3 Transferencia de embriones 2015

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INTRODUCCIÓN 
Vaca superior 
VENTAJAS DESVENTAJAS 
 Aumenta el factor de 
multiplicación de la 
hembra 
 
 Aumenta progreso 
genético 
 Disminuye el intervalo 
generacional 
 
 Alto costo 
 Personal capacitado 
 
 
Madre de toro 
genealogía 
Merito genético 
 
Es decir pueden o no estar probadas 
Asegurarse genética superior 
• Debido a los mayores costos 
• Habrá progreso genético solo si la donante es 
SUPERIOR 
Fértil 
Buen desarrollo 
Buena madre 
Mucha leche?? 
Buen estado nutricional 
Ciclando 
Sin cría al pie…. 
Adaptada al ambiente (rustica) 
No es necesario merito genético 
Sanidad 
• Asegurada antes de entrar en el programa. 
DONANTE RECEPTORA 
 Superovulación 
 Inseminación 
 Lavaje o colecta 
 transferencia 
 Sincronización con la 
donante 
 Evaluar CL 
 Transferencia 
 Diagnostico de gestación 
tratamientos 
Se utilizan hormonas con actividad FSH 
 
El tratamiento debe comenzar 
con el inicio de una onda 
folicular 
FSH-p (porcina, ovina, bovina, 
recombinante) 
PMSG o eCG (gonadotrofina de la yegua 
preñada) 
hCG gonadotrofina menospausica 
humana 
FSH-p vida media corta 
 
Dosis total: hasta 400 unidades 
8 dosis decrecientes cada 12 hs 
 
1º día 40% 
2º día 30% 
3º día 20% 
4º día 10% 
Vida media larga 
1500 a 3000 UI 
En una sola aplicación 
 
 Inconvenientes 
• Debido a la vida media larga es conveniente 
utilizar anti-PMSG al cuarto día 
• Como es de otra especie se crean anticuerpos y 
en los siguientes tratamientos decae la 
respuesta 
CON DETECCIÓN DE CELO EN CUALQUIER MOMENTO 
 10 días después de 
presentar celo (8-13) 
 Se puede inducir el celo 
con PGF2a 
 
 Inserción de dispositivo 
con P4 
 Al cuarto día comenzar con 
el tratamiento 
superovulatorio (día de 
emergencia de la onda 
folicular) 
Be 2 mg 
P4 50 mg 
Disp P4 
Día 0 
- Disp P4 
 GnRh 
Día 15 
lavaje IATF 
24 hs 
FSH en dosis decrecientes 
4 5 8 6 7 9 
PGF2a 
celo 
Día 0 
superovulación DC + I.A. 12 Y 24 hs 
Día 10 
PGF2a 
Estado del ovario al inicio del 
tratamiento 
Edad de la donante 
Nutrición 
• Condición corporal 
• gosipol 
Historia reproductiva 
Tratamientos sucesivos 
Raza 
 
 
 
Existe diferencia según el día del ciclo 
en el que se encuentre 
Si hay un folículo dominante en 
crecimiento puede afectar 
 
SIEMPRE INICIAR T.S. CON UNA ONDA 
FOLICULAR 
Vaquillas menos dosis 
 
 
Vacas dosis media 
 
 
Vacas de mas de 8 años aumentar dosis 
Buen estado nutricional 
No debe estar obesa (es el problema 
mas común) 
Mejores resultados cuando mejora la 
C.C. 
Flashing alimenticio?? Resultados 
contradictorios, aparentemente no 
influye en el bovino. 
Presente en la semilla de algodón 
Produce 
• Menor tasa de preñez 
• Mayores perdidas fetales 
• Degeneración celular reversible 
 
 
 
 Indicas o sus cruzas menor dosis que las 
británicas. 
Las razas indicas producen mayor 
cantidad de embriones, mayor dificultad 
para el lavaje, menor diámetro del 
cérvix. 
Primavera mayor 
Otoño un poco menos 
 Inverno y verano muy poco 
 
Causas: 
• Adaptación según raza. 
• Lluvias mejor nutrición 
• Stress térmico de las donantes 
Tener siempre presente que el 17 % no 
responde a la superovulación 
30% no resultan en preñez 
Seleccionar donantes 
• Fértiles 
• Jóvenes 
• Buen estado nutricional 
• Ciclando 
• Mas de 90 días pos-parto 
 
 
Determinar la dosis según 
• Raza 
• Edad 
• Frame 
Primer lavaje dosis media 
Corregir según respuesta 
Si al segundo lavaje no responde 
descartar del programa ( PMSG o FIV ??) 
De la donante 
12 y 24 hs de detectado el celo o de 
colocada la GnRh 
1º I.A.: dos dosis de semen de buena 
calidad y fertilidad probada (una dosis 
en cada cuerno si es posible) 
2º I.A.: una dosis I.A. normal (algunos 
recomiendan 2 dosis incluso una tercera 
I.A.) 
 
SINCRONIZACIÓN 
DONANTE RECEPTORA 
 PGF2a 
 Detectar celo 
 
 
 FSH 
 FSH 
 FSH + PGF2a 
 DC+I.A 
 
 
 LAVAJE 
 
 
 PGF2a 
 
 
 
 PGF2a 
 
 Detectar celo. 
 
