacke and Marshall, 1968): - TIPO I: Espermatozoides vivos caracterizados por una capa acrosómica intacta y uniformemente coloreada. - TIPO II: Células que mostraban desintegracián o alteraciones del acrosoma, COfl acumulaciones de colorante en él o aquellos que mostraban la pre- sencia de un plato ecuatorial menos coloreado; - TIPO Ill: Células que presentaban pérdidas de Ia membrana externa o sin retención de la parte posterior del acrosoma. 3. RESULTADOS Y DISCUSION En la Tabla 1 Se observan los resultados generales de los parámetros medidos, mostrando valores simi- tat-es en el comportamiento del semen a través del tiempo de equilibrio en el estado de precongelación. Analizando estadIsticamente la movilidad, porcen- taje de células vivas, porcentaje de G.O.T. liberada y degradación de las células espermáticas se encontró que existe una diferencia altamente significativa (P 0,01) del semen diluido sin congelar en relación con el congelado. No se encontró significancia en ci comportamiento del semen en ninguno de los dos tratamientos, a través de las horas de equilibrio del glicerol. La movilidad y ci porcentaje de células vivas, mostraron similitud en el comportamiento durante las 22 horas de análisis tanto antes como después de congelar ya que sus curvas van casi paralelas (Figura 1). Se encontró que at efectuar la congelación des- pués de las 4 horas de equilibrio se presenta mayor recuperación esperrnática resultando los valores más altos en el porcentaje de movilidad y porcentaje de espermatozoides vivos a las 4 y a las 22 horas respectivamente, donde se reportan valores del 60,0% de movilidad a las 4 horas y 57,05% de espermatozoides vivos a las 22 horas. Estos datos concuerdan con los suministrados pot- Sullivan y Mixner (1963), quienes analizando movilidad, utili- zación de azácares y producción de ácido láctico, TABLA 1. Resultados generales de dos parámetros medidos. Tiem ode - Equiltbrio Tratamiento % Movilidad % Vivos /c G.O.T. Transaminasa glutámica oxaloacética Acrosoma II III 1 H Precongelacion 75,25 73,50 58,35 83,30 a 12,50 a 4,20 Post-congelaciôn 49,50 47,50 75,10 61,80d 28,05e 9,95 2 H Precongelación 7350 74,10 57,45 82,85 a 13,20 a, b 4,00 Post-congelacion 55,00 53,90 81,00 70,10 c 22,75 d 6,90 3H Precongelacion 73,25 71,95 57,15 82.00 a 13,50 a, b 4,50 Post.congelacion 56,25 54,40 73,65 74,40 b 19,00 c 6,86 4 H Precongelacion 74,00 73,00 59,70 82,05 a 13,40 a, b 4,50 Post-congelación 60,00 56,10 72,50 72,85 b, c 19,95 c 7,20 5 H Precorigelacián 73,50 71,75 57,50 79,85 a, b 14,35 a, b 6,0 Post-congelación 55,50 53,45 75,35 70,75 C 21,50 C 7,70 22 H Precongelacion 68,75 67,85 61,30 74,80a, b 17,75 b, c 7,60 Post-congelaciôn 52,25 57,05 75,50 66,05 c, d 26,20d, e 9,10 Promedios de los valores obtenidos a 10 largo del tiempo de equilibrio, Se encontró diferencia altaniente significativa (P \( 0,01) entre el semen sin congelar y el congelado, asi como por la prueba de Duncan se hallaron diferencias en la morfologia de los acrosomas (Tipo I y tipo II), tal como lo demuestran las letras. 553 %M0vILIDAD C', 0 > > Cl, LU 0 N 0 LU CL Cl, LU >- 0 0 -J > 0 LU 0 el 90 50 PRECONGELACION -- POSTCONGELACION I 22 H IN 2H 311 411 511 TIEMPO DE EQUILIBRIO FIGURA 1. Movilidad y porcentaje de células vivas. encontraron que un perIodo de equilibrio para glice- rol de dos horas fue significativamente inferior (P . 0,01) que a las 5, 12 ó 18 horas. No encontra- ron diferencias en Ia evaluación Ilevada a cabo a Ia primera hora y a las 24 horas. (Estos resultados fueron independientes de los rnétodos de adición de yema de huevo o del perIodo de almacenamiento del semen). El análisis por G.O.T. (Figura 2) mostró en el perIodo precongelatorio un aumento lento pero progresivo, mientras que después de congelar las muestras, se observaron picos correspondientes a una mayor liberación de enzirnas a las 2 y 22 horas. Estos valores dan a entender que aunque se obser- yen cifras de inovilidad y porcentaje de células vivas aceptables del 55% y 53,9% y de 52,25% y 57,05% para las 2 y 22 horas, respectivamente, se presenta una liberación de enzima del 81' y del 75,501?'r, on cada uno de los casos, pero no fue estadIsticamente significativo. De acuerdo con los estudios realizados por Pace y Graham (1970), los datos anteriores indican quc at efectuar la congclación on cualquiera de estas horas dani como rcsultado una baja proba- bilidad de fertilización. Sin embargo, at congelar el semen a las 4 horas del tiempo de equilibrio se obtuvo el porcentaje niás bajo (72,50%) de GOT. on el medic extracelular (Tabla 1) y no fue significativo. Estos resultados concuerdan con los obtemidos por los autores men- cionados antcriorrncnte, quienes no encontraron diferencias significativas (P ( 0,05) at dejar el semen en equilibrio por 3, 5, 8, 13 y 23 horas al realizar análisis de G.O.T., pero observaron un aumento progresivo en la liberación de Ia enzima. En el análisis de los cambios sufridos por los espermatozoides a nivel individual de su acrosoma (Figura 3), para el tipo I se encontró diferencia altamente signiflcativa (P 