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UNIVERSIDAD NACIONAL AUTÓNOMA DE MÉXICO FACULTAD DE ESTUDIOS SUPERIORES CUAUTITLÁN MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA FISIOLOGÍA GENERAL PRÁCTICA #4 Músculo Liso Comparación Estadística de Medias EQUIPO #2 GRUPO: 2255 INTEGRANTES: - Hernández Rodríguez Joel* - Hernández Pacheco Andrea - Fuentes Flores Jessica Paola - Ledesma Pérez Valeria - Monroy Méndez Brenda - Cruz Morales Luis Alberto - Díaz Valencia David Ali PROFESORES: Mario Alberto Viazcan Carbajal Luis Jesus Lopez Morales SEMESTRE 2020-2 Fecha de entrega: 26/02/2020 Índice 1. Marco Teórico 1.1 Inervación del músculo esquelético………………….. 3 1.2 Estructura funcional de la fibra muscular estriada... 3-4 1.3 Músculo Estriado Esquelético…………………………. 4-5 1.4 Mecanismo de deslizamiento de los filamentos….… 5-6 1.5 Ciclos de contracción………………………………….... 6 1.6 Tétanos…………………………………………………….. 6 1.7 Fatiga muscular ………………………………….…….… 6 2. Objetivos …………………………………...………….…….... 7 3. Materiales y Métodos 3.1.1 Material que proporciona el laboratorio………..… 7 3.1.2 Equipo……………………………………..…………...... 7 3.1.3 Material que debe traer el alumno…..…………........ 7 3.2 Métodos…………………………………………….…….... 8-11 4. Resultados …………………………………..….....……….... 12-13 5. Discusión …………………………………………………..…. 14 6. Conclusiones ……………………………............................. 14 7. Referencias Bibliográficas ………………...………………. 15 1. Marco Teórico 1.1 Inervación del músculo esquelético 2. Objetivos ● Al finalizar la sesión, el alumno analizará las diferencias del músculo liso así como el mecanismo de contracción y su respuesta a la estimulación térmica, química y eléctrica. Y comparar estadísticamente la aplicación de una variable independiente con respecto a un grupo control. 3. Materiales y métodos 3.1.1 REACTIVOS, FÁRMACOS Y SOLUCIONES a) Tiletamina + Zolacepam b) Acepromacina c) Lidocaína d) Pilocarpina o acetilcolina (ACh) e) Adrenalina f) Oxitocina g) Estrógeno h) 2 Frascos gotero con solución Ringer. MATERIAL DIVERSO a) 1 Tabla para disección de roedores. 3.1.2 EQUIPO DE LABORATORIO a) Equipo de registro digital Biopac MP-35 b) Captor de fuerza para Biopac c) Soporte Universal d) Nuez e) Fisiógrafo con Unidad Estimuladora f) Juego de cables para Fisiógrafo g) Extensiones de caimans para la unidad estimuladora h) Baño María con termómetro 3.1.3 MATERIAL QUE DEBE TRAER EL ALUMNO a) Rata hembra cepa Wistar de aproximadamente 250g de peso. b) 2 Agujas para acupuntura de 10-15 centímetros c) Estuche de disección d) 6 Jeringas para insulina. e) Papel sanitario f) Tubo de hilo de algodón g) Tubo de hilo cáñamo h) Guantes latex i) Cubre bocas j) Gasas k) Jabón l) Hoja para rasurar m) Franela y líquido para desinfectar. 3.2 Métodos 1. De la práctica 1, Manejo del Biopac MP-35, se realizó del punto 1 al 10 2. Elige la opción ‘’Force (0-100 grams)’’ 3. Continúa con los puntos 11,12 y 13 para establecer la duración de tu registro. 4. El profesor te asignará el protocolo de analgesia y anestesia para la rata. 5. Sujete a la rata a la tabla de disección de la forma acostada en posición decúbito dorsal. 6. Efectúe la tricotomía de la piel del área ventral del cartílago xifoides a la sínfisis púbica, aproximadamente en un área de 4 x 3 cm. 7. Incida con el bisturí sobre la línea del abdomen hasta la cavidad abdominal 8. Identifique rápidamente el hígado, intestino delgado, intestino grueso, vejiga urinaria y cuernos uterinos. 9. Por incisión roma traspase el mesenterio de una asa de intestino delgado ue se encuentre vacía, y deslice un hilo de algodón, anudar los cabos libres de hilo de algodón, no los amarre sobre el intestino. Realice la misma maniobra en ambos cuernos uterinos. Aplique sobre los cuernos 3 gotas de estrógenos con la jeringa de insulina. 10.Coloque el cabo anulado del intestino delgafo en el porta especímenes del captor. 11.Localiza en pantalla el Show/Hide Journal y realiza los ajustes necesarios de identificación de la práctica. 