MICOLOGIA

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COLEGIO DE BACHILLERES PLANTEL CANCÚN UNO
MAESTRA: EMMA GALLEGO CUEVAS
“MICOLOGÍA,GENERALIDADES Y TOMA DE MUESTRAS”
MESA#1- 6°F
AC CUPUL YURIDIA
AZARCOYA ROSADO CINTHYA
BUENFIL WORBIS CORALIA
GRANADOS AGUILAR FRANCISCO
MALDONADO DOMINGUEZ HONEY
PERERA BRICEÑO ADRIANA
TAMAY CAAMAL MARISA
TAPIA SILVA GABRIEL
¿Qué es la micología?
Proviene de la combinación de dos palabras de origen latino, “Mico”, de “Fungus” y este tiene raíces griegas que significa “Hongos” y Logia de “Logos” que es Estudio. Entonces la Micología es el estudio de los hongos. 
Clasificación actual de los Hongos
Morfología en general
Hifas
Hongos pluricelulares
Levadura
Hongos unicelulares
¿Qué es una hifa?
¿Qué es una levadura?
Estructuras cilíndricas, cenocíticas (aseptadas) o tabicadas (con septos), generalmente multinucleadas. 
Crecen por el ápice (elongación) y pueden hacerlo en cualquier dirección, incluso dentro del sustrato
 Conjunto de hifas se denomina micelio 
Cuando alcanzan cierto tamaño se dice que forma colonias.
Presentan formas diversas: esférica, ovoide, elipsoidal y cilíndrica.
Crecen de forma isodiamétrica (por todos lados) 
Se reproducen asexualmente por gemación, fisión binaria o fragmentación.
Forman cadenas, se denominan seudohifas (por lo que la agregación de varias de ellas se conoce como seudomicelio). 
En la Micología Médica se consideran los hongos dimórficos. 
Estructura de hifa. va= vacuolas; pc= pared celular; re= retículo endoplásmico; 
s= septum; m= mitocondria; n= núcleo; vgs= Golgi; r= ribosoma; p= membrana plasmática;v= vesículas. CDC
Reproducción
Los hongos, durante la fase vegetativa (de nutrición y crecimiento), son haploides.
El ciclo de vida inicia con la germinación de una de las esporas, prosigue con el crecimiento en un sustrato, aumenta la biomasa, y termina nuevamente con la esporulación y la diseminación de los propágulos.
La reproducción puede ser asexual (mitosis) o sexual (meiosis)
Toma de muestras
	Indicaciones generales	Justificación
	a- No aplicarse en forma tópica o local medicamentos antifúngicos por lo menos 5 días antes de la toma de muestra.	La aplicación tópica de medicamentos antifúngicos impide la recuperación de hongos en los cultivos.
	b- Higienizarse la zona antes de concurrir al laboratorio con jabón blanco o solución salina (si está contraindicado el jabón) lavando la lesión con una gasa y no con algodón.	La higiene previa disminuye las posibilidades de contaminación del cultivo con hongos filamentosos ambientales. 
Se prefiere el uso de gasa porque cuando se utiliza algodón pueden quedar fibras del mismo que pueden interferir en la observación microscópica. 
	c-  No colocarse cosméticos, talcos, perfumes, etc. en la zona de la lesión.	Los cosméticos, talcos, etc. dificultan la visualización de las estructuras parasitarias al directo ya que suelen ser oleosos y tener cristales.
	d-     No cortarse al ras las uñas infectadas.	Para obtener suficiente material y observar las características de la lesión
Toma de muestras: Uñas
Material necesario:
 Cajas de Petri estéril, bisturí de punta fina, pipetas Pasteur estériles, suero fisiológico, gasa y alcohol.
 La toma de material se realiza colocando la punta del bisturí por debajo de la lamina ungueal y raspando firmemente.
 Se colocara unas gotas de suero fisiológico con pipeta Pasteur por debajo de la uña (en caso que el despagamiento de la lamina ungueal sea incipiente). Luego de 5 a 10 min. Recolectar la muestra
 En las onixis en las que predomine la afectación de la lamina externa de la uña, se obtendrá la muestra mediante raspado intenso de dicha zona.
Transporte y conservación
 Si la toma de muestra no se realiza dentro del laboratorio, se debe enviar dentro de las 24 horas manteniéndose a temperatura ambiente
Observaciones:
En lesiones de uñas de pies, se puede realizar la limpieza de la zona con una gasa estéril mojada con alcohol blanco,y tomar la muestra después del secado completo de la zona
Estudio parasitológico de piel
Diagnóstico: Sarna o escabiosis
Material necesario: Cajas de Petri estériles o láminas de vidrio limpias, bisturí.
Técnica: Intenso raspado de la piel , con hoja de bisturí en la zona afectada. Se seleccionará la zona en donde se observen micropápulas, trayectos, surcos o vesículas.