0,01) entre los 2 trata- mientos entre 22 horas de tiempo de equilibrio antes de Ia congelación con respecto a las otras horas del mismo tratamiento. Mientras que con la prueba de Duncan no se encontró significancia entre los acrosornas que se observaron a las 5 y 22 horas precongelaciOn con 3 y 4 horas post-congelacidn. Con la congelación a Ia 1 y 22 horas de equilibrio se encontró el mayor dano espermático, ohserván- dose disminuciones significativas del 21,50% y del 8,75%, respectivamente (Tabla 1), sobre los valores correspondientes a dichas horas on la precongela- ción. Los espermas parcialmente afectados (Tipo II) aumentaron en un 15,55%, un 9.55% y un 8,451_Xc al realizar Ia congelación a la 1, 2 y 22 horas, respecti- vamente: resultados que fueron altaniente signifIcati- vos respecto a las primeras horas de equilibrio pre- congelación cuando no hubo mayor daio acrosómi- co. Entre tanto, en las congelaciones efectuadas a las 2— 4-5 horas no se encontró diferencia significa- tiva en los acrosomas parciahnente dañados que se encontraron a las 5 y 22 horas preconge[ación (Tabla 1). Comparando los datos pre y post congelatorio, se concluyO que son estad Isticaniente significativos para esta prueha (P 0,05), mientras que la niortali- dad o dano total de las células espermáticas (Tipo III) 110 presentó diferencias (P \( 0.01) y su mayor incremcnto ocurrió durante la primera y segunda horas. RESUMEN En este trahajo se persiguid determinar el mo- mento óptimo para la congciación del semen, se realizaron 1.440 anãlisis en muestras provenientes de 3 torus iloistein, un Normando y un San Martinero, estudiándose todos los esiados dc la operación de congelacion, desde que se agregd at semen la solu- ciOn isotónicade citrato dc sodio, yema de huevo, antibidticos y después de Ia adición del diluyente glicerolado a intervalos de una hora pre y post-con- gelaciOn, haciéndose el examen Imal a las 22 horas. Sc midieron: movilidad, proporción vivus/moer- tos. morfologia del acrosoma y liberación de la enzima intracelular Transaminasa glutãrnica-Oxalo- acética (G.O.T.). Dc estos paránietros se obtuvo una medida de supervivencia espermatica adecuada. La mortalidad espermatica precongelacion alcanzó un máximo a las 22 horas, pero su supel-vivencia des- pués de la congelación alcanzó los valores más altos a las 4 y 22 horas y el minimo a la primera hora del perIodo de equilibrio. El an5lisis de G.O.T. nlostró la mayor liberación de enzinla at congelar a las 2 horas y el menor valor al congelar a las 4 horas Sill ser estadisticaniente significativo con res- pecto a las otras horas de congelación. El menor daflo acrosómico so obtuvo al congelar a las 3 horas. A las 4 horas se ohservó el mayor porcentaje de niovilidad. SUMMARY Factors affecting bovine semen processing during the freezing phase. In this work we tried to find the better moment for the freezing and so we did-1440 analisis from 3 1-lolstein bulls, I Normandy and I San Martinero. All the steps in the freezing process were studied, since the adition of part of the extender to the raw semen and at one hour intervals before the freezing and post-thawing after de adition of the glicerolated extender. Tile final exam was made at 22 hours of the equilibration time. The parameters studied were motility, percentaje of live-dead sperms. acrosome morphology and the release of the intracelular glutamie oxaloacetic Iran- saminase (G.O.T.) enzyme. The higest sperm morta- lity in the prefreezing stage was at 22 hours, but 555 LI] PRECONGELACION LI] POST CONGELACION 75,55 7550 - 67,50 5H 2 2 H 73,65 72,50 57. IS II J I I 3H 4H TIEMPO DE EQUILIBRIO IH 2 H 75,10 FIGURA 2. Análisis por G.O.T. U) 0 49 Iz a 50 F I Espermas sin acrosomas dañados (Tipo I) Precongelación Daño espermñtico Tipo II A Postcongelación DaFic espermàtico Tipo III IH 2H 3H A 4H CO A 5H A 22 H TIEMPO DE EQUILIBRIO i-fl (P FIGURA 3. Análisis de dos car-nbios sufridos por los espermatozoicles a nivel individual de su acrosoma, the survival after thawing gave the best results at 4 and 22 hours and the minimun values at the first hour of the equilibration period. The G.O.T. analisis showed the higest release of the enzyme when semen was frozen at 2 hours and the minor value at 4 hours, but it was not statisti- cally significant with the other hours of freezing. The minimum acrosomic damage was obtained during the freezing at 2 hours and at 4 hours and it was observed the higest percentaje of motility. 6. REFERENCIAS BIBLIOGRAFICAS BRAWN, K.I.; CRABO, B.G.; GRAHAM. E.F. and PACE, M.M. Some factors affecting loss of intracelular enzymes from spermatozoa. Res printed from cryobioloby. 8:220-224. 1971. CRAGLE, R.G. and MYERS, R.M. Effect of levels of sodium citrate, glicerol and equilibrating time on recovery of bovine spermatozoa after storage at .79C. J. Dairy Sci. 37:652. 1954. FLIPSE, R.L. Metabolism of bovine semen. IX Glutamic oxaloacetic and Glutamic Pyruvic Transaminase activities. J. Dairy Sci. 43:773-776. 1960. GRAHAM, E.F.; ERICKSON, W.E. and BAYLEY. N.D. 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