12.Teniendo todo listo, inicia el registro de la actividad de músculo liso de la rata, presiona START. 13.Normaliza el registro con ‘’Vertical Autoscale’’, posteriormente con ‘’Horizontal Autoscale’’. 14.Una vez estabilizada la actividad del intestino, obtenga un registro de 120 segundos, aplique posteriormente Riger a 4ºC y registre el efecto durante 120 segundos, utiliza marcadores en cada actividad (F9). 15.Aplique posteriormente Riger 40ºC, registre el efecto durante 120 segundos, anote la respuesta observada. 16.Aplique 0.05 ml de pilocarpina localmente por goteo con la jeringapara insulina, registre el efecto durante 5 a 10 minutos, anote la respuesta observada y posteriormente lave con algunas de Ringer 40ºC. 17.Aplique 0.05 ml de adrenalina localmente por goteo con la jeringa 4. Resultados Resultados de la estimulación del músculo liso visceral: Estímulo Intestino delgado. Amplitud. (g) Cuernos uterinos. Amplitud. (g) Registro basal. 167.01 234.65 Ringer (40°). 120.46 116.1 Ringer (4°). 147.68 145.77 Pilocarpina / Ach. 170.55 X Adrenalina. 130.50 X Pulsos eléctricos. / X Oxitocina. X 172.66 5. Discusión En el desarrollo de nuestra práctica pudimos deducir que nuestros resultados son congruentes con los estímulos que se realizaron al material biológico ya que sé apreciar las variaciones eléctricas ejercidas del nervio y posteriormente al músculo. En este primer caso se exhibe la pérdida de acetilcolina ( ACh ), ya que cuando la membrana del nervio se despolariza la misma se libera hacia el espacio sináptico gracias a vacuolas que son expulsadas por medio del mecanismo de exocitosis, posterior a ello la acetilcolina excita a los receptores y a su vez al Ca que es liberado posteriormente en la parte receptora, en este caso músculo, por ello en nuestros resultados se evidencia una depresión de los mismos, podríamos decir entonces que nuestros resultados (numéricos y gráficos), son congruentes con la disminución de acetilcolina. Un segundo estímulo se realizó directamente al músculo esquelético dando apertura a un fenómeno llamado ”Treppe” o mejor conocido como el fenómeno de la escalera, tiene una estrecha relación con el calcio (Ca ++) liberado al transmitir un estímulo nervioso ya que cuando el músculo se encuentra en un periodo refractario absoluto (PRA), el calcio se puede liberar de forma excesiva ya que la membrana está despolarizada, para que esto ocurra nuevamente el músculo tiene que estar en un periodo refractario de repolarización (PRR), para dar apertura a una nueva despolarización. En este punto el calcio es liberado excesivamente por las cisternas gracias a la despolarización de membrana hasta llegar a un estado de tétanos incompleto, esto quiere decir que la liberación de calcio es excesiva, se puede reflejar claramente en nuestros resultados ya que va aumentando la frecuencia de las contracciones conforme a la intensidad de las descargas eléctricas (estímulo). En el quinto caso se estimuló directamente en el nervio con el fin de agotar el neurotransmisor (acetilcolina), disminuyendo la amplitud, esto es por el agotamiento de la acetilcolina, posteriormente los electrodos fueron insertados directamente en el músculo, observando que hubo un aumento en la contracción, esto es debido a el ion calcio (Ca).6. Conclusiones 7. Referencias ● Bertchold, M.W., H. Brinkmeier, y M. Muntener. 2000. Calcium Ion in Skeletal Muscle: Its Crucial Role for Muscle Function, Plasticity, and Disease. Physiol. Rev. 80 (3): 1215-1265. ● Burke, R.E., D.N. Levine, M. Salcman, and P. Tsairis. 1973. Motor units in cat soleus muscle: physiological, histochemical and morphological characteristics. J. Physiol. (Lond.) 234: 723-748 ● Estrada, M. 1999. Fisiología l. Editora BÚHO. Santo Domingo, D. N. ● Guyton, P. 2016. Tratado de fisiología médica. 13ra ed. Elsevier. España. ● Sherwood, L. 2011. Fisiología humana. De las células a los sistemas. Cengage Learning. México. ● Tortora, G. 2018. Principios de Anatomía y Fisiología . 15ta ed. Editorial Médica Panamericana. México
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