Deuteromycotas

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Deuteromycotas
Hongos imperfectos
•Agrupa formas de reproducción asexual 
(anamorfos) en su mayoría de Ascomycotas y 
algunas de Basidiomycotas. 
•En muchos casos se puede establecer una relación 
clara anamorfo-teleomorfo
-Ejemplo Venturia inaequalis/Spilocaea pomi
•Otras veces esa relación es difícil de establecer ya 
que:
--En algunos no se conoce el Teleomorfo
--Un género de Deuteromycotas puede 
corresponder a varios géneros en Ascomycotas y 
viceversa
Deuteromycotas
Hongos imperfectos
Ejemplos en los que no hay relación género a género 
anamorfo-teleomorfo
--En oídios el género Oidium se correponde a varios 
géneros en Ascomycotas (ya vistos). También se puede 
decir: varios géneros de Ascomycotas se corresponden a 
un solo género de Deuteromycotas
--Para el género Sclerotium encontramos el teleomorfo
de una especie ( S. cepivorum) en Ascomycotas y de otra 
(S rolfsii) en Basidiomycotas
Deuteromycotas
•Producen conidios sobre conidióforos libres o 
agrupados en conidiomas de diversas formas
•Unos pocos no producen conidios y se conocen 
como micelios estériles
•La reproducción sexual suele ser difícil de 
encontrar porque se produce sólo una vez al 
año, a veces en el rastrojo. 
•En cambio la reproducción asexual la 
encontramos durante el cultivo, en gran 
cantidad, en varios ciclos.
Deuteromycotas
•Por ello una clasificación basada en la reproducción 
asexual resulta muy práctica en fitopatología
•La taxonomía se basa en la forma que adoptan 
conidiomas, conidióforos, conidios y en como se 
originan los conidios desde los conidióforos 
(conidiogénesis).
Conidióforos, 
con phialides, 
conidios 
unicelulares
Conidiogénesis: 
ARTROSPORAS 
(OÍDIOS)
Conidiogénesis: Artrosporas –
OÍDIOS 
Conidiogénesis: Porosporos. Helmisthosporium
Conidióforos torulados
Conidióforo complejo : Aspergillus
Conidióforo Verticillium
Conidióforos/ conidios Botrytis
Alternaria sp mancha zonada Conidios
Alternaria alternata. Conidióforos y conidios
Conidiomas
https://nanopdf.com/download/el-reino-fungi_pdf
(O COREMIO) 
Coremio- conidios. Anamorfo de
Pleurotus fuscosquamulosus-Basidiomycota
V. Laudicina, G. Mirabile,
https://www.semanticscholar.org/author/V.-Laudicina/6933039
https://www.semanticscholar.org/author/G.-Mirabile/1572401460
Esporodoquios- Fusarium sp
Picnidios/conidioforos/conidios
Picnidios- conidióforos y conidios
Picnidios
Granados-Monteros, M. 2018.
Acérvulas
Granados-Monteros, M. 2018
Acérvula con setas 
Acérvula con setas: Colletotrichum sp
Viruelas ( ver clasificación de enfermedades-guía)
Se caracterizan por producir manchas locales 
de crecimiento definido, generalmente con 
halos (no siempre)
Cercospora
Cercosporidium,
Septoria,
Marssonina, etc
Viruelas del Maní
V. temprana: Cercospora arachidicola
V. tardía: Nothopassalora personata
Los teleomorfos: Mycospherella arachis y
M. berkeleyii no se los encuentra en el país
Conidio Cercospora sp
Ciclo
• Sobreviven como micelio en rastrojo superficial o 
ligeramente enterrado, allí producen conidios (inóculo 
primario)que son llevados por salpicaduras durante las 
lluvias a folíolos inferiores
• En condiciones de alta humedad y temperaturas 
superiores a 16 C se desarrollan las manchas , y en ellas 
conidióforos y conidios (ciclo secundario). Policíclica
• La disminución de la superficie fotosintetizante lleva a 
menor desarrollo de granos
• Grupo de enfermedades producidas por hongos derivados del 
antiguo género Helminthosporium, el cual actualmente se ha 
dividido en varios géneros
Helminthosporiosis
• Género Helminthosporium sensu stricto Link (1809)
Conióforo
solitario
cilíndrico
sin ramificaciones
Conidio
emergen por poros
apical y lateral
Sisterna M. 2015
Sisterna M. 2015
Estudio de caracteres morfológicos
Estudio de su ADN
En función de esto se crean 
nuevos géneros
Exserohilum turcicum (An.)