 
 TRANSFERENCIA 
Be 2 mg 
P4 50 mg 
Disp P4 
Día 0 
- Disp P4 
 GnRh 
Día 15 
lavaje IATF 
24 hs 
FSH en dosis decrecientes 
4 5 8 6 7 9 
PGF2a 
Be 2 mg 
Disp P4 
-Disp P4 
+PGF2a 
+cipionato 1mg 
4 5 8 6 7 9 
Día 15 
transferencia 
instrumental 
Medio de lavaje 
500 ml por cuerno aprox. 
 Medios comerciales 
• Dulbeco`s 
• Ringer lactato 
PBSS 
Evaluar las receptoras 
• Separar las que tienen CL 
• Anotar en que ovario se encuentra el CL 
• Mejor si se marca el anca del lado del CL 
Embretar la donante 
• Tranquilizante 
• Sacar bosta y evaluar respuesta superovulatoria 
(CL en cada ovario) 
• Epidural baja sin sacar el brazo para que no se 
embalone el recto 
Lavar la zona peri-anal (cepillar bien) 
 Introducir la sonda Foley con estilete 
Atravesar el cérvix 
 Ingresar en uno de los cuernos lo mas 
craneal posible 
Retirar 5 cm aprox el estilete 
Empujar nuevamente 
 Inflar el balón (con jeringa sin 
intermediario de goma) 
Comprobar que quedo bien sujeto 
Retirar el estilete 
Conectar tubo en Y 
Dejar pasar liquido al interior del útero 
hasta sentir la distención del mismo 
Masajear 
Abrir el clamp hacia el filtro o tubo 
colector 
Controlar volumen recolectado 
Una vez que pasaron unos 500 ml 
cambiar de cuerno 
Desinflar el balón 
Sacar la sonda y armar de nuevo 
Colocar ídem anterior pero en el otro 
cuerno y repetir el lavado. 
 
IMPORTANTE: el ayudante debe controlar 
que el filtro tenga siempre liquido 
SISTEMA ABIERTO SISTEMA CERRADO 
 Jeringa 60 ml 
 
 Mejor control de la 
cantidad de liquido que se 
coloca y se extrae 
 Posible contaminación 
 El ayudante es el que 
ingresa el liquido 
 
 Tubo en Y 
 
 No hay contaminación ?? 
 Menor control del liquido 
recuperado 
 Mas practico un solo 
operador 
 Es el mas usado. 
De los embriones 
Lupa con platina térmica 
Platina térmica de mesa 
Lugar Estadio Día 
Ovario 
Celo 0 
Ovulación 1 
Oviducto 
2 cel 2 
8 cel 3 
16 cel 4 
Cuerno uterino 
Mt 5 
Mc 6 
Bt 7 
B 7 
Be 8 
Bp 9 
Óvulos sin fertilizar 
Embriones de 8 células 
Mórula Compacta 
Bt 
Mc 
Ovulo sin 
fertilizar 
Mc 
Bt 
O sf 
Be 
IETS (SOCIEDAD 
INTERNACIONAL DE 
TRANSFERENCIA DE 
EMBRIONES 
CRITERIO 
 Grado I, II, III, IV 
 
 EXCELENTE 
 BUENO 
 REGULAR 
 MALO (no transferible) 
 
 Forma 
 Simetría 
 Apariencia 
 Tonalidad 
 Uniformidad 
 Proporcionalidad 
 Zona pelucida 
 
Usar pajuelas de 0,25 ml irradiadas 
Cargar PBSS 4cm 
Burbuja 
Embrión 1cm 
Burbuja 
PBSS 4cm 
Comprobar la presencia del embrión bajo 
la lupa 
Las burbujas son para que no se desplace el 
embrión hacia los extremos 
La primer columna cargada para que lo 
empuje fuera de la vaina. 
Colocar la pajuela unida al intermediario 
de la vaina 
 Introducir la pajuela en el pistolete 
Desplazar la vaina hacia caudal 
Ajustarla con el anillo plástico 
Colocar dentro de la camisa sanitaria 
Dejar siempre en posición horizontal. 
Punta roma con 
los orificios 
laterales 
pajuela 
Pistolete 
Estilete 
Embretar la receptora 
Vaciar el recto 
Con el brazo adentro epidural baja 
 Introducir pistolete con camisa sanitaria 
Al llegar a la entrada del cérvix el 
ayudante retira la camisa sanitaria 
Enhebrar 
 Introducir en el cuerno ipsilateral al CL 
DEPOSITAR LO MAS CRANEAL POSIBLE 
LENTAMENTE. 
ESTADIO 
EMBRIONES 
TRANSFERIDOS 
Preñez 
Mt 586 359 61% 
Mc 1178 792 67% 
B 600 402 67% 
Be 139 99 71% 
total 2503 1652 66% 
Schneider y col. 1980 
transferencia Receptoras Preñez 
n n % 
1º 183 102 56% 
2º 108 50 46% 
3º 40 15 37% 
Liebriech 1991 con embriones FIV