Recomendaciones previas: Suspender tratamientos antimicóticos 5 días antes de la toma si es ungüento y 2 semanas antes si es oral, no usar talcos, desodorantes; Higienizar la zona con jabón neutro y uso de gasas evitando la aplicación de cloro.
Escamas de la piel
Material necesario: 
Cajas de Petri estéril, hoja de bisturí. 
Técnica:
Realizar intenso raspado de la piel, con hoja de bisturí en la zona afectada.
Las escamas de piel recolectadas, se colocarán en cajas de Petri estériles
En lesiones topografiadas en piel glabra, se seleccionará las zonas en la que se observen bordes sobre elevados, eritematosos y descamantes.
En aquellos casos en los que presenten ampollas se seccionará el techo de la misma. 
Transporte y conservación: 
si no se realiza la toma de muestra en el laboratorio debe enviarse dentro de las 24 horas a temperatura ambiente. 
Nº de muestras: material suficiente para la realizar una examen directo y 2 tubos de cultivos.
Condiciones del paciente:
-Suspender toda medicación con antifúngicos, una semana previa.
-Suspender toda medicación tópica 3 días previos a la toma de muestra.
Exudado vaginal (muestra de moco o flujo vaginal)
Diagnostico:
 Candida (levaduras)
Preparacion del paciente:
Debe indicársele al paciente que 24 horas antes no debe utilizar óvulos , pomadas , o soluciones antisépticas vaginales ; no mantener relaciones sexuales y para realizar el examen no debe de estar menstruando .
 Pasos:
Siempre que sea posible, se utilizará un espéculo para la adecuada visualización y recogida de la muestra.
 El espéculo se debe introducir en la vagina sin lubricante (puede emplearse agua templada en su lugar). 
Con una torunda de algodón estéril, tomar elexudado vaginal frotando en la zona donde sea más abundante o bien del fondo de saco vaginal posterior
Registrar la muestra con su número de identificación y los datos de la paciente en el libro o cuadernos de registro.
MATERIAL NECESARIO: 
Camilla ginecológica, especulo estéril , pipetas pasteur de plástico, tubos de vidrio con suero fisiológico estéril.
Piedra blanca
EXAMEN DIRECTO 
Hidróxido de Potasio (aclarar), Azul de Algodón
CULTIVOS
 T. ovoides y T. cutaneum.
Observar al microscopio
Hidróxido de potasio del 10 al 20 %
INDICACIONES ANTES DE TOMAR LA MUESTRA
El paciente no debe de haber usado ningún tratamiento contra el hongo en su cabeza
Durante la menos 24 horas antes de la toma de muestra
 PASOS:
Colocar al paciente en un asiento y acomodarlo
Usar guantes y retirar de 5 a 7 pelos y ponerlos en portaobjetos
Piedra Negra
EXAMEN DIRECTO 
Hidróxido de Potasio (aclarar), Azul de Algodón ( se sienten piedritas)
CULTIVOS
Piedraia, crecen a temperatura ambiente en Sabouraud.
Observar al microscopio
Hidróxido de potasio del 10 al 20 %
INDICACIONES ANTES DE TOMAR LA MUESTRA
El paciente no debe de haber usado ningún tratamiento contra el hongo en su cabeza
Durante la menos 24 horas antes de la toma de muestra
 PASOS:
Colocar al paciente en un asiento y acomodarlo
Usar guantes y retirar de 5 a 7 pelos y ponerlos en portaobjetos
Cuero cabelludo.
Material necesario:
Caja de petri estéril.
Hojas de bisturí
Pinzas sin dientes estériles
Técnica:
Se recolectan escamas de la zona alopécica. Mediante una raspado intenso con una hoja de bisturí.
Se observan los pelos que estén clínicamente afectados y se extraerán los mismo utilizando las pinzas.
En caso de exudado purulentos.
Se colocara en una lamina de vidrio limpia
Extiende suavemente el materias evitando los acúmulos
Se recolecta el material con jeringa estéril o hisopo . 
Transporte y conservación: 
Si la toma de la muestra no se realiza en el laboratorio debe enviarse dentro de las24 horas, manteniéndose a temperatura ambiente.
Videos
https://www.youtube.com/watch?v=I_Z5pAV-aTw&app=desktop
 https://www.youtube.com/watch?v=M8viMYfRFYA&app=desktop
Bibliografias
http://www.podium.es/podium/anom15.htm
http://www.facmed.unam.mx/deptos/microbiologia/pdf/Generalidades_micol_med_2013.pdf
http://www.facmed.unam.mx/deptos/microbiologia/micologia/generalidades.html
http://www.scielo.org.ar/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0325-00752009000300014
http://laslevaduras.mex.tl/788048_MORFOLOG-A.html