- Setosphaeria turcica(Tel)
Bipolaris maydis (An.)
- Cochliobolus heterostrophus (Tel) 
Tizón o helminthosporiosis del 
maíz y del sorgo
Mancha de la hoja del maíz
Exserohilum turcicum: manchas
Exserohilum turcicum
Sorgo: Exserohilum turcicum
Sisterna M. 2015
Exserohilum turcicum
https://www.flickr.com/photos/cimmyt/
Bipolaris maydis manchas
Mancha amarilla o bronceada del trigo
Drechslera tritici-repentis
Teleomorfo: Pyrenophora tritici-repentis
Pyrenophora tritici-repentis
Pseudotecios
Sisterna M. 2015
Carmona y col., 1999
Mancha amarilla ciclo
• Certificación y evaluación de enfermedades cuarentenarias para 
comercio o movimiento internacional. 
• Manejo de enfermedades que se transmiten por semillas de 
acuerdo a niveles de infección.
• Detectar de la presencia de patógenos que afectan la germinación, 
que producen enfermedades foliares o en otros órganos de la 
planta, o que contaminan lotes.
Test de sanidad de semillas: 
objetivos
• EN LA MUESTRA DE SEMILLA: CONCOMITANTE
• En la semilla 
 EXTERNAMENTE: INFESTACIÓN
 INTERNAMENTE: INFECCIÓN
¿DÓNDE SE LOCALIZAN LOS 
PATÓGENOS?
• Placas de Petri, de 9 cm de diámetro, capacidad 10 semillas. Su uso 
facilita la observación bajo lupa ya que entra completa en el campo 
visual. 
• Bandejas grandes (17x25 cm): 11 g de algodón, 100 ml de agua 
destilada estéril (a.d.e.),1 hoja y media de papel estándar. 
Capacidad:100 semillas 
• Bandejas medianas (16x20 cm): 9 g de algodón, 90 ml de a.d.e., 1 
hoja de papel estándar. Capacidad: 50 semillas 
• Bandejas chicas (12x17 cm): 4 g de algodón, 35-40 ml de a.d.e., 1 
hoja de papel estándar. Capacidad: 20-25 semillas 
• Los datos son orientativos, se sugiere corroborarlos con los 
insumos, bandejas, algodón, papel, que cada uno disponga.
Protocolo de realización del 
blotter test
1. Recipientes: Bandejas plásticas para microondas de 16x20x5 cm. 
2. Sustrato por bandeja: 9 g de algodón, 1 hoja papel de filtro estéril y 40 ml de solución de 
NaCl Proanálisis (11,81 g/l agua destilada estéril (presión osmótica -1 Mpa). 
3. Semilla: Separar de la muestra enviada 200-800 semillas y proceder a la desinfección 
superficial con hipoclorito de sodio al 1%* durante 1-2 minutos, y luego realizar 2 
enjuagues sucesivos con agua destilada estéril* durante 1 minuto cada una, orear las 
semillas sobre papel de filtro esterilizado. 
4. Sembrar en las bandejas en diseño 10 x5, 8 bandejas por muestra de semilla. Mover las 
bandejas cuidadosamente. También podrán sembrarse en otros recipientes: cajas de Petri 
de plástico o de vidrio de 9 cm de diámetro, 10 semillas por placa en un diseño 3, 4,3, cajas 
Gerbox, Casete de semillas. 
5. Incubar a temperatura constante 25ºC , ciclos alternados de luz 12 horas luz fluorescente 
-12 hs.oscuridad, durante 7 días. 
6. Observar bajo lupa binocular 20-40X en busca de las estructuras que permitan reconocer 
el hongo; conidióforos y conidios de C. sojina. Marcar con rojo las semillas con C. sojina. 
No confundir con conidióforos dematiáceos (oscuros) de Cladosporium, setas de 
Colletotrichum o de Chaetomium. Confirmar siempre con la presencia de conidios típicos 
al microscopio óptico 200-400X. 
7. Resultados: incidencia (% de semillas con estructuras de C. sojina).
Protocolo Método blotter test con 
restricción hídrica 
M. M. Scandiani Laboratorio Agrícola Río Paraná-CEREMIC
• Signos de los patógenos que se hallan presentes en la semilla, 
generalmente de Deuteromycetes. 
¿Cómo expresamos?
• Incidencia (% de semillas infectadas) 
• Severidad (nivel de infección/ conc de inóculo) 
• Prevalencia (% de muestras afectadas)
¿Qué se detecta mediante los 
métodos con incubación?